PROGRAMA FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD CARRERA DE TECNOLOGÍA MÉDICA PROGRAMA ASIGNATURA: INMUNOLOGIA CLINICA

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1 PROGRAMA FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD CARRERA DE TECNOLOGÍA MÉDICA PROGRAMA ASIGNATURA: INMUNOLOGIA CLINICA PROFESOR ENCARGADO PROFESORA AYUDANTE Docentes : Prof. : Prof. : Prof. Hugo Moscoso Espinoza IDENTIFICACION DE LA ASIGNATURA Código : TEM1039 Curso al que se imparte : 4 año Tecnología Médica Semestre en que se imparte : VIII Semestre Año académico : 2008 Prerrequisitos : Inmunología y Bioquímica, Clínica I Calidad : Teórico - Práctico Carácter : Obligatorio Régimen : Semestral Número de sesiones semanales : Teóricas: 1 : Prácticas 3 Número de horas académicas semanales : 8 DESCRIPCION DE LA ASIGNATURA Esta asignatura tiene el propósito de entregar a los estudiantes los conocimientos actualizados de las técnicas inmunológicas a través de clases teóricas y prácticas de laboratorio. Los estudiantes tendrán una participación activa en el laboratorio, que les permita adquirir habilidades y destrezas necesarias para el manejo de las técnicas inmunológicas en uso en los laboratorios clínicos.

2 OBJETIVOS GENERALES Al finalizar el curso los alumnos estarán en condiciones de: Valorar la importancia de la Inmunología clínica en el diagnóstico de las enfermedades de origen inmunológico o que involucran al sistema inmune. Integrar los conocimientos de las ciencias básicas y los adquiridos en la asignatura para analizar críticamente situaciones del sistema inmunológico. Comprender los mecanismos fisiopatológicos que operan en patologías inmunológicas y aplicarlos a diversos tipos de enfermedades. Manejar los fundamentos y principios de los métodos de análisis usados en el laboratorio de Inmunología. Adquirir habilidades y destrezas para realizar exámenes inmunológicos en forma rápida y confiable. Desarrollar y ejecutar con habilidad y destreza las técnicas de uso frecuente en un laboratorio de inmunología. Estos conocimientos también deben permitirle implementar técnicas inmunológicas especializadas. Conocer, manejar y aplicar normas de bioseguridad en el trabajo del laboratorio de inmunología. Manejar parámetros de control de calidad de procedimientos y resultados para un análisis de laboratorio. Valorar la importancia de la ética en las diversas acciones del quehacer profesional OBJETIVOS ESPECIFÍCOS Al finalizar el curso el alumno estará capacitado: Conocer el fundamento bioquímico, fisiológico e inmunológico en que se basan las diferentes pruebas de laboratorio inmunológico. Conocer y realizar con eficacia y eficiencia las técnicas de laboratorio que permiten evaluar la normalidad y alteraciones de los diferentes procesos inmunológicos. Describir para cada técnica utilizada, el fundamento químico e inmunológico, intervalos de referencia, importancia clínica y condiciones para la obtención de la muestra. Valorar la importancia de las variables que modifican el resultado de las diferentes pruebas inmunológicas del laboratorio clínico. Manejar y mantener en condiciones óptimas el instrumental utilizado en el laboratorio Realizar e interpretar los métodos inmunológicos de tipo celular y humoral para diagnóstico.

