DETERMINACIÓN DE CURVAS DE ELIMINACIÓN DE HUEVOS DE NEMATODOS GASTROINTESTINALES EN HECES DE EQUINOS DE LA SABANA DE BOGOTÁ.

Transcripción

1 DETERMINACIÓN DE CURVAS DE ELIMINACIÓN DE HUEVOS DE NEMATODOS GASTROINTESTINALES EN HECES DE EQUINOS DE LA SABANA DE BOGOTÁ. ANDRES MAURICIO SANTOYO VELASCO UNIVERSIDAD DE LA SALLE FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA BOGOTA, D.C. 2008

2 DETERMINACIÓN DE CURVAS DE ELIMINACIÓN DE HUEVOS DE NEMATODOS GASTROINTESTINALES EN EQUINOS EN HECES DE LA SABANA DE BOGOTÁ. ANDRES MAURICIO SANTOYO VELASCO Trabajo de grado para optar el titulo de Medico Veterinario Director Dr. Germán Alonso Prada Sanmiguel Medico Veterinario Universidad Nacional de Colombia Director Clínica de grandes animales Universidad de La Salle UNIVERSIDAD DE LA SALLE FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA BOGOTA, D.C. 2008

3 DIRECTIVOS RECTOR Hno. Carlos Gabriel Gómez VICERRECTOR ACADEMICO Hno. Fabio Humberto Coronado VICERRECTOR DE PROMOCION Y Hno. Carlos Humberto Pabón M DESARROLLO HUMANO VICERRECTOR ADMINISTRATIVO Dr. Mauricio Fernández Fernández VICERRECTOR DE INVESTIGACION Manuel Cancelado Jiménez Y TRANSFERENCIA Hno. DECANO DE LA FACULTAD Dr. Pedro Pablo Martínez Méndez SECRETARIO ACADEMICO Dra. María Teresa Uribe Mallarino DIRECTOR CLINICA VETERINARIA Dr. Juan Pablo Pinedo

4 ACEPTACIÓN DIRECTOR Dr. Germán Alonso Prada JURADO Dr. Dildo Márquez JURADO Dr. Mauricio Ortega SECRETARIA ACADEMICA Dra. María Teresa Uribe

5 COMPROMISO El presente trabajo de investigación no contiene ideas que de una u otra forma sean contrarias a la iglesia católica, en cuanto a su doctrina, dogma y moral. Las ideas aquí expuestas por el graduando no son responsabilidad ni del director del proyecto de investigación, ni de los jurados y siquiera de la Universidad de La Salle, son simples opiniones de libre expresión del presente y directo responsable de este escrito.

6 DEDICATORIA A mi padre; Salomón por su constante apoyo no solo económico sino moral; a mi abuela Hilda María, a mi novia Carolina, a Lady, a mis compañeros de universidad, a la Doctora Pilar Calvo que siempre creyó en mi, y a quienes de una u otra forma me colaboraron y participaron en la realización de este trabajo de investigación. Gracias por su apoyo incondicional por supuesto agradezco a la Universidad de La Salle y su cuerpo docente que estuvieron en continuo seguimiento y a Dios por darme la fortaleza necesaria para culminar la investigación.

7 AGRADECIMIENTOS A los propietarios de las fincas de la Sabana de Bogotá quienes muy amablemente nos prestaron sus animales, en cabeza de sus directores y trabajadores, puesto que gracias a ellos fue posible la realización de este trabajo de investigación, en especial a aquellos trabajadores que mes a mes colaboraron desinteresadamente para la toma de las muestras. A la Universidad de La Salle por permitir utilizar sus instalaciones y equipos para el desarrollo del proyecto. Al Doctor Germán Prada por su vinculación al proyecto y orientación del mismo. A los Doctores Pilar Calvo y Cesar Augusto Díaz, por su colaboración, paciencia, amistad y compañía permanente sin interés de ninguna clase en el desarrollo del proyecto. A los jurados y respetados doctores por su interés y colaboración siempre hacia la alta calidad y excelencia de la investigación. Y a todas las personas que directa o indirectamente colaboraron para la culminación del Proyecto de investigación.

8 CONTENIDO Pág. INTRODUCCION 1 1 MARCO TEORICO PARASITISMO EN EQUINOS PARÁSITOS INTERNOS 4 2 GENERALIDADES DE LOS NEMATODOS GRANDES ESTRÓNGILOS PEQUEÑOS ESTRÓNGILOS ÁSCARIS CÉSTODOS 20 3 DIAGNÓSTICO PARASITOLÓGICO 23

9 3.1 MÉTODOS DIAGNÓSTICOS 23 4 MATERIALES Y MÉTODOS LOCALIZACIÓN POBLACIÓN Y MUESTRA VARIABLES AMBIENTALES 29 5 MÉTODOS Y PROCEDIMIENTOS MATERIALES MÉTODO 30 6 ANÁLISIS ESTADÍSTICO 36 7 RESULTADOS RESULTADOS ZIPAQUIRÁ Y CAJICÁ RESULTADOS TABIO Y TENJO 41

10 7.3 RESULTADOS LA CALERA Y SOPÓ RESULTADOS SIBATÉ Y PASCA PROMEDIOS ZONAS SABANA DE BOGOTÁ PROMEDIO MENSUAL DE VARIABLES AMBIENTALES RELACIÓN DE LAS VARIABLES CON LOS RESULTADOS OBTENIDOS EN LAS CUATRO ZONAS DURANTE LOS 6 MESES DE MUESTREO SÍNTESIS ANÁLISIS ESTADÍSTICO (CORRELACION DE PEARSON) 62 8 ANÁLISIS Y DISCUSIÓN DE RESULTADOS ANÁLISIS DE DATOS SOBRE LOS PREDIOS DE LA ZONA 1 (ZIPAQUIRÁ-CAJICÁ) ANÁLISIS DE DATOS SOBRE LOS PREDIOS DE LA ZONA 2 (TABIO Y TENJO) 67

11 8.3 ANÁLISIS DE DATOS SOBRE LOS PREDIOS DE LA ZONA 3 (LA CALERA Y SOPÓ) ANÁLISIS DE DATOS SOBRE LOS PREDIOS DE LA ZONA 4 (SIBATÉ Y PASCA) ANÁLISIS DE DATOS SOBRE LOS PREDIOS DE LA SABANA DE BOGOTÁ CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES 75 BIBLIOGRAFIA 77 ANEXOS 81

12 LISTA DE ANEXOS Pág. ANEXO A. PROMEDIO HPG ZONA 1 (ZIPAQUIRÁ-CAJICÁ) 81 ANEXO B. PROMEDIO HPG ZONA 2 (TABIO - TENJO) 82 ANEXO C. PROMEDIO HPG ZONA 3 (LA CALERA - SOPÓ) 83 ANEXO D. PROMEDIO HPG ZONA 4 (SIBATÉ PASCA) 84 ANEXO E. CORRELACIÓN GENERAL DE PEARSON 4 ZONAS SABANA DE BOGOTA 85

