Facultad de Medicina. Grado en Medicina

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1 GRADO EN MEDICINA ASIGNATURA: CITOLOGÍA E HISTOLOGÍA GENERAL Facultad de Medicina GUÍA DOCENTE DE LA ASIGNATURA: CITOLOGÍA E HISTOLOGÍA GENERAL Curso Académico 2012/2013 Fecha: 27 Abril 12 V2. Aprobada en Consejo de Gobierno el310112

2 1. Datos Descriptivos de la Asignatura Asignatura: CITOLOGIA E HISTOLOGIA GENERAL Código: - Centro: Facultad de Medicina - Titulación: Médico - Plan de Estudios: Rama de conocimiento: Ciencias de la Salud - Itinerario / Intensificación (sólo en Máster): - Departamento: Anatomía, Anatomía Patológica e Histología - Área de conocimiento: Histología - Curso: Primero - Carácter: Cuatrimestral - Duración: - Créditos ECTS (teóricos/prácticos): T: 1.32 / P: 1.08 / Crédito Trabajo Autónomo: 3.6 Totales ECTS 6 - Horario: Poner el link a los horarios de la titulación - Dirección Web de la asignatura (aula virtual): - Idioma: Español - Asignatura: Básica 2. Requisitos 3. Profesorado que imparte la asignatura [Cuadro a cumplimentar por todo el profesorado que imparta la asignatura] Coordinación / Profesor/a: Profesor José Luis García Miranda - Grupo: - Departamento: Anatomía, Anatomía Patológica e Histología - Área de conocimiento: Histología - Lugar Tutoría (1) : Despacho del profesor - Horario Tutoría (1) : 13:00 a 14:00 h Lunes a Jueves / Viernes 12:00 a 14:00 h - Teléfono (despacho/tutoría): Correo electrónico: jolugar@ull.es - Dirección web: Profesor/a: Maria Nélida Rancel Torres 2

3 - Grupo: - Departamento: Anatomía, Anatomía Patológica e Histología - Área de conocimiento: Histología - Centro: Facultad de Medicina - Lugar Tutoría (1) : Despacho del profesor - Horario Tutoría (1) : 13:00 a 14:00 h Lunes a Jueves / Viernes 12:00 a 14:00 h - Teléfono (despacho/tutoría): Correo electrónico: nrancelt@ull.es - Dirección Web: Profesor/a: Ricardo Gutiérrez García - Grupo: - Departamento: Anatomía, Anatomía Patológica e Histología - Área de conocimiento: Histología - Centro: Facultad de Medicina - Lugar Tutoría (1) : Despacho del profesor - Horario Tutoría (1) : 13:00 a 14:00 h Lunes a Jueves / Viernes 12:00 a 14:00 h - Teléfono (despacho/tutoría): Correo electrónico: rgutier@ull.es - Dirección Web: Profesor/a: Francisco Valladares Parrilla - Grupo: - Departamento: Anatomía, Anatomía Patológica e Histología - Área de conocimiento: Histología - Centro: Facultad de Medicina - Lugar Tutoría (1) : Despacho del profesor - Horario Tutoría (1) : 13:00 a 14:00 h Lunes a Jueves / Viernes 12:00 a 14:00 h - Teléfono (despacho/tutoría): Correo electrónico: fvallapa@gmail.com - Dirección Web: Profesor/a: José Luis Carrasco Juan - Grupo: - Departamento: Anatomía, Anatomía Patológica e Histología - Área de conocimiento: Histología - Centro: Facultad de Medicina - Lugar Tutoría (1) : Despacho del profesor - Horario Tutoría (1) : 13:00 a 14:00 h Lunes a Jueves / Viernes 12:00 a 14:00 h - Teléfono (despacho/tutoría): Correo electrónico: jcarraju@ull.es - Dirección Web: 3

4 (1) Se entiende como la atención personalizada al alumnado. Se trata de la tutoría burocrática que tradicionalmente el profesorado desempeña en su despacho. 4. Contextualización de la asignatura en el Plan de Estudios - Bloque Formativo al que pertenece la asignatura: BLOQUE I: MORFOLOGIA, ESTRUCTURA Y FUNCION DEL CUERPO HUMANO - Perfil Profesional: 5. Competencias Opcional en función de la Memoria de Verificación del Título (VERIFICA) 4

