PONTIFICIA UNIVERSIDAD CATÓLICA DEL ECUADOR ESCUELA DE BIOANÁLISIS
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- Silvia Robles Cano
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1 PONTIFICIA UNIVERSIDAD CATÓLICA DEL ECUADOR ESCUELA DE BIOANÁLISIS 1. DATOS INFORMATIVOS: MATERIA: PRÁCTICA PREPROFESIONAL I CODIGO: CARRERA: Microbiología Clínica y Aplicada NIVEL: Sexto No. CRÉDITOS: 6 CRÉDITOS PRÁCTICA: 6 PROFESOR: Lic. Fanny Tamayo J. SEMESTRE/AÑO ACADÉMICO: Segundo DESCRIPCIÓN DE LAS PRÁCTICAS: A través de la experiencia práctica supervisada, el estudiante tiene la oportunidad de desarrollar las habilidades y destrezas manuales para la ejecución de pruebas en las áreas de Parasitología, Urinálisis, Inmunología, Bacteriología y Micobacterias, relacionando de esta forma el conocimiento Teórico-Práctico y los resultados obtenidos en cada una de las pruebas aplicadas. 3. OBJETIVOS GENERALES: - Complementar la formación teórico-práctica de los estudiantes con entrenamiento en las diferentes áreas de laboratorio de acuerdo con el perfil profesional. - Tomar conciencia de la importancia de mostrar una actitud sensible ante los problemas de salud del país. 4. OBJETIVOS ESPECÍFICOS: - Organizar el trabajo diario desarrollando hábitos sistemáticos que permitan optimizar el tiempo y la capacidad profesional. - Demostrar habilidad para la lectura e interpretación analítica de los resultados. - Aplicar los conocimientos teórico-prácticos adquiridos en la Universidad, logrando una interrelación lógica, ética y dinámica de beneficio mutuo. - Aplicar conocimientos de control de calidad y bioseguridad para asegurar un desarrollo óptimo en cada una de las áreas de práctica. 5. CONTENIDOS AREAS DE ROTACIÓN: FLEBOTOMÍA: Desarrollo de destrezas, que permitan realizar adecuadamente extracciones de sangre venosa y capilar de niños, jóvenes y adultos, manteniendo los requisitos de bioseguridad tanto para el paciente como para el flebotomista. PARASITOLOGÍA:
2 Aplicación de técnicas de manejo, preparación y análisis de muestras para la correcta identificación de parásitos, cumpliendo los parámetros de control de calidad. Correlacionar los hallazgos y reportar correctamente los resultados. URINÁLISIS: Recolección, conservación y transporte de muestras. Aplicación de técnicas de manejo, preparación de muestras de orina para realizar la correcta valoración física, química, microscópica y/u hormonal, cumpliendo los parámetros de control de calidad. Correlacionar los hallazgos y reportar correctamente los resultados. INMUNOLOGÍA BÁSICA Y SEROLOGÍA: Recolección de muestras siguiendo las instrucciones adecuadas. Aplicación de técnicas de manejo, preparación de muestras y realización de pruebas serológicas cumpliendo los parámetros de control de calidad. Correlacionar los hallazgos y reportar correctamente los resultados. BACTERIOLOGÍA CLÍNICA: Aplicación de técnicas apropiadas de manejo, preparación de muestras clínicas y realizar cultivos microbiológicos y coloraciones que permitan el aislamiento e identificación de patógenos humanos no comunes y técnicas especiales para determinar sensibilidad antimicrobiana como E-Test, CMI,CMB. MICOBACTERIAS: Aplicación de técnicas apropiadas de manejo y preparación de muestras clínicas para cultivos micológicos. Correlación de los hallazgos y reportar correctamente los resultados. 6. METODOLOGÍA De acuerdo a la distribución por áreas de prácticas preprogramadas por la Escuela, se realizarán: a) Actividades del estudiante bajo guía y supervisión del personal de planta, de cada Centro de Práctica: - Práctica de Flebotomía. - Manejo de muestras biológicas. - Familiarización con materiales y equipos del área respectiva. - Aplicación técnica y desarrollo de destreza manual con un número determinado de muestras. - Lectura y reporte de resultados. b) Actividades de los Tutores de los Centros de Salud: - Organiza el tiempo del estudiante durante su permanencia en el área correspondiente. - Designa las funciones que debe cumplir durante su permanencia en dicha área. - Indica y explica los métodos y técnicas que se están utilizando. - Le da al estudiante la oportunidad de aplicar todos los pasos del proceso que se realiza en esa área. - Observa al estudiante para calificar el desempeño en cada una de las actividades que realice. - Ayuda a fomentar en el estudiante reglas de bioseguridad para un adecuado desempeño en el trabajo que realiza. c) Actividades del Docente-Supervisor de la Escuela: - Verifica la ubicación del estudiante en el área de práctica correspondiente, de acuerdo a la distribución preprogramada. - Visitas periódicas a los centros de práctica para control de asistencia, cumplimiento de horario y
