Reporte Epidemiológico 003 Cochinilla rosada del hibisco Maconellicoccus hirsutus (Green)

Transcripción

1 Reporte Epidemiológico 003 Cochinilla rosada del hibisco Maconellicoccus hirsutus (Green) Octubre 2011 Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria Centro Nacional de Referencia Fitosanitaria Dirección General de Sanidad Vegetal Servicio Nacional de Sanidad Inocuidad y Calidad Agroalimentaria SAGARPA Programa de Vigilancia Epidemiológica Cochinilla rosada del hibisco Laboratorio Nacional de Geoprocesamiento de Información Fitosanitaria Coordinación para la Innovación y Aplicación de la Ciencia y la Tecnología Universidad Autónoma de San Luis Potosí sinavef@uaslp.mx

2 Situación Fitosanitaria La Cochinilla rosada del hibisco actualmente está presente en los estados de Baja California, Nayarit, Jalisco, Quintana Roo, Oaxaca, Guerrero, Chiapas, Colima y Sinaloa, en dichos estados se opera la campaña fitosanitaria para su control y monitoreo, manteniendo niveles bajos de infestación. Con el fin de detectar de manera oportuna a la cochinilla rosada del hibisco en 2010 se comenzó a operar una Red de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria en Baja California Sur, Sonora, Michoacán, Tabasco, Campeche y Yucatán. Derivado de las actividades del Programa de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria en septiembre de 2010 se detectó un brote de la plaga en la ciudad de Mérida, Yucatán y recientemente en septiembre de 2011 se detectó otro brote en el municipio de Lázaro Cárdenas, Michoacán, por lo que con base en lo anterior y de acuerdo con la Norma Internacional de Medidas Fitosanitarias No.8 (NIMF) el estatus de la plaga es: presente sujeta a control oficial. Figura 1. Situación fitosanitaria de Cochinilla rosada del hibisco. Maconellicoccus hirsutus (Green). Noviembre 2011.

3 De acuerdo con la literatura se consideran entre 100 y 360 especies de plantas hospederas de la cochinilla rosada del hibisco, tanto silvestres como cultivadas (CABI, 2011; González, 2009; Mayerdirk, 2003). En México, se han determinado 40 especies de plantas como hospederas (Cuevas-Arias, 2005). Mecanismos de Dispersión La dispersión de la CRH se puede dar por diversos medios y en diferentes etapas de su desarrollo, pero resulta de mayor cuidado cuando está en etapa de huevecillo y ninfal. En la etapa de huevecillo la cera que los cubre se adhiere fácilmente a personas, aves o animales permitiendo su transporte, lo que se conoce como dispersión pasiva. De igual manera, durante su primer instar ninfal, conocido como migrantes, caminante o rastreadores, la cochinilla puede desplazarse por sus propios medios o ser asistidas por las hormigas en una relación simbiótica, por lo que la presencia de hormigas es un posible indicador de la presencia de la plaga (Martínez, 2007). Las lluvias y el viento son elementos que influyen de igual manera en el transporte, sobre todo durante la temporada de huracanes ya que las velocidades y la rotación continua de los vientos favorecen el traslado de insectos, principalmente aquellos que no están sujetos a las superficies de las plantas o que pueden ser movilizados a través de hojas, flores o frutos. Se ha establecido que los huevecillos, las ninfas y los adultos tienen la potencialidad de ser transportados por corrientes de aire en la atmosfera superior a más de 160 km, por lo que estos fenómenos deben considerarse como importantes vías de diseminación (Martínez, 2007; EPPO, 2005). En este sentido, el SMN reportó durante el periodo del 15 de octubre al 15 de noviembre, tres eventos meteorológicos (dos en el Atlántico y uno en el Pacífico), donde solo Rina tuvo influencia directa en la Península de Yucatán, con vientos sostenido de 175 km/h y rachas de hasta 215 km/h. Este meteoro pudo dispersar a la plaga en toda la Península, sin embargo, las fuertes lluvias pudieron abatir algunas poblaciones de la misma. Las áreas urbanas es donde más se ha propagado el insecto, sobre todo por la agricultura de traspatio y por la presencia de hospederos que son utilizados como plantas de ornato como obeliscos, majahuas, parotas o guanábanos. En este sentido, la transportación de material vegetal infestado, sin regularización o de manera clandestina, es quizá el mecanismo de dispersión más importante por la cantidad de productos que puede movilizar, por ello las acciones cuarentenarias y la vigilancia en puertos y carreteras constituyen una de las principales barreras para evitar la propagación de la cochinilla (Martínez, 2007). Riesgo epidemiológico A partir del modelo de distribución (MAXENT) se obtienen las áreas con condiciones climáticas análogas a donde se han localizado puntos positivos de Cochinilla rosada del hibisco. Se puede observar en la Figura 2, que existe desde el norte de Sinaloa hasta el suroeste de Chiapas condiciones para que se establezca la plaga, especialmente sobre toda la planicie costera. Los sitios a vigilar, por tener ausencia de la plaga pero teniendo condiciones similares, son Michoacán, norte de Sinaloa y centro de Oaxaca (particularmente todos los municipios con costa), además de que la plaga puede ser dispersada por el movimiento de material vegetal sobre la carretera costera que cruza todos los estados del Pacífico. Por el lado del Golfo, los

4 estados de Campeche, Tabasco y Veracruz, presentan las condiciones para el establecimiento de la plaga, por lo que también debe enfocarse la vigilancia en estos estados. Referencias Figura 2. Análisis climático maxent. CABI, Crop Protection Compendium. Maconellicoccus hirsutus. [online] disponible en /?compid=1&dsid=40171&loadmodule=datasheet&pag e=868&site=161 Cuevas-Arias, C. T Las especies hospederas de Maconellioccus hirsutus cochinilla rosada del hibisco en Bahía de Banderas, Nayarit. Memorias XIII Simposio Nacional de Parasitología Forestal. CONAFOR, SEMARNAT, SME, INIFAP. Noviembre 25-26, Morelia, Mich. EPPO Maconellicoccus hirsutus. Data sheets on quarantine pests. Bulletin EPPO No. 35, pp González, H Ficha técnica Maconellicoccus hirsutus (Green). Inédito

5 Martínez, M. A La Cochinilla Rosada del Hibisco, Maconellicoccus hirsutus (Green), un peligro potencial para la agricultura cubana. Protección Vegetal. Vol. 22 No. 3, pp Meyerdirk, D.; Warkenin, R.; Attavian, B.;Gersabeck, E.; Francia, A.; Adams, M. y Francis, E. 1998: Biological Control of Pink Hibiscus Mealybug. Project Manual. USDA.