Desarrollo Participativo Integral Rural (DEPARTIR)

Transcripción

1 Desarrollo Participativo Integral Rural (DEPARTIR) MANUAL TéCNICO 04 Calidad de agua Verónica Guevara Torres Juan Carlos Moran Centeno Serie de Manuales y Guías técnicas Facultad de Agronomía Programa de Desarrollo Participativo Integral Rural (DEPARTIR) Managua, Nicaragua Octubre, 2011

2 CONTENIDO Sección Pág. 1 Introducción 1 2 Situación actual de las fuentes de agua 3 3 Metodología empleada en el análisis del agua 4 4 Resultados obtenidos 6 5 Bibliografía 10

3 Sobre el DEPARTIR La Universidad Nacional Agraria (UNA), con más de 150 profesores y 3000 estudiantes, reconoce la gravedad de sus limitaciones y ha estado trabajando durante los últimos cuatro años en sistematizar 28 años de diversos esfuerzos de relaciones entre las comunidades y la Universidad. El objetivo de la UNA es reestructurar su aproximación a la realidad, para asegurar que esta aproximación participativa con la población rural no solamente esté basada en los individuos involucrados sino en la filosofía, misión y estructura institucional y operacional de la Universidad misma. El Programa de Desarrollo Participativo Integral Rural (DEPARTIR) desea ofrecer propuestas concretas para apoyar el progreso sostenible en áreas rurales, estableciendo una visión a largo plazo de una interacción dinámica entre productores y productoras, estudiantes y científicos, para el progreso conjunto de procesos productivos económicamente viables, ecológicamente sostenibles, socialmente aceptables y humanamente deseados. El propósito de este programa es desarrollar una estrategia universitaria para construir un modelo interactivo que conjugue los mecanismos institucionales y responda a los requerimientos urgentes y los retos enfrentados por familias campesinas. En este marco se decidió empezar a sistematizar algunos de los resultados prácticos desarrollados por el equipo de investigadores con las familias campesinas durante los últimos cuatro años, y publicarlos en forma de manuales prácticos. Esperamos les sean de utilidad. José Cisne Contreras, Coordinador DEPARTIR Álvaro Benavides González, Miembro fundador DEPARTIR Daniel Querol Lipcovich, Asesor 1

4 1. Introducción El agua es un recurso natural necesario para el desarrollo de un gran número de actividades humanas. Su creciente degradación por disminución de su calidad implica la reducción del número de usos que se le da; es por ello que se hace necesaria la realización de estudios que permitan determinar su calidad, tanto físicas, químicas y microbiológicas, en esta ocasión se hará una determinación microbiológica. Se debe conocer la forma de los patógenos hídricos y determinar su presencia y origen, la magnitud y oscilación de su número, el curso de su ciclo vital y el índice de su supervivencia. Los parámetros biológicos en las aguas potables son de mucho interés, los microorganismos que puede haber en el agua son virus, bacterias, hongos, algas y protozoos. Aquellos que son inocuos para el hombre no tienen significación sanitaria, por lo que el control microbiológico del agua se va a centrar en las especies patógenas que causan un daño a la salud de las personas. Dado que buscar todo tipo de microorganismos patógenos, por su diversidad, es costoso y complicado y como la relación patógenos/no patógenos es muy pequeña, se realiza un control del agua a través de indicadores microbiológicos de contaminación. Diversas normativas recogen una serie de análisis microbiológicos según se efectúe para nuestro caso solo se realizara un análisis mínimo: Coliformes Totales. Si el agua es procedente de un manantial, vamos a realizar un análisis microbiológico normal y en aquellos casos en que es muy difícil realizarlo, realizar un análisis mínimo, con el objetivo de determinar la contaminación microbiológica que puede existir, buscar las causas de esa contaminación y proponer soluciones al problema, si existiese alguna. Como parte del trabajo que actualmente la Universidad Nacional Agraria (UNA), mediante el Programa de Desarrollo participativo integral rural (DEPARTIR), está realizando esfuerzos en diversas comunidades del municipio de Las Sabanas, Madriz (El pegador, Buenas Vista, Nueva Esperanza), se realizó un análisis de las principales fuentes de abastecimiento de agua en las comunidades antes mencionadas, para determinar la carga contaminante. 2

