Ictericia y fiebre en un gato asociados a Hemoplasmosis.
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- Agustín Alvarado Fuentes
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1 Ictericia y fiebre en un gato asociados a Hemoplasmosis. 1 Bolio-González, ME; 1 Sauri-Arceo, CH, 1 Gutierrez-Blanco, E; 2 Rosado-León, E; 2 Martínez-Vega, PP. 1 Clínica de Pequeñas Especies. Departamento de Medicina Interna y Cirugía. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Universidad Autónoma de Yucatán. 2 Residente de la Clínica de Pequeñas Especies. Departamento de Medicina Interna y Cirugía. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Universidad Autónoma de Yucatán. Resumen. La hemoplasmosis felina antes conocida como hemobartonelosis, es una enfermedad de los gatos ocasionada por tres micoplasmas: haemofelis, haemominutum y turicensis, de los cuales el primero es el considerado como más patógeno, sin embargo, los tres son agentes oportunistas en infecciones de tipo viral, principalmente VLeFe y VIFe. Son parásitos epicelulares de los eritrocitos felinos. La manifestación de la enfermedad es principalmente anemia hemolítica con componentes inmunomediados, los demás signos que se pueden encontrar dependen del grado de anemia y de sí existe algún padecimiento concomitante. El diagnóstico no es sencillo y se basa en demostrar la presencia de éstos parásitos por medio de frotis teñidos o bien, la utilización de métodos de biología molecular (PCR). El tratamiento es a base de tetraciclinas principalmente Doxiciclina que es considerada como la de menor toxicidad en gatos; en los casos de anemia severa es necesario transfusiones sanguíneas; también debe considerarse el uso de glucocorticoides para tratar la anemia inmunomediada, en especial cuando se observa eritrofagocitósis. Generalmente la recuperación es buena y los animales pueden quedar como portadores asintomáticos (Greene, 2000; Prats, 2002; Lappin, 2004). Introducción. La Hemobartonelosis felina, recientemente llamada Hemoplasmosis felina, es causada por un parásito gramnegativo epicelular de los eritrocitos de los gatos, que actualmente se clasifica como mycoplasma y se reconocen tres especies: M. haemofelis, M. haemominutum y M. turicensis; de las cuales M. haemofelis es la mas patógena (Lappin, 2004; Tasker, 2006; Willi, et al., 2006b; Lobetti, 2007) La forma de transmisión mas común se produce a través de artrópodos que chupan sangre como las pulgas; el contagio de las gatas con enfermedad clínica a sus crías es posible, aunque no se sabe exactamente si el contagio ocurre por vía uterina, durante el parto o la lactancia. También puede ocurrir el contagio por transfusión de sangre de gatos portadores a sanos (Greene, 2000; Lobetti, 2004). Durante la enfermedad se producen diversos ciclos de parasitemia cada 3 a11 días. El número de parásitos aumenta en la circulación periférica hasta alcanzar un máximo en 1 a 5 días y después disminuye rápidamente en unas horas (Prats, 2002; Kewish et al., 2004; Tasker, 2006). La Hemoplasmosis felina presenta cuatro etapas: a) Preparasitémica, donde los gatos no muestran signos ni parásitos en circulación (2 a 17 días). b) Aguda con signos clínicos y parasitemia (1 mes).
