PLAGAS INVERTEBRADAS

UNIVERSIDAD DE EL SALVADOR FACULTAD DE CIENCIAS AGRONOMICAS UNIDAD DE POSGRADO DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS Ing. Agr. M.Sc. José Miguel Sermeño Ing. Agr. José Cristóbal Escobar Ing. Agr. M.Sc. Andrés Wilfredo Rivas Ciudad Universitaria, Mayo de 2004

UNIVERSIDAD DE EL SALVADOR FACULTAD DE CIENCIAS AGRONOMICAS UNIDAD DE POSGRADO DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS Manual técnico: Ing. Agr. M.Sc. José Miguel Sermeño Ing. Agr. José Cristóbal Escobar Ing. Agr. M.Sc. Andrés Wilfredo Rivas Ciudad Universitaria, mayo de 2004

INDICE INTRODUCCION... 1 OVIPOSICION Y ESTRATEGIAS DE LOS INSECTOS... 2 MODOS DE POSTURA DE LOS INSECTOS... 2 CARACTERISTICAS DE LOS HUEVOS DE LOS INSECTOS... 3 REPRODUCCIÓN Y DESARROLLO DE LOS INSECTOS... 4 FORMAS DE TRANSFERENCIAS DE ESPERMATOZOIDES DE LOS ISNECTOS... 4 OVIPOSICION DE LOS INSECTOS... 5 LUGARES DONDE LOS INSECTOS OVIPOSITAN... 5 HUEVO DE LOS INSECTOS... 5 DESARROLLO EMBRIONICO DE LOS INSECTOS... 6 FORMAS DE NACIMIENTO O ECLOSION DEL EMBRIÓN DE LOS INSECTOS... 6 DESARROLLO POST-EMBRIONARIO DE LOS INSECTOS... 6 PROCESO DE LA MUDA DE LOS INSECTOS... 7 TIPOS DE METAMORFOSIS DE LOS INSECTOS... 7 TIPOS DE LARVAS DE LOS INSECTOS QUE SUFREN METAMORFOSIS COMPLETA.... 11 CARACTERIZACION DE FORMAS INMADURAS DE INSECTOS... 15 INFLUENCIA DE LOS FACTORES ABIOTICOS EN LA ALIMENTACION DE INSECTOS INMADUROS... 17 EFICIENCIA EN LA UTILIZACIÓN DEL ALIMENTO POR LARVAS DE COLEOPTEROS CLETROFAGOS... 18 EFICIENCIA EN LA UTILIZACIÓN DEL ALIMENTO POR LARVAS DE COLEOPTEROS SAPROXILOFAGOS... 18 EFICIENCIA EN LA UTILIZACION DEL ALIMENTO POR LARVAS ZOOFAGAS... 19 EFICIENCIA EN LA UTILIZACIÓN DEL ALIMENTO EN FORMA INMADURAS DE INSECTOS PARASITOS... 19 TIPOS DE PUPAS DE LOS INSECTOS... 20 CARACTERISTICAS PARA IDENTIFICAR LOS INSECTOS ADULTOS DEL ORDEN THYSANOPTERA... 22 CARACTERISTICAS PARA IDENTIFICAR LOS INSECTOS ADULTOS DEL ORDEN ISOPTERA... 23

CARACTERISTICAS PARA IDENTIFICAR LOS INSECTOS ADULTOS DEL ORDEN DERMAPTERA... 24 CARACTERISTICAS PARA IDENTIFICAR LOS INSECTOS ADULTOS DEL ORDEN ORTHOPTERA... 26 CARACTERISTICAS PARA IDENTIFICAR LOS INSECTOS ADULTOS DEL ORDEN COLEOPTERA... 30 CARACTERISTICAS PARA IDENTIFICAR LOS INSECTOS ADULTOS DEL ORDEN NEUROPTERA... 40 NUMERO DE INSECTOS EN EL PLANETA... 44 QUE ES PLAGA... 47 ALGUNAS CAUSAS DEL APARECIMIENTO DE LAS PLAGAS... 48 CLASIFICACION DE LAS PLAGAS... 48 NIVELES DE PLAGA... 49 DAÑOS Y PERDIDAS CAUSADAS POR LAS PLAGAS A LOS CULTIVOS ALIMENTICIOS... 51 COMPOSICIÓN DEL ESPECTRO DE PLAGAS SEGÚN EL TIPO DE DAÑO POR CULTIVO AGRÍCOLA (SEGÚN PUBLICACIONES DE KORYTKOWSKI, CH., 1995). 55 ALGUNAS ENFERMEDADES INFECCIOSAS TRANSMITIDAS POR PICADURAS O MORDEDURAS DE INVERTEBRADOS... 56 ARTROPODOS ASOCIADOS CON ENFERMEDADES VEGETALES INFECCIOSAS.. 57 INSECTOS DEL ORDEN HOMOPTERA... 60 CARACTERISTICAS PARA IDENTIFICAR LOS INSECTOS ADULTOS DEL ORDEN HOMOPTERA (Sub- Orden Sternorrhyncha)... 64 PLAGAS DE LOS FRUTALES... 79 PLAGAS RIZOFAGAS... 82 PLAGAS DE LAS LEGUMINOSAS... 85 PLAGAS DE LAS HORTALIZAS... 87 PLAGAS DE AGROINDUSTRIALES... 89 PLAGAS DE PRODUCTOS ALMACENADOS... 92 PLAGAS DE LAS GRAMÍNEAS... 94 DESCRIPCION DE LOS GENEROS FITOPARASITOS DE NEMATODOS ENCONTRADOS EN LAS PLANTACIONES DE CITRICOS DE EL SALVADOR... 97 BIBLIOGRAFIA... 111

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 INTRODUCCION Los invertebrados (insectos, moluscos, ácaros y nemátodos), constituyen uno de los grupos más numerosos en la naturaleza y son el segundo grupo con habilidades parasíticas en diversos cultivos, después de las malezas. El daño causado por invertebrados plagas a los rendimientos de muchos cultivos alimenticios, de fibras y forestales, es muy grande y se acentúa más en los trópicos donde la diversidad de este grupo es mayor. Dentro de los invertebrados tiene una gran importancia el estudio de los insectos, ya que prácticamente son omnipresentes en muchos habitats. Los insectos son un grupo muy diverso y peculiar, que presenta grupos con características muy conspicuas, lo cual permite agruparlos en categorías taxonómicas. La taxonomía se ocupa tanto de estadios inmaduros como de adultos. Los insectos pueden mostrar asociaciones complejas con diversos organismos como virus y fitoplasmas entre otros, lo que potencia los problemas ocasionados por este grupo como plagas. Cada grupo taxonómico presenta especimenes con capacidad de convertirse en plaga bajo condiciones particulares, esto hace importante su conocimiento en diferentes estadios para tomar las medidas de manejo apropiadas. Acaros, moluscos y nemátodos, son un grupo menos numeroso pero con representantes plaga que pueden ocasionar pérdidas considerables cuando incrementan sus poblaciones, pero también por la capacidad de asociarse a otros organismos y complicar aún más las interacciones plaga-hospedero. Este manual comprende una descripción taxonómica de diversos grupos de invertebrados y un anexo del manejo químico de ellos. 1

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Ubicación de los huevos. OVIPOSICION Y ESTRATEGIAS DE LOS INSECTOS Con base a los hábitos de las forma inmaduras, los huevos de los insectos pueden ser depositados en: 1. Suelo. 2. Agua. 3. Plantas. 4. Animales. 1. Suelo. De acuerdo a su ubicación, los huevos pueden ser: 1.a) Huevos epigeos o epigaeicos: Cuando son depositados sobre la superficie del suelo. 1.b) Huevos Hipogeos o hipogaeicos. Cuando son depositados dentro o por debajo de la superficie del suelo. 2. Agua. La mayoría de las especies con formas inmaduras acuáticas depositan sus huevos en forma libre sobre la superficie de diversas fuentes de agua. Algunas pocas formas son mas especializadas, depositando sus huevos en o sobre plantas acuáticas. Ej. Orden Odonata: Familia Zygoptera: Huevos dentro del tejido de la planta. 3. Plantas. De acuerdo a la ubicación de los huevos, ellos pueden ser: 3.a) Huevos epifitos ó ectofiticos: Cuando son depositados libremente o adheridos a la superficie de algún órgano de la planta. 3.b) Huevos hipofitos o endofiticos: Cuando son depositados dentro de los tejidos de la planta. 3.c) Huevos fitocripticos: Estos son generalmente de aspecto semejante a semillas, polen u otros órganos de la planta, lo cual les permite un cierto grado de protección hacia depredadores y parasitoides. 4. Animales. De acuerdo al grupo de animales que sirven de sustención a los huevos, pueden existir dos grandes grupos. a) Grupo de los Epizooticos. Es característico de especies parasíticas sobre animales superiores (vertebrados). Aquí los huevos son depositados sobre o adheridos a pelos, plumas, piel, heridas, sobre la mucosa nasal. En este grupo existen especies foresicas: Depositan sus huevos sobre insectos hematofagos, logrando de esta forma alcanzar indirectamente a animales superiores. b) Grupo de los parasitoides. Consideradas aquí a todas las formas proteleanas y cuyos estados inmaduros se desarrollan en el interior de tejidos de otros insectos o Arthopoda. De acuerdo a la ubicación o forma característica de postura, los huevos pueden ser: a) Epidermales: Cuando son depositados sobre la cutícula de los hospederos b) Hipodermales: Cuando son depositados en el interior del cuerpo o hemocele del hospedero c) Microtípicos: Son huevos usualmente epifitos y que son ingeridos por el hospedero. d) Macrotípicos: Son epífitos, pero en los cuales el embrión emerge antes de ser ingeridos o puede desplazarse hasta el hospedero. MODOS DE POSTURA DE LOS INSECTOS Los modos de postura son diversos, aunque usualmente son depositados aislados, es decir uno por uno y casi siempre en forma independiente, otras veces muchos huevos aislados son depositados al mismo tiempo, ya se dejándolos caer o expulsándolos mediante mecanismos especializados. Algunos otros modos de postura son: 2

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Grupos: En este caso varios (usualmente 8-10) huevos son depositados en cada acto de oviposición. Masas: Consisten en grupos de huevos de número variable que son depositados desordenadamente sobre la superficie de oviposición, frecuentemente al exterior y cubiertos con algún tipo de protección. Paquetes: Consiste en grupos de huevos depositados es una cubierta a modo de bolsa, generalmente dentro del suelo o tejidos orgánicos. Ooplacas: Son series de huevos, generalmente ordenadas ya sea en hileras, helicoides o círculos, en estas series los huevos son adheridos entre sí mediante sustancias emanadas por la hembra. Oothecas típicas: son series o hileras de huevos depositadas dentro de cubiertas completamente cerradas. Pseudo-oothecas: Son series o hileras de huevos depositados dentro de cubiertas parcialmente cerradas. CARACTERISTICAS DE LOS HUEVOS DE LOS INSECTOS 1. Color: La gran mayoría de las especies conocidas presentan huevos de color blanco, aunque otras tonalidades son frecuentes, especialmente los colores rosado, rojizo o negruzco. 2. Tamaño: Usualmente los huevos guardan una proporción con relación al tamaño del insecto. En algunos casos dicha regla no se cumple Ej. Hembras del genero Corydalus sp depositan huevos muy pequeños en relación con su gran tamaño. 3. Forma: la forma de los huevos es muy variable, algunas de las forma mas comunes son: 3.1 Oval o esférica: Es la forma más común para la mayoría de Lepidoptera y Coleoptera y en algunas especies de Hymenoptera. Se presentan las siguientes variantes. 3.1.1 Oval alargado u oblonga: El diámetro mayor es aproximadamente dos veces el diámetro menor. 3.1.2 Ovoide: con una proporción aproximada de 1.5:1.0 3.1.3 Hemisférica 3.1.4 Aplanada 3.1.5 Cónica. 3.2 Alargada: Es una delas formas mas frecuntes en Diptera, Homoptera, y la mayoría de los Orthoptera. Se presentan las siguientes variantes: 3.2.1 Ahusada. 3.2.2 Fusiforme. 3.3 Pedunculados: provistos de un apéndice filamentoso de tamaño variable y que generalmente sirve de inserción al huevo con la superficie de sustentación. Esta forma se presente en la mayoría de Neuroptera, en algunos Diptera, Hymenoptera parasíticos y algunos Coleoptera acuáticos. Se presentan las siguientes variantes: 3.3.1 Bi-pedunculados: con pedúnculos bipolares. Ej. Son característicos de algunos Drosophilidae (Diptera). 3.3.2 Multi-pedúnculados: con pedúnculos multipolares. Ej. son frecuentes en el género Nepa sp (Hemiptera). 3