5 1) Instrumentales: - Conocer los diferentes aparatos que se utilizan en el laboratorio de Citología e Histología para la preparación del material biológico para su observación al microscopio. - Aprender el manejo del microscopio óptico - Aprender el manejo y fundamento del microscopio invertido para ver células en cultivo. -Aprender el fundamento del microscopio electrónico e identificar en fotografías de microscopía electrónica los diferentes componentes celulares. 2) Personales: - Aprender a trabajar en equipo. - Adquirir hábitos y destrezas en el laboratorio de Citología e Histología - Utilizar el aula virtual 3) Conocimientos (Saber) - Tipos, características y cinética de las estructuras macromoleculares y sus interacciones en la génesis de estructuras supramacromoleculares y subcelulares. a) Citomembrana y sus diferenciaciones. B) Núcleo (carioteca, carioplasma, cromatina, cromosomas, nucleolo). c) Maquinaria biosintética-secretora: ribosomas, retículo endoplasmatico, golgi, lisosomas, inclusiones citoplasmáticas (paraplasma), mitocondrias y peroxisomas. d) Citoesqueleto y dinámica celular: microfilamentos y miofilamentos, filamentos intermedios, microtúbulos. Agrupaciones complejas de microtúbulos: Centríolo, cilios y flagelos. - Manifestaciones estructurales de la actividad vital de la célula: a) Ciclo celular. b) Envejecimiento y muerte celular. - Organización estructural de los diferentes tejidos del cuerpo humano: epitelial, conjuntivo con sus variedades, muscular y nervioso. - Composición y organización del tejido epitelial de revestimiento. -Conocimiento de los epitelios glandulares exocrinos y endocrinos, incluyendo los anficrinos, de células transformadas y células paracrinas. -Tejido conjuntivo (Células y elementos que componen su matriz extracelular) -Clasificación y variedades del tejido conjuntivo (conjuntivo común, sangre, tejido adiposo, tejido cartilaginoso, tejido óseo y estructura de los elementos articulares). Reparación. - Tejido muscular y sus diferentes tipos: liso, estriado esquelético y estriado cardiaco. Uniones músculo-tendinosas. Reparación y regeneración del tejido muscular. - Tejido nervioso: elementos constituyentes: neuronas, glia, vasos sanguineos - Relaciones neuronales: sinapsis y circuitos neuronales. - Terminaciones nerviosas eferentes (uniones neuromusculares y neuroglandulares). Terminaciones aferentes (receptores somatoestésicos). Clasificación y estructura de los mismos. -Fibra nerviosa. Variedades y diferencias fundamentales en el SNC y SNP. 4) Destrezas (Saber hacer) - Preparar el material biológico para su observación al microscopio, incluyendo técnicas de fijación y las tinciones histológicas básicas. - Manejar el microscopio óptico y reconocer en el mismo los diferentes tipos celulares y sus componentes estructurales básicos. - Reconocer e interpretar con el microscopio óptico las diferentes fases de la mitosis en células y tejidos de renovación rápida. - Reconocer e interpretar con el microscopio óptico invertido células en cultivo y sus formas de crecimiento in Vitro. - Reconocer e interpretar a nivel ultra estructural los diferentes componentes celulares, utilizando fotografías de microscopia electrónica. - Reconocer la estructura de los tejidos epiteliales (de revestimiento y glandular), conjuntivo y sus variedades, musculares y nerviosos, con el microscopio óptico y electrónico. 5

6 5) Actitudes y valores (Saber Ser) - Conocer el significado de la célula como patrón especial de organización biológica y de las alteraciones moleculares y supramacromoleculares como base de la lesión biológica. Papel de la Citología e Histología General en el estudio de cada individuo, con el fin de mejorar su estado de salud y contribuir a diagnosticar y tratar la enfermedad. - Aprender a valorar la célula y los tejidos en condiciones normales, para más adelante saber interpretar sus modificaciones patológicas. - Aprender a reconocer la necesidad de mantener y actualizar los conocimientos adquiridos, con el fin de poder asumir los nuevos conocimientos y técnicas. 6. Contenidos de la asignatura Módulo I.- LA MEMBRANA PLASMATICA - Profesor/a: José Luis García Miranda Temas: ESTRUCTURA DE LA MEMBRANA PLASMÁTICA. INTERCAMIOS DE LA CÉLULA CON EL MEDIO EXTERNO Método de trabajo: Dos horas de trabajo presencial (alumno y profesor). Cuatro horas de Trabajo personal del alumno Actividades a desarrollar: Conocer la estructura de la membrana plasmática y los diferentes modelos moleculares, con especial referencia al modelo en mosaico fluido. Comprender los mecanismos de transporte a través de la membrana, especialmente el transporte mediante vesículas. Temas: Estudio mediante microscopia óptica de la forma y tamaño celular en células hemáticas obtenidas mediante frotis sanguíneo. Estudio mediante imágenes de microscopia electrónica de la membrana plasmática y sus diferenciaciones. Método de trabajo: Inserción de fotografías en el aula virtual y posterior interpretación de imágenes en la sala de prácticas. Preparaciones histológicas. Dos horas de trabajo en prácticas de laboratorio. Actividades a desarrollar: Conocer la forma celular en células hemáticas. Conocer la estructura de la membrana y de sus diferenciaciones mediante microscopia electrónica Materiales: Frotis de sangre para estudio al microscopio óptico. Fotografías de microscopia electrónica. Actividades a desarrollar en inglés 6

