MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE INDENTIFICACIÓN DE TRIATOMINOS (HEMIPTERA: REDUIIDAE) DEL PERÚ

Transcripción

1

2

3 MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE INDENTIFICACIÓN DE TRIATOMINOS (HEMIPTERA: REDUIIDAE) DEL PERÚ MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE IDENTIFICACIÓN DE TRIATOMINOS (HEMIPTERA: REDUVIIDAE) DEL PERÚ ELABORACIÓN: Blgo. ABRAHAM G. CÁCERES LÁZARO División de Entomología. Centro Nacional de Salud Pública MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD

4 MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE INDENTIFICACIÓN DE TRIATOMINOS (HEMIPTERA: REDUIIDAE) DEL PERÚ Catalogación hecha por el Centro de Documentación e Información del Instituto Nacional de Salud (INS) Cáceres Lázaro, Abraham Manual de procedimientos de identificación de triatominos (hemiptera: reduviidae) del Perú/Elaborado por Abraham Cáceres Lázaro. -- Lima: Ministerio de Salud, Instituto Nacional de Salud, p.: 15 cm. -- (Serie de Normas Técnicas; 41) 1.TRIATOMA /crecimiento y desarrollo 2. INSECTOS VECTORES 3. CONTROL VECTORIAL 4. TÉCNICAS Y PROCEDIMIENTOS DE LABORATORIO 5. PERÚ I. Cáceres Lázaro, Abraham III. Instituto Nacional de Salud (Perú) IV. Perú. Ministerio de Salud ISBN (O.C.) ISBN (N 41) ISSN Hecho el Depósito Legal Nº Ministerio de Salud, 2005 Av. Salaverry, cuadra 8 s/n, Jesús María, Lima, Perú Teléfono: (511) Instituto Nacional de Salud, 2005 Cápac Yupanqui 1400, Jesús María, Lima, Perú Teléfono: (511) Fax: (511) Correo electrónico: revmedex@ins.gob.pe Página web: Publicación aprobada con R.J. Nº J-OPD/INS Portada: Espécimen macho de Triatoma infestans Se autoriza su reproducción total o parcial, siempre y cuando se cite la fuente. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD

5 MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE INDENTIFICACIÓN DE TRIATOMINOS (HEMIPTERA: REDUIIDAE) DEL PERÚ CONTENIDO INTRODUCCIÓN 5 SECCIÓN Objetivo Campo de aplicación Responsabilidades Documentos de referencia Definiciones... 8 SECCIÓN Disposiciones Principales medidas de bioseguridad SECCIÓN Generalidades de los triatominos Los triatominos Ecología de los triatominos Ciclo biológico Características morfológicas de los triatominos SECCIÓN Encuesta y vigilancia de triatominos Método para detectar infestaciones Examinar los ambientes internos (intradomicilios) y externos (peridomicilios) de una vivienda Buscar triatominos en ambientes extradomiciliarios (selváticos) Equipos para capturar triatominos Envío de triatominos Indicadores entomológicos SECCIÓN Identificación de triatominos Clave taxonómica para triatominos del Perú MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD

6 MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE INDENTIFICACIÓN DE TRIATOMINOS (HEMIPTERA: REDUIIDAE) DEL PERÚ SECCIÓN Montaje de ejemplares de triatominos en alfileres SECCIÓN Estudio de la infección natural Examen de triatominos para investigar Trypanosoma cruzi o Trypanosoma rangeli SECCIÓN Adaptar colonias de triatominos al laboratorio SECCIÓN Xenodiagnóstico SECCIÓN Lista de especies en el Perú Triatoma infestans (Klug, 1834) Panstrongylus herreri (Wygodzinsky, 1948) Rhodnius ecuadoriensis (Lent y León, 1958) SECCIÓN Bibliografía ANEXO A ANEXO B ANEXO C MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD

7 MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE INDENTIFICACIÓN DE TRIATOMINOS (HEMIPTERA: REDUIIDAE) DEL PERÚ INTRODUCCIÓN La enfermedad de Chagas o trypanosomiasis americana es una infección ocasionada por el parásitotrypanosoma cruzi y constituye un problema de salud pública para América Latina. La enfermedad se distribuye entre el límite de México con los Estados Unidos y el sur de Chile y Argentina lo que corresponde a los paralelos 42º LN y 45º LS. La trypanosomiasis americana es una de las enfermedades prioritarias para el Programa del Banco Mundial de la OMS/UNDP. Después de la malaria, es la más seria y de amplia distribución en los seres humanos de las Américas. Su presencia en el continente americano data de hace más de 2000 años; pues, se ha demostrado el megacolon chagásico y posiblemente cardiopatía en momias exhumadas pertenecientes a los indios Wankarani establecidos en el interior de la Provincia de Tarapacá a 1100 msnm (norte de Chile) procedentes de Bolivia. Los vectores del agente etiológico de la trypanosomiasis americana son los insectos triatominos que se encuentran distribuidos en las regiones neotropicales y neárticas desde los 41º LN y 46º LS. Aproximadamente, 90 millones de personas en Latinoamérica están en riesgo de infectarse con el Trypanosoma cruzi, y se estima que entre 16 y 18 millones de ellas se encuentran infectadas. En el Perú, esta enfermedad es un problema de salud pública que afecta a la población de 15 departamentos, siendo dos las zonas más afectadas: a) Nororiente, y b) Sudoccidental. Con respecto a los triatominos, se han notificado en localidades de algunas provincias de 20 departamentos. En la historia natural de esta enfermedad, uno de los eslabones que permite establecer la medida de control y vigilancia epidemiológica es, sin duda, el estudio de los triatominos transmisores y los factores determinantes para considerarlos vectores efectivos. El control de la enfermedad de Chagas se basa en la eliminación o control de las poblaciones de los triatominos mediante diversas estrategias como el control químico, el ordenamiento del medio y la educación sanitaria. Para ello, es importante también la decisión de organizar y llevar adelante un programa antitriatomínico que debe tener una base en la decisión política a largo plazo para que sustente su permanencia, su vigilancia, así como la formulación y desarrollo de investigaciones. Lo contrario, implica correr riesgos serios en la interrupción del programa, lo que significaría perder los esfuerzos y recursos invertidos, y lo más grave y peligroso, no alcanzar los objetivos. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD

8 MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE INDENTIFICACIÓN DE TRIATOMINOS (HEMIPTERA: REDUIIDAE) DEL PERÚ El presente Manual de procedimientos de identificación de triatominos (hemiptera: reduviidae) del Perú proporciona de manera sencilla y resumida la información de los aspectos entomológicos básicos y fundamentales para apoyar la investigación y los programas de vigilancia y control de esta enfermedad. Se agradece a todas las personas que de alguna manera han apoyado y brindado facilidades para la redacción del presente manuscrito, en especial al Dr. César Náquira Velarde y al Dr. Alfonso Zavaleta Martínez-Vargas por las sugerencias y la revisión del Manual; a la Dra. Juana Lung de Herrer, por facilitar las referencias bibliográficas, y a los Dres. Alejandro Llamoga Sánchez y Roque Fernández Vera por haber realizado algunas tomas fotográficas de los triatominos, que sirvieron para ilustrar el presente manual. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD

9 MANUAL DE PROCEDIMIENTOS DE INDENTIFICACIÓN DE TRIATOMINOS (HEMIPTERA: REDUIIDAE) DEL PERÚ MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD

10 SECCIÓN 1 GENERALIDADES 1.1. OBJETIVO Brindar información referente a los procedimientos y técnicas de: 1) captura, 2) conservación, 3) embalaje, 4) transporte de ejemplares, 5) montaje, y 6) identificación de los triatominos, con énfasis en los que han sido incriminados como vectores del agente etiológico de la enfermedad de Chagas; asimismo, el estudio de su capacidad vectorial. Se concluye con la presentación de claves para diferenciar géneros y especies de triatominos notificados en el Perú CAMPO DE APLICACIÓN Para el personal de los laboratorios regionales, intermedios y locales que integran la Red Nacional de Laboratorios de Salud Pública RESPONSABILIDADES El Centro Nacional de Salud Pública (CNSP), a través de la Dirección Ejecutiva de Enfermedades Transmisibles (DET), es responsable de autorizar la elaboración, revisión y actualización del presente manual, de acuerdo con los procedimientos aprobados por el Instituto Nacional de Salud Los directores regionales de salud y los directores o jefes de los establecimientos de salud son responsables de autorizar, proporcionar los recursos necesarios y designar al personal responsable y calificado para la aplicación y la supervisión de las disposiciones contenidas en el presente manual El personal de los establecimientos de salud es responsable de planificar las acciones, organizar, controlar y capacitar al personal; así como de proporcionar equipos, materiales, reactivos e instalaciones Los jefes o responsables de los laboratorios deben asegurar el control interno de la calidad Los profesionales designados para realizar el diagnóstico son responsables de controlar el cumplimiento de las disposiciones contenidas MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 7

11 en el presente manual y, además, de mantener la confiabilidad de sus actividades e informar a las instancias superiores en caso de ocurrencia de variaciones en las especificaciones de los procedimientos establecidos El personal asignado para realizar esta actividad, descrita en el presente manual, debe estar calificado para manejar técnicas y métodos de ensayo, aplicar medidas de bioseguridad y de buenas prácticas de laboratorio, y mantener la confiabilidad de las actividades que realiza DOCUMENTOS DE REFERENCIA Instituto Nacional de Salud. Manual de procedimientos de laboratorio para la obtención y envío de muestras (1). Serie de Normas Técnicas Nº 15, 2 da ed., Instituto Nacional de Salud. Manual de normas de bioseguridad. Serie de Normas Técnicas Nº 18, 2 da ed., DEFINICIONES Capacidad vectorial. Factibilidad del triatomino para transmitir los trypanosomatideos Clípeo. Borde anterior de la cabeza, compuesto de dos escleritos: uno grande posterior, denominado postclípeo y otro pequeño anterior, articulado flexiblemente al postclípeo Conexivo. Margen lateral saliente en el abdomen de los hemípteros Cópula. Unión física de los insectos machos y hembras Doméstico. Triatomino que desarrolla todo el ciclo evolutivo en el interior de una vivienda Depredador. Un insecto que naturalmente caza y devora a otros insectos Escutelo. Porción posterior de la superficie dorsal del mesotórax, visible en la base de las alas. Es un esclerito triangular en todos los géneros, excepto en el Parabelminus en el que se presenta trapezoidal. La superficie dorsal del escutelo es rugosa, con un área central más o menos deprimida y bordeada por dos o más surcos convergentes; la MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 8

12 proyección posterior del escutelo en muchos casos es cilíndrica, elongada y subhorizontal con ápice puntiagudo, redondeado o a veces truncado Estercolarios. Agrupamiento de Trypanosoma que lleva a cabo su desarrollo en el intestino del insecto vector Exotepterigoto. Adjetivo que se deriva de exopteriota, subdivisión de los insectos que incluye a los hemípteros y otras órdenes cuya metamorfosis o desarrollo a través de su ciclo de vida pasa de huevo a ninfa y a adulto. A esta forma de desarrollo se le denomina también hemimetábolo o metamorfosis incompleta Exuvia. Cubierta exterior de la que se despojan los insectos cuando mudan a su próxima etapa de desarrollo Gena. Es un segmento de la cabeza ubicado lateralmente al clípeo. El ápice de éste puede ser redondeado o en punta Hemiélitro. Alas delanteras de los hemípteros con una porción basal más gruesa y otra porción distal membranosa Hábitat. Lugar donde vive en forma natural el insecto Huésped. Organismo en el cual se aloja un parásito u otros microorganismos Hemíptera. Uno de los 29 órdenes de insectos. Estos poseen alas delanteras denominadas hemiélitros y tienen piezas bucales chupadoras y perforadoras Índice de Infestación Domiciliaria (IID). Número de viviendas infestadas sobre el número total de viviendas encuestadas multiplicado por 100; se expresa en porcentaje. Es útil para estratificar áreas por intervenir mediante control vectorial Índice Trypano-Triatominico (ITT). Es el número de triatominos infectados naturalmente con Trypanosoma cruzi sobre el total de triatominos examinados multiplicado por 100; se expresa en porcentaje. Es útil para estratificar áreas por intervenir mediante muestreo parasitológico para enfermedad de Chagas y para efectuar el control vectorial Metacíclico. Forma infectante del Trypanosoma presente en las heces del vector Ocelo. Son ojos simples situados a ambos lados de la cabeza, casi detrás de los ojos compuestos. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 9