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 3.4 Oval bi-planal: Son huevos fundamentalmente ovoides constituidos por dos pares de superficies planas opuestas. Ej.: Algunos Hemiptera y Orthoptera (Familia Phasmidae). 3.5 Gelatinoso amorfos: De aspecto irregular y usualmente transparentes Ej. algunos Lepidoptera y Plecoptera. 3.6 Formas especiales: De aspecto muy peculiar como en Homoptera de la Familias Cicadidae. Tipos de Reproducción: REPRODUCCIÓN Y DESARROLLO DE LOS INSECTOS 1. Oviparidad: Los insectos depositan huevos en vez de depositar crías vivas, las cuales nacen después de cierto tiempo de haber sido depositados: Ej. Coleoptera, Lepidoptera, Hemiptera, Homoptera. 2. Viviparidad: Los insectos expulsan crías vivas en lugar de huevos Ej. Ciertos pulgones o áfidos los huevos se desarrollan dentro de los ovarios y al final expulsan ninfas vivas; Mosca Tsé Tsé (género Glossinasp.) que expulsan larvas maduras que al efectuarse la expulsión pasan al estado de pupa. 3. Partenogénesis: Proceso en el cual los huevos se desarrollan sin ser fertilizados. Tipos de partenogénesis. 3.a) Arrenotokia: Se desarrollan únicamente machos de huevos no fertilizados Ej. Abeja de colmena (miel). 3.b) Telitokia: Se desarrollan únicamente hembras de huevos no fertilizados. Ej. Escarabajo Fam. Curculionidae. 3.c) Deuterotokia: Se desarrollan hembras y machos de huevos no fertilizados. Ej. Algunas especies de pulgones áfidos. 4. Hermafroditismo: Cuando los dos sexos están presentes en el mismo insecto. Ej. Homoptera Fam. Margarodidae. Se conoce como escama blanca algodonosa (Iceria purchasi). 5. Paedogenesis: Madurez reproductiva precoz que presentan algunos insectos en donde las larvas o las pupas depositan huevos o larvas, como por ejemplo, Diptera mosca Muastor sp., Coleoptera, como el genero Micromalthus debilis. 6. Poliembrionia: Cuando se desarrollan dos ó mas embriones de un solo huevo, como por ejemplo, se presenta en algunos insectos parasitoides del Orden Hymenoptera y dentro esta familias tenemos: Braconidae: Macrocentrus sp con 16-24 embriones/huevo. Platygasteridae: Platygaster sp con 2-18 embriones/ huevo. Aphelopus sp con 2-18 embriones/huevo. Encyrtidae: con 1500 embriones/huevo. FORMAS DE TRANSFERENCIAS DE ESPERMATOZOIDES DE LOS ISNECTOS 1. Introduciendo el macho su aedeagus en una estructura del aparato reproductor femenino llamado espermateca, como por ejemplo las chinches. 4

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 2. Descargando el espermatozoide en una estructura llamada bursa copulatrix de la cual posteriormente el espermatozoide pasa a la espermateca de la hembra. 3. Depositando el espermatozoide dentro de un saco membranoso llamado espermatoforo, el cual es colocado en el sustrato, por lo tanto llega la hembra y se lo coloca en la vagina o puede devorarlo. OVIPOSICION DE LOS INSECTOS Los insectos pueden ovipositar en forma individual o en forma de masa o grupo. El número de huevos varia desde uno hasta varios miles en varios insectos sociales (abejas reinas); pero el promedio se encuentra entre 50 a varios centenares. Los huevos están protegidos por una cáscara dura en la cual se pueden encontrar: a) Espinas. b) Arrugas. c) Estrías o surcos. d) Estructuras flotantes laterales, etc. LUGARES DONDE LOS INSECTOS OVIPOSITAN Lo hacen en lugares donde el huevo o los inmaduros encuentran condiciones adecuadas para su desarrollo, por lo que: 1. Algunos insectos depositan sus huevos en masas, protegidas por una cápsula llamada Ooteca. 2. Otros insectos depositan sus huevos, debajo de la superficie del suelo Ej. Saltamontes, chicotes. 3. Otros insectos depositan sus huevos en masa, sobre el follaje de las plantas y los protegen con escamas (mariposa): Ej. Gusano cogollero Spodoptera frugiperda. 4. En los frutos. Ej. Mosca de cítricos Anastrepha. Mosca dela papaya Toxotripana curvicauda. 5. Otros lo hacen dentro de los botones florales. Ej.Picudo del algodón Anthonomus grandis, Picudo del chile Anthonomus eugenii. 6. En el agua pegados en algún objeto. Ej. Mosca de mayo. Libélula. Zancudo. 7. También los huevos pueden ser depositados sobre o dentro del hospedero. Ej. Parasitoides como Encarsia sp., Eretmocerus sp. HUEVO DE LOS INSECTOS E huevo de un insecto es una célula de simetría bilateral, formado de: a) Cáscara o corión. 5

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 b) Membrana vitelina: es la membrana más delgada y delicada. Ambas membranas del huevo de los insectos (a y b) presentan poros minúsculos que reciben el nombre de micrópilo y son los que permiten la entrada del espermatozoide, para que se lleve acabo la fertilización del huevo. c) Núcleo. d) Yema: Rodea al núcleo. e) Citoplasma cortical o periplasma: Rodea a la yema. DESARROLLO EMBRIONICO DE LOS INSECTOS Media vez el huevo es depositado, comienza el desarrollo embriónico de la siguiente manera: 1. El núcleo comienza a dividirse en núcleos hijos. 2. Los núcleos se dirigen a la periferie del huevo. 3. El citoplasma cortical comienza a formar células nucleadas. A esta banda de células nucleadas en la periferie del huevo se le llama blastodermo y a esté estado del huevo se le llama estado de blástula. Las células del blastodermo en la parte ventral del huevo se engruesan formando lo que se llama placa ventral. Por lo tanto el blastodermo se introduce o invagina por medio de un proceso llamado gastrulación. 4. El ectodermo: Es la primera capa embrionaria que se forma cuando se unen los extremos o bordes de la placa ventral que se invagino. 5. El mesodermo: Es la segunda capa embrionaria que se forma sobre el ectodermo y al conjunto de células que se forman sobre el mesodermo formaran el endodermo. Por lo tanto estas capas son las que darán origen a las diferentes estructuras que son los órganos y tejidos de los insectos. El ectodermo da origen a la formación del sistema nervioso, la formación de la pared del cuerpo, origina el sistema traqueal, formación del intestino anterior y posterior, tubos de malpighi. El mesodermo: da origen al sistema muscular, gónadas, células de la sangre (hemolinfa), grasa del cuerpo. El endodermo da origen a la formación del intestino medio. Cuando el embrión se ha formado completamente se da ó realiza lo que se llama nacimiento ó eclosión del huevo. FORMAS DE NACIMIENTO O ECLOSION DEL EMBRIÓN DE LOS INSECTOS 1. Cortando el chorión con sus mandíbulas dejando libre un orificio por medio del cual sale al exterior. 2. Levantando una tapa en forma de tapadera (operculum) que posee el huevo y que le permite salir. Ej. huevos en forma de barril (chinches). 3. Rompiendo la cáscara (chorión) por medio de un proceso externo que posee el insecto, en la parte dorsal de la cabeza el cual puede tener la forma de un cuchillo, sierra o aguja. 4. Rajando el cascarón del huevo a través de líneas débiles cuando el insecto retuerce su cuerpo y empuja dentro del huevo. Al desarrollo del insecto dentro del huevo se le llama desarrollo embrionario y cuando esté sale del huevo se le llama desarrollo post-embrionario. DESARROLLO POST-EMBRIONARIO DE LOS INSECTOS Los insectos desarrollan un exoesqueleto que para proteger al insecto es algo rígido o duro por lo que le ocasiona problemas para el crecimiento, por lo tanto estos presentan el proceso de muda o ecdisis. 6

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 ecdyces o muda: proceso de cambiar y formar un exoesqueleto. Exuvias: Pieles viejas que tienen la forma del insecto. Antes de que el insecto mude se forma una nueva cutícula que es secretada por las células epidermales y al mismo tiempo estas células secretan un fluido llamado fluido de la muda cuya función es separar la nueva cutícula de la vieja. Cuando se lleva acabo dicha diferenciación cuticular todos los productos de la digestión son absorbidos por la nueva cutícula, hasta que está queda bien formada y por lo tanto se desprenderá de ella. PROCESO DE LA MUDA DE LOS INSECTOS El insecto comienza su proceso de muda rajando líneas débiles que se encuentran en la línea media o parte media del torax. La forma en que se rompe es a través de una presión sanguínea que se realiza introduciendo una fuerza en el torax a través de contracciones musculares. Un insecto recién a realizado su muda es de color pálido y su cutícula es débil; pero en un lapso de 2 a 4 horas dependiendo del tipo de insecto, esta cutícula empieza a endurecerse y oscurecerse y en este período de tiempo el insecto absorbe aire para aumentar de tamaño. El buche juega un papel muy importante para que el insecto se expanda y alcance un nuevo tamaño (contiene aire). La mayoría de insectos mudan de 4 a 8 veces (libélulas) y otros pueden mudar hasta 28 veces (mosca de mayo) pero algunos insectos pueden mudar aun en estado adulto (pescadito de plata). Los insectos media vez alcanzan el estado adulto ya no mudan ni aumentan de tamaño ya que este proceso se desarrolla o verifica en estado inmaduro. Estadío: estado del insecto que ocurre entre cada muda. Por lo tanto el 1º estadío estaría entre el nacimiento y la primera muda larval o de ninfa. El 2º estadío estaría entre el 1º estadío y la 2º muda y el 3º estadío estaría entre el 2º estadío y la 3º muda. Estado: Es el conjunto de estadíos. En otras palabras, es uno de los períodos definidos y diferenciados en la metamorfosis de los insectos. Para que el insecto alcance su estado adulto luego del nacimiento se desarrolla el proceso de metamorfosis. Metamorfosis: Son cambios en forma que sufren los insectos durante su desarrollo post-embrionario. TIPOS DE METAMORFOSIS DE LOS INSECTOS A. Metamorfosis simple o incompleta. B. Metamorfosis completa. A- Metamorfosis Simple o Incompleta:. Característica de la metamorfosis simple. Las alas si existen en el adulto, se desarrollan externamente durante los estadíos inmaduros. No presentan un estado de reposo de inactividad antes de la última muda. Se reconocen 2 tipos de metamorfosis simple o incompleta: A.1. Metamorfosis gradual o desarrollo paurometabolo. A.2. Metamorfosis incompleta o desarrollo hemimetabolo A.1- Metamorfosis gradual. Característica dela metamorfosis gradual. 7

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Los estados jóvenes se le conoce con el nombre de ninfa y la forma general de las ninfas se parece a los adultos. El estado inmaduro es terrestres. Las ninfas y los adultos viven en el mismo lugar. Las ninfas gradualmente van desarrollando sus estructuras como por Ej. rudimentos alares, apéndices, genitales, ocelos, proporción del cuerpo. Estos insectos pasan por los estados biológicos de: Huevo, Ninfa y Adulto. Entre las ordenes de insectos tenemos: Orthoptera, Homoptera, Hemiptera, Dermaptera, Isoptera, Mallophaga, Anoplura. A.1 Metamorfosis Incompleta. Características de la metamorfosis incompleta. El estado inmadura es acuático. El estado inmaduro se le conoce con el nombre de náyade, que respiran por medio de agallas. Es estado joven (náyade) es bastante diferente al adulto. Estos insectos pasan por los estados biológicos: Huevo, Náyade (ninfa de las aguas) y adulto. Entre las ordenes de insectos tenemos: Orden Odonata: presentan las agallas en la parte posterior del abdomen. Orden Ephemeroptera: posee las agallas traqueales en la parte dorsal de los segmentos abdominales. Orden Plecoptera: presentan las agallas traqueales en el torax. B. Metamorfosis completa: Características de los insectos con Metamorfosis Completa. Si las alas existen en el insecto adulto, estas se desarrollan internamente, durante los estadíos inmaduros. Presentan un estado de reposo o de inactividad antes de la última muda. El estado inmaduro y el adulto son diferentes en forma, viven en lugares diferentes y tienen hábitos también diferentes. A los estadíos inmaduros se les llama larvas (técnicamente). Las cuales no tienen ojos compuestos y pueden o no tener patas en el tórax. Algunas larvas presentan procesos externos en forma de patas en el abdomen, que se conocen como falsas patas o pseudopatas. La mayoría de larvas presentan aparato bucal masticador. Cuando las larvas completan su desarrollo, pasan a un estado biológico conocido como pupa o crisálida. Hipermetamorfosis: Tipo de metamorfosis completa en el cual las larvas son de diferente tipo. Ejemplo: 1º larva compodeiforme y posteriormete scarabaeiforme. Esta metamorfosis se da generalmente en insectos parásitos Ej. - Orden Coleoptera; Fam. Meloidae. - Orden Neuroptera; Fam. Mantispidae que son parásitos de huevos de araña. - Orden Stresiptera. 8