5 2. Situación actual de las fuentes de agua Uno de los principales problemas presentes en las sociedades modernas, es la contaminación de las fuentes de agua, lo que conlleva a ocasionar trastornos en la salud de las personas y animales domésticos de igual manera la producción agrícola pierde calidad, lo que reduce su precio y demanda en los mercados, uno de los principales agentes causantes de estos problemas son los coliformes fecales, definiéndose como un subgrupo, capaz de fermentar la lactosa a 44 ºC. Aproximadamente el 95% del grupo de los Coliformes presentes en heces están formados por Escherichia Coli y ciertas especies de Klebsiella, se encuentran casi exclusivamente en las heces de los animales de sangre caliente. La capacidad de los Coliformes fecales de reproducirse fuera del intestino de los animales homeotérmicos es favorecida por la existencia de condiciones adecuadas de materia orgánica, ph, humedad. Desde hace mucho tiempo se han utilizado como indicador ideal de contaminación fecal. Su presencia se interpreta como una indicación de que los organismos patógenos pueden estar presentes y su ausencia indica que el agua se halla exenta de organismos productores de enfermedades. Tomando en cuenta que el agua es de gran importancia para la vida, pero sin embargo esta es un vector de una gran cantidad de microorganismos que afectan la salud de las personas por lo cual es substancial conocer el grado de potabilidad. Para considerar si un suministro de agua es o no apta para su consumo ésta ha de someterse a cuatro tipos de análisis: 1. Análisis químico, donde se determinará su dureza, residuo seco, oxígeno disuelto, ph, cloruros, sulfatos, así como otros productos químicos nocivos; por ejemplo, cobre, plomo, zinc, etc. 2. Examen físico, que determinará la posible turbidez o no, el color, el sabor y olores inadecuados, es decir, las propiedades organolépticas de las aguas. 3. Análisis biológico, que permite determinar la presencia de algas, protozoos, grupos de nematodos, larvas de insectos acuáticos, etc. 3

6 4. Análisis microbiológico, que establece un examen y estudio de gran valor y vital importancia en la prevención de epidemias resultantes de la contaminación de aguas. Con este tipo de análisis se determinará el número de bacterias presentes en el agua así como la presencia o ausencia de bacterias del grupo coliforme y Streptococus faecalis, cuya presencia es indicativo de contaminación fecal y por tanto, de la posible presencia de cepas microbianas patógenas responsables de enfermedades, tales como las fiebres tifoideas, fiebres paratifoideas, disentería, cólera, etc. 3. Metodología empleada en el análisis del agua Se tomaron seis muestra en recipientes con capacidad de 500 ml a una profundidad aproximada de cm cada una, el cual es considerado adecuado para el análisis bacteriológico, se recomienda recipientes con una capacidad mínima de 250 ml, siendo conveniente utilizar otros de mayor capacidad. Para determinar la presencia de microorganismos se realizó la Prueba presuntiva NMP (Número más Probable), utilizando caldo lactosado (Lauril Triptosa, Púrpura de bromocresol, Mc.Conkey), realizándose de la siguiente manera. 1. Disponer 3 series de 10 tubos con 10 ml. de caldo lactosado (Lauril Triptosa, Púrpura de bromocresol, Mc.Conkey), 1 series a concentración normal (1 %), otra serie a concentración normal (1%) en tubos grandes y otra serie a concentración de baja (0.1 %). 2. Colocar una campana de Dürham en posición invertida en cada tubo. 3. Esterilizar en autoclave. 4. Añadir con pipetas estériles, la muestra de agua de la siguiente forma: a). 10 ml de la muestra inicial a 10 tubos conteniendo concentración normal (1 %) b). 1 ml de la muestra inicial a 10 tubos conteniendo concentración normal (1 %) c). 0.1 ml de la muestra inicial a 10 tubos conteniendo concentración baja (0.1 %) 5. Incubar los tubos a 37 ºC durante horas. 4

7 6. Se consideran positivos los tubos que tras la incubación producen gas (al menos un 10 % del volumen de la campana Dürham), y el viraje del indicador, por la fermentación ácida de la lactosa. 7. Determinar el NMP de coliformes totales/100 ml de agua a partir de los tubos positivos. De igual manera se procedió a realizar la prueba rápida mediante el método de filtro de membrana, utilizando equipo portátil, aquí se pasaba una muestra de agua (200 ml), al vacío por una membrana de celulosa de 0.45 micrones, el instrumento debe de esterilizar entre muestra y muestra para evitar una contaminación, una vez filtrada la muestra de agua se coloca sobre un plato petrí, el cual contiene medio lo que permitirá el crecimiento de los microorganismos fecales presentes en el agua (Figura 1). Figura 1. Prueba de rápida mediante el método de filtro de membrana 4. Resultados obtenidos Una vez que se identificó la presencia de microorganismos fecales se procedió a realizar la prueba confirmativa, cultivados en medios EMB Levine. 5