13 Operculado. Término que se usa para describir a los huevos que poseen una tapa notoria Ovipostura. Postura de los huevos Peridoméstico. Insecto que vive en depósitos, corrales de aves u otros abrigos de animales cercanos a las viviendas Polimorfismo. Que presenta forma distinta, que no está relacionada con las etapas del ciclo de vida Proboscis. Piezas bucales de los hemípteros que forman un tubo enroscado bajo la cabeza. El tubo tiene un estilete que penetra los tejidos del huésped Pronoto. Es un esclerito a manera de escudo que cubre el mesotórax de forma trapezoidal, posee dos lóbulos anteriores y dos posteriores; el lóbulo posterior puede presentar una superficie lisa o granulosa y tubérculos distales y laterales Rostrum o rostro. Es el órgano picador chupador. Se inserta debajo del lado posterior de la cabeza, a la cual se denomina gula. El rostrum en los triatominos hematófagos consta de tres segmentos; en la gran mayoría de los redúvidos entomófagos el rostrum es curvado. El segundo segmento generalmente es el más largo y el tercero es el más corto Surco estridulatorio. Es una depresión o surco localizado en la porción central del prosternum (porción ventral del protórax) donde descansa el ápice del rostrum cuando se encuentra replegado o doblado hacia abajo Xenodiagnóstico. Método para el diagnóstico parasitológico de la enfermedad de Chagas, donde se permite que un triatomino no infectado se alimente con sangre del paciente, examinándose el contenido rectal del insecto a partir de los 15 días posteriores, en busca de parásitos que probablemente hayan podido multiplicarse en sus intestinos Yugo. Es una placa de la cabeza situada en la base de la gena, es de forma subtriangular y pequeña. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 10

14 SECCIÓN DISPOSICIONES Las disposiciones contenidas en el Manual de normas de bioseguridad. Serie de Normas Técnicas Nº 18, 2 da ed., son aplicables para el cumplimiento de las disposiciones del presente manual Se debe aplicar las medidas de bioseguridad pertinentes, especialmente las aplicables a: El ambiente El equipo El personal Animales de experimentación Los triatominos Las muestras y su procesamiento La esterilización La bioseguridad es un conjunto de medidas preventivas para proteger la salud y la seguridad del personal que trabaja en el laboratorio, frente a diferentes riesgos producidos por agentes Es responsabilidad de la dirección del laboratorio, establecer y aplicar las normas y procedimientos de bioseguridad detalladas por escrito La dirección del establecimiento de salud debe dar las facilidades para que las normas de bioseguridad se cumplan Los principales peligros son las exposiciones por puntura accidental con agujas de jeringas, estiletes, pinzas, etc.; por corte con bisturí, láminas y cubreobjetos contaminados y por exposición en membranas mucosas o en la piel que presenta lesión activa, laceraciones, heridas o rasguños PRINCIPALES MEDIDAS DE BIOSEGURIDAD Todos los triatominos deben ser trasladados de su ambiente natural al laboratorio en vasos colectores apropiados, para evitar que escapen A todos los triatominos se les debe tratar como potencialmente infectados con Trypanosoma cruzi. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 11

15 En el momento de manipular, identificar y disectar los triatominos, se debe utilizar mascarillas, guantes nuevos y guardapolvo Lavarse las manos luego de concluir el trabajo con los triatominos Si la persona que va a manipular los triatominos presenta cortaduras o rasguños en las manos y antebrazos, éstos deben ser cubiertos y estar bien protegidos Debe utilizarse zapatos que cubran los pies, no debe usarse sandalias o zapatos abiertos El procesamiento de los triatominos debe realizarse sobre una superficie de trabajo protegido por papel absorbente plastificado o papel de filtro La superficie de trabajo debe ser descontaminada por el operador antes y después de cada actividad Informar inmediatamente cualquier accidente al jefe del laboratorio Se debe disponer de un ambiente apropiado para el lavado de los ojos en caso de exposición accidental por salpicaduras Todos los instrumentos utilizados durante el trabajo con triatominos deben descontaminarse antes de ser eliminados, en solución desinfectante y luego ser autoclavados (121 C durante 20 minutos) o incinerarlos Si se trabaja con cultivo para Trypanosoma cruzi, se debe usar una cabina de flujo laminar y mechero Bunsen o mechero de alcohol El animal infectado experimentalmente con Trypanosoma cruzi debe ser colocado en una jaula apropiada y segura, a la que se le adherirá una etiqueta que indique ANIMAL INFECTADO CON TRYPANOSOMA CRUZI, para luego depositarla en un ambiente seguro y apropiado. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 12

16 SECCIÓN GENERALIDADES DE LOS TRIATOMINOS El orden Hemiptera se divide en cuatro subórdenes: COLEORRHYNCHA HETERÓPTERA AUCHENORRHYNCHA STEINORRYNCHA 1 Familia 75 Familias 28 Familias 41 Familias Fitófagos Fitófagos y Fitófagos Fitófagos predatores En el suborden Heteróptera se ubica la familia Reduviidae con 25 subfamilias, todas de ellas predatoras, excepto la subfamilia Triatominae que es hematófaga y está integrada por más de 100 especies LOS TRIATOMINOS Son insectos del orden Hemiptera. Se caracterizan por poseer aparato bucal succionador; la mayoría son fitófagos, algunos predadores y unos pocos son hematófagos Su distribución abarca América y Asia, pero la mayor densidad de las especies se localiza en América A los triatominos se les denomina con diversos nombres regionales, como: chinches hocicones y cacarachuelos en México; chinches mamones y chinches de monte en Panamá; pitos en Colombia; en Venezuela pitos y chipos ; en Bolivia hitas ; en Ecuador chinchorros, chupasangre y chinches de caballo ; en Argentina, Chile, Uruguay y otras partes de Sudamérica se les denomina vinchucas ; en Perú se les conoce como: chinches, chinchones y chirimachas ; en Brasil se les conoce como barbeiros Estos hemípteros son de tamaño pequeño o mediano, el cual varía considerablemente en los diferentes grupos de géneros, aunque la hembra casi siempre supera al macho en tamaño. La coloración es generalmente sencilla, no obstante, también existen especies con colores vistosos. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 13