13 LISTA DE TABLAS Pág. TABLA 1. PRINCIPALES PARÁSITOS INTERNOS DE LOS EQUINOS 5 TABLA 2. FINCAS ZIPAQUIRÁ Y CAJICÁ 27 TABLA 3. FINCAS TABIO Y TENJO 28 TABLA 4. FINCAS SIBATÉ Y PASCA 28 TABLA 5. FINCAS SOPÓ Y LA CALERA 29 TABLA 6. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LA ZONA 1, CORRESPONDIENTES A ZIPAQUIRÁ - CAJICÁ EN EL MES DE OCTUBRE DE TABLA 7. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LA ZONA 1, CORRESPONDIENTES A ZIPAQUIRÁ - CAJICÁ EN EL MES DE NOVIEMBRE DE TABLA 8. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LA ZONA 1, CORRESPONDIENTES A ZIPAQUIRÁ - CAJICÁ EN EL MES DE DICIEMBRE DE

14 TABLA 9. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LA ZONA 1, CORRESPONDIENTES A ZIPAQUIRÁ CAJICÁ EN EL MES DE ENERO DE TABLA 10. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LA ZONA 1, CORRESPONDIENTES A ZIPAQUIRÁ - CAJICÁ EN EL MES DE FEBRERO DE TABLA 11. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LA ZONA 1, CORRESPONDIENTES A ZIPAQUIRÁ - CAJICÁ EN EL MES DE MARZO DE TABLA 12. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LA ZONA 1, CORRESPONDIENTES A ZIPAQUIRÁ CAJICÁ ENTRE OCTUBRE/2006 HASTA MARZO/ TABLA 13. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LA ZONA 2 CORRESPONDIENTE A TABIO Y TENJO. EN EL MES DE OCTUBRE DE TABLA 14. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 2 CORRESPONDIENTE A TABIO Y TENJO. EN NOVIEMBRE DE TABLA 15. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 2 CORRESPONDIENTE A TABIO Y TENJO. EN DICIEMBRE DE

15 TABLA 16. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 2 CORRESPONDIENTE A TABIO Y TENJO. EN ENERO DE TABLA 17. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 2 CORRESPONDIENTE A TABIO Y TENJO. EN FEBRERO DE TABLA 18. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 2 CORRESPONDIENTE A TABIO Y TENJO. EN MARZO DE TABLA 19. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 3 CORRESPONDIENTE A LA CALERA Y SOPÓ. EN OCTUBRE DE TABLA 20. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 3 CORRESPONDIENTE A LA CALERA Y SOPÓ. EN NOVIEMBRE DE TABLA 21. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 3 CORRESPONDIENTE A LA CALERA Y SOPÓ. EN DICIEMBRE DE

16 TABLA 22. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 3 CORRESPONDIENTE A LA CALERA Y SOPÓ. EN ENERO DE TABLA 23. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 3 CORRESPONDIENTE A LA CALERA Y SOPÓ. EN FEBRERO DE TABLA 24. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 3 CORRESPONDIENTE A LA CALERA Y SOPÓ. EN MARZO DE TABLA 25. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 4 CORRESPONDIENTE A SIBATÉ Y PASCA. EN OCTUBRE DE TABLA 26. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 4 CORRESPONDIENTE A SIBATÉ Y PASCA. EN NOVIEMBRE DE TABLA 27. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 4 CORRESPONDIENTE A SIBATÉ Y PASCA. EN DICIEMBRE DE

17 TABLA 28. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 4 CORRESPONDIENTE A SIBATÉ Y PASCA. EN ENERO DE TABLA 29. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 4 CORRESPONDIENTE A SIBATÉ Y PASCA. EN FEBRERO DE TABLA 30. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LOS MUNICIPIOS DE LA ZONA 4 CORRESPONDIENTE A SIBATÉ Y PASCA. EN MARZO DE TABLA 31. PROMEDIO MENSUAL ZONA 1 CORRESPONDIENTE A ZIPAQUIRÁ CAJICÁ. 51 TABLA 32. PROMEDIO MENSUAL ZONA 2 CORRESPONDIENTE A TABIO TENJO. 52 TABLA 33. PROMEDIO MENSUAL ZONA 3 CORRESPONDIENTE A LA CALERA SOPÓ. 52 TABLA 34. PROMEDIO MENSUAL ZONA 4 SIBATÉ PASCA. 53 TABLA 35.PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG DURANTE 6 MESES EN MUNICIPIOS DE LA SABANA DE BOGOTÁ. 53 TABLA 36. PROMEDIOS MENSUALES DE VARIABLES AMBIENTALES EN LA ZONA 1 CORRESPONDIENTE A ZIPAQUIRÁ-CAJICÁ. 54

18 TABLA 37. PROMEDIOS MENSUALES DE VARIABLES AMBIENTALES EN LA ZONA 2, CORRESPONDIENTE A TABIO Y TENJO. 55 TABLA 38. PROMEDIOS MENSUALES DE VARIABLES AMBIENTALES EN LA ZONA 3, CORRESPONDIENTE A LA CALERA Y SOPÓ. 55 TABLA 39. PROMEDIOS MENSUALES DE VARIABLES AMBIENTALES EN LA ZONA 4, CORRESPONDIENTE A SIBATÉ Y PASCA. 56

19 LISTA DE FIGURAS Pág. FIGURA 1. CICLO DE VIDA DE STRONGYLUS 13 FIGURA 2. CICLO DE VIDA DE LOS PEQUEÑOS ESTRÓNGILOS DEL EQUINO 15 FIGURA 3. CICLO DE VIDA DE LOS ÁSCARIS 19 FIGURA 4. CICLO DE VIDA DE LOS CÉSTODOS 22 FIGURA 5. MAPA DE LOCALIZACIÓN 26 FIGURA 6. GRUPO DE ANIMALES CORRESPONDIENTES A UNA ZONA DE ESTUDIO 31 FIGURA 7. MATERIA FECAL FRESCA Y RECOLECCIÓN. 32 FIGURA 8. MATERIA FECAL FRESCA REFRIGERADA Y MONTAJE PARA LECTURA DE HUEVOS. 33 FIGURA 9. GRAFICA ILUSTRATIVA MÉTODO DE MC MASTER. 35

20 LISTA DE GRAFICAS Pág. GRÁFICA 1. PROMEDIO DE ELIMINACIÓN DE HPG, EN LOS PREDIOS DE LA ZONA 1, CORRESPONDIENTES A ZIPAQUIRÁ CAJICÁ ENTRE OCTUBRE/2006 HASTA MARZO/ GRAFICA 2. PROMEDIO DE HPG EN PREDIOS MUESTREADOS DE LA ZONA 2 CORRESPONDIENTES A TABIO-TENJO, ENTRE OCTUBRE/2006 HASTA MARZO/ GRAFICA 3. PROMEDIO DE HPG EN PREDIOS MUESTREADOS DE LA ZONA 3 CORRESPONDIENTE A LA CALERA- SOPÓ ENTRE OCTUBRE 2006 HASTA MARZO GRAFICA 4. PROMEDIO DE HPG EN PREDIOS MUESTREADOS DE LA ZONA 4 CORRESPONDIENTE A SIBATÉ-PASCA ENTRE OCTUBRE DE 2006 HASTA MARZO DE GRAFICA 5. PROMEDIO DE HPG DE LAS 4 ZONAS MUESTREADAS CORRESPONDIENTES A LA SABANA DE BOGOTÁ (ZIPAQUIRÁ -CAJICÁ, TABIO-TENJO, LA CALERA-SOPÓ, SIBATÉ-PASCA). 54 GRÁFICA 6. CURVAS DE ELIMINACIÓN DE HPG EN LA ZONA 1 (ZIPAQUIRÁ- CAJICÁ) DURANTE LOS MESES MUESTREADOS Y SURELACIÓN CON LA TEMPERATURA (T C), PRECIPITACIÓN PLUVIAL (MMS), HUMEDAD RELATIVA (%) Y BRILLO SOLAR (BS HRS). 57