7 Opcional solo se rellena si aparece en pantalla - Profesor/a: - Temas: Módulo II.- EL NUCLEO - Profesor/a: José Luis García Miranda Temas: ESTUDIO DE LAS CARACTERISTICAS Y PROPIEDADES DEL NUCLEO DE LA CELULA. Método de trabajo: Dos horas de trabajo presencial (alumno y profesor). Cuatro horas de trabajo personal del alumno. Actividades a desarrollar: Saber las características generales del núcleo y de sus componentes: envoltura nuclear, lamina nuclear, poros nucleares y laminillas anilladas así como el estudio de la estructura y organización molecular de la cromatina y el cromosoma. El nucleolo Temas: Estudio del núcleo de diferentes tipos celulares mediante microscopía óptica y electrónica. Método de trabajo: Preparaciones histológicas y fotografías de microscopia electrónica insertadas, estas últimas, en el aula virtual. Dos horas de trabajo en prácticas de laboratorio. Actividades a desarrollar: Conocer el núcleo y nucleolo de la célula en preparaciones de microscopia óptica, así como sus características ultraestructurales en fotografías de microscopia electrónica. Materiales: Frotis de sangre y preparaciones histológicas para el estudio de diferentes tipos de núcleos. Fotografías de microscopia electrónica. Módulo III.- SINTESIS Y DEGRADACION DE MACROMOLECULAS - Profesor/a: Ricardo Gutiérrez García Temas: ESTUDIO DE LAS DIFERENTES RUTAS MORFO-FUNCIONALES QUE INTERVIENEN EN LA SITESIS Y EN LA DEGRADACION DE LAS MACROMOLECULAS Método de trabajo: Tres horas de trabajo presencial (alumno y profesor) y 6 horas de trabajo personal del alumno Actividades a desarrollar: Estudio de los ribosomas, reticulo endoplasmatico liso y rugoso y complejo de Golgi, así como de los Lisosomas Temas: Estudio de los ribosomas, RER y REL, Golgi y Lisosomas mediante microscopia electrónica. Método de trabajo: Inserción de fotografías de microscopia electrónica en el aula virtual (Dos horas de trabajo de profesor y ocho horas de trabajo personal del alumno). Actividades a desarrollar: Identificar y describir en imágenes de microscopia electrónica los componentes que intervienen en la síntesis y degradación de macromoléculas: Ribosomas, RE, Golgi y lisosomas. Materiales. Fotografías de microscopia electrónica. 7