17 3.3. ECOLOGÍA DE LOS TRIATOMINOS La principal característica biológica de los triatominos, tanto de las ninfas como de los adultos de ambos sexos, es la de succionar sangre, principalmente de aves y mamíferos Sus hábitats naturales son ecotopos silvestres que sirven de nidos, refugios o lugares de descanso para mamíferos, aves y reptiles; los cuales constituyen sus fuentes naturales de alimentación. Algunos triatominos tienen preferencia por cierta especie en particular, pero la mayoría de ellos se alimenta de una amplia variedad de huéspedes Generalmente los triatominos se alimentan durante la noche, pero en lugares oscuros pueden alimentarse durante el día La presencia de animales incrementa y preserva la población, pues èstos se constituyen en fuentes de alimentación; algunos animales pueden ser predadores de triatominos, y a la vez desempeñar un papel en la dispersión pasiva de los vectores, constituyéndose como huéspedes y como reservorios de diversos patógenos. Por otro lado, los factores climáticos, principalmente la temperatura, al parecer controlan el índice de incremento de las poblaciones de los triatominos Otro factor para la colonización, proliferación y mantención de los triatominos son las condiciones de edificación de las viviendas que crean microhábitats apropiados. En las construcciones de las viviendas se observan hendiduras, rajaduras y grietas en las paredes y techos de barro o cemento; asimismo, en las uniones entre los adobes y ladrillos, los espacios entre tablas de madera, también los techos de hojas de palmeras. Otros factores que favorecen la infestación son el uso de telas como cortinas, el almacenamiento de los productos de las cosechas, el depósito de adobes y el apilamiento de maderas y palos dentro de la casa, y, por último, la presencia de animales domésticos en el interior de las casas, como: cuyes, conejos, gallinas, pavos, perros, gatos, etc La picadura es poco dolorosa y se puede soportar, provocando sólo a veces un ligero prurito y en algunas ocasiones una ampolla en el lugar de la picada, siendo la cara, los miembros superiores y los pies los más afectados Al momento o después de alimentarse, el triatomino hace una deyección líquida que tiene dos aspectos: uno de color amarillento que se seca rápidamente al contacto del aire, y otro que se seca lentamente y es de color negro. Este comportamiento de picar y defecar se debería a MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 14

18 la necesidad del triatomino de succionar más sangre y almacenarla desocupando su intestino CICLO BIOLÓGICO Los triatominos son insectos hemimetábolos. De huevo pasan por cinco estadios ninfales (Fig.1), en los que son muy parecidos a los adultos pero de menor tamaño y carecen de alas. La obtención de sangre para los triatominos es muy necesaria para la muda y continuación de su desarrollo El ciclo de vida de los triatominos oscila entre 4 y 16 meses o más. Muchas especies de triatominos han sido adaptados a condiciones de laboratorio con temperaturas que fluctúan entre 24 ºC y 27 ºC, y a una humedad relativa entre 70% y 75%, con la finalidad de conocer el ciclo biológico de cada triatomino. Respecto de estos estudios se da a conocer lo siguiente: Huevo Figura 1. Ciclo biológico de un triatomino. Los huevos son colocados entre 10 y 15 días después de la cópula. Algunas hembras no apareadas pueden poner algunos huevos, pero éstos serán infértiles. Las hembras fértiles generalmente ponen huevos una sola vez, pero en muchos casos continúan poniendo huevos durante toda su vida. El número de huevos puestos por hembra y la frecuencia de la ovipostura depende principalmente de la cantidad de sangre ingerida. En la mayoría de los casos, cada hembra pondrá entre 100 y 600 huevos durante su vida. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 15

19 Los triatominos son de hábitos terrestres, generalmente colocan sus huevos individualmente o en grupo, en cualquier lugar que encuentre la hembra. Pero las especies que habitan en los árboles como es el caso de la mayoría de especies de Rhodnius colocan sus huevos en grupos pequeños adheridos al sustrato. Los huevos son de forma oval, más o menos elípticos (Fig. 2 y 3), presentan un opérculo en uno de sus extremos, por el cual emerge la ninfa I. Al inicio, los huevos son de color blanco-perla o gris, posteriormente cambian a rosado o rojizo a medida que el embrión desarrolla, observándose por transparencia los ojos de la futura ninfa. El tiempo que transcurre desde la puesta de los huevos hasta que eclosiona la primera ninfa varía para cada especie; también varía para una misma especie cuando habitan en regiones diferentes. En algunas especies el tiempo es de entre 10 y 30 días. El corión presenta ornamentaciones que varían según las especies. Figura 2. Huevos eclosionados de Panstrongylus herreri. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 16

20 Ninfa (Fig. 4) Figura 3. Huevos eclosionados de Triatoma infestans. Presenta cinco estadios ninfales. Transcurridos de dos a tres días después de emerger, las ninfas ya están listas para alimentarse; de no conseguir alimento pueden pasar varias semanas en ayunas. Todas las etapas de ninfas normalmente se alimentan de la misma variedad de huéspedes que los adultos presentes en el mismo hábitat. Bajo buenas condiciones, las ninfas pueden ingerir sangre hasta nueve veces su peso, mientras que los adultos, aproximadamente, de 2 a 4 veces. Generalmente, las ninfas que están en el quinto estadio son las que absorben la mayor cantidad de sangre, esto va algunas veces de 400 a 1000 por especie asociada al ser humano. Todos los estadios de ninfa, así como ambos sexos, pueden sobrevivir durante períodos largos sin ingerir alimento, llegando en algunos casos hasta 11 meses. Figura 4. Vista dorsal de una ninfa de triatomino. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 17