21 GRÁFICA 7. CURVAS DE ELIMINACIÓN DE HPG EN LA ZONA 2 (TABIO-TENJO) DURANTE LOS MESES MUESTREADOS Y SU RELACIÓN CON LA TEMPERATURA (T C), PRECIPITACIÓN PLUVIAL (MMS), HUMEDAD RELATIVA (%) Y BRILLO SOLAR (BS HRS). 58 GRÁFICA 8. CURVAS DE ELIMINACIÓN DE HPG EN LA ZONA 3 (LA CALERA Y SOPÓ) DURANTE LOS MESES MUESTREADOS Y SU RELACIÓN CON LA TEMPERATURA (T C), PRECIPITACIÓN PLUVIAL (MMS), HUMEDAD RELATIVA (%) Y BRILLO SOLAR (BS HRS). 59 GRÁFICA 9. CURVAS DE ELIMINACIÓN DE HPG EN LA ZONA 4 (SIBATÉ Y PASCA) DURANTE LOS MESES MUESTREADOS Y SU RELACIÓN CON LA TEMPERATURA (T C), PRECIPITACIÓN PLUVIAL (MMS), HUMEDAD RELATIVA (%) Y BRILLO SOLAR (BS HRS). 60 GRÁFICA 10. CURVAS DE ELIMINACIÓN DE HPG EN EQUINOS DE LAS 4 ZONAS DE LA SABANA DE BOGOTÁ DURANTE LOS MESES MUESTREADOS Y SU RELACIÓN CON LA TEMPERATURA (T C), PRECIPITACIÓN PLUVIAL (MMS), HUMEDAD RELATIVA (%) Y BRILLO SOLAR (BS HRS). 61

22 RESUMEN El presente estudio abarcó los municipios de La Calera, Sibaté, Zipaquirá, Cajicá, Tabio y Tenjo, donde se evaluaron 180 equinos pertenecientes a 9 fincas de cada municipio, es decir, 45 animales por municipio. En cada predio, se recolectaron 5 muestras de materia fecal, directamente de los potreros, y que habían sido deyectadas recientemente en un tiempo menor a una hora, es decir se trabajó con 45 muestras por municipio para un total de 180 muestras en toda la sabana. Estas se analizarón en el laboratorio de la Clínica de la Universidad de la Salle (Sede La Floresta), mediante la técnica de Mc Master. Con ello, se obtuvieron, los conteos de huevos por gramo de cada muestra, los promedios de cada predio, perteneciente a cada uno de los municipios de la Sabana de Bogotá mensualmente, esto con el fin de establecer la curva de eliminación de huevos por gramo de parásitos gastrointestinales (Strongylus, oxiuros y parascaris) en equinos de la sabana de Bogotá durante 6 meses. Se utilizó el programa Statistix para calcular la estadística descriptiva, la correlación entre las variables climáticas (Temperatura, Precipitación Pluvial Pluvial, Brillo Solar y Humedad Relativa), y cada parasito; se establecieron las curvas de eliminación de huevos por gramo de materia fecal de nematodos gastrointestinales del orden Strongylida y los géneros Strongylus, parascaris y oxyuris.

23 ABSTRACT The present study I included the municipalities of The Calera, Sibaté, Zipaquirá, Cajicá, Tabio and Tenjo, where there was evaluated 180 horses belonging to 9 estates of every municipality, that is to say, 45 animals for municipality. In every land, there will be gathered 5 samples of fecal matter, directly of the herdsmen, and that have been To evacuate recently in a minor time an hour, that is to say one was employed with 45 samples for municipality for a whole of 180 samples at the whole sheet. These will be analyzed in the laboratory of the Clinic of the University La Salle, by means of Mc Master's technology (skill). With it, there will be obtained, the counts of eggs for gram of every sample, the averages of every land, belonging to each of the municipalities of the Sheet of Bogotá monthly, this in order to establish the curve of elimination of eggs for gram of gastrointestinal parasites (Strongylus, Oxiurus and parascaris) in equine of the sheet of Bogotá for 6 months. I used the program Statistix to calculate the descriptive statistics, the correlation between (among) the climatic variables (Temperature, rainfall, solar Sheen and relative dampness), and every parasite; there were established the curves of elimination of eggs by gram of fecal matter of nematodos gastrointestinal of the order Strongylida and the kinds (genres) Strongylus, Parascaris and Oxyuris.

24 INTRODUCCION Los caballos al igual que todas las especies animales conviven con otros animales que se alojan dentro de su organismo o sobre él, utilizando los nutrientes del primero para beneficio del segundo. La especie equina se ve afectada a diario por la infección de parásitos del medio ambiente y condiciones de manejo en el que se desarrollan (pastos, agua, suelo de las pesebreras y de los potreros); estos parásitos sobreviven en estado microscópico sin ser percibidos a simple vista por el ser humano. Por tal razón, es de vital importancia conocer cuáles parásitos perjudican en mayor grado a los equinos y así establecer un tratamiento adecuado con relación a la población y al tiempo; ya que en el país se maneja la desparasitación de manera empírica en la mayoría de explotaciones equinas, sin conocer con exactitud la carga parasitaria de cada animal. Así mismo, el presente estudio expresa un análisis más específico de las poblaciones, determinando en que meses del año existe mayor incidencia de parásitos gastrointestinales, contribuyendo así al manejo preventivo en las explotaciones equinas de la Sabana de Bogotá. Por consiguiente, el objetivo de la investigación pretende determinar cómo varia la eliminación de huevos de parásitos gastrointestinales en heces de equinos ubicados en la Sabana de Bogotá a lo largo de seis meses. 1

