METODOLOGÍA DE CARACTERIZACIÓN DE PRADERAS MARINAS

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1 República de Panamá Autoridad de los Recursos Acuáticos de Panamá (ARAP) Programa de Fortalecimiento de la Capacidad de Gestión de la Autoridad de Recursos Acuáticos de Panamá para el Manejo Costero Integrado Fortalecimiento de la capacidad técnica de la Unidad Ambiental, por medio de la Elaboración de guías técnicas para Evaluación de impacto ambiental ANEXO 5 METODOLOGÍA DE CARACTERIZACIÓN DE PRADERAS MARINAS

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3 ANEXO 5 Metodología de caracterización de praderas marinas Tabla de contenido 1 Metodología para caracterización de praderas de hierbas marinas Determinación de la Biomasa y Características de las Praderas de de Hierbas Marinas Inventario de la fauna y epifauna asociada a las hierbas marinas Muestreo de juveniles (peces y crustáceos) Muestreos de Lambí (Strombus gigas) Muestreo de langostas juveniles (Panulirus spp)... 5 Índice de Tablas Tabla 1, Formulario de campo para registrar datos de biomasa en praderas de hierbas marinas... 2 Tabla 2, Categorías de cobertura... 4 Tabla 3, Lista de especies de epifauna de praderas de hierbas marinas... 6 Tabla 4, Formulario utilizado en transectos de lambí... 7 Índice de Figuras Figura 1, Cuadrante utilizado para estimar cobertura de praderas marinas... 3 ARAP i Anexo 5

4 ARAP ii Anexo 5

5 ANEXO 5 1 Metodología para caracterización de praderas de hierbas marinas Para determinar la importancia de estos ecosistemas y detectar los cambios que ocurren a través de perturbaciones, primero es necesario mapear la distribución y densidad de los organismos que los componen. Los muestreos iniciales de reconocimiento de praderas de hierbas marinas deben incluir las evaluaciones de cobertura por los componentes bióticos y abióticos y los inventarios presencia / ausencia de la flora y fauna bentónica dominantes. 1.1 Determinación de la Biomasa y Características de las Praderas de de Hierbas Marinas Método 1: Los datos sobre la biomasa de las hierbas marinas sirven para determinar la estructura o tipo de comunidad de hierbas marinas, así como su salud relativa. El método consiste en determinar la densidad de hojas y de retoños, así como la altura del canopio en unidades apropiadas de muestreo. De esta forma se pueden recolectar los siguientes datos: # de retoños colectados y/o contados en cada cuadrante; # de hojas colectadas y/o contadas en cada cuadrante y; longitud máxima de hoja (cm) por retoño para un número determinado de retoños en un número determinado de cuadrantes. Antes de comenzar el muestreo se debe determinar el tamaño del lugar del muestreo y el posicionamiento de las líneas de transecto. Se debe predeterminar el tamaño de cuadrante ser utilizado (20 x 40 cm 2 ), así como la cantidad de cuadrantes a ser muestreados. El tamaño del cuadrante debe ser basarse en la densidad de las hojas de hierba. Los cuadrantes que se muestrean para biomasa deben seleccionarse al azar antes del comienzo del trabajo de campo, ver Tabla 1. Para el número de retoños se debe indicar el número total de retoños de cada especie de hierba en cada cuadrante. Para el número de hojas, se debe indicar el número total de hojas de cada especie de hierba marina en cada cuadrante. Para los muestreos de longitud de hoja, después de determinar el número de retoños que se utilizarán para determinar la longitud máxima de hoja, se debe indicar la longitud máxima de hoja de cada uno de los retoños escogidos midiendo hasta el centímetro más cercano. ARAP 1 Anexo 5

6 Tabla 1, Formulario de campo para registrar datos de biomasa en praderas de hierbas marinas Fuente: Tomada de Sullivan et al., Citada en (Geraldes and Vega 2001) ARAP 2 Anexo 5

7 Método 2: (Para calcular biomasa) Se realiza cortando alrededor de todo el borde de un cuadrante (4 por estación) de tamaño determinado (50 x 50 cm) y recolectando toda la vegetación dentro de esos cuadrantes, como lo muestra la figura 1. Las muestras de cada cuadrante se colocan dentro de fundas plásticas que las identifiquen. También se toman muestras del sedimento (tres por estación) usando una paleta. Las muestras se deben tomar de los primeros 10 cm del fondo, y se deben tomar unos 500 gramos. Al salir del buceo se le agrega 5% formalina a las fundas con las muestras de hierbas. Para limpiar las impurezas (organismos y carbonatos incrustados), se debe lavar la muestra en 5% ácido fosfórico por minutos. Para cada especie se cuentan los brotes, se secan, y se pesan (peso mojado en gramos). Se mide la longitud de por lo menos 10 brotes para cada especie y se calcula un promedio. Luego se combinan todos los materiales de una misma especie de los cuatro cuadrantes evaluados en cada estación. De cada una de las muestras combinadas, y de todos los brotes se toman 50 brotes, los cuales se separan en tres porciones compuestas por hojas, rizomas, y raíces. Para obtener el peso seco de cada porción, se colocan separadas en fundas plásticas, identificadas y se secan en un horno a C. Figura 1, Cuadrante utilizado para estimar cobertura de praderas marinas Fuente: Tomada de English et al., Citada en (Geraldes and Vega 2001) Finalmente se toman 10 gramos del material vegetal seco, se colocan en una fuente de porcelana, y se colocan en un horno a 555 C por lo menos 5 horas para determinar la biomasa de las muestras. El análisis de sedimento es el mismo aplicado para manglares. Método 3: Consiste en colocar un cuadrante de 50 x 50 cm que ha sido dividido en 25 cuadros de 10 x 10 cm, sobre el sustrato. En cada uno de estos 25 cuadros se registra la cobertura por las diferentes especies utilizando las siguientes categorías: ARAP 3 Anexo 5

