CAPACITACIÓN EN TÉCNICAS DE RUTINA DE ANÁLISIS CLÍNICOS UTILIZADAS EN EL DIAGNÓSTICO MÉDICO VETERINARIO

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1 CAPACITACIÓN EN TÉCNICAS DE RUTINA DE ANÁLISIS CLÍNICOS UTILIZADAS EN EL DIAGNÓSTICO MÉDICO VETERINARIO OBJETIVOS GENERALES:.Conocer las posibilidades y limitaciones de los análisis clínicos como métodos complementarios en el diagnóstico clínico..proporcionar conocimientos teóricos y prácticos básicos de los análisis clínicos de rutina utilizados en el diagnóstico médico veterinario. OBJETIVOS PARTICULARES:.Conocer y utilizar elementos de trabajo básicos utilizados en un laboratorio de análisis clínicos..interiorizarse en el funcionamiento y en el manejo de diferentes aparatos empleados en los análisis clínicos..conocer el fundamento y el procedimiento técnico de las pruebas más utilizadas en el laboratorio de análisis clínicos..adquirir destreza manual en el desarrollo de técnicas y métodos de análisis. Interpretar e informar los resultados obtenidos. CONTENIDOS: Módulo I: Hematología. Módulo II: Análisis de orina. Módulo III: Líquidos de punción. Módulo IV: Bioquímica sanguínea. Módulo V: Citología diagnóstica. Módulo VI: Exploración de la piel y anexos. Módulo VII: Microbiología clínica. Módulo VIII: Integración de contenidos.

2 PROGRAMA A- Contenidos teóricos: I. Hematología. Importancia de la hematología en el diagnóstico. Evaluación del eritrón: Determinación del microhematocrito: materiales, metodología, ventajas, información obtenida del mismo. Dosaje de hemoglobina: reactivos y metodología. Recuento de glóbulos rojos: métodos de determinación. Morfología eritrocitaria. Diferenciación de Anemias regenerativas y no regenerativas. Interpretación de los resultados obtenidos. Evaluación de los leucocitos: Recuento total de los glóbulos blancos: materiales, reactivos, metodología. Fórmulas leucocitarias: materiales, métodos. Morfología leucocitaria normal en las diferentes especies domésticas, características tintoriales. Morfología neutrofílica anormal: neutrófilos tóxicos, desvíos a la izquierda, desvío a la derecha. Linfocitos reactivos, características, significado. Interpretación de los resultados obtenidos. Evaluación de las plaquetas: morfología plaquetaria, estimación plaquetaria, recuento de plaquetas. Muestra a remitir, metodología, interpretación. Evaluación de los factores de la coagulación: tiempo de protrombina, tiempo de tromboplastina parcial activada. Particularidades de la muestra a remitir, metodología, interpretación. II. Análisis de orina. Muestra a remitir, tiempo de conservación. Examen físico: materiales, métodos. Examen químico: materiales, métodos. Prueba de Heller: Fundamento, metodología. Examen del sedimento urinario: materiales, métodos. Diagnóstico de parasitosis renales. Interpretación de los resultados

3 III. Examen de los líquidos obtenidos por punción. Líquido peritoneal: técnicas de recolección de los líquidos, remisión al laboratorio. Examen físico: volumen, color, aspecto, olor, densidad. Modificaciones e interpretación. Examen químico: proteínas, glucosa, ph. Significado. Prueba de Rivalta: fundamento, interpretación. Examen citológico: recuento celular total: metodología, interpretación. Recuento celular diferencial: tipos celulares, interpretación. Diferenciación de los tipos de efusiones: trasudados puros, trasudados modificados, exudados, efusiones hemorrágicas, efusiones biliares, efusiones quilosas, efusiones malignas. Líquido sinovial: Toma y remisión al laboratorio. Examen físico: volumen, color, aspecto, viscosidad. Examen químico: proteínas, glucosa. Prueba del coágulo. Prueba del coágulo de mucina. Fundamento, interpretación. Examen citológico: recuento celular y tipos celulares, interpretación. Perfiles del líquido sinovial en procesos específicos: hemartrosis, artritis séptica, osteoartritis aséptica, artropatía inmunomediada. Líquido cefalorraquídeo: Toma y remisión al laboratorio. Examen físico: volumen, color, aspecto, presión. Examen químico: proteínas, glucosa. Prueba de Pandy. Fundamento, interpretación. Examen citológico: recuento celular y tipos celulares, interpretación. Cambios del líquido cefalorraquídeo en la enfermedad. IV. Bioquímica sanguínea. Perfiles metabólicos: concepto, utilidad. Evaluación de metabolitos y enzimas en las diferentes especies domésticas. Metodología e interpretación. V. Nociones de Citología diagnóstica. Caracterización del método. Indicaciones. Toma para la evaluación de los diferentes sistemas orgánicos, remisión de muestra al laboratorio. Procesamiento de las muestras. Métodos de tinción citológica. Diferenciación de procesos inflamatorios, hiperplásicos y

