1. OBJETO DOCUMENTOS UTILIZADOS EN LA ELABORACIÓN DOCUMENTOS (PNTs) A UTILIZAR CONJUNTAMENTE MATERIALES Y REACTIVOS.

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1 Página 1 de 5 CENTRO DE INVESTIGACION EN SANIDAD ANIMAL (CISA-INIA) Laboratorio de Referencia de la UE de PPA (EURL-ASF) Centro de Investigación en Sanidad Animal CISA-INIA, Valdeolmos 28130, Madrid, Spain. Contacto Dr. Carmina Gallardo Virginia Pelayo eurl.asf@inia.es CONTENIDO 1. OBJETO. 2. ALCANCE. 3. REFERENCIAS DOCUMENTOS UTILIZADOS EN LA ELABORACIÓN DOCUMENTOS (PNTs) A UTILIZAR CONJUNTAMENTE. 4. GENERALIDADES. 5. REALIZACIÓN MATERIALES Y REACTIVOS. PNT CISA/PPA/ EXTRACCIÓN ADN /1 PROCEDIMIENTO NORMALIZADO DE TRABAJO PARA LA EXTRACCIÓN DEL ADN DEL VIRUS DE LA PESTE PORCINA AFRICANA PARA SU DETECCIÓN MEDIANTE REACCIÓN EN CADENA DE LA POLIMERASA (PCR) 5.2. PREPARACIÓN REALIZACIÓN DE LA TÉCNICA. 5.4 PUNTOS CRÍTICOS 5.5 MEDIDAS DE SEGURIDAD.

2 Página 2 de 5 1. OBJETO. El objeto del presente procedimiento es describir el método a seguir para la extracción específica de ADN del virus de la peste porcina africana (VPPA) en material clínico utilizando el kit de extracción de ácidos nucleicos High Pure PCR Template Preparation Kit [Ref (ROCHE)] para su posterior amplificación mediante la técnica de PCR. Esta técnica se encuentra incluida en el Manual de la OIE (capítulo del Manual de las Pruebas de Diagnóstico y de las Vacunas para los Animales Terrestres de la edición del 2012). 2. ALCANCE. Este procedimiento es de aplicación a los siguientes tipos de muestras de origen porcino; suero, sangre (con EDTA) y homogeneizados de tejidos. También se palica a homogeneizados de garrapatas género Ornithodoros. Se recomienda, en el caso de muestras de sangre-edta, analizarlas siempre sin diluir, y, en el caso de homogeneizados de tejidos, analizarlos por duplicado sin diluir y en una dilución 1/ REFERENCIAS DOCUMENTOS UTILIZADOS EN LA ELABORACIÓN. 1. AFRICAN SWINE FEVER. Manual of Diagnostic Tests and Vaccines for Terrestrial Animals (mammals, birds and bees). CHAPTER OIE, 2012 [ 2. Protocol High Pure PCR Template Preparation Kit: Commercial nucleic acid ROCHE [ 3. Agüero M, Fernández J, Romero LJ, Zamora MJ, Sánchez C, Belák S, Arias M, Sánchez-Vizcaíno JM. A highly sensitive and specific gel-based multiplex RT-PCR assay for the simultaneous and differential diagnosis of African swine fever and Classical swine fever in clinical samples. Vet Res Sep-Oct;35(5): M. Agüero, J. Fernández, L. Romero, C. Sánchez, M. Arias, J.M. Sánchez-Vizcaíno Highly Sensitive PCR Assay for Routine Diagnosis of African Swine Fever Virus in Clinical Samples. J. Clin. Microbiol., vol. 41, no. 9, p PPA REVISIONES: 1. Arias, M., Sánchez-Vizcaíno, J.M. (2012). African swine fever. In: Zimmerman, J., Karriker, L.A., Ramirez, A., Schwartz, K.J, Stevenson, G.W. (Eds), Diseases of swine, 10th Edition. John Wiley and Sons, United States of America, pp Arias, M.; Sánchez, C.; González, M.A.; Carrasco, L. y Sánchez-Vizcaíno, J.M. (2002). Peste porcina Africana In Curso digital de enfermedades infecciosas porcinas. [ on line, July, Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). RECOGNIZING AFRICAN SWINE FEVER. A FIELD MANUAL Edition. [ DOCUMENTOS (PNTs) A UTILIZAR CONJUNTAMENTE. PREPARACIÓN DE MUESTRAS PARA EL DIAGNÓSTICO DE LA PESTE PORCINA AFRICANA (PNT/CISA/PPA/MUESTRAS/1). DETECCIÓN DEL GENOMA DEL VIRUS DE LA PESTE PORCINA AFRICANA MEDIANTE REACCIÓN EN CADENA DE LA POLIMERASA (PCR) CONVENCIONAL (PNT/CISA/PPA/PCR/1) DETECCIÓN DEL GENOMA DEL VIRUS DE LA PESTE PORCINA AFRICANA MEDIANTE REACCIÓN EN CADENA DE LA POLIMERASA (PCR) EN TIEMPO REAL (PNT/CISA/PPA/PCR/2) 4. GENERALIDADES ABREVIATURAS. ADN: ácido desoxirribonucleico. E+: Control positivo de extracción.