21 Adulto (Fig. 5 y 6) Los triatominos adultos se diferencian de la ninfa por sus alas anteriores y posteriores bien desarrolladas y por ser sexualmente maduros, con los genitales completamente desarrollados. La hembra copula sólo una vez y después de ser fecundada comienza la postura, antes de los 30 días. En algunas especies pueden observarse hasta 40 posturas que sobrepasan los 200 huevos. Los adultos tienen un par de ocelos sensibles a la luz en la parte posterior de la cabeza, justo detrás de los ojos. Las ninfas no tienen estos ocelos. Figura 5. Triatomino hembra. Figura 6. Triatomino macho. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 18

22 3.5. CARACTERÍSTICAS MORFOLÓGICAS DE LOS TRIATOMINOS Cabeza Es de forma variada. Algunos tienen la cabeza más o menos alargada y otros algo cónica. Se inicia en un ápice simple no dividido, que les permite dar movimientos notablemente libres; además, puede ser relativamente lisa o estar provista de numerosos tubérculos. La cabeza está divida en dos regiones: una situada delante de los ojos denominada región anteocular, y otra posterior llamada postocular; la región anteocular suele ser más larga que la postocular (Figs. 7, 7a). La región anteocular presenta lateralmente dos surcos longitudinales: las genas que limitan una región central estrecha y alargada a la cual se le denomina clípeo, y el epistoma; por detrás de los surcos y un poco por encima de las bases antenales se presentan dos pequeñas prominencias denominadas tubérculos, procesos frontales. La región postocular es relativamente corta, se estrecha hacia atrás para formar el cuello, y en ella se encuentran dos pequeños órganos casi redondeados, hialinos y transparentes que están situados lateralmente por detrás de los bordes superiores de los ojos, son los llamados ocelos, que en algunas hembras ápteras pueden ser rudimentarios o estar ausentes. El rostro, también denominado proboscis, es recto, alargado y delgado, formado por tres segmentos desiguales. Puede ser lanzado hacia delante, pero en reposo se encuentra debajo de la cabeza, llegando generalmente hasta el tórax. Su inserción se hace hacia delante de la región anteocular (Fig. 7a). Las antenas están compuestas por cuatro segmentos, de los cuales el primero es más corto que la cabeza. Se inician a ambos lados de la región anteocular en los llamados tubérculos anteníferos, por delante y a la mitad de los ojos, casi en la extremidad cefálica. Los ojos compuestos son prominentes y anteceden al par de ojos simples u ocelos que, por lo general, están colocados en protuberancias, excepto en las ninfas, las cuales carecen de ellos. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 19

23 Ante Clípeo Post Clípeo Gena Yug o Tubérculo Antenífero Reg ión Anteocular Ojo Acelo Cuello Reg ión Posocular Figura 7. Vista dorsal de la cabeza. Tubérculo Antenífero Ocelos Yugo Clípeo Gena Labro Rostro Ojo Figura 7a. Vista lateral de la cabeza Tórax En esta sección la parte más visible es el protórax, el cual tiene una forma trapezoidal y su cara dorsal o pronoto se halla dividida en dos porciones: una anterior o lóbulo anterior y otra posterior o lóbulo posterior (Fig. 8). La línea divisoria entre los lóbulos generalmente se halla situada más próxima al ápice que a la base y, lateralmente, existen unas expansiones más o menos prominentes llamadas ángulos anteriores o posteriores, según su posición. En los ángulos anteriores o porciones laterales del lóbulo anterior, se encuentran unos pequeños salientes en forma de tubérculos o espinas denominadas MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 20

24 tubérculos pronotales anteriores, los cuales se dividen en: a) tubérculo distal y b) tubérculo lateral. Los ángulos posteriores o porciones laterales del lóbulo posterior carecen de salientes, pero su forma puede ser redondeada o aguda. En la parte que se encuentra por detrás del pronoto existe una estructura de forma triangular llamada escutelo, que es corto, cuyo ápice es simple o muchas veces provisto de un proceso elevado agudo o romo (Fig. 8). Lateralmente, el tórax presenta las pleuras que están divididas en tres pares: pro, meso y meta pleura (Fig. 8a). Ventralmente encontramos de delante hacia atrás el pro, meso y metasterno (Fig. 8b). Ángulo Anterolateral Collar Tubérculo Distal Tubérculo Lateral Lóbulo Anterior Lóbulo Posterior Ángulo Humeral Carena Escutelo Figura 8. Vista dorsal del protórax y escutelo. Coxa Prosterno Acetabulo Propleura Escutelo C oxa An terior Mesosterno Coxa Media Rostro Acetabulo Anterior Coxa Anterior Mesopleura Metapleura Metasterno Coxa Posterior Figura 8a. Vista lateral de la cabeza, protórax y del escutelo. Figura 8b. Vista ventral de la cabeza y el tórax. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 21

25 Las ninfas carecen de alas, mientras los adultos de ambos sexos generalmente son alados. Los hemiélitros o alas anteriores (Fig. 9) presentan un aspecto peculiar y cubren parcial o totalmente el abdomen, a la vez que presentan diseños típicos. El corio (mitad basal) es mucho más grueso y oscuro que la membrana (mitad apical), la cual, por lo general, presenta manchas y está provista de tres venas longitudinales que incluyen cuatro celdas. Las alas posteriores tienen cinco venas longitudinales, son membranosas y más cortas y finas que las anteriores (Fig. 9a). Las patas caminadoras son largas y delgadas, con las márgenes internas de los fémures inermes o provistas de espinas. Las tibias anteriores y medias de los machos casi siempre tienen fosas esponjosas y sencillas. Los tarsos están formados por tres segmentos y terminan en dos uñas (Fig. 9b). Figura 9. Ala posterior. Figura 9a. Ala anterior. Figura 9b. Pata anterior. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 22

