ENFERMEDADES DE LA VID.

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1 ENFERMEDADES DE LA VID. Ing. Agr. Vivienne Gepp, MSc. Curso de Protección Vegetal Frutícola. Año 1. BIBLIOGRAFÍA Arias Giralda, A. et al Los parásitos de la vid; estrategias de protección razonada. M.A.P. y A. 34 p Pearson, R.C.; Goheen, A.C Compendium of grapevine diseases. APS Press, St. Paul. 93 p Flaherty, D.L. et al Grape pest management. University of California Publication Nº p Internet IPM Resources on Grapes and Current Enfermedades de la vid en Uruguay Excoriosis Peronospora Oidio Antracnosis Podredumbr es de racimos: Botrytis otros Enfermedade s de tronco Leaf roll Nepovirus Xiphinema index o MILDIU Plasmopara viticola Oomycete o MILDIU Plasmopara viticola o MILDIU Plasmopara viticola 1

2 o MILDIU Plasmopara viticola Ciclo: invierno oosporas primavera zoosporangios infección primaria inóculo secundario ciclos secundarios... verano ciclos secundarios?... otoño ciclos secundarios?... hoja caída Oosporas zoosporangios en verano? 2

3 Desarrollo en el espacio, ciclos de la enfermedad Condiciones favorables: invierno húmedo primavera lluviosa verano lluvioso 22-25ºC tejido joven, en activo crecimiento. MANEJO DEL CULTIVO drenaje primeros focos poda de verano CONTROL QUÍMICO Objetivos principales FUNGICIDAS: de contacto: Cúpricos Mancozeb, maneb, metiram Propineb, Ziram, Ferbam Folpet, Captan Tolyfluanid Strobilurinas: Azoxystrobin, Pyraclostrobin, etc. FUNGICIDAS SISTÉMICOS: Fosetil aluminio, Fosfito de potasio Metalaxil, Benalaxil Cimoxanil Dimetomorph Restricciones 3

4 POLVILLO, CENIZA u OIDIO Uncinula necator Ascomycete OIDIO OIDIO Ciclo del OIDIO Yemas Cleistotecios? Brotes nuevos Sarmientos Conidios Racimos Hojas OIDIO Condiciones: 25-28ºC alta humedad, sin lluvias brotes jóvenes FUNGICIDAS: Azufre POLVILLO, CENIZA u OIDIO Inhibidores de la Biosíntesis del Ergosterol Strobilurinas: Azoxystrobin, Pyraclostrobin Tolyfluanid 4

5 EXCORIOSIS. Phomopsis viticola EXCORIOSIS. Phomopsis viticola EXCORIOSIS EXCORIOSIS EXCORIOSIS EXCORIOSIS Ciclo: 21-3 días Necesita: frío (23ºC) lluvias brotes jóvenes 5

6 EXCORIOSIS Poda Fungicidas: Dinitro ortro cresol, arsenito de sodio brotes 1-3 cm y 6-12 cm Captan, Folpet, Maneb, etc. Elsinoe ampelina Sphaceloma ampelinum ANTRACNOSIS ANTRACNOSIS ANTRACNOSIS Elsinose ampelina Sphaceloma ampelinum ANTRACNOSIS ANTRACNOSIS Ciclo: primavera: esclerotos en bordes de cancros conidios bayas caídas conidios o ascosporas infeccion de tejido joven Condiciones: precipitaciones óptimo 24-26ºC síntomas en 4 días a 32ºC 6

7 ANTRACNOSIS MANEJO: Variedades muy sensibles, ej.: Cardinal, Italia, Thompson seedless (Sultanina) cúpricos, ditiocarbamatos, ftalimidas, tolyfluanid,strobilurinas, diatinon Podredumbres de racimos Agentes causales: HONGOS: Oomycetes y Zigomycetes: Plasmopara viticola, Rhizopus sp. Ascomycetes y Deuteromycetes: Guignardia bidwellii, Pseudopezicula tracheiphila,botrytis cinerea, Phomposis viticola, Greeneria uvicola, Coniella diplodiella, Colletotrichum sp., Macrophoma sp., Diplodia natalensis, Alternaria sp., Cladosporium herbarium, Helminthosporium sp., Aspergillus spp., Penicillium spp., Ascochyta sp. Fusarium moniliforme, Stemphylium botryosum, Monilia sp., Sclerotinia sclerotiorum, Hormiscium sp., Torula sp. LEVADURAS: Candida sp., Chaetomium elatum, Saccharomyces cerevisae BACTERIAS: Acetobacter sp. Géneros de hongos En restos florales y bayas: Botrytis, Aspergillus, Cladosporium, Alternaria, Penicillium, Rhizopus, Trichoderma, entre otros. Podredumbre ácida heridas hongos varios Drosofila sp. bacterias y levaduras ácido acético BOTRYTIS. Botryotinia fuckeriana Botrytis cinerea BOTRYTIS. FP: Botryotinia fuckeriana FI: Botrytis cinerea 7