3 METODOLOGÍA DOCENTE a- Clases teóricas expositivas apoyadas y guiadas por medios audiovisuales b- Seminarios bibliográficos: se entregará con determinada anticipación y cada 2 alumnos un seminario (publicación o artículo de actualidad acorde al tema) el cual deberá ser expuesto al curso en fecha predeterminada. Los alumnos serán evaluados por esta actividad. c- Actividades prácticas de laboratorio CONTENIDOS UNIDAD I: GENERALIDADES Introducción Fundamentos de la reacción antígeno anticuerpo. Inmunoanálisis. Aplicación en laboratorio clínico: microbiología e inmunología. UNIDAD II: TECNICAS ELECTROFORETICAS SIMPLES Y COMBINADAS Fundamento y descripción de técnicas electroforéticas: electroforesis en acetato, agarosa y poliacrilamida Técnicas inmunoelectroforéticas: inmunoelectroforesis (IEF), contrainmunoelectroforesis (CIEF) e inmunofijación. Electroinmunotransferencia o Western Blot. Interpretación clínica de las técnicas electro e inmunoelectroforéticas. Aplicación clínica: inmunodeficiencias y enfermedades inmunoproliferativas Aseguramiento de la calidad de las técnicas electro e inmunoelectroforéticas. UNIDAD III: INMUNODIFUSION. INMUNOANÁLISIS CUANTITATIVO (turbidimetría y nefelometría) Fundamentos de la técnica de inmunodifusión: simple, doble y radial. Identificación de antígenos y/o anticuerpos por inmunodifusión doble Aplicación de la inmunodifusión radial. Fundamento turbidimetría y nefelometría. Cuantificación de inmunoglobulinas y proteínas. Aplicación clínica: inmunodeficiencias, enfermedades inmunoproliferativas y aumentos policlónales e inmunoglobulinas. Aseguramiento de la calidad de las técnicas de inmunodifusión, turbidimetría y nefelometría. UNIDAD IV: COMPLEMENTO Determinación cuantitativa de factores del complemento (C3, C4, C1q, inhibidor C1q) Determinación de la actividad hemolítica del complemento (CH50). Evaluación en suero y otros líquidos biológicos (líquido sinovial) Significado clínico en el diagnóstico, control y evaluación de varias patologías con niveles alterados de complemento. Aseguramiento de la calidad de las determinaciones de complemento. UNIDAD V: AGLUTINACION Factores reumatoídeos (LATEX y SCAT). Evaluación en patologías asociadas. Aseguramiento de la calidad de las técnicas de aglutinación

4 UNIDAD VI: INMUNOFLUORESCENCIA Bases de la microscopía de fluorescencia Fundamento y descripción de las distintas técnicas de inmunofluorescencia directa e indirecta Identificación y detección de autoanticuerpos (antinucleares, anti-dna, otros) Detección de depósitos de inmunoglobulinas, complemento y complejos inmunes en Diferentes tejidos. Aplicación clínica de la determinación de autoanticuerpos, depósitos de inmunoglobulinas, complemento y complejos inmunes. Aseguramiento de la calidad de las técnicas de inmunofluorescencia UNIDAD VII: ENZIMAINMUNOANALISIS (EIA) Fundamentos de la técnica de EIA. EIA homogéneo y heterogéneo. Diferentes métodos de EIA (ELISA, MEIA, EMIT). Curvas de calibración. Aplicación del EIA en el laboratorio clínico Aplicación clínica de la determinación de autoanticuerpos por ELISA. Valor de corte. Falsos Positivos y falsos negativos. Aseguramiento de la calidad de la EIA. UNIDAD VIII: BIOLUMINISCENCIA Introducción y fundamentos. Aplicación Aplicación clínica en inmunología. Aseguramiento de la calidad de la bioluminiscencia UNIDAD IX: CITOMETRÍA DE FLUJO Introducción y principios generales Determinación de poblaciones celulares y fenotipificación Estallido respiratorio. Análisis de DNA y ciclo celular Aplicación clínica de la citometría de flujo Aseguramiento de la calidad de la citometría de flujo UNIDAD VII: METODLOGIA DE INMUNIDAD CELULAR Introducción. Estudio de PMN: capacidad de ingestión y muerte. Determinación de poder de oxidoreducción Quimiotáxis.. Factores quimiotácticos y movilidad. Separación celular. Diferentes técnicas. Determinación de poblaciones y subpoblaciones de linfocitos (LT, LB, LTCD4, LTCD8 y otras.) Pruebas cutáneas e hipersensibilidad retardada. Prueba de MIF (factor inhibición de la migración) Aplicación clínica de las técnicas de inmunidad celular en el diagnóstico inmunológico Aseguramiento de la calidad de las técnicas de inmunidad celular. CALENDARIO DE ACTIVIDADES FECHA CLASE PROFESOR 4 de agosto Introducción. Sistema inmune y puntos críticos. Fundamento de la reacción antígeno-anticuerpo Inmunoanálisis. Aplicación laboratorio clínico. Automatización e inmunoanálisis