8 Módulo IV.- SISTEMAS ENERGETICOS CELULARES - Profesor/a: Ricardo Gutiérrez García Temas: ESTUDIO DE LAS MITOCONDRIAS Y PEROXISOMAS Método de trabajo: Una hora de trabajo presencial (alumno y profesor) y dos horas de trabajo personal del alumno. Actividades a desarrollar: Saber la estructura, composición y funciones de las mitocondrias, así como las alteraciones de las mismas. Estudio de la estructura y funciones de los peroxisomas Temas: Estudio de mitocondrias y peroxisomas al microscopio electronico. Método de trabajo: Inserción de imágenes de microscopia electrónica en el aula virtual (una hora de trabajo de profesor y cuatro horas de trabajo personal del alumno) Actividades a desarrollar: Identificar y describir en diferentes imágenes de microscopía electrónica las mitocondrias y los peroxisomas Materiales: Fotografías de microscopia electrónica Módulo V.- CITOESQUELETO Y DINAMICA CELULAR - Profesor/a: José Luis Carrasco Juan Temas: ESTUDIO DE LOS DIFERENTES COMPONENTES DEL CITOESQUELETO DE LA CELULA ASI COMO DE LA DINAMICA CELULAR Método de trabajo: Dos horas de trabajo presencial (alumno y profesor) y cuatro horas de trabajo personal del alumno. Actividades a desarrollar: Saber los diferentes componentes del citoesqueleto: Microfilamentos y Miofilamentos; Filamentos Intermedios, Microtúbulos y sus agrupaciones complejas (Centríolos, Cilios y Flagelos). Temas: Estudio mediante fotografías de microscopia electrónica, de los componentes del citoesqueleto (Micro y miofilamentos, Filamentos intermedios, microtúbulos, Centríolos, Cilios y Flagelos). Método de trabajo: Inserción de imágenes de microscopia electrónica en el aula virtual (dos horas de trabajo de profesor y ocho horas de trabajo personal del alumno) Actividades a desarrollar: Conocer y describir los diferentes componentes del citoesqueleto en células musculares estriadas esqueléticas (sarcomero), así como de los células musculares lisas. Saber identificar los Filamentos intermedios en diferentes tipos celulares. Reconocer y describir los centríolos y las diferentes partes de los cilios y flagelos. Materiales: Fotografías de microscopía electrónica 8

9 Módulo VI.- ESTUDIO DE LAS RELACIONES DE LA CELULA CON SU ENTORNO - Profesor/a: José Luis Carrasco Juan Temas: RELACIONAR LA CELULA CON LOS ELEMENTOS QUE LA RODEAN, Y CON OTRAS CELULAS. ESTUDIAR LOS MECANISMOS DE SEÑALIZACIÓN CELULAR. Método de trabajo: Dos horas de trabajo presencial (alumno y profesor) y cuatro horas de trabajo personal del alumno. Actividades a desarrollar: Estudio de las relaciones de las células con la matriz extracelular, así como de las uniones que establecen las células entre si y con la matriz. Saber los diferentes tipos de moléculas de señalización que se utilizan para las relaciones intercelulares Temas: Estudio mediante fotografías de microscopia electrónica de las diferentes fibras de la matriz extracelular así como de las uniones intercelulares morfológicamente especializadas. Método de trabajo: Inserción de imágenes de microscopia electrónica en el aula virtual (Una hora de trabajo de profesor y cuatro horas de trabajo personal del alumno) Actividades a desarrollar: Reconocer y describir las fibras de colágeno, elásticas y reticulares en imágenes de microscopia electrónica, así como las uniones intercelulares ocluyentes, de comunicación y de anclaje de filamentos de actina e intermedios. Materiales: Fotografías de microscopía electrónica. Módulo VII.- CICLO VITAL DE LA CELULA - Profesor/a: Francisco Valladares Parrilla Temas: CONOCER LAS ETAPAS DEL CICLO CELULAR Y SU REGULACION ASI COMO LAS DIVISIONES CELULARES MITOTICAS Y MEIOTICAS. MUERTE CELULAR Método de trabajo: Tres horas de trabajo presencial (alumno y profesor) y seis horas de trabajo personal del alumno. Actividades a desarrollar: Estudio del ciclo celular (etapas del mismo, reguladores, genes del ciclo de división celular y otras señales que lo regulan). Estudio de la mitosis y de sus agentes reguladores. La división celular meiotica y divisiones meioticas anormales y sus consecuencias. La muerte celular. Temas: Estudio al microscopio óptico de las diferentes fases de la mitosis y meiosis. Estudio de las divisiones meioticas anormales y de sus consecuencias en la descendencia. Método de trabajo: Preparaciones histológicas y esquemas de divisiones meioticas anormales insertadas, estas últimas, en el aula virtual. Dos horas de trabajo en prácticas de laboratorio. Actividades a desarrollar: Conocer las diferentes fases de la mitosis y meiosis, y saber las consecuencias de las divisiones meioticas y mitoticas anormales: no-disyunción, mosaicismo, etc. Materiales: Preparaciones histológicas y esquemas insertados en aula virtual Módulo VIII.- LOS TEJIDOS - Profesor/a: Francisco Valladares Parrilla Temas: CONCEPTO Y CLASIFICACION DE LOS DIFERENTES TEJIDOS DEL ORGANISMO HUMANO. Método de trabajo: Una hora de trabajo presencial (alumno y profesor) y dos horas de trabajo personal del alumno. Actividades a desarrollar: Saber el concepto de tejido y la clasificación de los mismos. Histogenesis y diferenciación celular. 9