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 CLASIFICACION MODERNA DE LOS TIPOS DE METAMORFOSIS HINTON (1963), basado principalmente en la interpretación del desarrollo alar y origen del estado pupal, propone la siguiente clasificación. 1. AMETABOLA -No hay modificaciones en la forma del estado inmaduro. - El inmaduro es idéntico al adulto. - Es característico de Ordenes mas primitivos, cuyos adultos carecen de alas. A. AMETABOLA TIPICA B. ANAMETABOLA -Hay un incremento del número de segmentos abdominales del estado inmaduro. ej. protura. 2. HETEROMETABOLA (GRADUAL O IMCOMPLETA) -Las formas inmaduras exopterygotas. -Hay un desarrollo progresivo y visible de las alas, o al menos provienen de este tipo cuando las formas adultas han perdido las alas en su tendencia evolutiva. A- PAUROMETABOLA -La forma inmadura presenta un desarrollo progresivo de las alas. -Los inmaduros son llamados ninfas. - Tanto inmaduro como adultos tienen el mismo habito (terrestres) A.1. HIPOMETABOLA A.2. EPIMETABOLA B-HEMIMETABOLA O BATHMEDOMETABOLA C. NEOMETABOLA O REMETABOLA. 3. HOLOMETABOLA O COMPLETA - Las formas adultas son aladas. -Las formas adultas son apteras. -Usualmente con numerosas mudas y ciclo muy largo. -Los inmaduros son llamados niada. -Los inmaduros son de habitos acuáticos y los adultos de vida libre. -Condición intermedia entre los exopterygota y los endopterygota. -Los inmaduros con desarrollo endopterygota. -Dentro de este tipo se consideran a la hipermetamorfosis o heteromorfosis. CRIPTOMETABOLA: es un tipo de metamorfosis completa, considerada una condicion muy rara en insecto, donde el estado inmaduro se desarrolla completamente en el interior del cuerpo de la hembra. Control de la Metamorfosis. En los insectos la metamorfosis es controlada por tres hormonas: a) Hormona cerebral. c) Hormona ecdyzona. d) Hormona juvenil. Hormonas: Son sustancias introducidas en la sangre (hemolinfa) y que son transportadas a otras partes del cuerpo, en donde producen algún efecto en los procesos fisiológicos. Feromonas: Son sustancias químicas que son liberadas fuera del cuerpo y que son captadas por otros insectos de la misma especie- mensaje químico orgánico. El conjunto de glándulas y órganos que producen hormonas se les llama sistema endocrino; que es formado por las células neurosecretoras del cerebro. - Glándulas corpora cardíaca. - Glándula pro-torácica. - Glándula corpora allata. 9

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Como se produce el cambia de inmaduro a adulto. 1. Primeramente las células neurosecretoras inician la metamorfosis, produciendo la hormona cerebral. 2. Después, la hormona cerebral es liberada en la sangre (hemolinfa) y transportada hacia las glándulas protorácicas, que las estímula para que produzcan la ecdyzona que es la encargada de iniciar el crecimiento y desarrollo del insecto y además ocasiona la muda. 3. La glándula corpora allata produce la hormona juvenil que es la que estimula el desarrollo larval y retarda el desarrollo de características adultas. Si la hormona juvenil es inyectada en la hembra adulta: impide la producción de huevos. Macho adulto: impide la formación de glándulas accesorias. Insectos con metamorfosis completa: El cambio de estado inmaduro a adulto, ocurre en el estado de pupa a adulto, ya que en esté estado se interrumpe la producción de la hormona juvenil. Insectos con metamorfosis gradual: El cambio de estado inmaduro a adulto avanza en una forma lenta debido a una disminución gradual dela hormona juvenil. En insectos con metamorfosis completa, la metamorfosis va acompañada de un proceso llamado histolisis e histogénesis. Histolisis: Proceso en el cual las estructuras larvales son divididas en materiales que pueden ser utilizados en el desarrollo de estructuras adultas. Histogénesis: Desarrollo de estructuras adultas a partir de los productos de la histogénesis. Materiales utilizados en histogénesis. - Células del cuerpo - Células sanguíneas - Grasa del cuerpo - Músculos larvales. Estados biológicos de los insectos de Metamorfosis Completa. 1. Huevo 2. Larva: Es el 2º estado biológico de un insecto que sufre M. Completa. Nota: Ninfa es el 2º estadío biológico de un insecto que sufre M. incompleta. 3. Prepupa: Período en el cual en el insecto las alas se encuentran sobre el cuerpo, pero todavía están cubiertas por el último estadío larval. 4. Pupa. 5. Adulto: El insecto ha completado su desarrollo, ha alcanzado su madurez sexual y esta apto para copular y reproducirse. Ordenes de insectos con Metamorfosis Completa. Lepidoptera. Coleoptera. Hymenoptera. Diptera. Neuroptera. Stresiptera. Mecoptera. Siphonaptera. 10

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 TIPOS DE LARVAS DE LOS INSECTOS QUE SUFREN METAMORFOSIS COMPLETA. 1. Scarabaeiforme (melolonthoide). Su cuerpo es curvo en forma de C. Larva de color blanco. Presentan patas torácicas bien desarrolladas, pero carecen de falsas patas en el abdomen. Se presenta en insectos del orden coleoptera; a los adultos se les llaman comúnmente chicotes y a las larvas gallina ciega. 2. Carabiforme (Campodeiforme). Larva de cuerpo robusto. Mandíbulas proyectadas hacia delante (prognatas). Presenta patas torácicas bien desarrolladas y carece de falsas patas en el abdomen. Generalmente son de color oscuro. 3. Eruciforme: Cuerpo más o menos cilíndrico y presentan una cabeza bien desarrollada. Mandíbulas bien desarrolladas. Presentan patas torácicas y falsas patas en el abdomen. Nota: El número de falsas patas en el abdomen depende del tipo de insecto, como por ejemplo, el Orden Lepidoptera presentan menos falsas patas abdominales que las larvas del Orden Hymenoptera. 4. Vermiforme: Cabeza reducida. Son de color blanco. Carecen de patas torácicas y de falsas patas en el abdomen. Se presenta en insectos del orden Diptera. 5. Elateriforme: Cuerpo alargado y delgado. Son de color café claro brillante. Cuticula bastante endurecida. Patas torácicas pequeñas y carece de falsas patas abdominales. Son encuentran en insectos del Orden Coleoptera y comúnmente se les llama gusanos de alambre. 6. Cerambiciforme: Cuerpo alargado y bien anillado. Cabeza desarrollada y redondeada. Carecen de patas toracicas y de falsas patas en el abdomen. Se presentan en insectos del Orden Coleoptera. Son insectos barrenadores. 7. Curculioniforme: Cuerpo un poco curvado. Color blanco. Cabeza bastante desarrollada. Cuerpo anillado. Carecen de patas torácicas y de falsas patas en el abdomen. Se presenta en insectos del Orden Coleoptero. Los adultos son llamados comúnmente picudos. 11

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 SISTEMA DE CLASIFICACION MORFOLÓGICA DE LAS LARVAS DE LOS INSECTOS Tipo de Larva CAMPODEIFORME ERUCIFORME SCARABAEIFORME Cabeza Ommatidia Antenas Espirácul os (torax) PROGNATHA HIPOGNATHA HIPOGNATHA 6 a cada lado, o a veces reunidos formando ojos compuestos. 6 a cada lado y generalmente dispuestos en semi-circulo. Normalmente ausentes. Relativamente Largas. Filiformes ó Setiformes Muy cortas setiformes con 2 segm. Relativamente largas. Usualmente 4 5 segm. ( El basal generalmente carnoso) Protorax y Metatorax. Protorax Protorax Patas (torax) Usualmente largas, con 4 segm. Y 1-2 uñas. Cortas con 3 4 segm. Y 1 uña en forma de garra. Usualmente bien desarrolladas con 4 segm. Generalmente incrementando en tamaño hacia atrás, excepto fam, passalidae (patas meta-toracicas rudimentarias.) Segmento (abdomen) Pseudopatas Hábitos. 9 Ausentes Vida errante sobre la superficie del suelo o de organos de plantas Depredadoras. 10 3-6 segm. En lepidoptera y 2-8 en Hym. S.O. Symphita. 9-10 Icrement. En diámetro hacia atrás Ausente Vida mas sedentaria, usualmente sobre el follaje de plantas durante toda o al menos parte de su vida. Fitofagas. Vida confinada al interior del suelo o materia vegetal en descomposición. Fitofagas. Especialmente de raíces plantas, Xilofafas o Fitoprofagas. 12

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 VERMIFORME PROGNATHA, HIPOGNATHA 1-2 CADA LADO Frecuentemente ausente. Protorax (en algunos grupos. Usuamente ausentes (pseudopatas en protorax de fam. Ceratopogonida e Chironomidae, Simuliidae). Usualmente 9 cada uno pseudosegmentado Apodas o con pseudopatas de diverso tamaño (fam. Tabanidae, Rhagionidae) Vida confinada a medios nutritivos. Fitofagas: Carpofagas; Minadoras hoja, formadores de Agalla. Zoofagas: Parasitas Parasitoides Saprofagas Sarcofagas. PRINCIPALES VARIACIONES DE LA FORMA SCARABAEIFORME (= MELOLONTHOIDE) TIPO DE LARVA CUERPO CABEZA OMMATIDIA PATAS PRO-TORAX CRIPTOPODA Igual a la forma típica Torácicas pero con patas reducidas, (fam. Bruchidae, Mordellidae) CURCULIONIFORME Algunas veces la 1 2 a cada lado Ausentes región ventral delos segm. Torácico ligeramente abultada. CERAMBYCIFORME Deprimido Pequeña parcial o Generalmente Cortas, muy cortas, ó totalmente invaginada ausentes. ausentes unisegm. en el torax (Buprestidae) ó multiseg. (Cerambicidae y Cucujidae) ELATERIFORME Fuertemente Ausentes o Bien desarrollados y deprimido o cilíndrico de 4 segm. Fuertemente deprimida y mas o menos cuadrangular representados por 1-2 puntos oscuros. Mas ancho que el resto del cuerpo Usualmente tan largo como los otros 2 Segm. 13

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 PRINCIPALES VARIACIONES DE LAS LARVAS VERMIFORMES TIPO DE LARVA CABEZA APENDICES BUCALES OJOS TORAX ABDOMEN EUCEFALA Bien definida esclerosada, pro o hipognatha Masticadores mas desarrollado en culicidae y bibionidae Bien definidos en culicidae y chaoboridae, reducidos a 2 ommatidia en bibionidae o 1 en sciaridae. Bien definido Con órganos respiratorios ampliamente modificados usualmente en el último segm. Abdom. (culicidae, simuliidae, chaoboridae, dixiidae. BRACHYCEFALA = HEMICEFALA Mas o menos diferenciada pobremente esclerosada Mandibulas de tamaño variable y de movimiento horizontal Normalmente ausentes, a veces con 1 ommatidia (algunos stratiomyiidae) No bien definido usualmente el protorax definido por 1 par de espiráculos algunos con 1 par de setas largas (bombyllidae) Apodas o con Pseudopatas (tabanidae, rhagionidae) ultimo segm. Muy variable, con 4 cuernos (dolichopodidae) o apendices flaccidos ((rhagionidae), o mechones de setas (stratiomyiidae). ACEFALA 1º Segm. Del cuerpo es homologado a la cabeza ahusado hacia adelante Ganchos mandibulares de movimiento vertical Ausentes 1º Seg. (2º después de la cabeza) con 1 par de espiráculos frecuentemente ramificados (algunas veces muy reducidos o ausentes en ephydridae gasterophilidae, cuterebtidae, oestridae. Ultimo segm. Con 1 par de espiráculos dorsocaudales en Syrphidae y Sub-Fam. Eristalinae. El último segm. Muy largo a manera de cola. 14