25 1. MARCO TEORICO Las enfermedades infecciosas en un caballo o brotes de la enfermedad en un grupo de equinos, resultan cuando los agentes infecciosos sobrepasan los niveles de resistencia que los caballos han adquirido a través de la previa exposición natural a la enfermedad o por la vacunación. Los programas de control de enfermedades deberán ser dirigidos a reducir la cantidad de agentes infecciosos en el ambiente, minimizar factores que disminuyen la resistencia de los caballos, e incrementar su resistencia a los mismos. El parasitismo interno es uno de los peligros más comunes que comprometen diariamente la salud y el bienestar de los caballos PARASITISMO EN EQUINOS. El parasitismo es una de las modalidades de asociación de seres vivos, es decir, de simbiosis, palabra que etimológicamente significa vida en común. La simbiosis es uno de los mecanismos básicos por los cuales se crearon y diferenciaron los eucariotas. Y es sobre los eucariotas, desde los protozoos al hombre, donde se desarrollaron los variados fenómenos de simbiosis que conocemos como mutualismo, comensalismo, parasitismo, etc. El concepto de parasitismo caminó históricamente parejo al de parasitología. La parasitología fue primero una disciplina médica, una zoología aplicada después y, finalmente, cuando se contempló como un suceso más de las relaciones de los seres vivos entre sí, un fenómeno ecológico. En realidad, la parasitología es todo esto al mismo tiempo, y el entendimiento del parasitismo, su origen, consecución 1 CARO, R.R (2003). Estrongilosis Equina. En: Veterinaria Argentina. Vol. 20. p

26 y transformación se entiende y expresa mejor con los conceptos y el lenguaje de la evolución de los seres vivos, porque, en esencia, es también una consecuencia de la evolución. 2 La salud de los animales es fundamental para poder mantener la eficiencia productiva y una de las enfermedades que más afectan los índices de producción es la parasitaria. En parasitología ningún organismo es un ente autónomo totalmente y aislado en sí mismo. Con esto se desprende que el parasitismo es un período prolongado durante el cual uno de los integrantes vive parcial o totalmente del otro. Esta relación hospedero-parásito puede mantenerse en equilibrio siempre que el daño que genere el parásito sea leve y no ponga en peligro la vida del caballo 3. Es importante señalar, que es casi imposible mantener a un animal libre de parásitos, lo importante es mantener esta relación en equilibrio. Cuando existe algún fenómeno que desequilibre esta relación, como por ejemplo, un ambiente con alta cantidad de parásitos que ingresan en corto tiempo a un animal, o cuando existe una situación de estrés en el caballo (parto, cambio de ambiente, fuerte entrenamiento, alta carga de trabajo, mala nutrición, bajas defensas), la balanza se inclina en favor del parásito logrando éste generar enfermedad al hospedero, conociéndose esta patología en términos generales como parasitosis. El parasitismo, si no es controlado, puede acarrear graves consecuencias sobre la salud de los caballos. Todas las categorías de caballos, ponies y asnos están afectados, de cualquier edad, raza y condición de vida. 4 2 M. CORDERO DEL CAMPILLO y ROJO., Parasitología Veterinaria. Madrid: Mc Graw Hill, p. 22 3QUIROZ ROMERO, Héctor. (1994). Parasitología y enfermedades parasitarias de animales domésticos. México: Noriega Editores. p 15 4 Ibíd., p. 15 3

27 Existen factores importantes como: la patogenicidad del parásito y su relación con la dosis que recibe el hospedador y el ritmo con el que llegan; y los diferente sistemas de explotación (practicas de manejo). 5 Los principales parásitos internos de los equinos se encuentran distribuidos por la clase, el orden, la familia, el género al que pertenecen y por último a la especie. En los animales domésticos del mundo existen miles de parásitos conocidos, que por lo menos alcanzan alrededor de las especies. En el Perú se han registrado por lo menos 354 especies (19,1 % del referente mundial). Con esta cifra referencial, aproximadamente, 36,2 % de las especies de parásitos están en los rumiantes, 11,6 % en los equinos, 10,7 % en los cerdos, 13,8 % en los perros y gatos, 16,9 % en las aves domésticas, y 10,7 % en los conejos y cuyes. Con el mismo referente, las especies parasitarias más numerosas pertenecen a los nematodos con el 29,9 %, artrópodos (30,2%) y protozoos (30,8%); y menos numerosas a los trematodos (1,5%), Céstodos (7,0%) y acantocephalos (0,6%) PARÁSITOS INTERNOS Los equinos son una especie muy susceptible a una gran variedad de parásitos internos los cuales se relacionan en la Tabla 1. 5 SOLIS, Juan pablo. (2007). Parásitos Internos y su importancia en la salud Equina. En: Medicina de Equinos Universidad de Chile. 6 ROJAS C, Marcelo. (2003). Inventario y Nosografía de los Parásitos de los Animales Domésticos Peruanos. En: Universidad Mayor de San Marcos. Manual Parasitológico. 4

28 Tabla 1. Principales parásitos internos de los equinos FILUM CLASE ORDEN FAMILIA GÉNERO ESPECIE Vulgaris Strongylus Cylicostephanus Edentatus Equinus minutus Calicatus Radiatus Nemathelminthos Nematoda Strongylida Strongylidae Leptsotomus Cylicocyclus Nassatus Catinatum Cyathostomun Goldi Labiatum Cylicodontophorus Poteriostomum Gyalocephalus Bicoronatus imparidentatum Capitalus Ascaridida Ascarida Parascaris Equorum Oxyurida Oxyuridae Oxyuris Equi Probsmayra Vivípara Habronematidae Habronema Muscae Rhabditida Strongyloididae Strongyloides Westeri Metastrongylidae Dictyocaulus Arnfieldi Trichostrongylidae Trichostrongylus Axei Magna Plathelminthos Cestoda Cyclophilida Anaplocephalidae Anaplocephala Perfoliata Fuente: M. Cordero del Campillo y Rojo Parasitología Veterinaria. Editorial McGraw-Hill. Madrid

29 En un estudio realizado por el Dr. Roger Rodríguez, se revisaron los archivos del laboratorio de Parasitología de la Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia de la Universidad Autónoma de Yucatán, de Marzo de 1984 a Diciembre de 1999 y se obtuvo la información de las muestras de heces de animales domésticos que fueron remitidas y procesadas mediante la técnica de Flotación Centrifugada. Se analizaron un total de muestras fecales, de las cuales 3827 fueron de bovinos, 1456 de caprinos, 544 de ovinos, 993 de caninos, 46 de felinos, 211 de aves, 3232 de porcinos y 380 de equinos. Los parásitos gastrointestinales más frecuentes en las distintas especies animales fueron los siguientes: Equinos: Strongylus sp (55.26%). bovinos: Strongylida (60.64%) y coccidia (71.57%), cabras: strongylida (75.41%) y coccidia (93.40%), ovinos: strongylida (59.00%) y coccidia (91.17%), caninos: Ancylostoma sp (37.36%), felinos: Ancylostoma sp (32.61%), aves de corral: coccidia (53.00%), Porcinos: coccidia (45.04%), Los animales domésticos del estado de Yucatán, México, se encuentran parasitados por una gran variedad de nemátodos, Céstodos y protozoarios. 7 7 RODRIGUEZ, Roger. (2001). Frecuencia de Parásitos Gastrointestinales en Animales Domésticos Diagnosticados en Yucatán, México. En: Revista Biomédica. Vol.12. 6