26 3.5.3 Abdomen Es alargado, más o menos ancho, con o sin marcas en su margen lateral al cual se le denomina conexivo. Consta de nueve segmentos en la hembra y diez en el macho; el primer segmento es muy reducido, carece de cerdas y casi siempre está desprovisto de otros apéndices abdominales. Los machos, en la parte extrema del abdomen, tienen una apariencia suavemente redondeada, cuando se les mira desde arriba (Figs. 10 y 10a); mientras que en las hembras, la punta del abdomen tiene una apariencia lobulada o puntiaguda (Figs. 11 y 11a). Hacia los lados y ventralmente se encuentran los estigmas o espiráculos respiratorios. Morfología externa del macho Morfología externa de la hembra Ala anterior Conexivos Extremidad redondeada del macho Figura 10. Vista dorsal del extremo posterior del macho Extremidad recortada de la hembra Figura 11. Vista dorsal del extremo posterior de la hembra Vista ventral Espiráculo Respiratorio Esterrito VII Esterrito VI Esterrito VII Esterrito VIII Esterrito VIII Hipopigio Clásper Tertigio IX Conapórisis posterior Figura 10a. Vista ventral del extremo posterior del macho Figura 11a. Vista ventral del extremo posterior de la hembra MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 23

27 SECCIÓN ENCUESTA Y VIGILANCIA DE TRIATOMINOS Procedimiento mediante el cual se determina la presencia de especímenes vivos o muertos de triatominos, rastros de ellos como heces, restos de corión de los huevos y exuvias. Se determina también la tasa de infección natural por Trypanosoma cruzi. Todos los triatominos son de origen silvestre y muchas especies aún se encuentran en sus hábitats naturales; otras especies ya están adaptadas a las viviendas, donde las personas y algunos animales domésticos existentes en el interior o exterior de las viviendas les sirven de alimento; además, la vivienda les brinda protección de las condiciones climáticas desfavorables. Otras especies se encuentran en proceso de domiciliación. Las adaptaciones de los triatominos mencionadas arriba, son producto del deterioro de su hábitat natural, pues al no encontrar alimento suficiente, migran hacia los alrededores de las viviendas o al interior de éstas, adaptándose a ellas, ya que encuentran las condiciones favorables para obtener alimento y reproducirse MÉTODO PARA DETECTAR INFESTACIONES Las infestaciones de las viviendas por los triatominos pueden ser demostradas por el hallazgo de los triatominos o por los residuos del corión (cáscara), exuvias o huellas de heces. La secuencia normal de una inspección, ya sea en un área endémica o no endémica, es la siguiente: 1) Preguntar a las personas que habitan las viviendas si han visto o encontrado triatominos o si han sido picadas mientras descansaban en el interior de sus viviendas. A las personas se les debe mostrar triatominos disecados. 2) Examinar los ambientes internos (intradomicilios) y externos (peridomicilios) de la vivienda. 3) Buscar triatominos en ambientes extradomiciliarios (silvestres) Informe de las personas La persona encargada de realizar la vigilancia entomológica de los triatominos, debe preparar una buena muestra donde figuren todos los estadios del triatomino. Ésta debe ser mostrada a los habitantes de las viviendas y referirse preferentemente con el nombre que se le conoce localmente. En algunas MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 24

28 ocasiones, las personas de las viviendas no pueden reconocer al ejemplar, pero la mayoría de los pobladores de las zonas endémicas las reconocen diferenciándolos con los chinches de cama. Hay que tener presente, que las personas pueden confundir los reduvideos predadores y los fitófagos con los hematófagos. Se debe tener en cuenta que si la vivienda se encuentra altamente infestada, las personas tendrán oportunidad de conocer de la existencia de los triatominos, pero si el nivel de infestación es bajo, probablemente no se hayan percatado de su presencia. En otras ocasiones, los dueños de las viviendas mencionan que éstas están infestadas, cuando en realidad no lo están, con la finalidad de que el tratamiento con insecticidas pueda eliminar a otros insectos como cucarachas, pulgas, etc Evidencias indirectas de infestación Las pruebas indirectas de infestación están dadas por las huellas de las heces dejadas por los triatominos sobre paredes y artefactos tales como cuadros, almanaques colgados sobre las paredes, etc.; esto demostrará que los triatominos están o han estado presentes en la vivienda. Las heces de los triatominos tienen como característica la forma de goteo de cera de las velas y algunas veces presentan una mezcla de líneas de color negro o marrón muy oscuro. El hallazgo de estos rastros demuestra evidentemente la presencia de los triatominos, pero esto no significa que aún se encuentren en la vivienda. Sin embargo, debemos tener presente que si los rastros son encontrados en cosas expuestas más recientemente como almanaques, por ejemplo, ellos serán la prueba de que aún existen en la vivienda. Un método de encuesta bastante útil es el de colocar o clavar papeles de color sobre las paredes de la vivienda, de esta manera se obtendrán los rastros de heces de los triatominos y así podremos, según las fechas, determinar su presencia reciente EXAMINAR LOS AMBIENTES INTERNOS (INTRADOMICILIOS) Y EXTER- NOS (PERIDOMICILIOS) DE UNA VIVIENDA Los triatominos que se han adaptado al interior de las viviendas deberán ser colectados en los diferentes ambientes de la vivienda de la siguiente forma: a) manual, b) con sustancias irritantes, y c) sin uso de sustancias irritantes. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 25