3 Página 3 de 5 E-: Control negativo de extracción. PPA: Peste Porcina Africana. PCR: Reacción en cadena de la polimerasa. r.p.m.: revoluciones por minuto. VPPA: Virus de la peste porcina africana 4.2. PRINCIPIO. El proceso de extracción de ácidos nucleicos utilizando el kit comercial High Pure PCR Template Preparation Kit se basa en la adsorción y desorción de los ácidos nucleicos en presencia de sales caotrópicas. Las células son inicialmente lisadas durante una corta incubación con proteinasa K en presencia de una sal caotrópica (HCl-guanidina), que inmediatamente inactiva todas las nucleasas. Los ácidos nucleicos se unen o adsorben selectivamente al filtro de fibra de vidrio (sílica) en un tubo de centrífuga especial. Los ácidos nucleicos permanecen unidos al filtro durante los siguientes pasos de lavado y centrifugado, donde se eliminan las moléculas celulares contaminantes, sales y proteínas. Posteriormente, los ácidos nucleicos se eluyen de la membrana de sílica mediante tampones de elución con baja concentración de sales (ligeramente alcalinos) o simplemente agua, ya que permiten recuperar la capa hidratante de los ácidos nucleicos, liberándolos así de la membrana. 5. REALIZACIÓN MATERIALES Y REACTIVOS. MATERIAL Congelador de <-10ºC. Congelador -70ºC. Gradillas tubos eppendorff od e características similares. Microcentrífuga de mesa. Micropipetas automáticas monocanal de 1-10 µl. Micropipetas automáticas monocanal de µl. Micropipetas automáticas monocanal de µl. Nevera de 4±3ºC. Papel absorbente. phmetro (0,01 UpH). Pipeteador automático Pipetboy acu o equivalente. Pipetas de vidrio o plástico, estériles, para descargar 1-25 ml. Puntas de micropipeta con filtros resistentes a aerosoles de rangos 1 10, 2-20, y µl, estériles. Puntas de pipetas desechables de 1-20, and l. Reloj cronómetro. Tubos eppendorf (o equivalentes) de 0,5 ml, 1,5 ml y 2 ml. Termobloque (72±2ºC). Vórtex. REACTIVOS INCLUIDOS EN EL KIT: Conservación: temperatura ambiente. Binding Buffer (20 ml) [6 M guaninidina HCl, 10 mm urea, 10 mm Tris-HCl, 20% Triton X-100 (v/v), ph 4,4]. Proteinase K, recombinant PCR grade 20 mg/ml (liofilizada). Inhibitor Removal Buffer (33 ml) [5 M guanidine-hcl, 20 mm Tris-HCl, ph 6.6]. Wash Buffer (20 ml) [20 mm NaCl, 2 mm Tris-HCl, ph 7.5]. High Pure Filter Tubes: 2 bolsas con 50 tubos de polipropileno con dos capas de lana de fibra de vidrio hasta 700ml de volumen de muestra. Collection Tubes: 2 bolsas con 50 tubos de polipropileno (2ml) REACTIVOS NO INCLUIDOS EN EL KIT: Etanol absoluto [Ref.: (Merck) o características similares]. H 2 O destilada grado de PCR. Isopropanol ( 99%) [Ref.: I9516 (Sigma) or o características similares]. Controles del proceso de extracción: E+ Muestra positiva al VPPA empleada como control positivo durante el proceso de extracción del ADN: muestra positiva