30 2. GENERALIDADES DE LOS NEMATODOS. Los nematodos son parásitos redondos, no segmentados, especies libres y parásitas, cuya morfología es básicamente semejante, aunque las últimas presentan adaptaciones a la forma de vida parasitaria. El cuerpo es filiforme con simetría bilateral, pero las hembras de algunas especies desarrollan dilataciones corporales más o menos globulosas. El tamaño de los nematodos varía desde pocos milímetros, hasta más de un metro de longitud (hembras de dracunculus). Poseen aparato digestivo, sexo separado y ciclos vitales directos o indirectos. 8 Las comunidades de helmintos intestinales en caballos son comúnmente estudiadas en post mortem. En un estudio realizado en Ucrania sobre un total de 44 caballos, El Cylicocyclus nassatus y Cyathostomum catinatum como la especie más dominante; fueron hallados en el 100 % de los caballos, incrementándose al 36.3 % y el 17.6 % del número total de strongylidos, respectivamente; C. longibursatus, C. ashworthi, Cylicostephanus calicatus, C. leptostomus y C. minutus fueron identificados en un 80% de los caballos y el 39.9 % del número total de strongylidos recogidos GRANDES ESTRÓNGILOS. Los miembros que pertenecen al género son: Strongylus vulgaris, S.edentatus y S. equinus. Entre las 3 especies principales de grandes estróngilos del caballo, el Strongylus vulgaris es el más patógeno y más frecuente. 8 M. CORDERO DEL CAMPILLO y otros. Parasitología Veterinaria. Madrid: Mc Graw Hill, p KUZMINA, T.A, KHARCHENCO, V.A, STAROVIR, A.I, DOVJNOS, G.M (2005). Analysis of the Strongylid nematodes (Nematoda: Stronglylidae) community after deworming of brood horses in Ukraine, avaible in Veterinary Parasitology News. Vol p

31 Habitan el intestino grueso (ciego y colon) de caballos y asnos junto con el Triodontophorus. En los caballos, los grandes estróngilos son parásitos frecuentes del intestino grueso, desde donde las larvas efectúan migraciones complejas a todo el organismo y son responsables de problemas variados y a menudo graves. Los potros son particularmente sensibles a este parásito. 10 En su ciclo biológico los parásitos adultos viven en el ciego y en el colon. Los huevos son similares a los de tricostrongílidos, son eliminados en las heces y su evolución hasta L3 durante el verano en países templados requiere unas dos semanas. La infección se origina por la ingestión de las L3. La infección de los équidos tiene lugar por la ingestión de las larvas infectivas con la hierba de los pastos o con el agua de bebida. En el intestino delgado se produce la liberación de larvas infectivas de la vaina que las encierra, un proceso que parece ser similar a la liberación de las larvas de los trichostrongylus. El comportamiento posterior de las larvas que han perdido su vaina varía con las especies de vermes. (Figura 1). Los hospedadores son caballos y asnos Los caballos infectados con los grandes estróngilos pueden perder su condición física, debilitarse y también presentar pérdida de peso, anemia y cólico. En casos extremos, la irrigación sanguínea al intestino alcanza a estar completamente bloqueada debido a los estróngilos, resultando en cólico severo y aún fatal. 10 PRADA, G., (2004). Parasitismo en Equinos. En: Consensus Vol. 18 p. 3. 8

32 En caballos infectados con una gran cantidad de estróngilos, puede favorecerse la formación de aneurismas arteriales, los cuales ocasionan la muerte repentina si se produce la ruptura de la arteria en la zona del aneurisma. 11. La acción patógena descrita por el Sr. TC Caro R;R en su artículo Estrongilosis Equina se refiere a: Debido que en caballos infectados y aparentemente sanos es posible encontrar gran cantidad de parásitos; incluidos grandes y pequeños estróngilos( hasta cientos de miles), se creyó por mucho tiempo que estos parásitos no eran patógenos. Además se subestimó el daño que podrían provocar los ciatostomas en comparación con las tan perjudiciales lesiones atribuibles a los Grandes estróngilos. En realidad es difícil separar los efectos de unos y otros por que ambos ocurren en forma simultánea en infestaciones naturales. 12 Todas las especies de los grandes estróngilos en su estado adulto se fijan en la mucosa del intestino grueso. Las lesiones producidas consisten inicialmente en hemorragias diminutas y áreas denudadas que indican donde el parasito se alimenta. La lesión tiene el tamaño de una cabeza de alfiler y consiste en una pequeña ulcera crateriforme, hay perforación de la mucosa y a veces ocurre una marcada infiltración celular. Posteriormente las áreas se agrandan y la confluencia de las lesiones lleva a la presentación de un foco ulceroso. Si la invasión parasitaria es importante se produce el engrosamiento de la pared del ciego o colon con escape de líquidos extracelulares y enteritis catarral. Otros estudios experimentales sobre la supervivencia de las larvas en fase infectiva a caballos con strongylus y su capacidad a sobrevivir en invierno sobre el pasto, fueron desarrollados en Ucrania central arrojando los siguientes resultados: Las heces (1.5 Kg. por cada uno) de caballos naturalmente infectados fueron 11 KUZMINA, V.A, STAROVIR, A.I, DOVJNOS, G.M. (2006). Field study on the survival, migration and overwintering of infective larvae of horses strongyles on pasture in central Ukraine. En: Veterinary Parasitology News.Vol.141.p CARO, R.R (2003). Estrongilosis Equina. En: Veterinaria Argentina. Vol. 20. p

33 colocados sobre el pastizal; y las muestras de excrementos con vegetación circundante (10 gr. cada uno) fueron recogidos cada mes, excluyendo los meses de invierno, de Noviembre de 2002 a Abril de El número de L3 de etapa infectiva fue calculado en cada muestra y comparado con el control (muestras fecales) en el laboratorio. En las muestras control, la proporción de L3 de etapa infectiva fue del 54.7 % en Junio hasta el 84.2 % en Noviembre 13. Esta proporción dependió de la presencia de hongos hematófagos que crecen en los excrementos que se encuentran sobre el pasto, el desarrollo de L3 infectantes tomó aproximadamente 4 semanas en la época cálida, de Abril a Septiembre. En Octubre, un porcentaje de los huevos (el 25 % del valor de EPG) no incubó. Ningún desarrollo larval fue observado en los excrementos en Noviembre. Una cantidad diminuta de larvas, aproximadamente el 0.03 % de su número inicial, fue observada y pudo sobrevivir sobre el pasto durante los 12 meses. La migración de larvas infectivas de los excrementos a la vegetación no fue intensiva, entre el 71 % y el 89 % permanecían en los excrementos 4 semanas después de la deposición fecal. El porcentaje fue relacionado con la humedad del suelo en cada mes 14. En investigaciones desarrolladas por el Dr. Omar Barriga de la Facultad Medicina Veterinaria de la Universidad de Chile, aporta lo siguiente: Los estróngilos son los parásitos más importantes de los equinos. Aunque la patogenicidad de los estróngilos pequeños ha sido plenamente reconocida sólo en los últimos años, el daño producido en los caballos por el grupo de los estróngilos ha sido temido desde tiempo atrás. Con el advenimiento de los benzimidazoles en 13 KUZMINA, V.A, STAROVIR, A.I, DOVJNOS, G.M. (2006). Op. Cit. p Ídem 10