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 CARACTERIZACION DE FORMAS INMADURAS DE INSECTOS Ordenes Tagmosis Cabeza Apéndices bucales Ojos Antenas Torax Abdomen Odonata Definida Prognatha Mandibulados Bien desarrollados Relativamente grandes Protorax desarrollado y un syntorax. Suborden Zygoptera: largo y delgado. Sub orden Anisoptera: Neuroptera Man o menos Definida Epheneroptera Definidos Prognatha Mandibulados Usualmente 2-10 ommata Prognatha o Hipognatha Mandibulados Bien desarrollados Orthoptera Definino Hipognatha mandibulados Bien desarrollaodos Isoptera Definida Prognatha Mandibulados Presentes o ausentes Thysanoptera Definida Hipognatha Raspadores chupadores Hemiptera definida Con región gular esclerosada Picadores - chupadores Bien desarrollados Bien desarrollados Normalmente largas y raras veces cortas Largas, setiforme Grandes o cortos Largas moniliformes Los 4 segmentos basales bien definidos A veces el 1ª segmento mas grueso Protorax grande en acuaticos Fuertemente deprimido Bien definido (pterothecas) Bien definido (4 pterothecas iguales o ausentes en costas) Bien definido (pronotum mas o menos rectantular) Bien definido (pterothecas bien definidas en 3º estadío) corto y deprimido. Agallas laterales en acuaticas, algunos con Pseudo-patas en el último segmento (Corydalidae) Cerci largos y con filamento caudal medio Cerci largos o cortos Cerci cortos y con 2 segmentos. Cerci muy reducidos o ausentes. Generalmente glándulas odoríparas 15

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Ordenes Tagmosis Cabeza Apéndices bucales Homoptera Evidente o no opistognatha Picadores - (Coccoidea y chupa dores Aleyrodoidea Coleoptera Variable, usualmente definida Pro ó Hipognatha Lepidoptera Definida Hipo ó Prognatha (minadores) Hymenoptera Muy variable Pro o Hipognatha Diptera Frecuentemente Pro ó poco evidente hipognatha Mandibulados Mandibulados. Labium representado por un organo llamado spinneret. Ojos Antenas Torax Abdomen Generalmente presentes 5-6 ommata debajo o detrás de antenas (frecuentemente ausentes). Usualmente 6 ommata (a veces ausentes) semicirculo. Usualmente setiformes o ausentes Normalmente bien desarrolladas Setiformes de 3 segmentos Segmentación variables (a veces con allotórax o prosoma) Bien definida (a veces no) Bien definido (en minadores no) Usualmente con Cerarii en diversas partes del cuerpo. Usualmente con espiráculos en 1-8 segmnento. Espiráculos en los 8 primeros segmentos. Pseudopatas en 3-6 segmento y un par de pygopodos siempre presentes; 10 segmentos (8 primeros con espiráculos) mandibulados Muy variable Muy variable Mandibulados (ganchos mandibulares) Usualmente ausentes (a veces presentes) Muy variables Segmentación poco definida Muy variable en forma y número de segmentos. 16

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 INFLUENCIA DE LOS FACTORES ABIOTICOS EN LA ALIMENTACION DE INSECTOS INMADUROS FACTOR ABIOTICO INSECTO T o TIEMPO DE ALIMENTACIÓN CONSUMO DE HOJA Temperatura Nugmia phaerrhoea (Lepidoptero) 28 o C 22.5. o C 17 o C Menor Mayor 80cm 2 50 cm 2 20 cm 2 TIEMPO SIN ALIMENTO To ALTA Trogodema 4 a 5 años Menor tiempo sin alimento Viento Spodoptera frugiperda Agua Homoptero y Hemiptero Con 100% H.R. muchas ninfas no se alimentaln ph Agriotes lineatus Se alimenta adecuadamente con un ph 4.2 5.2 17

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 EFICIENCIA EN LA UTILIZACIÓN DEL ALIMENTO POR LARVAS DE COLEOPTEROS CLETROFAGOS. LARVAS CONSUMO DE ALIMENTO EXCRETO CONVERSIÓN A ALIMENTO ASIMILABLE PESO ( PUPAS) S. oryzae < < 24.1% del total Alto Simbiontes intracelulares (microorganismos asociados) S. granarius 2.6 (>) 8.1 (>) 12.4% del total Bajo No EFICIENCIA EN LA UTILIZACIÓN DEL ALIMENTO POR LARVAS DE COLEOPTEROS SAPROXILOFAGOS NUTRIENTES DE LARVAS APARATO DIGESTIVO FUNCION DE SIMBIONTES Celulosa Enzimas celulolíticas Secretan celulosa Hemicelulosa Simbiontes (microorganismos asociados) Fijan nitrógeno Aportan vitaminas Forman parte de la dieta del insecto 18

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 EFICIENCIA EN LA UTILIZACION DEL ALIMENTO POR LARVAS ZOOFAGAS LARVAS INICIO DE DIGESTION CONTINUACIÓN DE DIGESTIÓN ENZIMA Pyrearinus termitilluminans Extraoral (regurgita sobre su presa, predigiriendo su alimento) Mesenteron (enzimas) B-glucosidasa ALIMENTACIÓN DE LARVA CARNE ENRIQUECIDA ACTIVIDAD MICROBIANA Thanatophilus truncatus (Col. Silphidae) Sobre la carne (agregación) Ecdisis Excrementos de la larva Capa de tierra Se facilita y aumenta. EFICIENCIA EN LA UTILIZACIÓN DEL ALIMENTO EN FORMA INMADURAS DE INSECTOS PARASITOS TIPO DE LARVA ALIMENTACIÓN (Nutrición) Sacciforme Mimariforme Teleoforme Absorben gran cantidad de alimentos a través de su cutícula Mandíblada Caudada mandibulada Fluidos internos del hospedero De larvas de su misma sp. ó de diferente especie (parasitismo múltiple). Caudada - mandibulada De células gigantes Caudada Posee un proceso caudal que absorbe nutrientes de la hemolinfa (primeros estadíos). Directamente del fluido interno del hospedero. 19

TIPOS DE PUPAS DE LOS INSECTOS 1. Obtecta: Los apéndices (alas y patas) están más o menos pegadas al cuerpo y cubiertas por un material protector llamado cocon. Se presenta en el Orden Lepidoptera. 2. Exareta: Los apéndices se encuentran libres y la pupa no esta protegida de ningún material, como por ejemplo el Orden Hymenoptera. Lo presentan la mayoría de insectos de metamorfosis completa a excepción del Orden Diptera y Lepidoptera. 3. Coarteta: Presenta los apéndices libres, pero todavía están protegidos por la última piel larval, endurecida llamada puparium. Se presentan en el Orden Diptera (moscas). Estos insectos para salir del puparium, lo hacen a través de una abertura circular. Y esta se realiza con una estructura en forma de vejiga llamada ptilinum, ubicado en la parte anterior de la cabeza arriba de la base de las antenas, por lo tanto después de esta actividad la vejiga vuelve a su estado normal. Pupa: presentan generalmente un color café oscuro sin brillo y generalmente se encuentran en el suelo. Crisálida: La pupa esta protegida por un material adornado con manchas brillantes (plateado, morado, dorado, etc). Pupa o crisálida: Es el estado en el cual el insecto no se mueve ni se alimenta, pero es donde ocurre una gran cantidad de procesos fisiológicos que permite que el insecto se convierta en adulto. Cocon: Es un material que protege a la pupa, el cual puede ser algo endurecido o algodonoso que es elaborado por la misma larva antes de pasar al estado de pupa. Un insecto en estado de pupa se puede encontrar: 1. Sobre, en ó a unos pocos centímetros debajo del suelo. 2. En el follaje de las plantas, sostenido con hilos que elabora el mismo insecto. 3. Colgado de las ramas tiernas delas plantas. 4. Colgado a través de un cremaster que es un proceso en forma de espina a través del cual la pupa cuelga de cabeza, lo que le ayuda a salir. 5. En el agua. En insectos cuyos estadíos inmaduros son acuáticos Ej. Orden Diptero. Algunas pupas (Orden Diptera) están protegidas por un material llamado puparium que se refiere a la última piel larval endurecida del insecto, durante la cual pasa su estado de pupa. El insecto al emerger de la pupa es de un color pálido, con alas cortas y un poco arrugadas; pero al cabo de unos minutos a pocas horas se endurecen y aparece su pigmentación que lo caracterizará. Formas como un insecto sale del cocon. 1- Utilizando un par de espinas grandes y fuertes ubicadas una a cada lado del tórax, en la base de las alas anteriores. 2- Debilitando un extremo del cocon por medio de un líquido que el insecto expulsa de la boca y por lo tanto con un poco de fuerza separa los hilos y el adulto logra salir. 3- Cuando la larva construye o elabora una división móvil que funciona como la tapadera de una caja, que al final el insecto adulto la levanta para escapar. 20

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 DE ACUERDO A SU ASPECTO EXTERNO Y CAPACIDAD DE MOVIMIENTO, SE PUEDEN IDENTIFICAR 3 TIPOS DE PUPAS. TIPO DE PUPA ASPECTO GENERAL CARACTERÍSTICAS IMPORTANTES EXARETA (LIBERA) OBTECTA (Momificada) COARTATA (ENCERRADA) -Pupa alargada y recurvada sobre si misma en la región ventral. - Todos los apendices y tagmas diferenciados -Pupas de aspecto mas o menos semejantes al tipo de exareta, pero usualmente no recurvada o raras veces contraída sobre si misma (coccinellidae). -Todos los apéndices están mas o menos pegados al cuerpo. -Pupas generalmente cilíndricas algunas veces deprimidas o de aspecto diverso. -Básicamente son pupas exaretas pero encerradas dentro de un puparium que corresponde al endurecimiento de pro-cuticula de ultimo estadio larval. Cabeza: inmóvil, aplanada ventralmente sobre el cuerpo apendices bucales, generalmente inmoviles (algunas veces las mandibulas esclerosadas y moviles). Torax: Los 3 segm. Diferenciados pronotum: usualmente aplanado formando el extremo anterior del cuerpo. Pterothecas: longitud variable y libres del cuerpo. Abdomen: con 8 9 segm. Con capacidad limitada de movimientos de contracción y retracción. último segm. Generalmente con cerci carnosos y uni-segmentados. Ordenes de insectos: Coleoptera, Strepsiptera, Neuroptera, Mecoptera, Trichoptera, Hymenoptera. Cabeza y Torax: Total mente inmóviles y no definidamente separados entres si. Pterothecas: Prolongadas en una longitud variable que puede abarcar hasta el 4º - 8º segm. Abdomonal y fusionadas al cuerpo por hemolinfa coagulada. Abdomen: Últimos segm. Moviles pudiendo desarrollar movimientos de contracción, retracción y algunas veces de rotación, generalmente provistas de ganchos caudales denominados cremaster. Ordenes de insectos: frecuentemente en lepidoptera, algunos coleoptera (solo en fam. Coccinellidae) y diptera (algunos orthorrhapha. No presentan diferenciación de tagmas o solo vestigios. Los ganchos mandibulares son retenidos en el interior del puparium. Espiráculos pro torácico y caudal son usualmente bien definidos. Son pupas totalmente inmoviles. Ordenes de insectos: La gran mayoría de diptera y algunos trichoptera. 21

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Diapausa: Cuando las actividades visibles del insecto se detienen y los procesos fisiológicos se reducen bastante en respuesta a condiciones ambientales adversas. Hibernación: Cuando el insecto se encuentra en temperatura bajas a la diapausa. Estibación: Estado de diapausa en zonas de elevadas temperaturas. Los estados biológicos en el que los insectos entran en diapausa: Huevos (se detienen el desarrollo). Larva (se detiene el desarrollo). Pupa (se detiene el desarrollo). Adulto (se impide el desarrollo de las gónadas). Factores que inducen a entrar en diapausa: 1. Fotoperíodo- duración de horas luz/día. 2. Temperatura. 3. Condiciones nutricionales desfavorables. 4. Falta de humedad del alimento. Sub-Orden: Terabrantia CARACTERISTICAS PARA IDENTIFICAR LOS INSECTOS ADULTOS DEL ORDEN THYSANOPTERA ALAS FLECO MEMBRANA ALAR Mucho más largo en el margen posterior que anterior del ala; relativamente ralo, corto y grueso. Con venación o al menos definida por hileras de setas. ANTENAS SEGMENTOS SENCILLUM 1. Fam. Aelothirpidae 9 Placodium largos y delgados en los segmentos 3-4 OVIPOSITOR DE HEMBRAS Con microtricha De valva Corto y mas o menos romo OVIPOSITOR DE HEMBRA Curvado hacia arriba ALAS Relativamente amplias, con ápice redondeado 2. Fam. Merothripidae 8 Placodium anchos solo en el ápice de lo Reducido curvado Con ápice agudo segmentos 3-4 hacia abajo 3. Fam. Heterothripide 9 Placodium muy pequeño y dispuestos Normal y curvado Con ápice agudo MACHO CON 10º TERGITO Aeolotrips fasciatus de hábitos depredadores. 22