8 Tabla 2, Categorías de cobertura Clase Área del Sustrato Cubierto % del Sustrato Cubierto % Medio (M) 5 ½ a todo ¼ a ½ /8 a ¼ /16 a 1/ Menos de 1/16 < Ausente 0 0 Fuente: (Geraldes and Vega 2001) La cobertura (C) de cada especie en cada cuadrante de 50 x 50 centímetros se calcula de la siguiente forma: C = M i xfi donde M i = % medio de la Clase i ƒ ƒ = frecuencia (número de cuadros con la misma categoría de dominancia (i)). Método 4: (Para calcular biomasa) Se seleccionan 5 cuadrantes de referencia al principio de cada período de muestreo. Estos cuadrantes deben representar la gama de biomasa que se pueda encontrar durante el muestreo. Los cuadrantes de referencia se ordenan en cada escala linear, de 1 (menor) a 5 (mayor). Esto se hace más fácil escogiendo los cuadrantes #1 y #5 primero, luego el #3, y finalmente #4 y #2. El número de cuadrantes a ser evaluados dependerá de la variabilidad en la densidad de la pradera, pero debe ser por lo menos 4 en cada estación. Al final del muestreo se seleccionan 10 cuadrantes. Estos deben cubrir la gama de biomasa encontradas en la estación. Se recolectan todas las hierbas en estos 10 cuadrantes para calibrar los estimados de ordenamiento. Se calcula los pesos secos como describió anteriormente. Se establecen curvas de calibración para cada observador haciendo un análisis estadístico de regresión a los pesos secos contra el rango correspondiente para los 10 cuadrantes de calibración. 1.2 Inventario de la fauna y epifauna asociada a las hierbas marinas Este método consiste en identificar las especies observadas dentro de un polígono de muestreo, lista mostrada en la Tabla 2. Una vez se haya identificado una comunidad de fondo blando, se deben realizar los inventarios de presencia / ausencia y la evaluación de cobertura por componentes bióticos y abióticos como se describió en el capítulo sobre comunidades de fondo duro. Además se debe incluir un listado de presencia / ausencia de algas e hierbas marinas. 1.3 Muestreo de juveniles (peces y crustáceos) Primero se debe evaluar la variabilidad en abundancia y en diversidad, tanto en tiempo como en espacio de los organismos realizando muestreos por lo menos 4 veces al año. Los muestreos deben realizarse tanto de día como de noche, que es cuando se activan la mayoría de los crustáceos. El diseño de muestreo, sin embargo, dependerá de los objetivos específicos de los estudios. Este método se basa en el uso de redes de arrastre que se remolcan detrás de una embarcación pequeña. ARAP 4 Anexo 5

9 La posición y dirección de los remolques se determina usando fotografías aéreas, un GPS, y una brújula. Cuando hay corriente, los remolques se deben hacer contra la corriente. Se deben realizar varias réplicas de los remolques en cada lugar. Los remolques deben estar repartidos de una manera aleatoria y no deben traslaparse. Para realizar un remolque se utiliza una soga que debe tener una longitud aproximada de 10 veces la profundidad. Se remolca a una velocidad aproximada de un nudo por dos minutos. Se debe monitorear la dirección del remolque. Se debe registrar el tiempo en que comienza cada remolque y la duración del mismo. Las muestras deberán ser conservadas en formalina al 5% en agua salada. 1.4 Muestreos de Lambí (Strombus gigas) Primero se escogen los lugares de muestreos al azar utilizando el mapa de comunidades. En cada estación dos buzos nadan, uno de cada lado de la línea de transecto, y va midiendo la densidad (# por área) y el tamaño (longitud total de caracol, longitud y ancho de giro principal, y espesor de labio) de cada lambí que encuentre a 2.5 m de distancia. Estos datos son registrados en el formulario de la Tabla Muestreo de langostas juveniles (Panulirus spp) Las evaluaciones se realizan conjuntamente con los transectos de lambí, y usando los mismos métodos) ARAP 5 Anexo 5

10 Tabla 3, Lista de especies de epifauna de praderas de hierbas marinas Fuente: Tomada de Sullivan et al., Citada en (Geraldes and Vega 2001) ARAP 6 Anexo 5

11 Tabla 4, Formulario utilizado en transectos de lambí Fuente: Tomada de Sullivan et al., Citada en (Geraldes and Vega 2001) ARAP 7 Anexo 5

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