8 BOTRYTIS. FP: Botryotinia fuckeriana FI: Botrytis cinerea Ascomycete BOTRYTIS. BOTRYTIS. BOTRYTIS. Condiciones para la infección: heridas grosor de cutícula variedad (tipo de racimos, tipo y microporos de piel, composición química, fitoalexinas) temperatura humedad Temperatura (º C) Horas de HR > 9% , , , Severidad de podredumbres 6 Severidad media de podredumbres Podredumbres en Tannat % podredumbre - 6 mar , ,59 26,8 Promedio % podredumbre por racimo Promedio % podredumbres por racimo Podredumbre media por racimo /2 28/2 6/3 Severidad de podredumbres /2 /2 27/2 5/3 Severidad de podredumbres /2 19/2 26/2 4/ Podredumbres en Tannat % humedad relativa /1 Podredumbre % por racimo /2 19/2 26/2 4/ Humedad relativa - media decádica 26/1 2/2 9/2 16/ /2 8

9 BOTRYTIS. MANEJO DEL CULTIVO. evitar: humedad, heridas, inóculo importancia del inóculo? Resistencia a Botrytis Racimos ± compactos Susceptibilidad Control biológico? Trichoderma sp. Fuente: Ellison, Ash y McDonald Fungicidas para Botrytis. Resistencia a fungicidas Multisitios: captan, folpet Bencimidazoles, dietofencarb Dicarboximidas: procimidone, iprodione Anilopirimidinas: cyprodinil, pyrimetanil, mepanipyrim. Fenilpirrol: fluodioxonil Hidroxianilida: fenhexamid 2,6 dinitro anilina: fluazinam Imidazoles: procloraz Sulfamidas: diclofluanida, tolyfluanid Benzimidazoles AL- Dicarboximidas TO acilalaninas (3) ME- IBEs DIO Strobirulinas (2) Cúpricos BA- Dithiocarbamatos JO Azufrados (1) Captan Riesgo del fungicida Riesgo de la enfermedad BAJO (1) MEDIO (2) ALTO (3) Venturia inaequalis Patógenos - suelo. Sclerotium - tomate Septoria - trigo Botrytis cinerea Alternaria - papa Penicillium spp. Phytophthora infestans Resistencia a fungicidas Resistencia a fungicidas Carbendazim - Botrytis de vid Pyrimethanil - Botrytis de vid 6 6 % de aislamientos Iprodione - Botrytis de vid % de aislamientos , Boscalid + Pyraclostobin - Botrytis de vid Concentración mínima inhibitoria C oncent ración mí nima inhibit oria Concentración mínima inhibitoria % de aislamientos Concentración mínima inhibitoria 9

10 VIRUS DE LA VID. 5 agentes Los más importantes: Closterovirus - Enrulamiento (Leaf roll) Nepovirus - Degeneración infecciosa (Fan leaf, Court noue) LEAF ROLL o ENRULAMIENTO. Grapevine leaf roll associated viruses: GLRaV I * GLRaV V GLRaV II GLRaV VI GLRaV III * GLRaV VII * GLRaV IV GLRaV VIII GLRaV III - mundial, Uruguay INCIDENCIAS DEL ENRULAMIENTO Y ENROJECIMIENTO FOLIAR SOBRE EL COMPORTAMIENTO DE VID cv. TANNAT (HARRIAGUE) Canelones Montevide o Montevide o Rendimiento/ planta Peso racimo (g) normal enferma normal enferma 7,1 4,7 11,8 3,8 ** 3,5 * 4,6 ** ** 146 * 157 ** Spínola, I Investigaciones Agronómicas N 3:1-14. INCIDENCIAS DEL ENRULAMIENTO Y ENROJECIMIENTO FOLIAR SOBRE EL COMPORTAMIENTO DE VID cv. TANNAT (HARRIAGUE) Grado alcohólico Kg grado/planta INIALB 12,6 9,4 117,8 45,9 INIALB 8,7 7,9 99,4 34,7 Joanicó 8,9 7,9 ** 62,2 29,8 ** 1Joanicó 7,9 6,7 ** 36,8 23,5 ** INIA 2 LB 12, 9,2 ** 85,3 39, ** Mdeo 1,2 1,1 NS 1, 45,8 ** Spínola, I Investigaciones Agronómicas N 3:1-14. LEAF ROLL o ENRULAMIENTO. No hay cvs totalmente resistentes Pie americano tolerante se mantiene latente LEAF ROLL o ENRULAMIENTO. TRANSMISIÓN: prop. vegetativa chanchito blanco Planococcus ficus, Pseudococcus longispinus 1