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 alrededor de la porción pre apical de los segmentos 3-4 4- Fam. Thripidae 6-9 Conicum simple ó bifurcado. Segmento antenal 3-4 Sub orden: Tubulifera Sin ninguna evidencia de venación hacia abajo Normal y curvado hacia abajo ALAS FLECO MEMBRANA ALAS Muy largo y fino, aproximadamente igual Sin microtricha a lo largo de todo el borde del alar. Estrechas con ápice agudo OVIPOSITOR DE HEMBRA Tubular Thrips tabaci, Género Frankliniella SENCILLUM 1-Fam. Phlaeothripidae Conicum como en Thripidae Hábitos depredadores. CARACTERISTICAS PARA IDENTIFICAR LOS INSECTOS ADULTOS DEL ORDEN ISOPTERA FAMILIA TARSI ALA POSTERIOR FONTANELA OCELLI VENAS LONDITUDIN ALES FUERTES ESCAMA HUMERAL SOLDADOS Y OBRERAS CON EL LÓBULO ANTERIOR DEL PRONOTUN HABITOS 1. Fam. Mastotermitidae 5 segmetos Con lóbulo anal bien definido; venación practicamente completa Solo región australiana donde se ha reportado una sp. Los huevos son depositados en Ootrhecas. Sexos muy parecidos entre si ya que no hay hembras especialmente desarrolladas. Son los mas primitivos. 2. Fam. 4 Sin lóbulo Ausente en Ausente 3 ó más Igual en alas La mayoría spp. Africa y Asia. 23

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Hodotermitidae segmentos anal todas las castas en todas las castas 3- Fam. Kalotermitidae 4- Fam. Rhinotermitidae 5- Fam. Termitidae 4 segmentos 4 segmentos Sin lóbulos anal Presentes Solo 2 anteriores y posteriores De las alas anteriores es mas grande que la de las alas posterior De las alas anteriores mas larga que en las alas posteriores Sin lóbulo Presente Variables Solo 2 Igual en alas anteriores y posteriores Plano (excepto en Rhinotermes) Proyectado dorsalmente Individuos grandes y forman colonias pequeñas en madera o en el suelo (alim. Gramíneas) No presentan casta obrera, no forman termiteros viven madera húneda o seca pero nunca en el suelo. Principalmente tropical. Las spp son pequeñas y en su mayoría subterraneas son probablemente las más destructibles a nivel mundial. Reticulitermes Presenta casta de soldados nasuti. CARACTERISTICAS PARA IDENTIFICAR LOS INSECTOS ADULTOS DEL ORDEN DERMAPTERA ORDEN DERMAPTERA Sub. Orden: Hemimerina 1. Fam. Arixeniidae 2. Fam. Hemimeridae OJOS CERCI HABITOS- COMPORTAMIENTO Reducidos ó Carnosos y Ectoparásitos de Ausentes Pubescentes mamíferos OJOS CERCI PATAS COMPORTAMIENTO HABITOS Reducidos 1 segmento carnoso Relativamente delgadas. Ectoparásitos de Solo en la y coto. Siempre apteros. murciélagos. región indostana. Ausentes 1 Segmento Anchas y cortas. Ectoparásitos de ratas. Solamente de carnoso y largo. Afríca. 24

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Sub. Orden: Forficulina A-Super Familia: Forficuloidea 1-Fam. Forficulidae 2. Fam. Chelisochidae B- Superfamilia: Labiduroidea 1-Fam. Carcinophoridae 2. Fam. Labiduridae OJOS CERCI COMPORTAMIENTO Relativamente grandes o al menos bien definidos 2º SEGMENTO TARSAL Expandido de bajo dela base del 3º Ampliamente espatulado Comprimido Normal, cilíndrico y no expandido debajo del 3º SEGMENTO ANTENAL 4-5-6 En conjunto más cortos que el escapo En cojunto mas cortos que el escapo 3. Fam. Labiidae En conjunto más largos que el escapo Forcipados y endurecidos De vida libre Es probablemente la familia más grande e importante del orden que incluye las spp. mas altamente evoluciondas y algunas de ellas ampliamante distribuidas y muy dañinas. Forficula auricularia es casi cosmopolita. Doru lineare en nuestro medio esta bien distribuida. Caracterizadas por su cuerpo relativamente robusto, oscuro y frecuentemente con coloraciones metálicas. El género más ampliamente distribuido: Chelisoche morio, el cual es importante enemigo natural de plagas en caña de azúcar en algunos países del pacifico sur, especialmente en Hawai. MACHOS CON CERCI Derecho mas curvo que el izquierdo simétricos HABITOS Mayormente neotropicales, silvestres, se encuentran debajo de corteza de árboles Considerada la Fam. mas primitiva, comprende spp. grandes y usualmente apteras; ampliamente distribuidas y con algunas de las spp. más grandes conocidas hasta ahora en el orden, particularmente los géneros; Anisolabius sp y Titanolabis sp. Está Fam. es una de las más grandes y ampliamente distribuidas, particularmente en las regiones tropicales del mundo. El género más frecuente mencionado es Labia sp. 25

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 CARACTERISTICAS PARA IDENTIFICAR LOS INSECTOS ADULTOS DEL ORDEN ORTHOPTERA ORDEN ORTHOPTERA Sub.Orden Caelifera Fam. Tridactylidae Fam. Tettigidae Fam. Proscopiidae Fam. Acrididae Fam: Eumastacidae PATAS TARSI ANTENA ORGANOS TIMPANIFORME Posteriores De 1 a 3 Cortas, mas corta Ubicado a ambos saltatorias segmentos que la cabeza y lados del primer torax en conjunto segmento abdominal TIBIAS ANTENAS ALAS Y ORGANOS -Tibia Anterior fossoria. -Tibia Posterior con espuelas largas y aplanadas -Anterior normal Anterior normal. Posterior muy alargada Anteriores y posteriors normales -Cortas, apenas el largo de la cabeza. TEGMINAS -Alas posteriores mas larga que el abdomen. -Tegminas cortas. ----------- Tagminas muy cortos a modo de escamas. Muy cortas, más corta que la cabeza. -Largas (mas larga que la cabeza y el torax en conjunto) ------- Cortas prorectas, apenas tan larga como la cabeza o más corta. Alas -Ausentes o muy pequeñas a modo de escama -Tagminas variables, largas, cortas o ausentes -Alas posteriores usualmente largas. Apteras o brachypteras OVIPOSITOR Corto, valvas en forma de cuña FORMULA PRONOTUM PATAS TIMPANIFORMES TARSAL Ausentes 2-2-1 ó 2-2-0 ------ ----- ------------- 2-2-3 -Muy largo proyectado hacia atrás, hasta el extremo del abdomen. ----------- -------------------- Muy largo y delgado. -Organos timpaniformes desarrollados a ambos lados del primer segmento abdominal. 3 3-3 Normal Ausentes --- -- -- Posteriores saltaterias. 26

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Sub-Orden Ensifera Fam. Tettigoniidae Fam. Stenopelmatidae Fam. Gryllidae Fam. Gryllotalpidae Comprimidos (aplastadas lateralmente) PATAS TARSI ANTENA ORGANO TIMPANIFORME Posteriores saltatorias 3-4 segmentos Setiforme, usualmente mas larga que todo el cuerpo -ubicado en la base de las tibias anteriores OVIPOSITOR Ovipositor largo, excepto en Stenopelmatidae. ANTENA TYMPANA ALAS TEGMINAS CERCI OVIPOSITOR FORMULA TARSAL -Muy largas, a -Ubicado en el Frecuentemente Con venación muy cortos -Comprimido y 4-4-4 veces 2 ó mas lado externo de la ambos pares bien irregular, curvado hacia veces la base de las tibias desarrollados mimetizando las arriba como un longitud del de las patas nervaduras de las sable cuerpo. anteriores hojas. Largas o relativamente cortas -Muy largos sobre pasan la longitud del cuerpo -Antena corta apenas tan larga como la cabeza y torax en conjunto Ausente Cortas o ausentes Patas posteriores relativamente gruesas en 4 espinas dispuestos en las tibias. -Presentes en las tibias anteriores -Presente en las tibias -La derecha ubicada sobre la izquierda formando órgano estridulatorio Patas enteriores fossoriales. Pronotum grande y endurecido -Dispuestos casi planas sobre el dorso. -Alargados Alargados Corto o largo mas o menos cilindrico. -Largo cilíndrico en forma de lanza Largo, cilíndrico en forma de lanza 4-4-4 3-3-3 3-3-3-27

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 ANTENAS PATAS CERCI OVIPOSITOR FORMULA TORSAL Sub-Orden Phasmodea Fam.: Phasmidae -Largas y filiformes -Cursoriales y muy largo Corte de un solo segmento -No evidente 5-5-5 -Cuerpo largo y estrecho, ojos relativamente pequeños, primer segmento tarsal alargado. PRONOTUM PATAS CERCI OVIPOSITOS FORMULA TORSAL Sub-Orden Dictyoptera -Largo ó ancho, siempre expandido lateralmente, a modo de lamina -Medios y posteriores cursoriales -Corto, multi segmentados -No evidente 5-5-5 Super familia Mantoidea familia Mantidae Pronotum expandido lateralmente, dejando la cabeza libre expuesta en un aspecto dorsal. PATAS TARSI CABEZA ANTENAS Anteriores rapaces con coxas anteriores muy largas. Fémur y tibia anterior provista de espinas fuertes Largos y delgados Triangular y muy movil Relativamente largas y setiformes PRONOTUM PATAS CERCI OVIPOSITOR 28

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Super Fam. Blattoidea -Expandido lateralmente y sobre la cabeza MARGEN POSTERO VENTRAL DEL FÉMUR DE LAS PATAS ANTERIORES -Sin espinas o Fam. Blaberidae con solo 1-3 espinas fuertes en la base y una espuela apical Fam. Blattidae -Con mas de 3 espinas, mas o menos iguales o decreciendo uniformemente en tamaño hacia el ápice Fam. Blattellidae -Con mas de 3 espinas fuertes y gruesas en la base, con 2 a 3 espuelas apicales -Cusoriales y aplastados sobre el cuerpo con numerosos espinas fuertes en la tibia APICE DEL ALA -Posterior sin área apendicular -Largos y multisegmentados PLACA GENITAL DE LA HEMBRA ----- ------ -No expuesto STYLI DE MACHOS ---------------- -Bilobada -Simetricos. -Con área apendicular -Entera -Asimetricos. 29

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 CARACTERISTICAS PARA IDENTIFICAR LOS INSECTOS ADULTOS DEL ORDEN COLEOPTERA Orden Coleoptera CARACTERES Sub-Orden: Adephaga -Sutura notopleural presente -3º par de coxas divide en 2 el 1º segmento abdominal -Antenas y alas de diferentes formas A. Superfamilia: -Antenas filiformes Caraboidea --6 esternitos abdominales visibles 1. Fam: Cicindelidae Antena entre los ojos. Clypeus, se extiende mas alla del punto inserción de las antenas 1º par de patas con espuelas apicales -Elytra sin estrias 2. Fam. Carabidae -Antenas entre el margen anterior de ojos y base mandibular -Clypeus no se extiende mas alla del punto inserción de las antenas -1º par de patas con espuelas anteapicales -Elytros con estrias 3. Fam. Omophronidae Cuerpo redondo y convexo Scutellum cubierto 4. Fam. Haliplidae -Metacoxa con un proceso laminar que cubre 2 o más segmentos abdominales -Tibias y tarsos con pubescencia -Proternum a manera de quilla 5. Fam. Amphizoidae Patas sin pubescencia. Metasternum con sutura transversa Elytra sin estrias 6. Fam. Gyrinidae Ojos divididos en dos Antenas muy cortas, capitata 1º par patas largas y finas; 2º y 3º par cortas y robustas con pubescencia HABITOS Adultos y larva son depredadores. Adultos y larva son depredadores. Se encuentran en arena húmeda a orillas de ríos y lagos. -Acuáticos -Adultos fitofagos -Larvas depredadoras Acuáticos Adultos y larvas depredadoras -Adultos y larvas son depredadores. -Adultos son gregarios. Nadan como remolino en la superficie del agua. 30