29 Captura manual Preferentemente, en cada vivienda, la colecta debe ser realizada por una sola persona. En cada vivienda, el colector debe buscar a los triatominos durante 15 a 30 minutos. El colector debe buscar detenidamente los triatominos o detectar sus rastros en sus refugios, ya sea grietas y hendiduras de las paredes, techos y corrales de animales, mediante el uso de pinzas y linternas. Adicionalmente, se buscará en las ropas, cajas, muebles, almanaques y otros lugares sombreados. Este tipo de captura presenta la desventaja de que no refleja la estructura etaria de la población de triatominos, ya que algunos permanecen escondidos en grietas donde no puede llegar el hombre. Al finalizar la encuesta en todas las viviendas se realizará el conteo por estadios ninfales, adultos, por sexos y presencia de huevos, asimismo, se contabilizará el número de especímenes por vivienda. Los ejemplares capturados se colocarán en vasos colectores o también se pueden utilizar bolsas de polietileno de acuerdo con el ambiente de captura (cuyeros, dormitorios, cocina-comedor, etc.). En ocasiones son útiles las cajitas de fósforo vacías los vasos deben contener papel plegado que facilitará a los triatominos ocultarse de la luz. Esta misma metodología es empleada para colectar en ambientes peridomiciliarios. El hecho de encontrar triatominos muertos, exuvias o restos de corión de los huevos, es una clara indicación de que la vivienda ha estado infestada, lo que no indica infestación actual. Por otro lado, si sólo se colecta uno o dos ejemplares vivos y no encontramos otras evidencias de infestación, esto podría indicar sólo la presencia casual de los triatominos inmigrantes o de una verdadera infestación. Sin embargo, si se encuentran ninfas vivas en el interior o en los peridomicilios de las viviendas, esto será la prueba más clara de que existe infestación. Los triatominos capturados vivos se deben contar y mantener con vida dentro de los vasos colectores; éstos deberán estar rotulados indicando los datos correspondientes a la fecha, lugar y ambiente de captura, hasta el momento que se realice la identificación y examine las heces para determinar la presencia de trypanosomatideos. Para encuestar un área antes de la campaña de control, es muy importante la participación de los moradores, a quienes, luego de un entrenamiento previo a ésta, se les emplea para que realicen la actividad bajo supervisión. Antes de realizar la encuesta y la campaña de control, es necesario anotar en el croquis de la localidad, la posición de las viviendas, las casas donde se encontraron triatominos vivos y aquéllas donde se encontró evidencias indirectas. Durante MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 26

30 la fase de ataque de la campaña de control con insecticidas, todas las casas deberán ser rociadas, sin importar que estén infestadas o no. Por lo que posteriormente al tratamiento es necesario realizar un seguimiento para detectar la eficacia de los rociamientos y ver cuáles son las viviendas que continúan infestadas, con la finalidad de planificar y diseñar la toma de decisiones correspondientes. Si se encuentran rastros de heces sobre las paredes después del control, éstos no son indicadores de que persistan los triatominos, ya que no podría determinarse si fueron dejados antes o después del tratamiento. Además, si la infestación persiste, será probablemente en un nivel bastante bajo, y los triatominos vivos no podrán ser detectados en los 15 y 30 minutos que dura la inspección de la vivienda Utilizando sustancias irritantes Se emplea el procedimiento mencionado anteriormente y se aprovecha la acción de algunos piretroides o piretrinas. Mediante esta metodología se incrementa la captura de los triatominos, pero limita que los ejemplares capturados muertos sean usados en otros tipos de estudios. Esta metodología es usada con frecuencia en localidades donde la densidad triatomínica es baja; también se usa cuando se va a programar una encuesta entomológica previa al rociamiento de una zona y transcurrido uno o dos días del rociamiento se programa una encuesta posrociado, donde se recogerá los triatominos muertos después del rociado BUSCAR TRIATOMINOS EN AMBIENTES EXTRADOMICILIARIOS (SELVÁTICOS) Realizar investigaciones de triatominos en el ambiente silvestre es importante para: Conocer los ecotopos de los triatominos. Conocer la interrelación trófica en el hábitat. Evaluar el desplazamiento de los triatominos y las tendencias de dispersión. Evaluar la capacidad de domiciliación que tienen algunos triatominos al invadir viviendas humanas o peridomicilios existentes en el área. Estudiar el comportamiento de las especies en sus ecotopos. Conocer sus enemigos naturales en el micro o macrohábitat. Para ello se emplean los siguientes procedimientos: MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 27

31 Expulsión de los ejemplares del interior de su microhábitat mediante procedimientos químicos Para ello se emplean sustancias químicas movilizantes y repelentes, por ejemplo las piretrinas o los piretroides; el inconveniente es que muchos ejemplares mueren al ser capturados y esto limita el estudio posterior Disección de hábitats Ha sido utilizado por muchos investigadores. Puede comprender desde deshacer un pequeño nido de aves hasta la disección de una palmera o arbustos. La disección de nidos se emplea para el estudio del área poblacional, del ciclo biológico en el hábitat natural, y además para conocer el hábitat de los triatominos silvestres; asimismo, nos permite determinar los refugios de algunos vertebrados que favorecen la presencia de triatominos Trampas sin cebo animal Se basa en el uso de cajas de cartón o madera con agujeros de entrada y con trozos de papel para impedir su salida, o también se puede emplear cañas de bambú que serán colocadas en ambientes como bosques o cuevas. Las trampas son utilizadas con éxito cuando se propone realizar encuestas domiciliarias posrociado Trampas con cebo animal Es uno de los métodos más utilizados por sus excelentes resultados. Una de ellas consiste en una caja de madera con dos compartimentos, en uno de los extremos se coloca un animal de sangre caliente (conejo, gato, perro, gallina o rata) y en el otro extremo se colocan embudos pequeños hacia adentro que facilitarán la entrada de los triatominos, pero impedirán la salida. Los vertebrados deberán estar separados de los triatominos capturados mediante el uso de una tela metálica con orificios pequeños Otro tipo de trampa consiste en una simple jaula rodeada de papel o tela adhesiva, donde quedan adheridos los triatominos que se aproximan a los vertebrados para alimentarse Atracción mediante fuente luminosa Se han empleado lámparas que emiten luz ultravioleta. Éstas son de utilidad restringida, pues generalmente atraen triatominos adultos machos. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 28