10 Temas: Estudio de los diferentes métodos histológicos que se utilizan en histología Método de trabajo: Seminario de 1 hora de duración (Presencial alumno-profesor) y dos horas de trabajo personal del alumno: Actividades a desarrollar: métodos de estudio utilizados en Histología Materiales: Seminario insertado en aula virtual para estudio del alumno y exposición del mismo por el profesor. Módulo IX.- TEJIDOS EPITELIALES - Profesor/a: Francisco Valladares Parrilla Temas: ESTUDIO DE LOS DIFERENTES TEJIDOS DE TIPO EPITELIAL DEL ORGANISMO Método de trabajo: Dos horas de trabajo presencial (alumno y profesor) y cuatro horas de trabajo personal del alumno. Actividades a desarrollar: Estudio de las características general y clasificación de los epitelios. Epitelios de revestimiento, glandulares y de células transformadas. Histogenesis e histofisiología. Renovación y reparación de los epitelios Temas: Estudio de los diferentes epitelios de revestimiento y glandulares del organismo Método de trabajo: Tres horas de prácticas de laboratorio y una hora de trabajo personal del alumno en aula virtual. Actividades a desarrollar: Identificar y describir las diferentes variedades de epitelios y sus diferentes localizaciones. Materiales: Preparaciones histológicas e imágenes en aula virtual. Módulo X.- TEJIDO CONJUNTIVO - Profesor/a: Francisco Valladares Parrilla Temas: ESTUDIO DE LOS TEJIDOS DE SOSTEN Y SUS VARIEDADES. Método de trabajo: Tres horas de trabajo presencial (alumno profesor) y seis horas de trabajo personal del alumno. Actividades a desarrollar: Estudiar el concepto de tejido conectivo, su histogenesis y sus características generales así como las de las células y la matriz extracelular. Estudio de las diferentes variedades de tejido conjuntivo: mucoso, laxo, denso, elástico y reticular. Temas: Estudio de las diferentes variedades de tejido conjuntivo Método de trabajo: Dos horas de prácticas de laboratorio y una hora de trabajo personal del alumno en aula virtual. Actividades a desarrollar: Identificar y describir las células y variedades de tejido conjuntivo y sus diferentes localizaciones en el organismo Materiales: Preparaciones histológicas e imágenes en aula virtual. Módulo XI.- SANGRE Y HEMATOPOYESIS - Profesor/a: Francisco Valladares Parrilla Temas: MORFOLOGIA Y ULTRAESTRUCTURA DE LAS CELULAS SANGUINEAS. CICLO VITAL DE LAS MISMAS Método de trabajo: Una hora de trabajo presencial (alumno profesor) y dos horas de trabajo personal del alumno. Actividades a desarrollar: Estudio de los componentes de la sangre. Los hematíes y las plaquetas. Clasificación, características morfológicas y funciones de los leucocitos. Hematopoyesis. Estructura de la médula. 10

11 Temas : Identificar en frotis sanguíneos los diferentes elementos celulares de la sangre. Método de trabajo: Una hora de prácticas de laboratorio y una hora de trabajo personal del alumno en aula virtual. Actividades a desarrollar: Reconocidos los diferentes elementos celulares de la sangre, realizar una formula leucocitaria. Materiales: Frotis de sangre para estudio microscopio e imágenes en aula virtual. Módulo XII.- TEJIDO ADIPOSO - Profesor/a: Francisco Valladares Parrilla Temas: HISTOLOGIA DEL TEJIDO ADIPOSO. HISTOGENESIS E HISTOFISIOLOGIA. Método de trabajo: Una hora de trabajo presencial (alumno profesor) y dos horas de trabajo personal del alumno. Actividades a desarrollar: Conocer las variedades morfológicas del tejido adiposo: Tejidos adiposos común y pardo. Su histogenesis, así como su histofisiología. Temas: Identificar las variedades del tejido adiposo Método de trabajo: Una hora de prácticas de laboratorio Actividades a desarrollar: estudio del tejido adiposo amarillo y pardo. Materiales: Preparaciones histológicas Módulo XIII.- TEJIDO CARTILAGINOSO - Profesor/a: Ricardo Gutiérrez García Temas: HISTOLOGIA DEL CARTIAGO Método de trabajo: Una hora de trabajo presencial (alumno profesor) y dos horas de trabajo personal del alumno. Actividades a desarrollar: Conocer la estructura histológica y localización de las diferentes variedades de tejido cartilaginoso: hialino, elástico y fibroso así como sus cambios degenerativos (variedades etarias) y su regeneración. Temas: Identificar el tejido cartilaginosos y sus variedades. Método de trabajo: Una hora de prácticas de laboratorio Actividades a desarrollar: Conocer la estructura histológica del cartílago hialino, elástico y fibroso, así como su localización. Materiales: Preparaciones histológicas. 11