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 7. Fam. Dytiscidae -Metatarsos con 1 uña recta -Convexos, dorsal y centralmente -Cavidades coxales anteriores abiertas caudalmente 8. Fam. Noteridae Fuertemente convexos dorsalmente, ventralmente planos. Sculletum cubierto Metatarsos con 2 uñas curvas Sub-Ordén: Polyphaga -Sutura notopleural ausente 3º par de coxas no divide el 1º segmento abdominal A. Superfamilia: Hydrophiloidea -Antenas y alas de diferentes formas -Palpos maxilares, generalmente mas largos que las antenas -El 7º y 8º segmento antenal forman una masa pubescente -Antenas cortas en el 6º segmento en forma de cúpula 1. Fam. Hydrophilidae -Palpos maxilares más largos que las antenas. -1º y 2º esclerito abdominal visibles y no fusionados. -Metasterno con una espina que se proyecta hasta el abdomen (no siempre) -Antena sin clavola y si posee entonces no serán geniculata Elytra generalmente truncados. B-Superfamilia: Staphylionoidea 1. Fam. Stophylinidae -Abdomen flexible dorso ventralmente, lados paralelos -Elytra muy cortos -Tarsos con 2 uñas iguales. Antenas generalmente filiformes -Con ocelli ó ausentes 2. Fam. Pselaphidae Abdomen sin flexibilidad dorsoventralmente Abdomen se ensancha hacia el ápice, con 5 esternitos Visibles Tarsos con 1 ó 2 uñas desiguales. 3. Fam. Limulodidae -Cuerpo mas ancho en la mitad anterior -Àpice abdominal descubierto -Ojos compuestos muy reducidos ó ausentes. Alas ausentes. 4. Fam. Silphidae Elytra entera o dejando al descubierto un tergito abdominal Cuerpo más ancho cerca del ápice abdominal Acuáticos Adultos y larvas depredadores Nadan inclinados en aguas tranquilas Acuáticos -Acuáticos y terrestres -Larvas depredadoras Se encuentran debajo de hojarasca, corteza de árboles en los hongos, nidos de mamíferos y aves. Se encuentran debajo de piedras, hojarasca en nido de mamíferos, aves, hormigas. Terrestres Viven en nidos de hormigas Se alimentan de exudaciones de hormigas. Se alimentan de plantas en descomposición; de cadáveres; algunos entierran los cadáveres. 31

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 5. Fam. Histeridae -Antena genículo-capitata -Elytra con finas líneas punteadas -Elytra cortos dejando al descubierto 2 degmentos Abdominales -Tarsos de 5-5-5- seg.; con colores negros brillantes -Tibias dilatadas. 6. Fam. Leiodidae -Tarsos de 4-3-3 -Cabeza mucho más estrecha que el pronotum y desde arriba no se distingue -Clavola antenal con 3-5 seg. -Pueden meter la cabeza y el protorax debajo y enrollarse 7. Fam. Scydmaenidae -La cabeza se comprime detrás de los ojos formando un cuello -Fémures dilatado en el ápice -Base de los elytra redondeados -Dorsalmente cubiertos de pubescencia larga 8. Fam. Limnichidae Cuerpo oval y convexo Coxas anteriores transversas Elytras muy pubescentes Antena capitata o serrata de 10-11 seg. 9. Fam. Ptiliidae Alas posteriores con flecos Elytra cortas Scutellum grande Antena clavata de 11 seg. Coxas transversas con placas femurales Muy pequeños Algunas especies son depredadores. Algunas especies son depredadoras y otras se alimentan, de materia orgánica en descomposición. Se alimentan de hongos y madera en descomposición Se encuentran debajo de hojas, piedras, en nidos de hormigas. Hábitos nocturnos, vuelan en grupos en el crepúsculo. Adulto y larva acuáticos. Se les puede encontrar en arenas húmedas ó suelos cercanos a riachuelos. Se alimentan de esporas de hongos. Se encuentran en troncos secos y hojas secas. C. Superfamilia: Dascilloidea Tarsos de 5-5-5. 5º esternitos abdominales visibles 1º par de coxas proyectadas -labium libre -Generalmente de cuerpo suave. 1. Fam. Dascillidae -Son muy similares a otras familias Se encuentran en flores y en follaje. 32

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 -Antenas serratas ó filiformes -Segmentos tarsales del 2-4 con lóbulos evidentes -Región anal de 2º par alas con 5 venas anales diferentes. -Elytra con lados casi paralelos; pubescentes. 2. Fam. Helodidae Cabeza no se ve dorsalmente Los torsos con el 4º segmento lobulado Con frecuencia el metafemus dilatado Parte apical de tibias posteriores con una espuela 3. Fam. Ptilodactylidae -Scutellum en forma de corazón -Los segmentos antenales de 4-10 (machos) con proceso basal largo (flabelata) -En las hembras las antenas son serrata -La cabeza puede ó no ser visible dorsalmente. -1er par de coxas transversales. Antenas generalmente filiformes o cortas y Superfamilia Dryopoidea dilatadas. El 5º segmento tarsal mas largo. Viven próximos a cuerpos de agua. Larvas y adultos se supone que son depredadores. Se encuentran en vegetación próxima al agua; en raíces y troncos. Larvas acuáticas. Larvas vive en troncos podridos. Adultos se pueden encontrar en las hojas ó en cercanías de cuerpos de agua. Fam: Dryopidae Fam. Elmidae Fam. Heteroceridae. Superfamilia Byrrhoidea Fam. Byrrhidae Fam.: Chelonariidae -Antenas muy cortas, los últimos 6 segmentos forman una clavola pectinada; coxas anteriores transversas; ángulos anteriores del pronotum agudos. -Antenas largas y finas o cortas con clavola. Patas largas y gruesas, coxas generalmente redondas, uñas largas; tarsos 5-5-5. -Antenas cortas serratas, tarsos 4-4-4. Las tibias anteriores y medias con los márgenes exteriores con fuertes espinas. Elytra con bandas o manchas amarillas -1er par de coxas transversales. Antenas dilatadas en el ápice, nunca cerrata o pectinata. Sutura fronto clypeal obselescente. -Cuerpo oval, evidentemente convexo-. Cabeza casi no se distingue dorsalmente. -Tibias generalmente comprimidas.- Tarso 4-4-4 ó 5-5-5. -Antenas flexibles en surcos en el prosternom. Cabeza no se distingue dorsalmente. Tarsos 5-5-5.. -Acuáticos, larvas viven en la tierra. Adultos no nadan, caminan dentro del agua. Acuáticos o terrestres -Viven en arena de ríos. Las larvas son acuáticas. Viven en arenas próximas a ríos. Adultos y larvas fitófagos. -Larvas acuáticas. Adultos en vegetación arbustiva 33

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Superfamilia Cantharoidea Fam. Cantharidae Fam.Phengodidae Fam.Lampyridae Fam. Lycidae Super Familia Cleroidea Fam. Cleridae Fam. Melyridae Fam. Dermestidae Fam. Ostomidae -3er par de coxas con proyecciones laminares angostas, incompletas o ausentes. Primer par de coxas largas y proyectadas.- tarso 5-5-5-. Abdomen 7-8 segmentos abdominales visibles Cuerpo suave, con elytras flexibles. -Trochanter corto y evidentemente oblícuo junto al fémur. Las elytras pueden ser cortos. Cabeza dorsalmente visible. 4º segmento tarsal bilobulado. -Antenas largas y plumosas.- Elytra corto y ahusado en el ápice.- alas posteriores visibles.- generalmente apteros con órganos luminosos. Fosetas antenales separadas. -Cabeza no visible dorsalmente. Los 2 ó 3 segmentos abdominales apicales luminoscentes. Cuerpo suave, lados paralelos.- antena filiforme o serrata. Trochanter largo y transverso, junto al fémur.- lóbulo del 4º segmento tarsal entero.- Elytra reticulado con carina longitudinales. Elytra ensanchándose apicalmente -Tarsos 5-5-5-.- 1º parte de coxas proyectadas o transverasales. Abdomen con 5 ó 6 esternitos abdominales visibles. -Antena clavata, raramente serrata. Cuerpo evendetemente pubescente (generalmente hirsuta). Cabeza tan ancha o más ancha que el pronotum. Pronotum más ancho que la base de los elytres. -Antena foliforme o serrata. Uñas casis siempre dentadas en la base. Elytros expandidos en el ápice. Cuerpo suave, puberancia erecta. -Cuando presentan ocellis /uno centra).- Cuerpo robusto cubierto de escamoso pelo.- antenas cortas y clavatas, alojándose en surcos laterales del pronotum. -Antena clavata tarsis 5-5-5, con el 1er segmento muy corto. Abdomen con 5 sternitos abdominales visibles. Pronotum separado de la bas de la elytra. -Viven en el follaje o en el suelo. Larvas depredadoras u omnivoras. Viven en el follaje o en el suelo larvas depredadoras y luminiscentes. Emiten luz por oxidación de la luciferina. Larvas viven en el suelo y son depredadoras. Viven en vegetación arbustiva. Larvas debajo de la corteza. -Viven en troncos caidos en el follaje ó flores. Adultos y larvas depredadores. Comunes en flores y vegetación larva depredadora o se alimentan de.. -Se alimentan de plantas y productos animales. (Trogoderma gramarium). -Adulto y larvas debajo de la corteza de árboles. Superfamilia Coccinelloidae Cuerpo oval fuertemente convexo. Generalmente con antenas capitata. 34

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Fam. Coccinellidae -Cuerpo fuertemente convexo dorsalmente ventralmente plano. Torso 4-4-4-, pero aparentan 3-3-3 ya que el 3er segmento es pequeño. Cabeza pareral o totalmente cubierta por el pronotum. Antena capitata de 3 6 seg. Fam. Endomychidae -Base del pronotum con dos hendiduras paralelas. Tarsos 4-4-4- aparentan 3-3- 3-, el 3er pequeño) ángulos anteriores del pronotum cubren parcialmente la cabeza. Clave antenal de 3 segmentos. Fam.: Lathiridiidae -Cavidades coxales anteriores pegadas al borde posterior del protorax. -Elytres cuales y anchos en el medio. Clevola de 2-3 segmentos. Tarsos 3-3-3- Fam. Nitidulidae Superfamilia: Cucujoidae Fam. Cryptophagidae -Incluye diversas familias que tienen poco en común. -Larvas y adultos depredadores de otros insectos. Se usan en control biológico. Rodolia cardinales (plaga cítrico) -Viven en madera en descomposición tambien larvas Se alimentan de hongos. -Se les encuentra en flores, también en materia infectada de hongos -Se les encuentra en fruta en descomposición nido de abejas hormigas.. ó 2-3-3- -Clavola antenal de 3 seg. (abrupta). Tarsos 5-5-5- ó 4-4-4. En algunas sp. Elytres truncados dejando al descubierto el último segmento abdominal. -Elytra redondeadas y dilatados medialmente. Clavola antenal de 3 segmentos -Tarsos 5-5-5, en algunos machos 5-5-4, Con fina puberancia. Pronotum con dientes laterales -Se encuentran en follaje y flores algunos en nidos de abejas, productos almacenados Fam: Mycetophagidae -Generalmente con puberescia. Clavola antenal de 2-5 seg. Tarsos 3-4-4- ó 4-4-4- Se alimentan de hongos, otros de polen, debajo de troncos etc. Fam: Erotylidae -Clavola antenal de 3 seg. Tarsos 5-5-5- (aparente 4-4-4, el 4º muy pequeño) sin puberancia. -Debajo de madera en descomposición Fam. Rhizophagidae -1er par de coxas transversals. Elytras cortos truncados. Antena de 10 seg. Clavola antenal de 1-2 seg. Último segmento tarsal largo, los demas cortos. -Adulto y larvas debajo de la corteza- algunos en nidos de hormigas. Fam. Cucuiidae -Cuerpo demprimido alargado y estrecho. Tarsos 5-5-5. (aparentan 5-5-4) antenas filiformes o clavatas. (algunas sp. causan pérdidas en granos almacenados Se encuentran debajo de corteza de árboles algunas larvas parasitan en Cer... sufriendo Hypermatamorsis Fam: Byturidae Elytras rectantulares.- clavola antenal de 3 segm..- tarsos 5-5-5- con el 2º y 3º lobulado. Pubescentes. Adultos follaje y flores. Larvas se alimentan de frutas. Fam. Colydiidae -Antena de 10-11 seg. Clavola antenal de 2-3 seg.- tarsos 4-4-4-, raramente 3- Fitofagas, barrenadoares de 35