3 calidad de práctica recibida por el estudiante. - Seguimiento del desempeño y progreso del estudiante. - Corrige informes mensuales de la experiencia práctica por área. - Reuniones con los estudiantes en casos que amerite solucionar problemas o de información. - Sortea las áreas de rotación, previo al examen final práctico. d) Presentación de informe mensual.- Debe incluir lo siguiente: - Nombre del Hospital y área de práctica. - Protocolo de trabajo diario. - Pruebas aplicadas y su respectivo fundamento. - Oportunidad de: Participar en toma de muestras Usar los equipos y materiales de laboratorio Procesar las muestras aplicando las técnicas respectivas Leer, interpretar resultados y reportar. - Cumplen con las normas de bioseguridad y control de calidad? En qué forma? - Criterio personal sobre la experiencia práctica en el área. - Sugerencias y recomendaciones. e) Areas de rotación: - Flebotomía, practicarán durante las tres rotaciones en el semestre. - Coprología-Urinálisis (5 semanas) - Bacteriología Clínica y Micobacterias (5 semanas) - Inmunología Básica y Serología (5 semanas) f. Instituciones que colaboran: - Hospital de Niños Baca Ortiz - Hospital Carlos Andrade Marín - Hospital Quito de la Policía Nacional - Hospital Metropolitano - Instituto Izquieta Pérez - Hospital de S.O.L.C.A. - Centro Médico Club de Leones - Centro Médico La Carolina - DISerLAB -PUCE RECURSOS: - Utilización de guías y manuales de laboratorio, diapositivas y videos. - Artículos científicos de acuerdo al área de rotación. - Equipos y material de laboratorio para cada área. 7. EVALUACIÓN 7.1 Cronograma de Evaluaciones: Evaluación 1: 28 Marzo Evaluación 2: 02 Mayo Evaluación 3: 06 Junio Examen Final práctico: 19 Junio
4 7.2 Sistema de Calificaciones: La evaluación sumativa comprende tres notas sobre 10, para un subtotal de 30 puntos. Los 10 puntos para cada una de las tres rotaciones durante el Semestre comprenderá: - Asistencia y habilidades prácticas: evaluado a través de registros elaborados por la Escuela y un examen práctico rendido en las áreas respectivas del centro de práctica, que tendrá una ponderación de 10 puntos y será evaluado por el tutor en el centro de prácticas. - Informe escrito mensual sobre las prácticas realizadas, el mismo que debe estar sujeto al Programa entregado por la Escuela y calificado por el docente-supervisor, con un puntaje sobre 10. Se promediará estas dos calificaciones para enviar a Secretaría una nota sobre 10 puntos, para cada una de las tres evaluaciones sumativas. - El Examen Final Práctico se rendirá al completar las rotaciones asignadas, previo sorteo de un área de rotación, evaluada por profesores de la materia en la Unidad Académica, sobre 20 puntos. Mínimo para aprobar Prácticas Preprofesionales I: 30/50 en el cómputo final y 8/20 en la Evaluación final. 7.3 Fecha de entrega de calificaciones en Secretaría: Nota 1: 02-Abril Nota 2: 09-Mayo Nota 3: 11- Junio BIBLIOGRAFÍA Los siguientes textos son sugeridos como guías de consulta sobre aspectos prácticos para la realización de pruebas por el laboratorio clínico. Textos de Referencia: - GONZALEZ DE BUITRAGO, JOSÉ M., Tecnología y Métodos de Laboratorio Clínico, - México, Salvat Editores S.A., HENRY, JOHN, y colaboradores, Diagnóstico Clínico por el Laboratorio, 9na.Ed.,Barcelona, Masson-Salvat, LYNCH, M. y colab., Métodos de Laboratorio, México, Interamericana, PRIETO, SANTIAGO y colab., Laboratorio Clínico-Principios Generales, 1era. Ed., Madrid, Interamericana, TODD SANFORD, Diagnóstico por el Laboratorio, 10ma. ed., Barcelona, Salvat, Textos Recomendados: - LYNCH, M. y colab., Métodos de Laboratorio, México, Interamericana, HENRY, John y colaboradores, El Laboratorio en el Diagnóstico Clínico (tomo 1 y 2), MARBÁN Libros, S.L. Madrid- España, DATOS DEL DOCENTE SUPERVISOR
5 Horario de atención a estudiantes: Martes de 16h30 a 18h00 Correo electrónico: Teléfono: Ext APROBADO: Por el Consejo de Escuela f) Director de Escuela Fecha:
6 CRONOGRAMA DE PRÁCTICAS PREPROFESIONALES I (LICENCIATURA EN MICROBIOLOGÍA CLINICA Y APLICADA) ESCUELA DE BIOANÁLISIS SEGUNDO SEMESTRE Publicación de distribución de prácticas por áreas: 19 - Febrero Inicio de Prácticas: 25-Febrero Número de rotaciones en el Semestre: 3 - Finalización: 06- Junio Horario de asistencia: 7h00 a 12h00 de Lunes a Viernes. FECHAS DE CADA ROTACIÓN: Rotación 1: 25 de Febrero al 28 de Marzo de Rotación 2: 31 de Marzo al 02 de Mayo de Rotación 3: 05 de Mayo al 06 de Junio de Sorteo de áreas de práctica para examen final: 12 de Junio de (Hora: 12h30 - Escuela de Bioanálisis) Examen práctico final: 19 de Junio de FECHAS DE ENTREGA DE INFORMES A SUPERVISIÓN: Informe 1: 27 de Marzo Informe 2: 30 de Abril Informe 3: 05 de Junio
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