12 Módulo XIV.- TEJIDO OSEO Y ARTICULACIONES - Profesor/a: Ricardo Gutiérrez García Temas: TEJIDO OSEO. HISTOGENESIS. LAS ARTICULACIONES Método de trabajo: Una hora de trabajo presencial (alumno profesor) y dos horas de trabajo personal del alumno. Actividades a desarrollar: Conocer la organización del tejido óseo y sus características histológicas. Matriz y células. Histogenesis e histofisiología. Estudio de las articulaciones (Sinartrosis y diartrosis). : Temas: Identificar en preparaciones histológicas los diferentes elementos histológicos del tejido óseo y de las articulaciones. Método de trabajo: Una hora de prácticas de laboratorio y una hora de trabajo personal del alumno en aula virtual. Actividades a desarrollar: Estudio e identificación de los elementos del tejido óseo y de su histogenesis, así como de las articulaciones. Materiales: Preparaciones histológicas y fotografías y esquemas en el aula virtual. Módulo XV.- TEJIDO MUSCULAR - Profesor/a: Ricardo Gutiérrez García Temas: ESTRUCTURA HISTOLOGICA DEL TEJIDO MUSCULAR Método de trabajo: Una hora de trabajo presencial (alumno profesor) y dos horas de trabajo personal del alumno. Actividades a desarrollar: Conocer la organización del tejido muscular e sus Variedades de músculo liso, estriado esquelético y estriado cardiaco. Histogenesis. Crecimiento y regeneración. : Temas: Identificar en preparaciones histológicas los diferentes tipos histológicos del tejido muscular. Método de trabajo: Dos horas de prácticas de laboratorio y una hora de trabajo personal del alumno en aula virtual. Actividades a desarrollar: Estudio e identificación de los elementos del tejido muscular Materiales: Preparaciones histológicas y fotografías y esquemas en el aula virtual. Módulo XVI.- TEJIDO NERVIOSO - Profesor/a: José Luis García Miranda Temas: HISTOLOGÍA DEL TEJIDO NERVIOSO Método de trabajo: Tres horas de trabajo presencial (alumno profesor) y seis horas de trabajo personal del alumno. Actividades a desarrollar: Estudio de los elementos constitutivos del tejido nervioso. Neuronas y relaciones neuronales. Neuroglia. Fibra nerviosa. Terminaciones nerviosas eferentes y aferentes Temas: Identificar en preparaciones histológicas los diferentes tipos de neuronas y de células gliales, así como las fibras y terminaciones nerviosas. Método de trabajo: Tres horas de prácticas de laboratorio y una hora de trabajo personal del alumno en aula virtual Actividades a desarrollar: Estudio e identificación de los diferentes tipos de neuronas y de elementos de la glía, así como las fibras nerviosas. Materiales: Preparaciones histológicas y esquemas y fotografías en el aula virtual. 12

13 7. Metodología y Volumen de trabajo del estudiante Descripción Clase teórica. Seminario. Prácticas de laboratorio con preparaciones histológicas. Fotografías de microscopia electrónica en el aula virtual. Fotos histológicas y esquemas en el aula virtual. Actividades formativas en créditos ECTS, su metodología de enseñanza-aprendizaje y su relación con las competencias que debe adquirir el estudiante Actividades formativas Horas presenciales Horas de trabajo autónomo Total Horas Relación con competencias Clases teóricas Clases prácticas (aula / sala de demostraciones / prácticas laboratorio) Realización de seminarios u otras actividades complementarias Realización de trabajos (individual/grupal) Estudio/preparación clases teóricas Estudio/preparación clases prácticas Preparación de exámenes 3,4,5 Realización de exámenes 2 3 Asistencia a tutorías 1 2 Otras: Aula Virtual Total horas Total ECTS 8. Bibliografía / Recursos Bibliografía Básica (2) - Abraham Kierszenbaum Histología y Biología Celular 3ª Edición Elsevier Sobotta Welsch Histología 2ª Edición Panamericana Bibliografía Complementaria (3) - Boya Atlas de Histología Otros recursos (3) 13