11 ESTUDIOS DE TRANSMISIÓN DE GLRaV 3 POR CHANCHITO BLANCO EN URUGUAY NEPOVIRUS Planococcus ficus plaga en vid. Maman y Peyrou (1997) - transmisión en laboratorio. Maeso et. al (1999) y () estudios de transmisión: confirmó la transmisión en Uruguay. en laboratorio: 1 insectos pueden transmitir, difícil adquisición (por lo menos 7 días y % bajo), se transmite rápido (15-3 minutos). Fuente: Maeso, 2. Degeneración progresiva (Nepovirus europeos): Grapevine fan leaf (GFLV) Arabis mosaic Strawberry latent ringspot Tomato black ring etc. Decaimiento (Nepovirus americanos): Peach rosette mosaic Tomato ringspot Tobacco ringspot NEPOVIRUS Síntomas: Deformación, Reducción de lámina foliar, Coloraciones anormales, Acortamiento e irregularidad de entrenudos, nudos dobles, fasciaciones, Reducción número y tamaño de racimos, corrimiento ( millerandage ). Menor calidad y cantidad de rendimiento. Menor longevidad, prendimiento, y enraizado. FAN LEAF = COURT NOUE Grapevine fan leaf nepovirus (GFLV) Xiphinema index transmite GFLV X. index X. italiae X. americanum X. rivesi X. californicum X. diversicaudatum X. coxi X. meditrraneum X. pachtaicum X. brevicolle X. algeriense X. vuittenezi X. turcicum Xiphinema index España: en 14% de los viñedos y en 5% de los con GFLV. Italia: en 15% de los viñedos. Presente en Uruguay focalizado 1,3 a 1,5 m/año restos de raíces 11

12 Xiphinema index Huéspedes: vid, higuera, rosal manzano, peral, duraznero, citrus, morera, algodón, álamo, haya, jasmín Xiphinema index Daños: TRANSMISIÓN DE VIRUS raíces planta Xiphinema index Biología Manejo de virosis Control de transmisión: Material de propagación Vectores: presencia control de nematodos control de chanchito Manejo de virosis Métodos de saneamiento: Termoterapia. Cultivo in vitro. Termoterapia + cultivo in vitro. Siempre: seguidos de comprobación de sanidad: indicadoras y ELISA. MANEJO INTEGRADO Cultivar y portainjerto Calidad sanitaria Poda y conducción Manejo de suelo y fertilización Modelos de predicción Ubicación del viñedo Antagonistas Fungicidas: cuál producto? cuándo aplicarlo? cómo aplicarlo? Fenología del cultivo Condiciones ambientales 12

13 MANEJO CULTURAL Plantas sanas Poda y conducción Fertilización y manejo de suelo CONTROL BIOLÓGICO Botrytis Trichoderma harzianum 36% control, 52% fungicidas Ulocladium atrum, Chaetomiun cochliodes colonizan tejido necrótico Oidio AQ1 (Ampelomyces quisqualis) oidios, alta HR Nematodos CRITERIOS DE SELECCIÓN DE FUNGICIDAS Históricamente: efectividad, fitotoxicidad, precio, compatibilidad, efecto sobre abejas. Efectividad Fuentes de información: INIA Fungicide and Nematicide Tests CAB Abstracts New York and Pennsylvania Pest Management Recommendations for Grapes 1 Pest Management Guide for Wine Grapes in Oregon Peronóspora Excoriosis Antracnosis Botrytis PRONÓSTICO Criterios: Fenología Clima y microclima Fenología Fenología 13

14 Fenología ABIÓTICAS. Daño de herbicida DAÑO DE HELADA 14

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