5 11 de agosto 18 de agosto 25 de agosto 01 de 03 de 08 de 10 de de 22 de 29 de 8:00 14:00 Técnicas electro e inmunoelectroforéticas. Interpretación clínica. Aseguramiento de calidad. Aplicación clínica: inmunodeficiencias y enfermedades inmunoproliferativas. Inmunodifusión. Inmunodifusión radial. Turbidimetría y nefelometría. Cuantificación de inmunoglobulinas y proteínas. Aseguramiento calidad. Aplicación clínica: inmunodeficiencias, enfermedades inmunoproliferativas y otras. Sistema complemento (clásica y alterna) y puntos críticos. Determinación cuantitativa de factores del complemento. Determinación actividad hemolítica y funcional. Aseguramiento calidad. Significado y aplicación clínica en el diagnóstico, control y seguimiento de patologías Factores reumatoídeos: Látex y SCAT. Evaluación en patologías. Aseguramiento de calidad -Primera prueba práctica : Grupo 1 y Grupo 2 Trabajo practico I: Primera Parte -Determinación cualitativa y cuantitativa de inmunoglobulinas y complemento. Inmunodifusión, electro e inmunoelectroforesis, inmunofijación y nefelometría. Trabajo practico I: Primera Parte -Determinación cualitativa y cuantitativa de inmunoglobulinas y complemento. Inmunodifusión, electro e inmunoelectroforesis, inmunofijación y nefelometría Trabajo practico I: Segunda Parte -Determinación cualitativa y cuantitativa de inmunoglobulinas y complemento. Inmunodifusión, electro e inmunoelectroforesis, inmunofijación y nefelometría Trabajo practico I: Segunda Parte -Determinación cualitativa y cuantitativa de inmunoglobulinas y complemento. Inmunodifusión, electro e inmunoelectroforesis, inmunofijación y nefelometría Vacaciones Fiestas Patrias Entrega informe Trabajo práctico I. Inmunofluorescencia directa e indirecta. Fundamentos. Identificación y detección de autoanticuerpos. Depósitos de inmunoglobulinas y complemento. Aseguramiento calidad. Aplicación clínica de la detección de autoaticuerpos. Enfermedades auto inmunes. Enzimainmunoanálisis. Fundamentos. Diferentes métodos. Aplicación del EIA en el laboratorio. Sensibilidad y especificidad. Aplicación clínica de la determinación de autoanticuerpos por ELISA. Aseguramiento de la calidad. Bioluminiscencia. Fundamentos. Aplicación clínica..

6 06 de octubre 08 de octubre 13 de octubre 15 de octubre hrs 20 de octubre 27 de octubre 8:00 14:00 03 de noviembre 10 de noviembre Aseguramiento de la calidad -Segunda prueba práctica: Grupo 1 y Grupo 2 Trabajo práctico II. Primera parte -Determinación de autoanticuerpos por inmunofluorescencia indirecta y ELISA. Identificación de patrones y asociación con enfermedades. Trabajo práctico II. Primera parte -Determinación de autoanticuerpos por inmunofluorescencia indirecta y ELISA. Identificación de patrones y asociación con enfermedades. Primera prueba solemne Trabajo práctico II. Segunda parte -Determinación de autoanticuerpos por inmunofluorescencia indirecta y ELISA. Lecturas, análisis y discusión de diferentes patrones y sustratos usados en el laboratorio clínico Trabajo práctico II. Segunda parte -Determinación de autoanticuerpos por inmunofluorescencia indirecta y ELISA. Lecturas, análisis y discusión de diferentes patrones y sustratos usados en el laboratorio clínico Entrega informe Trabajo práctico II Seminarios Bibliográficos Seminarios Bibliográficos Entrega Seminario escrito y presentación 30 minutos y 10 minutos de discusión Inmunidad celular inespecífica y específica. Fundamentos. Técnicas y métodos de estudio. Aseguramiento de la calidad. Aplicación clínica. Diagnóstico, seguimiento y pronóstico. Tercera prueba práctica: Grupo 1 y Grupo 2 Trabajo práctico III. Manejo de células. Separación. Determinación fagocitosis de leucocitos PMN. Demostración quimiotáxis 12 de noviembre 17 de noviembre Trabajo práctico III. Manejo de células. Separación. Determinación fagocitosis de leucocitos PMN. Demostración quimiotáxis Entrega Informe: Trabajo práctico III. Citometría de flujo. Fundamentos. Aplicación de la citometría en el laboratorio clínico: determinaciones de poblaciones celulares, otras. Aseguramiento de la calidad. Aplicación clínica de la citometría de flujo. 24 de noviembre Demostración de uso del citómetro de flujo. Protocolos de trabajo. (VISITA A LABORATORIO FUERA UNIVERSIDAD) Hugo Moscoso E. Hugo Moscoso E.