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Fam. oedemeridae Fam: Anthicidae Fam: Pedilidae Fam: Euglenidae Fam: Phalacridae Super Familia Tenebrionoidea Fam: Tenebricnidae Fam: Lagriidae Fam: Alleculidae Super familia Meloidea -Tarsos 5-5-4 Fam: Meloidea 3-3-.- pronotum generalmente con surco. madera. Algunos en nidos de hormigas. -Finos alargados de cuerpo suave.- tarsos 5-5-4, penúltimo largo con -En flores y hojas. Las larvas se pubescencia. alimentan de madera en Pronotum dilatado anteriormente y en la base evidentemente mas estrecho que descomposición. elytra. Cuerpo semejante al de una hormiga. Tarsos 5-5-5-. Cabeza vertical fuertemente céntrica detrás de los ojos. Pronotum estrecho oval, con proceso horizontal extendiéndose sobre la cabeza. Ojos enteros. -Pronotum oval o redondo. Antenas largas serratas.- antena se inserta en el margen del ojo, provocando que el margen del ojo se invagine. -Antena se inserta en margen del ojo provocando su invaginación. Abdomen con 4 seg. Visibles.- tarso 5-5-4 CARACTERES -Superficie dorsal convexa, ventral plana, fémures dilatado, clavola 3 seg. Tarso 5-5-5- -Tarsos 5-5-4. (heteeromera). Inserción de antena y borde para todos. -Dorsalmente no se ve el punto de inserción de antena. Uñás simple.- borde anterior del ojo ondulado.- antena de 11 seg., filiforme. -Antenas con el último segmento evidentemente alargado. Elytra mas ancho cerca del ápice.- pronotum mas estrecho que los eltytros. Cabza casi del mismo largo que el pronotum -Con uñas pectinatas (dentadas).- antenas serratas, raramente pectinatas, con evidente pubescencia -Cabeza mas ancha que el pronotum. Pronotum mas estrecho que la base de los elytros generalmente suaves y flexibles. Antenas filiformes. Patas largas y finas.- generalmente con pubescencia clara (Hypermetamorfosis) Se les encuentra en el follaje del suelo, debajo de las piedras. -Se le encuentra en el follaje. Larvas viven en materia organica en descomposición. Se les encuentra en Follaje. HABITOS -Viven en flores de fam: asteraceae Frecuentemente en áreas desérticas plagas de pred. Almacenados debajo de piedras. -Habitan en flores y follaje, debajo de madera larvas se alimentan de m. org. En descomposición -Adultos en el follaje larvas en madera previamente barrenador. -Presentan hipermetamorfosis. Son comunes en follaje y flores, algunas sp. plagas de papa y 36

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Fam. Rhipiphoridae Fam: Mordellidae Superfamilia Elateroidea Fam: elateroidea Fam. Buprestidae Fam: Rhipiphoridae Fam: Mordellidae Super Familia: Elateroidea Fam: Elateridae -Hembras antenas flavelata o pectinata; hembras antena cerrada -Abdomen truncado en el ápice; elytra cortas o muy cortas no cubren el abdomen -Algunas hembras pueden se apteras. -Uñas dentadas; cuerpo evidentemente arqueado, cabeza hipognatha -Abdomen ahusado y su ápice no es cubierto por los elytra. -Generalmente con placas femorales bien desarrolladas; 5 esternitos abdom. Visible -Prosternum frecuentemente proyectado sobre el mesosternum -Tarsus de 5-5-5- -Placas femurales de 3º par de coxas ahusado externamente -Proceso intercoxal prosternal generalmente estrecho y curvo -antenas serratas, filiformes o pectinatas, cuerpos alargado. -Cuerpo alargado y robusto; colores metálicos especialmente en región ventral -Antenas serratas o filiformes, raramente pectinatas -Machos con antenas flaveleta o pectinata; Antenas serratas en las hembras. -Abdomen truncado en el ápice; elytra cortos o muy cortos no cubriendo el abdomen.- algunas hembras pueden se apteras -Uñas dentadas.- cuerpo evidentemente arqueado.- cabeza hipegnatha -abdomen ahusado y su ápice no es cubierto por las elytra.- antenas cortas, filiforme, serratas o capitatas -Con placas femurales bien desarrolladas. Con 5 esternitos abdominales visibles... Prosterno frecuentemente proyectado sobre el mesosternum. Tarsos de 5-5-5. -Ángulos posteriores de pretorax ahusados. Placas femurales del 3er par de coxas ahusado externmente.- proceso intercoxal presternal, generalmente estrecho y curvo. Antena serrata, filiforme o pectinata. -Cuerpo alargado y redondeado en el ápice de los elytra. tomate. -Se les puede encontrar en flores -El 1º estadío larval es parasito interno, el 2º ectoparasito -En flores y follajes dela Fam. Asteraceas. En follaje sobre flores larvas viven en la tierra algunas son depredadores fitofagas. Larvas barrenan madera de árboles ó arbustos vivos ó muertos. -Familia escasa se le puede encontrar en flores. 1º estadío larval endoparásito. Son comunes en las flores y follaje de Familia Asteracea. -Son muy comunes en el follaje sobre las flores. Las larvas viven en la tierra, algunos depredadores, fitofagas. Dañan semillas sembradas. Especie Pyrophorus noctilucus- emite luz 37

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Fam: Buprestidae Super Familia: Bestrichoidea Fam: Ptinidae Fam: Anobidae Fam: Bostrichidae Fam. Psoidae Fam. Lyctidae. Super Familia: Scarabaeoidea -Angulos posteriores del protorax rectos no ahusados. Cuerpo alargado y robusto. Antenas serratas o filiformes raramente pectinatas.. colores metálicos especialmente en la región ventral. -Protorax proyectado sobre la cabeza, generalmente con el 1er segmento grande. Tarsos 5-5-5- -Con apariencia de araña. Proceso intercoxal prosternal se proyecta meses ternum. Pronotum mas estrecho que los elytra. Cabeza dorsalmente no se distingue. Patas largas y finas. Antenas largas y filiformes Elytra alargados o ovales. Pubescencia hirsuta o sin ella. -Proceso intercoxal prosternal no se aloja en el mesosternum-. Evindentemente convexos.- cabeza no seve dorsalmente.- los 3 últimos segmentos antenales alargados y ensanchados. Antena serrata o pectinata 1er par de coxas proyectadas.- cabeza no se distingue dorsalmente. Pronotum generalmente tuberculado. Clavola antenal de 3-4 segmentos alargados cilíndricos -1er para de coxas globosas y sus cavidades son evidentemente cerradas en el margen posterior del protorax. Cabeza visible dorsalmente deprimidos, alargados.- clavola antenal de 2 segmentos. -Cabeza visible dorsalmente- mandíbulas anchas y fuertes.- 1 er segmento torsal obliterado.- tarsos 4-4-4- -Antena de 10 segmentos.clavola antenal de 3-7 seg- lamelados. Tarsos de 5-5-5- -CARACTERES -La larvas barrenan madera de árboles o arbustos causa daño en viveros o plantas ornamentales. -Plagas de granos almacenados algunas especies viven en nidos de hormigas y de ovejas. -Viven en la madera seca o los adultos pueden dañar los muebles, libros medicamentos. Stegobium paniceim (-Fe) -Barrenadores de madera y árboles frutales. Algunos pueden causar daño en los cables telefónicos. Scobicia declivis. Barrenadores de madera de árboles y arbustos, larvas barrenan. -Barrena árboles muertos y los convierten en polvillo. Pueden atacar muebles sin barnizar o pintar. HABITOS Fam: Lucanidae Elytros no poseen estrias longitudinales.- antena mas o menos geniculada Clavola antenal de 3-4 segm (dispersas). Mandíbulas en manchas grandes y Viven en las arenas. Las larvas viven en madera barrenadas. 38

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Fam: Passalidae Fam: Scarabaeidae Super Familia: Chrysomeloidea Fam: Chrysomelidae Fam. Bruchidae ramificadas.- largos y robustos. -Elytras con estrias longitudinales. Antena no geniculada.- cabeza con una proyección antero dorsal (cuerno). Pronotum cn un surco medio evidente -Antena de 8-10 seg. Lamelatas, clevola antenal compacta. Cuerpo robusto alargado u ovales convexos..- tibias anteriores dilatadas y dentadas. Marcada dimosfismo sexual -Cabeza sin rostrum. Sutura gular bien desarrollada y separada. Tarsos 5-5-5- (aparentan 4-4-4-), el 4º segmento es pequeño -Antenas generalmente costas (menos de la mitad del cuerpo) proyectadas hacia delante, pudiéndolas doblar hacia abajo, pero no sobre el dorso. Generalmente ovales -Elytra cortos exponiendo. Antenas clavolas serratas pectinatas.- Cabeza prolongada cuerpo oval -Algunas especies forman caleñas -Adultos y larvas producen sonidos estridulantes. -Adultos pueden secretar alimento para sus larvas a través de glándulas salivales -Hábitos variables.. plaga de granos hierbas y forrajes. Algunos se alimentan de carroña, hongos, etc. Fitofagos Comunes en el follaje y las flores larvas se alimentan de raíces y hojas. -Serias plagas de granos almacenados -Adultos ovipositan en semillas casi maduras. -Trijei: Acunthoscellides obtetus. Fam. Cerambycidae Super Famiolia: Curculionoidea Fam: Curculionidae -Antenas mas largas que la mitad del cuerpo y pueden doblarse sobre el dorso. Cuerpo cilíndrico ojos ondulados en el margen anterior -Cabeza proyectada formando un rostrum. Suturas gulares confluentes o ausente. Antena geniculocapitata. Generalmente palpos dirigidos. Labrum ausente. Antena geniculo-capitata. Rostrum evidente lobrum ausente. Palpos dirigidos cubiertos - Pueden alimentarse en flores se les encuentra debajo de troncos. Larvas barrenan en maderas. -Pueden atacar cultivos como algodón arroz, maíz, algunas especies atacan granos 39

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Fam: Brentidae Fam: Anthribidae Fam: Platypodidae Fam: Scolytidae Antenas casi rectas sin clavola antenal. Elytra largas y casi rectangulares. Cuerpo alargado filiforme. Evidente dimerfismo sexual -Antenas capitatas. Largos y ovales rostrum corto y robusto pronotum lateralmente dentado pubescentes. Cuerpo muy largo y fino, casi rectangular.- Tarso largo y fino con el 1er segmento tarsal evidentemente mas largo que los demas. Cabeza visible dorsalmente -Cuerpo cilindrico alargado,. Pequeño.- cabeza dorsalmente visible o no.- Tarso cortos el 1º tan largo como los siguientes. Antenas geniculocapitatas almacenados. Las larvas mas veraces. -Se les encuentra en madera muerta se alimentan de madera y hongo. Larva barrena madera viva o muerta. -Adultos viven en árboles y troncos muertos y se alimentan, se alimentan de hongos y semillas. En café: Araeserus fasciculatus -Adultos y larvas se alimentan de hongos. Barrenan madera -Clasicos barrenadores de madera.- los adultos se les puede encontrar en los tunees. Atacan árboles vivos o muertos. CARACTERISTICAS PARA IDENTIFICAR LOS INSECTOS ADULTOS DEL ORDEN NEUROPTERA Sub-Orden: Megaloptera ALAS AREA ANAL VENAS LONGITUDINALES Alas posteriors más Relativamente amplia capaz Usualmente no bifurcadas anchas en la base que de doblarse cuando el cerca del margen del ala las alas anteriores insecto está en reposo OCELLI 4º SEGMENTO TARSAL SUBMENTUM Y GULA acuáticas LARVAS 1. Fam: Sialidae Ausentes Dilatado y definidamente bilobulado Con lados paralelos 2. Fam: Corydalidae 3 Cilindrico En forma de Y 40

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 PROTORAX PATAS ANTERIORES OVIPOSITOR Sub-orden: Raphidiodea Alargado y cilindrico Cursorias einsertados en el extremo posterior OCELLI PTEROSTIGMA DE ALAS ANTERIORES 1. Fam. Raphidiidae presentes Bordeado proximal mente por una venula Largo y bien desarrollado SEGMENTOS ANTENALES Los básales más cortos que el resto 2-Fam. Inocelliedae ausentes No definido proximalmente por una venula Todos son cilíndricos PROTORAX PATAS ANTERIORES OVIPOSITOR Sub-Orden: Panipennia No especialmente Si el protorax es alargado, No especialmente alargado entonces las patas anteriores desarrollado rapaces e insertadas en el extremo anterior. A-Superfamilia: Coniopterygoide ALAS VENAS SECTOR RADIAL LONGITUDENALES Y TRANSVERSAS Cubiertas con Escasas en número A lo más solo bifurcada pulverulencia blanquizca 1. Fam. Coniopterygidae ALAS PROTORAX Estrecho y delgado a modo de cuello. Spp. De tamaño pequeño Spp. De aspecto muy semejante a Raphidiidae. ALAS Y CUERPO ANTENA OCELLIA VENACION ALAS Cubiertos de pulverulencia blanquizca VENAS LONGITUD Y TRANSVERSOS Largas, filoforme 16 a 43 seg. SECTOR RADIAL Ausentes Pobre en comparación con otros miembros del orden. CABEZA ANTENAS ABDOMEN DE MACHOS 41