8 En todos los tubos se obtuvieron resultados positivos en la prueba presuntiva, se procedió a tomar una muestra, se introdujo un asa de siembra estéril y se toma una porción la cual se sembró en estría en una placa Petrí con medio EMB Levine. El EMB Levine contiene eosina y azul de metileno que inhibe parcialmente el crecimiento de los microorganismos Gram negativos, además la combinación de azul de metileno y eosina permitieron diferenciar microorganismos lactosa positiva de los negativos. Se incubaron por horas a una temperatura de 44 ºC. Cuando transcurrida las horas se procede a observar el plato petrí, en un estereoscopio o microscopio para realizar el conteo de las bacterias (Figura 2). Figura 2. Realización de la prueba confirmativa, de microorganismos fecales en las muestras de agua procedentes de las comunidades de Las Sabanas, Madriz. Transcurrido el tiempo de incubación se procedió a realizar la observación de los platos petrí, notándose crecimiento abundante para todas las muestras (Figura 3 y 4). 6

9 Figura 3. Crecimiento microbiológico, en medio EMB Levine, líquido y sólido para muestras de agua de la comunidad Nueva Esperanza y El Pegador, Municipio de Las Sabanas Figura 4. Crecimiento microbiológico, en medio EMB Levine, líquido y sólido para muestras de agua de la comunidad Buena Vista, Municipio de Las Sabanas. 7

10 El conteo de colonias se realizó a las 24 horas de haberse realizado la siembra, el área de conteo fue un recuadro de 5 mm 2 en donde se obtuvo los siguientes resultados, calculado mediante la fórmula siguiente: Coliformes. Totales. Contado Colonias. de. Coliformes. Contada * 200ml 200. ml Volumen. de. l. Muestra. original. Filtrada Cuadro 1. Cantidad de colonias de Coliformes Fecales encontradas en Muestras de Agua en tres comunidades del Municipio de Las Sabanas, Madriz. Muestr a Comunida d Origen de la Fuente Colonias Contada s en 5 mm 2 Total de Colonias Aproximada s Nivel Permisibl e 1 Nueva Agua ,200 <2,2 Esperanza Potable 2 El Pegador Agua ,950 <2,2 Potable 3 El Pegador Laguna ,500 <100 4 El Pegador Quebrad ,650 <100 a 5 Buena Quebrad ,500 <100 Vista a 6 Buena Quebrad ,740 <100 Vista a * El Número de colonias Aproximadas se obtuvo tomando en cuenta que el filtro cuenta con un promedio de 143 recuadros de 5 mm 2. De acuerdo a estos resultados Obtenido el Agua que la población está consumiendo superan ampliamente los límites permisibles, estipulado por la EPA y la OMS, lo que pone en riesgo la salud de los habitantes de estas comunidades, es de suma importancia orientar a los comunitarios acerca de métodos que disminuyan el riesgo de contraer enfermedades estomacales severas que puedan llegar a ocasionar la muerte de las personas. 8

11 5. Bibliografía Valiente, C; Mora, D Estudio bacteriológico del agua asociado a brotes de diarrea en Costa Rica, , Cartago, CR. 8p. Guías para la Calidad del Agua Potable, Vol. 3, Publicación Científica N 58, Organización Panamericana de la Salud, Washington, (1988). Obón de Castro, JM. S.f. Análisis Microbiológico del agua. 29p. Pall Corporation Garantizar una detección precisa: Los filtros de membrana de Pall optimizan su aplicación. Barcelona, Esp, 20 p. Vargas, C Manual para análisis bacteriológico de agua en sitios de desastres: Método de filtro de membrana, utilizando equipo portátil. Lima, Perú. 23p. 9

12 El Programa de Desarrollo Participativo Integral Rural (DEPARTIR) de la Universidad Nacional Agraria (UNA) desea ofrecer propuestas concretas para apoyar el progreso sostenible en áreas rurales, estableciendo una visión a largo plazo de una interacción dinámica entre productores y productoras, estudiantes y científicos, para el desarrollo conjunto de procesos productivos económicamente viables, ecológicamente sostenibles, socialmente aceptables y humanamente deseados. El propósito de este programa es una estrategia universitaria para construir un modelo interactivo que conjugue los mecanismos institucionales y responda a los requerimientos urgentes y los retos enfrentados por familias campesinas. En este marco decidimos empezar a sistematizar algunos de los resultados prácticos desarrollados por el equipo de investigadores con las familias campesinas durante los últimos cuatro años, y publicarlos en forma de manuales prácticos. El equipo DEPARTIR Otras publicaciones de la serie: Manuales Técnicos 01 Fresa Orgánica en Nicaragua 02 Producción de Cucurbitas 03 Crianza de Patos 04 Calidad de Agua 05 Perforadora de Pozos Guías Técnicas 01 Integración de la UNA en el Desarrollo Rural de Nicaragua 02 Producción orgánica de fresa en Nicaragua 03 Manejo de Suelos Utilizando Indicadores de Calidad de Suelo 04 Introducción a la Estadística y SPSS 05 Análisis FODA Edición auspiciada por APPEAR, en el marco del Proyecto Cambiando Mentes y Estructuras Cualquier comentario y sugerencias enviar a: abenavides@una.edu.ni MT01DEP v1.0, 10/