ASIGNATURA METODOS EXPERIMENTALES EN SEÑALIZACIÓN CELULAR. Máster Universitario en DIANAS TERAPÉUTICAS EN SEÑALIZACIÓN CELULAR. Universidad de Alcalá

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1 ASIGNATURA METODOS EXPERIMENTALES EN SEÑALIZACIÓN CELULAR Máster Universitario en DIANAS TERAPÉUTICAS EN SEÑALIZACIÓN CELULAR Universidad de Alcalá Curso Académico 2017/18

2 GUÍA DOCENTE Nombre de la asignatura: Métodos experimentales en señalización celular Código: Titulación en la que se imparte: Máster oficial Departamento: Biologías de Sistemas Áreas de Conocimiento: Bioquímica y Biología Molecular; Fisiología; Química Orgánica Carácter: Obligatoria Créditos ECTS: 9 (1T+8P) Curso y cuatrimestre: Primer Cuatrimestre Profesorado: B.Colás (Coordinadora); A. Chiloeches; S. Ropero; M.A. Pérez- Albarsanz; A. Jimenez; M.L. Diez; F. Germain; G. Quintanilla; J.C. Diez Ballesteros; Gemma Olmos Centenera; M. Piedad Ruiz Torres; L. Calleros; J. Vicente Horario de Tutoría: Abierto por correo electrónico y a concertar en persona Idioma en el que se imparte: Español 1. PRESENTACIÓN La identificación a lo largo de los últimos años de nuevas dianas terapéuticas y el diseño de tratamientos dirigidos contra determinadas alteraciones moleculares ha supuesto un cambio fundamental en las estrategias para el tratamiento de distintas patologías, especialmente oncológicas y neurodegenerativas. Un elevado porcentaje de estas nuevas dianas son moléculas de señalización celular y son muchos los fármacos dirigidos contra estas moléculas que se encuentran en fase de investigación. Todo ello requiere una actualización permanente de nuestros conocimientos teóricos y prácticos para abordar con éxito estos nuevos retos. Esta asignatura pretende que el alumno conozca los fundamentos teóricos y prácticos de una serie de técnicas de gran utilidad para establecer nuevas dianas terapéuticas y el desarrollo de nuevos fármacos dirigidos contra ellas. La asignatura tiene un enfoque eminentemente práctico dirigido al manejo y utilización de dichas técnicas. Prerrequisitos y Recomendaciones (si es pertinente) Se requieren conocimientos en Bioquímica y Biología Molecular a nivel de grado y un nivel de inglés adecuado para la lectura y comprensión de artículos científicos. 2

3 2. COMPETENCIAS Competencias genéricas: 1. Desarrollar la capacidad de aplicar los conocimientos obtenido en el nivel de grado, incrementados y mejorados, como soporte para la originalidad en el desarrollo y aplicación de ideas en un contexto de investigación o de ejercicio profesional. 2. Desarrollar destrezas y habilidades para la resolución de problemas en entornos nuevos y en contextos amplios (multidisciplinarios) relativos al campo de la señalización celular, dianas terapéuticas y descubrimiento de fármacos. 3. Desarrollar la capacidad de integración de conocimientos, enfrentamiento a la complejidad y formulación de juicios a partir de información incompleta o limitada, pero que incluya reflexiones sobre las responsabilidades sociales y éticas ligadas a la aplicación de sus conocimientos y juicios. 4. Desarrollar la capacidad de comunicación en el marco científico, tanto para una audiencia experta como no experta. 5. Desarrollar la capacidad de aprendizaje autónomo que permita mantener una formación continua a lo largo de la carrera profesional. 6. Adquirir una base formativa sólida para continuar con la realización de un Doctorado o iniciar una carrera profesional en el sector farmacéutico o biotecnológico. Competencias específicas: 1. Adquirir conocimientos de la principales técnicas experimentales 2. Saber diseñar un experimento 3. Alcanzar destrezas técnicas en el laboratorio 4. Aprender a trabajar con responsabilidad y seguridad en el laboratorio 5. Aprender a elaborar un cuaderno (o diario) de laboratorio 6. Saber interpretar e integrar los datos experimentales con actitud crítica 7. Comunicar de manera efectiva los resultados experimentales, tanto de forma escrita como oral 8. Saber utilizar con rigor el método científico 9. Mejorar la capacidad de trabajo en equipo e individual 3. CONTENIDOS Bloques de contenido (se pueden especificar los temas si se considera necesario) Total de clases, créditos u horas 3