7 01 de diciembre 8:00-14:00 horas Segunda prueba solemne El Laboratorio de Inmunología y su relación con las otras áreas del laboratorio clínico. 10 de Diciembre Recuperativa teórica 15 de diciembre 8,00 horas 18 de diciembre 08,00 horas EXAMEN EXAMEN REPETICIÒN TEMAS SEMINARIOS BIBLIOGRÁFICOS 1.-Inmunomodulación de la respuesta inmune. 2.-Daño inmunológico y enfermedad 3.-Laboratorio de histocompatibilidad y transplante 4.-El laboratorio clínico en el diagnóstico y seguimiento de lupus eritematoso sistémico. 5.-Inmunoterapia. Vacunas 6.-El laboratorio clínico en el diagnóstico y seguimiento de la artritis reumatoídea 6.-Inmunotipificación en enfermedades hematológicas e inmunes 7.-Relación de los sistemas endocrino, nervioso e inmunológico y enfermedad. 8.-Utilidad de la determinación de citoquinas en cáncer y enfermedades autoinmune. 9.-Automatización en el laboratorio clínico. 10.-Intervalos de alerta o críticos de exámenes del laboratorio clínico. EVALUACIÓN DE LOS ALUMNOS De acuerdo al Reglamento de Régimen de Estudio de Pregrado, para ser aprobado en la asignatura, el alumno deberá obtener nota mínima 4.0. tanto en el aspecto teórico como en el práctico, debiendo asistir al 100% de las actividades prácticas y a las evaluaciones programadas. Para los alumnos que no aprueben la asignatura ó algunos de los aspectos (teórico ó práctico). No existirán pruebas optativas ó de recuperación. Evaluación asignatura: -Ponderación 40 %: -Pruebas prácticas ( pruebas 1, 2 y 3 ) -Informes Trabajos prácticos ( informes 1, 2 y 3 ) -Seminario ( evaluación presentación y documento escrito ) -Ponderación 60 %: -Pruebas solemnes ( prueba 1 y 2 ) -Nota presentación examen 70 % ( nota obtenida de acuerdo a la ponderación indicada ) Exigencia asignatura: -Trabajos prácticos ( Laboratorio ): -100 % asistencia y puntualidad -Uso de uniforme -Presentación seminarios : -100 % asistencia y puntualidad

8 La asignatura se regirá por el Reglamento de Evaluación y Promoción de los Estudiantes de Pregrado de la Facultad de Ciencias de la Salud que se encuentra en Reglamentos. Es obligación del alumno estar en conocimiento del reglamento. BIBLIOGRAFÍA Acceso a Revistas científicas de biblioteca: Immunochemistry American Journal Clinical Pathology Journal Immunology Arthritis and Rheumatism Material de Seminario otorgado por el grupo docente Libros de consulta: - Fundamentos de Inmunología Básica y Clínica. Editores: I. Palomo, A. Ferreira, C. Sepúlveda, M. Rosemblatt, U. Vergara. Editorial Universidad de Talca Inmunología celular y molecular. Abul Abbas y Andrew Lichtman. Quinta Edición. Editorial Elsevier Inmunología básica y clínica. Editores: A. Ferreira, A. Afani, P. Lanza, J.C. Aguillón, C. Sepúlveda. Editorial Mediterraneo