34 1960 y su efectividad sobre estos parásitos, se empezó a recomendar la administración regular de antihelmínticos a los caballos cada 6 a 8 semanas para prevenir la acumulación de los parásitos en el hospedero y la contaminación de los potreros con sus huevos. Esta estrategia fue exitosa, particularmente contra los grandes estróngilos pero, ineludiblemente, la administración repetida de antihelmínticos resultó en el desarrollo de poblaciones de parásitos resistentes a estas drogas. En la década de los 60, varios autores descubrieron que en los rumiantes ocurría un aumento del pasaje de los huevos de los nematodos gastrointestinales en las heces durante la primavera ("aumento de primavera"). Poco después se encontró que un aumento aún más importante ocurría después del parto ("aumento de la lactancia"). Un fenómeno similar ocurrió en los años 50 pero, como no estaba relacionado con la lactancia, no parece haber despertado el interés de los investigadores. Trabajos efectuados más tarde en Europa y en los Estados Unidos, sin embargo, demostraron que una manifestación similar ocurría en los equinos: los huevos de los estróngilos aumentaban marcadamente en las deposiciones de los caballos infectados en el verano, o en la primavera. Este es un hallazgo de gran importancia potencial ya que podría reducir los tratamientos de los caballos. 15 En nuestro país existen gran variedad de productos comerciales e infinidad de marcas y presentaciones a base de Ivermectina (pasta y/o gel) también asociados a otros compuestos y combinaciones como: Benzimidazoles, Pamoato de Pyrantel etc; para el control de los grandes estróngilos. 15 BARRIGA, Omar. (2004). Tendencias estacionales en la producción de huevos de estróngilos en caballos. En: Monográfico Equinotecnia. Vol

35 El control prolongado descrito recientemente por Bulman en 1997 concluye que en materia de tratamientos y con este nuevo enfoque de control prolongado: 1) tanto Ivermectina a una dosis de 0.2mg/kg como Moxidectin a 0.4mg/kg logran un excelente control de parásitos adultos; 2) en relación a los estadios larvarios de los parásitos Ivermectina supera a los Benzimidazoles y pamoato de Pyrantel; esta ventaja de Ivermectina es ampliamente superada por Moxidectin la particular actividad de Moxidectin en el control de las larvas enquistadas fue del 97% BULMAN, G., Mauricio. (1997). Principales parásitos de los equinos: Recientes progresos en su investigación y Control. En: Veterinaria Argentina. Vol. 16. p

36 Figura 1. Ciclo de vida de Strongylus. Pared abdominal Nódulos Subperitoneales Muda a L V (3.er-5. mes) Hígado Muda a L IV (6.a 8.a semana) Luz intestinal Adulto fértil ( mes) Huevo L-I L-III L-II Luz intestinal Adulto fértil (8. -9 mes) Luz intestinal Adultos fértiles ( mes) Nódulos en la Subserosa de la Submucosa intestinal pared intestinal Intestinal (1.er-3.er día) Muda a L-IV Nódulos en la pared Muda a L-IV (7. día) ( día) Intestinal Páncreas y región peripancreática Capilares, arteriolas y Arterias cecal y cólica (14. día) Cavidad peritoneal (19. día) Tronco, arterias mesentéricas Hígado Y otras arterias (21.er día) (6.a-8.a semana) Muda L-V ( mes) Strongylus equinus Strongylus vulgaris Strongylus edentatus Fuente: M. Cordero del Campillo y Rojo Parasitología Veterinaria. Editorial McGraw- Hill. Madrid

37 2.2 PEQUEÑOS ESTRÓNGILOS. También llamados cyathostominos agrupan 13 géneros y más de 51 especies. Los géneros más importantes son Cyliscotephanus, Cylicocyclus y Cyathostomum. Huéspedes primordialmente son los équidos domésticos, caballo, asno, mulo y burdégano aunque también los équidos de vida silvestre como la cebra. El ciclo biológico es directo y similar para todas las especies del grupo. Los huevos caen al medio ambiente junto con la materia fecal que otorga un hábitat favorable para el desarrollo de los huevos de los pequeños estróngilos, mientras que las larvas infectantes (L3) viven en la tierra o sobre la superficie de las plantas. A una Temperatura ambiental de 25 c en 4 a 7 días se desarrolla el 68% de L3. Su desarrollo es óptimo en los meses de verano, y nulo durante los meses de invierno. Las L3 se caracterizan por tener una cola muy larga y por ser muy resistentes a las condiciones ambientales, pudiendo sobrevivir por más de 1 año. Al ser ingeridas pierden su vaina de protección en el intestino delgado penetrando en la submucosa cecal y del colon mayor, donde forman nódulos pequeños de color amarillento o grandes nódulos de color rojizo. Allí mudan a L4 y L5 regresando luego al lumen del ciego y colon ventral derecho, con un periodo prepatente de 4 a 6 semanas hasta 3 a 4 meses. Estos parásitos también tienen la capacidad de desarrollar el estado de hipobiosis que consiste en el enquistamiento de larvas L3 de la mucosa intestinal, sobre todo en los meses de invierno o en áreas con cambios climáticos extremos o muy marcados. (Figura 2). 14

38 Figura 2. Ciclo de Vida de los Pequeños Estróngilos del Equino. Fuente: Prada, 2004 La hipobiosis, al parecer, se ve estimulada en las L3 presentes en el pasto, por Temperaturas bajas a nivel de las pasturas. Dichas L3 al ser consumidas por el equino, entran en hipobiosis en la mucosa del intestino grueso hasta que mejoren las condiciones ambientales. Se sabe que la salida de larvas a partir de los nódulos hipobióticos puede ocurrir a lo largo de años. Lo cual ha servido para teorizar que la hipobiosis es un mecanismo de control que utilizan los parásitos para regular el número de individuos adultos a nivel de la luz intestinal. Esto debe tenerse en cuenta al realizar programas de control antiparasitario, pues de este modo se puede estimular la salida de las larvas hipobioticas. Usualmente el número de estos parásitos es mucho más alto en animales jóvenes que en adultos, indicando una respuesta inmunitaria a la exposición previa de los mismos Ibíd., p.3. 15

39 En la patogénesis los adultos se alimentan de la mucosa intestinal cambiando frecuentemente de lugar. Las parasitosis masivas destruyen una gran superficie de mucosa del colon ventral, disminuyendo su capacidad de absorción de nutrientes y aumentando la absorción de sustancias toxicas desde la luz del intestino debido a la lesión de la mucosa. La emergencia de un gran número de L3 en estado hipobiótico a un mismo tiempo puede llevar a la presentación de un cuadro clínico conocido como cyatostomosis larval. Sin embargo también un gran numero de parásitos en estado hipobiótico, siendo estos animales negativos al diagnostico coproscopico, puede causar diarrea persistente, emaciación e hipoalbuminemia y colitis granulomatosa. Hay bajo rendimiento en equinos adultos y retraso en el crecimiento de los potrillos. 18 Para el Control una vez establecido el diagnóstico corresponderá instaurar el tratamiento correspondiente. La elección del mismo dependerá si se trata de un animal ó de muchos animales y a su vez si éstos están estabulados ó en campo. Por lo tanto la estrategia de control será diferente. En los animales en pastoreo teniendo en cuenta la epidemiología de los pequeños estróngilos, el programa sanitario se orientara básicamente a reducir la posibilidad de ingestión de larva 3 en el invierno. Podrán utilizarse benzimidazoles, tales como el mebendazol (dosis 8.8 mg/kg), el fenbendazol (7.5mg/kg) y el oxfendazol (10mg/kg), tienen gran poder ovicida. 18 PRADA, G., (2004). Parasitismo en Equinos. En: Consensus Vol. 18 p