4 Cultivo celular. Manipulación de cultivos celulares: congelación y descongelación, sembrado y replicación. Contaje celular. Tratamientos farmacológicos. Lisado celular. Aislamiento de material biológico (proteínas, RNA). Análisis de la expresión de determinadas proteínas en líneas celulares mediante técnicas inmunológicas (inmunoprecipitación, inmunoblot) y de los niveles de RNAm correspondiente por RT-PCR. Silenciamiento de proteínas expresadas en líneas celulares tumorales mediante interferencia del RNA y análisis del efecto producido en el fenotipo celular. Análisis del estado de metilación de promotores de genes supresores de tumores en líneas celulares tumorales. Fundamento teórico sobre la producción de: vectores para la transferencia de ADN a células animales, anticuerpos y vacunas. Terapia génica. Preparación, análisis, manipulación y clonaje de ADN. Expresión de ADN en sistemas heterólogos. Fundamentos teórico-prácticos de técnicas microscópicas y citómicas. Microscopía confocal y citómetro de flujo. Fundamentos teóricos de radioisótopos. 126h (10T + 106P) Cronograma (Optativo) Semana / Sesión Contenido 01ª Cultivos celulares 02ª 03ª Radiactividad, aspectos teóricos. Inmunoprecipitación. Silenciamiento génico Inmunoprecipitación. Silenciamiento génico 4

5 04ª Silenciamiento génico RT-PCR 05ª Metilación del DNA. 06ª 07ª Microscopía confocal. Citometría de flujo: Análisis de viabilidad celular. Análisis de especies reactivas de oxígeno. Preparación, análisis, manipulación y clonaje de ADN. Fundamento teórico sobre la producción de: vectores para la transferencia de ADN a células animales, anticuerpos y vacunas. Terapia génica 4. METODOLOGÍAS DE ENSEÑANZA-APRENDIZAJE.-ACTIVIDADES FORMATIVAS 4.1. Distribución de créditos (especificar en horas) Número de horas presenciales: 126 Número de horas del trabajo propio del estudiante: 99 Total horas Estrategias metodológicas, materiales y recursos didácticos Lecciones expositivas: 1 ECTS. Competencia específica 1. Clases prácticas: 8 ECTS. Consistirá en: Actividades presenciales Elaboración de los protocolos de los ensayos Preparación de reactivos y realización de los ensayos Elaboración y gestión continua del cuaderno de laboratorio Elaboración y presentación de los resultados Discusión de resultados Actividades no presenciales Preparación y ejecución del trabajo 5

6 práctico en el laboratorio Búsqueda bibliográfica Estudio, análisis y asimilación de los contenidos 5. EVALUACIÓN: Procedimientos, criterios de evaluación y de calificación 1 La asignatura utiliza una evaluación continua en su totalidad con diversos procedimientos. La asistencia será obligatoria, salvo causa justificada por escrito. Procedimientos. Realización de prácticas de laboratorio. Elaboración y discusión de resultados. Realización y gestión del cuaderno de laboratorio. Calificación final: En el sistema de evaluación continua, el aprendizaje de cada alumno se valorará mediante datos objetivos procedentes de: Calidad de los resultados obtenidos y una prueba escrita de los conocimientos adquiridos en las prácticas de laboratorio: Inmunoprecipitación: 15% Silenciamiento génico. RT-PCR: 20% Metilación del DNA: 15% Preparación, análisis, manipulación y clonaje de ADN: 20 % Análisis de viabilidad celular. Análisis de especies reactivas de oxígeno: 15% Otras actividades: 15% Convocatoria extraordinaria: En el caso de no aprobar la asignatura en la convocatoria ordinaria se realizará una prueba específica sobre las competencias no superadas. 1 Es importante señalar los procedimientos de evaluación: por ejemplo evaluación continua, final, autoevaluación, co-evaluación. Instrumentos y evidencias: trabajos, actividades. Criterios o indicadores que se van a valorar en relación a las competencias: dominio de conocimientos conceptuales, aplicación, transferencia conocimientos. Para el sistema de calificación hay que recordar la Normativa del Consejo de Gobierno del 16 de Julio de 2009: la calificación de la evaluación continua representará, al menos, el 60%. Se puede elevar este % en la guía. 6

7 6. BIBLIOGRAFÍA Bibliografía Básica. La bibliografía principal serán los protocolos de las prácticas y material adicional publicados en la página web del máster. Páginas web de interés: Esta página web se utilizará en distintos momentos de la asignatura con distintos objetivos y aplicaciones. 7