4 neoplásicos. Requisitos para un diagnóstico correcto: calidad de la muestra, interpretación, comunicación. VI. Exploración de la piel y anexos. Metodología diagnóstica para la aproximación de las principales dermopatías de origen bacteriano, fúngico y parasitario. Toma de muestras y remisión al laboratorio. Procesamiento de las muestras en el laboratorio. Observación directa. Tinciones. Interpretación de los hallazgos. VII. Nociones de Bacteriología clínica. Conceptos generales. Cuando sospechar de agentes microbianos. Obtención de muestras, conservación y remisión. Procesamiento de las muestras: generalidades. Tinción Gram: fundamento e interpretación. Aislamiento y susceptibilidad antibiótica. Ejemplos B- Contenidos prácticos. Introducción a la metodología del laboratorio de análisis clínicos en medicina veterinaria: envío y recepción de las muestras. Manejo, acondicionamiento y conservación de las muestras. Protocolos de solicitud de análisis. Reconocimientos de materiales del laboratorio. Uso y cuidados. Reconocimiento de equipos, uso y cuidados de los mismos. Informe de resultados. Higiene y limpieza. Normas de bioseguridad. Manejo y cuidados del microscopio. Técnicas hematológicas: determinación del microhematocrito. Dosaje de hemoglobina. Recuento total de glóbulos rojos. Recuento total de los glóbulos blancos. Realización de frotis sanguíneos. Tinciones. Determinación de las fórmulas leucocitarias. Reconocimiento de la morfología eritrocitaria y leucocitaria. Recuento de reticulocitos. Determinación del total de proteínas plasmáticas por refractometría. Determinación del fibrinógeno por calentamiento y refractometría. Estimación de plaquetas. Morfología plaquetaria. Recuento

5 de plaquetas. Determinación del tiempo de tromboplastina parcial activada. Determinación del tiempo de protrombina. Valores de referencia en las distintas especies domésticas. Interpretación de resultados. Diagnóstico de Hemoparásitos Análisis de orina: determinación de las características físicas y químicas. Evaluación del sedimento urinario. Interpretación de resultados. Evaluación de líquidos de punción: determinación de las características físicas y químicas. Recuento de células nucleadas total y diferencial. Interpretación de resultados Bioquímica sanguínea: Determinación de analitos: urea, creatinina, glucosa, colesterol, triglicéridos, calcio, fósforo. Determinación de enzimas: GPT, AST, FAS, GGT. Interpretación de resultados. Citología diagnóstica: Procesamiento de impronta, hisopados, frotis, líquidos. Tinciones. Reconocimiento celular. Diferenciación de procesos inflamatorios y neoplásicos. Procesamiento general de muestras para bacteriología. Tinción gram. Reconocimiento de morfología bacteriana. Realización de antibiograma. DIRECTOR DEL CURSO Vet. MSc. Marcelo Ruiz DOCENTES A CARGO DEL DICTADO Vet. MSc. Marcelo Ruiz (Docente Análisis Clínicos/ Laboratorio de Análisis Clínicos, HSA. FCV.UNL). M.V. Rossana Zimmermann (Docente Análisis Clínicos/ Laboratorio de Análisis Clínicos, HSA. FCV. UNL).

6 M.V. MSc. Norma Russi (Docente Infectología y Enfermedades Infecciosas/ Laboratorio de Microbilogía, HSA. FCV.UNL). M.V. MSc. Marini Rocío (Docente de Biología Celular/Patología Veterinaria/Laboratorio de Anatomía Patológica, HSA. FCV. UNL). M.V. Fabián Aguirre (Docente de Análisis Clínicos/ Laboratorio de Análisis Clínicos HSA. FCV.UNL). Vet. Especialista en diagnóstico anatomohistopatológico veterinario Amorina Sánchez (Docente de Patología Veterinaria, Laboratorio Anatomía Patológica HSA. FCV. UNL). MODALIDAD CURSADO: Semi- intensivo: se dictará un módulo por mes. Los días jueves y viernes correspondientes al último fin de semana de cada mes, 18 hs cada módulo, con excepción de los módulos V, VI, VII y VIII cuya duración será de 10 hs cada uno (ESTA MODALIDAD ES LA QUE COMENZARÍA EN AGOSTO 2015). Intensivo: todos los módulos se dictarán en una semana de un mes previamente acordado con el interesado. De lunes a sábado. 10 Hs por día (INTERESADOS POR ESTA MODALIDAD CONSULTAR). Observación: se pueden realizar módulos individuales (INTERESADOS POR ALGÚN MÓDULO EN PARTICULAR CONSULTAR). CONDICIONES DE ADMISIÓN Ser Veterinario o Médico Veterinario con más de un año de ejercicio de la profesión. Enviar curriculum vitae y carta manifestando sus motivaciones personales al director del curso. Observación: cupos limitados, hasta 5 profesionales (se seleccionaran a través del curriculum vitae).

7 APROBACIÓN: Asistir a todos los módulos. El examen es individual y consta de dos etapas. La primera, de modalidad escrita sobre los contenidos teóricos y prácticos del curso. La segunda, de modalidad oral, donde deberá realizar alguna técnica y reconocer preparados microscópicos. Para aquellos profesionales que opten por realizar solo un módulo, la evaluación se basará en los contenidos de dicho módulo y de forma similar a lo especificado en el párrafo anterior.

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