40 El pamoato de Pyrantel tiene una eficacia del 70 al 98% para pequeños estróngilos a una dosis de 6.6mg/kg. Sin embargo se ha demostrado que la eficacia de la Ivermectina es baja para los ciatostomas no supera el 10% aún empleándola a 5 veces la dosis terapéutica(es decir a 1mg/kg).por lo cual no esta indicada en estos casos ÁSCARIS. A este género pertenece el Parascaris equorum; sus principales huéspedes son Caballos y asnos. El ciclo de vida de P.equorum comienza cuando el caballo ingiere los huevos conteniendo la L2 comiendo pasto o tomando agua. Eclosionan los huevos y las larvas se albergan en el intestino delgado y pasan por las venas portales. Estas migran al hígado, corazón y posteriormente a los pulmones. Después de la migración en las vías aéreas, las larvas son deglutidas, retornando al intestino delgado y maduran en el duodeno y yeyuno proximal. Los parásitos crecen en tamaño y los primeros huevos aparecen en los excrementos 72 a 110 días después de la infección. 20 (Figura 3). Con respecto a sus efectos patógenos más sobresalientes tenemos hemorragias y petequias en superficie pulmonar por ruptura de capilares sanguíneos. Aumento de producción del moco bronquial y alveolar. Bronquitis y Bronquiolitis eosinofilicas: las larvas con su cutícula degranulan las células cebadas, las cuales poseen en sus gránulos el factor quimiotáctico eosinofilico de anafilaxia que atrae gran numero de eosinofilos que lesionan el parénquima pulmonar. 19 CARO, R.R (2003). Estrongilosis Equina. En: Veterinaria Argentina. Vol. 20. p KOUDELA. B., BODECEK., S (2006). Effects of low and high Temperaturas on viability of Parascaris equorum eggs suspended in wáter. En: Veterinary Parasitology Vol. 142 p

41 Hipoalbuminemia: debido al robo masivo de proteína a nivel intestinal, disminuyendo al mismo tiempo la capacidad para integrar la metionina a la dieta de las proteínas plasmáticas. Lesiones intestinales como invaginaciones, oclusiones y perforaciones intestinales por la presensia de vermes adultos. Este patógeno afecta a potros menores de 6 meses los cuales presentan, taquipnea, tos, secreción nasal blanca a grisácea, fiebre anorexia y embotamiento. 21 La profilaxis antihelmíntica para los estróngilos del caballo puede ser también efectiva frente al P.equorum. Ya que la transmisión se produce de potro a potro, es una buena medida evitar el uso de las mismas caballerizas para las yeguas y sus potrillos en años sucesivos. Los huevos son muy resistentes a condiciones ambientales y pueden dejar infección durante años sobre pastos e instalaciones (pesebreras). Debido a la longevidad de huevos infectantes, el objeto de control es prevenir cualquier contaminación ambiental con P.equorum. 22 En caballos adultos se recomienda utilizar Ivermectina en cualquiera de sus presentaciones (EQVALAN ) a dosis terapéutica de 0.2mg/kg vía oral. En las primeras desparasitaciones de los potrillos, se recomienda utilizar productos que no contengan Ivermectina en su composición ya que es tal la efectividad de este compuesto, que elimina en un 100 % algunos grupos de endoparásitos, disminuyendo la posibilidad de que el sistema inmune del potrillo se ponga en contacto con los parásitos, lo que podría generar una tardía o baja defensa inmunitaria del equino PRADA, G., (2004). Parasitismo en Equinos. En: Consensus Vol. 18 p KOUDELA. B., BODECEK., S (2006). Effects of low and high Temperaturas on viability of Parascaris equorum eggs suspended in wáter. En: Veterinary Parasitology Vol. 142 p SOLIS, J. P., (2007). Parásitos Internos y su importancia en la salud equina. En: Medicina de Equinos U. de Chile. 18

42 Figura 3. Ciclo de Vida de los Áscaris Adultos cavidad intestinal (10ª-16 semana) Cavidad intestinal Huevo Muda a L-V Muda a L-II y L-III (4ª semana) en medio ambiente L-IV en faringe (Deglución) L-II en Luz intestinal L-IV en sistema Bronquial y tráquea (Expectoración) L-IV alvéolos y bronquios Pulmonares Pulmón Mudas a L-III y L-IV (7-14 día) Sistema portal Hígado (48 horas) Fuente: M. Cordero del Campillo y Rojo Parasitología Veterinaria. Editorial McGraw- Hill. Madrid

43 2.4 CÉSTODOS. Los parásitos pertenecientes a este grupo son: Anoplocephala perfoliata, Anoplocephala magna, Paranoplocephala mamillana y Moniezia pallida. Los caballos son los huéspedes definitivos. Los Céstodos tienen un ciclo de vida indirecto. El huésped definitivo es el equino y su huésped intermediario es un acaro oribatide, los cuales son comunes para los bovinos y equinos. Los proglótidos maduros, después de la fertilización se tornan grávidos y son liberados de la extremidad posterior del parasito y excretados en las heces de los animales infectados. A la desintegración de los proglótidos, los huevos conteniendo un embrión infectante se tornan disponibles en el ambiente y son ingeridos por un acaro oribatídeo común en los pastizales. En el ácaro, el embrión se desarrolla hasta una forma larvaria cisticercoide. La infección del caballo ocurre cuando ingiere el acaro oribatídeo. Cuando este acaro es digerido, las larvas cisticercoides son liberadas en el tracto digestivo del equino y se desarrollan en parásitos adultos en el intestino. El periodo necesario para el reinicio de un nuevo ciclo es de dos meses. 24 (Figura 4). En España, un estudio realizado entre Noviembre de 2001 a Mayo de La Anoplocephala perfoliata se detecto en un 24% de los animales y la Anoplocephala magna en un 18%. La carga individual de tenias se contó desde 1 hasta 491 para el A. perfoliata y de 1 a 64 para el A.magna. Las cargas bajas de tenias (menos de 30 Céstodos) predominaron perceptiblemente (p 0.01) en todas las estaciones para ambas especies PRADA, G., (2004). Parasitismo en Equinos. En: Consensus Vol. 18 p ARANZAZU, Meana. (2005). Estudios Epidemiológicos de Céstodos en Equinos de España Central: Patrón de la infección y dinámica de la población. En: Veterinary Parasitology. Vol., 130., p