14 (2) Se recomienda acotar el número de bibliografía. (3) Este apartado podrá ser eliminado en el caso en que el profesorado estime que las características y necesidades de la asignatura no lo hacen necesario. 9. Sistema de Evaluación y Calificación Descripción La evaluación global de la asignatura se distribuye en dos partes: 1ª parte teórico-práctico que supondrá el 90% de calificación final (Pruebas objetivas 60% y Valoración practica 30%), y se superará con un 3 para las pruebas objetivas (50% de las respuestas correctas) y un 2,1 para la parte práctica (7 diagnosticos correctos sobre 10 preparaciones histológicas). Superada la parte teórico-práctico se le añadirá valoración de la 2ª parte que supone un 10% de la calificación final. La calificación final se calculará sumando ambas partes. Estrategia Evaluativa TIPO DE PRUEBA (4) COMPETENCIAS CRITERIOS PONDERACIÓN Pruebas objetivas Pruebas de respuesta corta Pruebas de desarrollo Trabajos y Proyectos Informes memorias de prácticas Pruebas de ejecución de tareas reales y/o simuladas Escalas de actitudes Técnicas de observación Portafolios Examen Teórico Conocer la morfología y relaciones microscópicas de los diferentes órganos y sistemas del cuerpo humano (3,4,5) Valoración del cuaderno de prácticas realizado a lo largo del curso sobre las diferentes preparaciones de células y tejidos (4) Examen final test 60% Realización de cuaderno de prácticas 5% 14

15 Asistencia y Participación regular a todas las actividades de la asignatura Fomentar la discusión y el debate sobre diferentes aspectos y/o temas de especial actualidad referidas a la asignatura. (2) Mediante control presencial periódico 5% Valoración de la destreza desarrollada en la sala de prácticas Reconocer las diferentes preparaciones de las células y tejidos del organismo. (1,4) Comprobación de los conocimientos adquiridos al microscopio mediante prueba de evaluación 20% Valoración de la utilización del Aula Virtual Estimular al alumno al empleo de las tecnologías de la información en el aspecto microscópico. (2) Comprobación de la respuesta a las diferentes cuestiones planteadas en las fotografías de microscopía electrónica 10% (4) Las filas de este apartado, podrá ser eliminadas sólo en el caso en que el profesorado estime que no procede o no realiza estas acciones. 10. Resultados de aprendizaje Opcional. Sólo es obligatorio si se especifica en la Memoria del Título de Grado/Máster 11. Cronograma/Calendario de la asignatura Opcional. A determinar por el Centro [En las guías docentes la planificación temporal de la programación sólo tiene la intención de establecer unos referentes u orientaciones para presentar la materia atendiendo a unos criterios cronológicos, sin embargo son solamente a título estimativo, de modo que el profesorado puede modificar si así lo demanda el desarrollo de la materia dicha planificación temporal. Es obvio recordar que la flexibilidad en la programación tiene unos límites que son aquellos que plantean el desarrollo de materias universitarias que no están sometidas a procesos de adaptación del currículo]. Descripción del Cronograma 1 er Cuatrimestre (5) 15

16 SEMANA Temas Actividades de enseñanza aprendizaje Horas de trabajo presencial Horas de trabajo autónomo Total Semana 1: Introducción Clase Teórica Semana 2: 1-2 Clase Teórica Semana 3: 3-4 Clase Teórica Semana 4: 5-6 Clase Teórica Semana 5: 7-8 Clase Teórica Semana 6: 9-10 Clase Teórica Semana 7: Clase Teórica Semana 8: Clase Teórica Semana 9: Clase Teórica Semana 10: Clase Teórica Semana 11: Clase Teórica Semana 12: Clase Teórica Semana 13: Clase Teórica Semana 14: Clase Teórica Semana 15: Clase Teórica er Cuatrimestre (5) SEMANA Temas Actividades de enseñanza aprendizaje Horas de trabajo presencial Horas de trabajo autónomo Total Semana 1: Semana 2: Semana 3: Semana 4: Semana..: (5) NOTA: En caso de que la asignatura sólo abarque un cuatrimestre eliminar cuadro que no procede. 16