4 Página 4 de 5 (suero,sangre con EDTA, tejido homogeneizado en dilución 1/10 o sobrenadante de cultivo) diluidos en muestra negativa. Es recomendable que el positivo de extracción se encuentre en el límite de detección de la técnica para asegurar el rendimiento del proceso de extracción del ADN. Conservar a <-10ºC en alicuotas. Fecha de caducidad: 6 meses E- Muestra negativa utilizada como control negativo en el proceso de extracción: Agua destilada grado PCR incluida en proceso de extracción para excluir posibles contaminaciones 5.2. PREPARACIÓN PREPARACIÓN DE LAS MUESTRAS. La preparación de las muestras a analizar se realizará según se describe en el procedimiento de preparación de muestras para el diagnóstico de la peste porcina africana [PNT/CISA/PPA/MUESTRAS/1] PREPARACIÓN DE LOS REACTIVOS: Proteinasa K liofilizada: resuspender la proteinasa K en 4,5 ml de agua destilada estéril y alicuotar en volúmenes de 500 l. Conservación: <-10ºC hasta su uso. Inhibitor Removal Buffer: añadir 20 ml de etanol absoluto al vial original. Etiquetar y marcar la fecha en la botella. Conservar a temperatura ambiente Wash Buffer: añadir 80 ml de etanol absoluto al vial original. Etiquetar y marcar la fecha en la botella. Conservar a temperatura ambiente REALIZACIÓN DE LA TÉCNICA. 1. Pipetear 200 l de Binding Buffer y 40 l de Proteinasa K en un tubo de microcentrífuga de 1,5ml. 2. Añadir 200 l de muestra. Incluir en cada proceso de extracción E+ y E- (200 l H 2 O). 3. Mezclar invirtiendo los tubos e incubar 10 min a 72±2ºC. Centrifugar unos segundos, un pulso de centrífuga, para eliminar restos de muestra en la tapa. 4. Añadir 100 l de isopropanol. 5. Mezclar agitando en vórtex. Centrifugar unos segundos, un pulso de centrífuga, para eliminar restos de muestra en la tapa. 6. Pasar la mezcla al High Pure filter tube colocado sobre un tubo colector. Centrifugar 1 min a g (con muestras de sangre, repetir el paso de centrifugación si queda muestra sobre el filtro). 7. Descartar el tubo colector y colocar el tubo columna sobre un nuevo tubo colector 8. Añadir 500 l Inhibitor Removal Buffer. Centrifugar 1 min a g. 9. Descartar el tubo colector y colocar el tubo columna sobre un nuevo tubo colector. 10. Añadir 450 l de Wash Buffer. Centrifugar 1 min a g. 11. Descartar el tubo colector y colocar el tubo columna sobre un nuevo tubo colector. 12. Repetir el paso de lavado. 13. Centrifugar sobre un tubo vacío a g 10 seg. 14. Colocar la columna sobre un tubo de 1,5 ml con tapa. 15. Añadir 50 l de agua destilada estéril, precalentada a 72±2ºC, asegurando que cubre totalmente el filtro. Centrifugar 1 min a g. 16. Recoger el eluido conteniendo el ADN y guardar a <-10ºC hasta su uso (fecha de caducidad: 12 meses) o a 4±3ºC si se va a emplear en 1-2 h desde su obtención.

5 Página 5 de PUNTOS CRÍTICOS 5.5. MEDIDAS DE SEGURIDAD. El punto crítico durante todo el proceso de análisis es el riesgo de contaminación de las muestras y, por tanto, los posibles falsos positivos que en este caso se obtendrían. La contaminación puede deberse al propio VPPA presente en las muestras que puedan ser positivas o en los controles positivos empleados en el proceso de extracción. Por ello, es imprescindible seguir y cumplir unas estrictas normas de trabajo para minimizar el riesgo de contaminación intrínseco a la técnica de PCR: Todos los pasos que implican el análisis de muestras por PCR se realizarán en espacios diferenciados, con equipamiento y material específicos para cada uno: preparación de muestras, extracción de ADN, montaje de mezcla de PCR, análisis por electroforesis de los productos de PCR. Trabajar siempre con guantes de látex o nitrilo limpios en el laboratorio de PCR. Cada vez que el técnico que esté realizando el análisis acceda a una zona de PCR diferente, deberá cambiarse los guantes desechando los que tenía puestos. El material será de uso exclusivo para el paso del procedimiento para el que esté destinado por su situación/identificación. Utilizar una punta de pipeta diferente cada vez que se pipetee en un tubo conteniendo alguna muestra o ADN. Leer y seguir cuidadosamente el protocolo. Conservar los reactivos a la temperatura indicada antes y después de su utilización. No mezclar reactivos ni instrucciones de diferentes kits. Evitar cualquier contaminación de los reactivos. No utilizar los reactivos una vez superada la fecha de caducidad. No comer, beber ni fumar en el laboratorio. No pipetear los reactivos con la boca. Utilizar siempre guantes de látex o nitrilo. El Binding Buffer, el Inhibitor Removal Buffer y el Wash Buffer incluidos en el kit de extracción de ADN contienen derivados de guanidina que son irritantes, por lo que deben ser manipulados con precaución. En caso de contacto con piel, mucosas y/u ojos, lavar inmediatamente con agua abundante. Si ocurre un vertido accidental, diluir con agua antes de limpia