44 La patogenia es dependiente del número de parásitos de la luz intestinal, lo cual en los últimos años se ha observado, al parecer por la eliminación de otros grupos de parásitos y el no ataque a este patógeno por la mayoría de fármacos antiparasitarios usados en equinos. Las lesiones a las que pueden llevar incluyen: oclusiones intestinales por hematomas submucosos, perforaciones del ciego, invaginaciones intestinales, ileocecales, cecocecales y cecocólicas y torsiones intestinales del ciego. El ciclo de vida se muestra en la Figura 4. El tratamiento para las tenias en la actualidad se puede realizar con el uso de Ivermectina + praziquantel; Se recomienda una única administración de 200µg de Ivermectina y 1.5 mg de Praziquantel por kg de peso. (EQUIMAX ), contra todos los tipos de tenia. 26 Anaplocephala perfoliata. Es el cestodo más común en equinos en todo el mundo para su tratamiento son efectivos productos como niclosamida, pamoato de pirantel, El pamoato de pirantel suministrado en una sola dosis por vía oral al doble de la dosis farmacológica (13.2 mg/kg peso vivo), ha demostrado una eficacia del 93% en el control de los principales Céstodos que parasitan a los equinos. Incluso, se ha demostrado una efectividad del medicamento en el control de estos parásitos entre un 58 y 100%, cuando se suministra en las dosis indicadas para el tratamiento de nemátodos (6.6 mg/kg de peso vivo), (diclorofeno y praziquantel (98-100% de eficacia). 27 En un estudio se demostró que pamoato de pirantel pasta a dosis terapéutica de 6.6mg/kg y/o a dosis única de 13.2mg/kg vía oral obtuvo una eficacia del 95.5% en caballos naturalmente infectados con A. perfoliata LYONS, E.T. y Otros (2004). Especies de Tenias en Caballos. En: Consensus Vol. 18 p PRADA, G., (2004). Parasitismo en Equinos. En: Consensus Vol. 18 p CRAIG. R., y Col, (2006). Dose-confirmation studies of the cestodial activity of pyrantel pamoate paste in horse. En: Veterinary Parasitology Vol. 138 p

45 Figura 4. Ciclo de Vida de los Céstodos Adultos en luz Intestinal del équido (2 4 meses) Huevos y proglotis En heces Ingestión EQUINO Cisticercoide en La Luz intestinal FUERA DEL EQUINO Libre en intestino Cavidad celómica Cisticercoide (2-6 meses) Fuente: M. Cordero del Campillo y Rojo Parasitología Veterinaria. Editorial McGraw-Hill. Madrid

46 3. DIAGNÓSTICO PARASITOLÓGICO. En el diagnóstico de laboratorio y de campo se pueden utilizar gran diversidad de métodos y modificaciones individuales; la estandarización de las técnicas de laboratorio veterinario para el diagnóstico parasitológico, se toman como una guía para quienes eligen cualquiera de ellas, tales como: recuento de huevos/larvas, recuento de vermes, recuento de larvas en el pasto, etc. Es cómodo para la mayoría de unidades de enseñanza e investigación, aplicar sus propios protocolos y procedimientos ya que todas cumplen un objetivo específico. 3.1 MÉTODOS DIAGNÓSTICOS. TÉCNICA DE MAC MASTER MODIFICADA. Se basa en la mezcla de 45ml de una solución saturada de cloruro de sodio (360gr/ litro de agua) con 3 gramos de materia fecal. Macerando luego la muestra, para acto seguido llenar con la solución la cámara de recuento de huevos (cámara de Mc Master), esta debe dejarse en reposo 2 minutos para luego hacer un conteo de huevos en ambas secciones con 100 o 250 aumentos. El número de huevos encontrados se multiplica por 50 para obtener el número de huevos por gramo de materia fecal. (Hpg). Esta técnica permite diagnosticar la mayor parte de parásitos que eliminan huevos por materia fecal a excepción de Céstodos y trematodos PRADA, G., (2004). Parasitismo en Equinos. En: Consensus Vol. 18 p. 7 23

47 TÉCNICA DE SEDIMENTACIÓN-FLOTACION. a. En esta prueba deben mezclarse 40gr de materia fecal con 10 ml de agua corriente, los cuales se reparten en 2 tubos de ensayo de aproximadamente 15ml, para centrifugarlos a 1200 r.p.m por 10 minutos. Se sacan los tubos de la centrifuga y se dejan reposar por 1 hora. b. Se llenan los tubos hasta formar un menisco convexo con la solución sobresaturada en sucros, colocando una lámina cubre objeto. La lámina se retira a los 5 minutos. Se coloca sobre una lamina portaobjeto y se mira al microscopio con objetivo 4x y 10x. Esta técnica permite diagnosticar e identificar los huevos de Céstodos que afectan al equino, lo cual no es posible con ninguna de las demás técnicas de diagnostico parasitológico. DISPOSITIVO DE BAERMAN. Esta técnica consiste en envolver 10gr de materia fecal en una gasa a modo de bolsa, la cual se coloca dentro del colador plástico y este dentro de un embudo, el cual esta sellado en su parte interior por una manguera de goma obliterada por una pinza. El embudo se llena con agua corriente hasta que cubra la muestra de materia fecal, dejándola así por un lapso de 24 hrs. Transcurrido dicho tiempo se abre la pinza, recolectando unos 10 ml de sedimento en un tubo de ensayo, el cual es centrifugado a 1500 r.p.m, durante 2 minutos, posteriormente eliminamos el sobrenadante y colocamos una gota de sedimento sobre una lamina portaobjeto para observar al microscopio las larvas. 24

48 Esta técnica permite diagnosticar parásitos que eliminan larvas por la materia fecal, específicamente el Dictyocaulus arnfieldi. 30 PRUEBA DEL CELOFÁN. Esta prueba consiste en aplicar una cinta de celofán sobre el área que rodea al ano, la cual es retirada y colocada sobre una lamina portaobjeto, para su observación en el microscopio. La técnica permite diagnosticar parásitos como el Oxyuris equi Ídem. 31 ídem. 25

49 4. MATERIALES Y MÉTODOS LOCALIZACIÓN El estudio se realizó en cuatro zonas ubicadas dentro de la Sabana de Bogotá. (Figura 5). Figura 5. Mapa de Localización Z.1 Z.2 Z.3 Z.4 Fuente: Instituto Agustín Codazzi 26

50 4.2 POBLACIÓN Y MUESTRA Se tomaron muestras de 180 animales, pertenecientes a 9 predios de los cuatro Municipios ubicados en la Sabana de Bogotá, cada predio con 5 animales, escogidos aleatoriamente. Se visitaron los predios una vez al mes; al estar en cada predio, se ubicaron los animales en el potrero correspondiente; recorriendo éste en su totalidad con el fin recolectar las muestras lo más frescas posible; estas muestras se recogieron directamente del potrero y fueron llevadas al laboratorio para su procesamiento. (Véase métodos y procedimiento). Los animales a los que se les tomo el muestreo tenían las mismas condiciones de manejo y alimentación. Los animales se encontraban en pastoreo permanente, en trabajo continuo y con un programa sanitario (desparasitación) no fijo y distribuidos de la siguiente manera: Tabla 2. Fincas Zipaquirá y Cajicá. FINCA ANIMALES El Gavilán 5 La Fraguita 5 Manata 5 Manga Cobos 5 El Mercadillo 5 Río 5 Cogua 5 Vecinar 5 San Fernando 5 27