2 c) De recuperación o normalización, con anemias leves tendientes a normalización y signos clínicos inaparentes (2 a 4 meses después de la inoculación). d) Portador que puede durar por años, los gatos son clínicamente normales, con recidivas poco frecuentes (Greene, 2000; Prats, 2002). La gravedad de la enfermedad es variable y depende del grado de anemia, el estadío de infección y el estado inmunitario de los gatos infectados, la manifestación clínica característica es una anemia hemolítica de tipo regenerativa, que se asocia a la infección con M. haemofelis. Los cuadros subclínicos son mas frecuentes en las infecciones con M. haemominutum y M. turicensis. También se ha asociado esta enfermedad como un oportunista en infecciones virales como LeVFe y VIFe (Tasker, 2006; Lobetti, 2007). Los cuadros observados en la hemobartonelosis o hemoplasmosis son generalmente de anemias hemolíticas de leves a graves según el grado de parasitemia, puede también presentarse fiebre con decaimiento marcado y mucosas pálidas aunque algunas veces pueden mostrarse ictéricas; en ocasiones puede haber esplenomegalia (Greene, 2000; Lappin, 2004). La anemia se produce básicamente por dos mecanismos: 1- Los Hemoplasmas se unen a la superficie de los eritrocitos causando daño directo a la membrana celular, muchos eritrocitos parasitados son fagocitados directamente en el bazo y otros son desviados a espacios vasculares estrechos y ahí son fagocitados; los macrófagos pueden remover los hemoplasmas de la superficie del eritrocito y éstos regresan a la circulación, pero presentan una fragilidad osmótica mayor, esto provoca la perdida de la biconcavidad, formando esferocitos, lo cual reduce su vida media. 2- La alteración de la membrana celular del glóbulo rojo conduce a que algunos antígenos de superficie se oculten y a que aparezcan otros, generándose una reacción Ag-Ac-complemento la que produce hemólisis. Con el tiempo también se producen autoanticuerpos, que aumenta la lisis de eritrocitos (Greene, 2000; Prats 2002; Lappin, 2004; Lobetti, 2004; Tasker, 2006; Lobetti, 2007). Los síntomas dependen de la fase en que se encuentra, de la velocidad de desarrollo de la anemia y de la intervención del parásito como agente patógeno principal u oportunista secundario. El tipo de anemia detectada en los pacientes con Hemoplasmosis es generalmente macrocítica normocrómica; aunque en ocasiones puede ser hipocrómica. Los hallazgos regularmente son anemia regenerativa, con esferocitos, policromasia, anisocitosis, cuerpos de Howell-Jolly y metarrubricitos. Normalmente el recuento de blancos está aumentado y neutrofilia en los casos agudos y con monocitosis en los crónicos. Las pruebas bioquímicas no arrojan resultados significativos, a no ser porque en algunos casos pueden hallarse aumentadas las transiminasas, la fosfatasa alcalina así como también la bilirrubina directa, esta última debido a la hemólisis (Lappin, 2004; Tasker, 2006; Lobetti, 2007). El diagnóstico definitivo requiere la demostración de los hemoplasmas en los eritrocitos del paciente, ésta técnica presenta mucha dificultad ya que sólo el 50% de los positivos muestran microorganismos en el frotis. Para lo anterior, se debe realizar un frotis y se tiñe con colorantes tipo Romanowski (Giemsa, Wright o Diff- Quick). Por lo general se observan formas cocoides de 0.1 a 0.8 micras de diámetro, a veces se detectan formas anulares y pueden hallarse solos, de a pares, en cadenas y dispersos en el frotis. El frotis deberá realizarse y revisarse una vez