32 Marcación, suelta y recaptura Esta técnica nos brinda información cuantitativa. Para el marcado de los insectos se pueden emplear polvos fosforescentes de diversos colores e isótopos radioactivos, éstos sólo son aplicados a triatominos adultos y tienen una duración aproximada de 40 días EQUIPOS PARA CAPTURAR TRIATOMINOS Cada laboratorio que pretende realizar o está desarrollando vigilancia entomológica en triatominos o intenta realizar trabajos de investigación con triatominos debe tener o adquirir los siguientes instrumentos: Pinzas rectas, largas y metálicas de 20 cm. Alambre grueso de 80 cm de largo. Linterna. Cajas de tecnoport (poliestireno). Vasos colectores. Bolsas plásticas medianas. Papel periódico plegado. Cinta maskingtape (cinta adhesiva). Ficha de encuesta ENVÍO DE TRIATOMINOS Los triatominos capturados en las localidades de muestreo deben llegar vivos al establecimiento de salud o al lugar donde se realizará la identificación y determinación si están o no infectados con trypanosomatideos, para ello se usarán los vasos colectores Vasos colectores Estos vasos deben ser de preferencia de plástico y de boca ancha de 13 cm de largo x 12 cm de diámetro. La tapa del vaso debe ser a presión. Ésta se debe hacer una abertura de 8 cm de diámetro, la cual debe estar cubierta por una organza. Es recomendable que se coloque papel filtro, periódico o cartulina MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 29

33 con dobleces en el interior de los vasos, los cuales le brindarán mayor área de reposo, permanecerán más frescos y tendrán oscuridad (Fig. 12). Figura 12. Vaso colector. Si sólo se capturan adultos, en el vaso se colocará de 10 a 12 ejemplares, pero si los ejemplares capturados corresponden a estadios inmaduros (ninfas) en cada vaso el número será de entre 15 y 20 ejemplares. La tapa se debe colocar a presión, y además debe asegurarse con cinta adhesiva la parte superior del vaso con parte de la tapa; esto se hace con la finalidad de que los vasos no logren destaparse con el movimiento y evitar que los triatominos puedan salir. Cada vaso deberá rotularse con los siguientes datos de captura: localidad, distrito, provincia, departamento, ambiente de captura (peri, intra o extradomicilio, especificando el lugar, por ejemplo corral de aves, dormitorio, cuyero, etc.), área rural o urbana, altitud, hora y fecha de captura y nombre (s) de la (s) persona (s) que realizó la captura. Estos datos deben ser escritos con lápiz en papel o sobre una cinta adhesiva, para luego ser adherida en la parte externa del vaso. MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 30

34 Los vasos deben ser colocados de costado, unos sobre otros, colocando papel higiénico, servilletas u otro material entre ellos para que les sirva de colchón. Éstos serán colocados de costado con la finalidad que los triatominos tengan mayor espacio para desplazarse; también, se pueden colocar en cajas de cartón. La caja de tecnopor o de cartón debe ser colocada en el interior de otra caja grande que la protegerá de los golpes, en la tapa externa de ésta se debe rotular la dirección del establecimiento de salud o la del laboratorio referencial regional o del Instituto Nacional de Salud; además, se escribirá en los costados y lugares visibles: FRÁGIL, MATERIAL BIOLÓGICO SIN VALOR COMERCIAL INDICADORES ENTOMOLÓGICOS Las condiciones de riesgo de transmisión vectorial domiciliaria de la enfermedad de Chagas son: a) Que el vector esté presente. b) Que el vector esté infectado. c) Que el vector colonice la habitación humana. Estas condiciones pueden ser traducidas en indicadores que miden el riesgo, los cuales pueden ser categorizados en: Indicadores Operacionales Sirven para la toma de decisión y tipo de conducta a seguir ante la presencia del vector. Se debe tener presente que, si el objetivo es eliminar al vector, la presencia de éste es condición suficiente para intervenir una zona. Tenemos los siguientes índices: Índice de Dispersión Nos permite conocer el grado de concentración y la distribución del vector dentro de una determinada área o lugar: ID % = Nº de localidades infestadas con triatominos x 100 Nº de localidades examinadas MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 31

35 Indicadores de seguimiento y evaluación. Tenemos los siguientes: Infestación domiciliaria En función de la limitada sensibilidad de los métodos de detección por búsqueda activa del vector (hora/hombre) en áreas en que se usa esta metodología, debe considerarse a la localidad como unidad mínima de intervención. En caso de usar métodos permanentes de detección, puede que la unidad de intervención sea la vivienda o casa. ID % = Nº de viviendas infestadas con triatominos x 100 Nº de viviendas inspeccionadas Índice de Infestación Intradomiciliaria III % = Nº de intradomicilios infestados con triatominos x 100 Nº de intradomicilios inspeccionados Índice de Infestación Peridomiciliaria IIP % = Nº de peridomicilios infestados con triatominos x 100 Nº de peridomicilios inspeccionados Índice de Infección Natural (por T. cruzi) ITT % = Nº de triatominos Infectados con Trypanosoma cruzi x 100 Nº de triatominos examinados Índice de Colonización IC % = Nº de casas con ninfas de triatominos x 100 Nº de casas positivas con triatominos Índice de Densidad Nº de triatominos capturados ID % = Nº de viviendas inspeccionadas x 100 MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 32

36 Estos indicadores nos informan sobre el avance y permanencia de los logros a obtener, permitiendo monitorizar indirectamente las actividades, razón por la cual deben ser usados regularmente Indicadores del sistema de vigilancia (seguimiento) Estos indicadores serán usados en la validación del sistema de vigilancia, (evaluación del programa). Son los siguientes: Índice de Cobertura IC = Nº de localidades con infestación anterior por triatominos con vigilancia instalada x 100 Nº de localidades con infestación anterior por triatominos Índice de Producción a) Nº de unidades de notificación productivas Nº de unidades de notificación instaladas x 100 b) Nº de unidades con notificación negativa Nº de unidades de notificación instalada x Calidad de la Producción a) Nº de localidades positivas por vestigios de triatominos N de localidades con notificación positiva x 100 b) Nº de localidades positivas por captura o captura de triatominos Nº de localidades con notificación positiva x 100 c) N.º de local. posit. con captura de triatom. de una especie particular x 100 N.º de localidades con notificación positiva MPR-CNSP INSTITUTO NACIONAL DE SALUD 33