3 obtenida la muestra, puesto que la presencia del parásito en el mismo varía en relación de los ciclos de parasitemia del agente (Prats 2002; Lappin, 2004; Willi et al., 2006a,b;Tasker, 2007). Actualmente los estudios para determinar la presencia de los hemoplasmas se realiza por métodos de biología molecular (PCR) que tienen una alta sensibilidad y especificidad, que permiten además determinar la especie mycoplasma que está presente (Lappin, 2004; Tasker, 2006; Willi, 2006a,b; Lobetti, 2007). El tratamiento es a base de antibióticos, el de primera elección en gatos es la Doxiciclina, que es la tetraciclina que presenta menos efectos adversos y la dosis recomendada es de 5mg/Kg/PV/BID, que puede ser hasta por 21 días; generalmente los gatos responden bien, aunque es probable que los mycoplasmas no se eliminen por completo y los pacientes sean portadores asintomáticos. En casos donde la anemia es severa está recomendada la transfusión sanguínea y el uso de glucocorticoides como la Prednisolona a dosis de 1 a 2 mg/kg/bid, en gatos con anemia severa, este tratamiento es para prevenir la eritrofagocitósis y los efectos autoinmunes que podrían ocasionar los hemoplasmas (Greene, 2000; Prats 2002). Descripción del caso clínico. Se presenta a consulta un gato doméstico castrado de 2.5 años, el motivo de la consulta es por que el gato se ha encontrado decaído, con fiebre e hiporexia desde hace 5 días. Al examen físico, el gato presentó fiebre (41 C), taquicardia (220 latidos/min), depresión, deshidratación (6%), mucosas pálidas y con ictericia, los demás valores fisiológicos se encontraron dentro de los rangos normales. Se realizó una biometría hemática (BH), coproparasitoscópico directo, perfil renal y transaminasas hepáticas; los resultados de la BH fueron macrocitosis con hipocromía, el diferencial de glóbulos blancos reveló una leucopenia por linfopenia y neutropenia, en la citología hemática se observó rouleax, anisocitosis, policromatófilos, esferocitos, metarrubricitos, cuerpos de Howell-Jolly y microorganismos de hemoplasma (figura 1), macroscópicamente se observó además autoaglutinación. El coproparasitoscópico resulto negativo, perfil renal y transaminasas hepáticas se hallaron dentro de rangos normales. Al paciente se le envió como terapéutica Doxiciclina a dosis de 5 mg/kg/bid por 21 días, dieta blanda y antipiréticos; la propietaria reportó mejoría del paciente al tercer día de iniciado el tratamiento. Conclusiones. La Hemoplasmosis es una enfermedad hemoparasítica que puede pasar desapercibida en los gatos. Deberá de incluirse en el diagnóstico diferencial en gatos con anemia, ictericia y fiebre.
4 Bibliografía consultada. Greene, CE. (2000). Enfermedades Infecciosas en Perros y Gatos. Segunda edición. Mc Graw-Hill Interamericana, editores. México, D.F. Kewish, K; Appleyard, E; Myers, S; Kidney, B; Jackson, M. Mycoplasma haemofelis and Mycoplasma haemominutum detection by polymerase chain reaction in cats from Saskatchewan and Alberta. Canine Veterinary Journal, 2004; 45: Lappin, MR. Haemobartonellosis. 29 th Grecia. World Congress WSAVA Rhodes, Lobetti, R. Haematological Changes Associated With Tick-Borne Diseases. 29 th World Congress WSAVA Rhodes, Grecia. Lobetti, R. Feline Haemoplasmosis. 32 th Australia. World congress WSAVA Sydney, Prats, A. (2002). Hemobartonelosis feline en: Enciclopedie Medico Chirurgicale, Laforge, H. Editions Scientifeques et Médicales Elsevier. Paris, Francia. E-MI-1-4 Tasker, S. Feline Haemoplasma Infections. 31 th World Congress WSAVA Praga, República Checa. Willi, B; Boretti, F; Baumgartner, C; Tasker, S; Wenger, B; Cattori, V; Meli, M; Reusch, C; Lutz, Hofmann-Lehmann, R. Prevalence, risk factor analysis, and followup of infections caused by three feline Hemoplasma species in cats in Switzerland. Journal of Clinical Microbiology, 2006a; 44: Willi, B; Tasker, S; Boretti, F; Doherr, M; Cattori, V; Meli, M; Lobetti, G; Malik, R; Reusch, C; Lutz, H; Hofmann-Lehmann, R. Phylogenetic analysis of Candidatus Mycoplasma turicensis isolates from pet cat in the United Kingdom, Australia, and South Africa, with analysis of risk factors for infection. Journal of Clinical Microbiology, 2006b; 44:
5 Figura 1. Eritrocito (flecha) que contiene hemoplasmas.
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