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 B. Superfamilia: Ithonoidea C. Superfamilia: Myrmeleontoidea 1. Fam. Ascalaphidae 2. Fam. Myrmeleontidae 3. Fam. Stilbopterygidae 4. Fam. Nemopteridae. D-Superfamilia: Nemopteridae 1.- Fam. Nemopteridae E. Superfamilia Hemerobioidea 1. Fam. Mantispidae 2. Fam. Hemerobiidae 3. Fam. Chrysopidae Desprovistas de pulverul. Numerosas Con varias ramas ó bifure Parcialmente invaginada en el torax Largas setiforme 40 a 50 seg. Terminando en 2 apéndices largos en formas de pinzas Antenas: clavatas ó capitatas Iscetos de aspecto semejantes a las odonata. ANTENA VENACION ALAR ALAS Largas casi tan largas como el cuerpo Sin una celda Hipostigma definida. peculiarmente clavata con una protuberante clavola corta en el ápice. Relativamente coartas y débilmente clavata ó Con una larga celda hipostigmal aplastadas en el ápice Fuertemente clavata Con celda hipostigmal variable Alas y abdomen brillantes. Sin represent ante en el Neotropic o. Pubescentes. Color gris ó negruscas, frecuentemente con manchas oscuras. -Alas posteriores grandemente alargadas y estrechas, frecuentemente ensanchadas en el ápice en forma de hojas ó cucharas Cabeza usualmente prolongada a forma de pico. -Antenas filiformes. -Alas posteriores de aspecto semejante a las anteriores, no especialmente estrechadas. -Antenas filiformes, moniliformes ó pectinatas. -Protorax alargado. Antenas cortas frecuentemente pectinata en machos. Patas anteriores rapaces naciendo del extremo anterior del protorax Alas con pterostigma definido. -Setas hirsutas en las venas de las alas, especialmente el borde posterior. -Venas marginales bifurcadas; alas frecuentemente con manchas oscuras. -Alas con venas marginales simples dos venas gradeantes en el área discal y probablemente el carácter mas determinante la presencia de una vena recta llamada pseudomedius (psm) en el margen posterior del área discal. -Antenas largas filiformes; alas y cuerpo desnudos. 42

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 4. Fam. Dilaridae -Ocelli ubicados en el extremo de tuberculos. -Alas con las venas Sc y R, separadas en el ápice. 5. Fam. Berothidae -Antenas macho pectinatas o flabelotatas y hembras moniliformes. -Vena Rs de la cual nacen todas las otras ramas de este sector -Usualmente el ápice del ala (especialmente la anterior) agudo y curvo (faleado) -Antenas largas y filiformes. Insectos pequeños parecidos a Hemerobiidae 6. Fam. -Vena humeral recurrente, una vena gradeante Polystoechotidae -Largas y estrechas celdas en el área discal -Venas marginales numerosas y bifurcadas. Venas Sc y R 1 fusionadas cerca del ápice. 7. Fam. Sisyridae -Ala con área costas relativamente estrecha. Venas Sc y R 1 fusión, antes del ápice 8. Fam. Osmylidae 9. Fam. Psychopsidae 10. Fam. Neurorhidae 11. Fam. Brucheiseridae -Alas terminadas en punta curva (calcadas) -Numerosas venas transversas en el área costal y otras numerosas y bifurcadas en los otros márgenes. -Área discal con numerosas y pequeñas celdas -Sin representantes en el Neotropico -Sin representantes en el Neotropico 43

NUMERO DE INSECTOS EN EL PLANETA Actualmente existe mucho debate sobre el número de especies que existen en el planeta y en los trópicos. Cálculos conservadores lo estiman en 1,750,000 especies, de las cuales el 76% son animales. De éstos una gran cantidad son insectos, existiendo 751,000 especies ó según datos más reciente lo aproximan a 950,000 especies descritas. Estimaciones de Samways publicados en 1994, considera una cifra de 1,112,000 especies insectiles. El científico Williams, dobló dicha cantidad a 3 millones de especies. Sin embargo, Erwin con sus publicaciones de 1982, 83, 85 y 88, sugirió que en los bosques tropicales esta cifra se sitúa en un punto entre los 30 y 50 millones de especies de insectos. Especies de organismos descritos (Según Wilson 1988, Biodiversity, Nat. Acad. Sci. Press; Global biodiversity strategy, 1992; Samways 1994, Insec conservation biology) TAXON ESPECIES TAXON ESPECIES TAXON ESPECIES Plantas 270,000 Mamíferos 4,300 Moluscos 50,000 Insectos 751,000 Peces 19,056 Nemátodos 12,000 Aves 9,700 Hongos 69,000 (72,000) Protozoos 30,800 Reptiles 6,300 Virus 5,000 Platelmintos 12,200 Anfibios 4,200 Bacterias 4,000 Algas 26,900 Según Wilson (1992. La Diversidad de la Vida), el número de organismos conocido asciende a 1,4 millones. De ellos, más de la mitad son Insectos (751,000), pero estas cifras son conflictivas (ver Entomología y Biodiversidad). Las cifras de Wilson deben ser matizadas. En primer lugar el cuadro sólo recoge las especies bautizadas por la sistemática, pero no las existentes. Sobre éstas sólo pueden hacerse estimaciones, que se mueven en una horquilla que oscila entre los 100 millones de Erwin y las más moderadas de 5-10 millones de especies. En todos los casos, los especialistas consideran que la mayor parte de los organismos no descritos son artrópodos y, en concreto, insectos. Eso dejaría entre 3 y 8 millones de insectos por describir. 44

En el cuadro siguiente se presenta el número de especies descritas de la península Ibérica para los principales órdenes de insectos desde 1978 a 1999. La estimación de Erwin causó tal impacto que en los últimos cinco años ha sido uno de los temas más recurrentes en la literatura entomológica, lo cual es considerado como uno de los logros de dichas publicaciones, ya que permitió que no se estancara la investigación científica en este campo tan importante. Algunos autores consideran las estimaciones de Erwin ciertamente exageradas. Por tanto, Gaston, considera que 10 millones de especies, es una estima mucho más razonable de acuerdo con el conocimiento y experiencia de los diferentes especialistas que trabajan en todo el mundo. Erwin rebate los argumentos de Gaston, arguyendo que las estimas de los especialistas, no son un criterio científico sino un criterio de autoridad. La polémica aún no ha terminado. Según publicaciones divulgadas en 1993 por Samways, es Probable que menos del 10% de los insectos han sido descritos formalmente con un nombre científico. Esto implica que cuando hablamos de extinción de especies y pérdida de Biodiversidad, estamos refiriéndonos casi por completo a unos pocos megataxon: Insectos y otros invertebrados tales como, Ácaros, Anélidos y Hongos, a pesar de su escasa presencia en las denominadas Listas Rojas. Esto es preocupante, porque los animales necesitan de las plantas para vivir y si más de la mitad (57%) de la pérdida neta de bosques entre 1980-95 tuvo lugar en sólo 7 países (Brasil, Indonesia, Congo (Zaire), Bolivia, México, Venezuela y Malasia), que esperamos del futuro, ya que según la FAO, al comenzar el siglo XXI existe una pérdida neta anual de 11,3 millones de hectáreas de bosque que se destinan a otros usos. Es difícil documentar con precisión la extinción cuando muchas especies, particularmente de insectos, aún no han sido descritas. Por otro lado, las tasas de extinción varían entre áreas geográficas y tampoco son idénticas en todos los organismos (May et al., 1995). Las actuales estimaciones arrojan cifras verdaderamente alarmantes: entre el 10 y el 25% de los seres vivos, podrían extinguirse en los próximos 25-30 años (Raven, 1988); a qué velocidad?. Con una estimación tan moderada como 5 millones de seres vivos confinados en las áreas tropicales, Wilson (1988) popularizó la cifra de 17,500 especies como la tasa anual de extinción en los bosques tropicales. Entre 1990 y 1995, el área forestal se redujo en 56 millones de hectáreas, resultando en una pérdida de 65 millones de hectáreas en los países en desarrollo y un aumento de 9 millones en los países industrializados. Según el estudio reciente desarrollado por el Instituto Nacional de Pesquisa da 45

Amazonia (Brasil), y las Universidades estadounidenses de Oregón y Michigan, se estima que, si el gobierno brasileño continúa desarrollando su plan Avanza Brasil, que comprende carreteras transamazónicas, decenas de puertos, aeropuertos, gasoductos, hidrovías, millares de kilómetros de líneas eléctricas, más de mil kilómetros de vías férreas y represas hidroeléctricas, y si las demás actividades depredadoras siguen al mismo ritmo que hasta ahora, en el año 2020 sólo quedará un 4.7% de selva virgen, un 42% habrá desaparecido completamente y el resto estará severamente dañado. Esto creara más presión en el ambiente y surgirán nuevas plagas agrícolas, medicas y veterinarias. Según la FAO en su documento titulado El hambre en el mundo, primeros 40 años menciona que las causas fundamentales del hambre en el mundo son debidas: a) Falta de prioridad a la agricultura: Cada año se gastan en el mundo más de 700,000 millones de dólares en armamentos, algunos expertos afirman que con una pequeña parte de esto se podría resolver el problema; b) Escasez y mala distribución de las tierras: La frontera agrícola se estima en unos 3,000 millones de hectáreas aptas para cultivos. Actualmente se utiliza solo un 11%, es decir unos 1,500 millones, tendiendo a disminuir en el futuro, debido a diversos problemas; c) Prácticas agrícolas perjudiciales: Técnicas de laboreo, manejo de plagas, aspectos sociales y económicos; d) El dilema de los bajos precios internacionales; e) Situación del mercado internacional; f) La desigual distribución de los alimentos; g) Los procesos de globalización, integración y tratados internacionales. Hace ya una década la FAO estimó que la destrucción anual del bosque lluvioso tropical es de 70,000 km 2 anuales; un área de destrucción casi equivalente a 40.5 hectáreas/3 minutos. Los bosques tropicales que cubren el 7% de las tierras emergentes, albergan entre el 50% al 90% del total de las especies. El promedio de extinción era de una especie de mamífero cada 400 años y una especie de ave cada 200 años, pero las extinciones documentadas en los últimos 400 años indican que han desaparecido 58 especies de mamíferos y 115 especies de aves (estas cifras representan solo las extinciones documentadas). Por tanto es importante saber que una zona con muchos tipos de suelos y superficies, tienen más especies de plantas y un lugar con muchas especies de árboles albergara más especies de aves e insectos que un monocultivo. En tal sentido nos preguntamos Qué pasa con la alimentación humana?, si se elimina a China del estudio que analiza el problema de la alimentación, el número de personas con hambre en el mundo aumento 11% (de 536 millones en 1970 a 597 millones en 1990). En América del Sur, el número de desnutridos tuvo un incremento del 19%. En el siguiente cuadro, podemos observar algunos datos basados en información procedente de 86 países en vías de desarrollo (no se incluyen datos de la Republica Popular de China, Kampuchea Democrática, La Republica Democrática de Corea y Vietnam). Alcance de la malnutrición en los países en vías de desarrollo (86 países) Región Población (Millones) Número de personas mal nutridas (Millones) En porcentaje de población total Africa 320 72 23 América Latina 317 41 13 Cercano Oriente 192 19 10 Asia y el Pacifico 1090 303 28 Total 1919 435 23 Es preocupante observar que alrededor del 12% de las especies mamíferas y el 11% de aves fueron clasificadas como especies en peligro en 1990. Esto ayuda al incremento de plagas insectiles, porque a las aves les encanta alimentar a sus pequeños con insectos grandes y jugosos, por lo que pocos insectos sobreviven a las etapas de huevo y larva de primeros estadíos. Al alimentarse de insectos grandes, en las etapas avanzadas de los gusanos y de adultos, las aves constituyen una fuerza clave para reducir las poblaciones de insectos; pero que pasara con el ataque de los insectos plagas a los cultivos, si las aves se están extinguiendo?; recordemos que el 90% de nuestra alimentación procede de 15 especies de plantas y de 8 especies de animales. El arroz, según la FAO, aporta el 26% de las calorías, el trigo el 23% y el maíz el 7%. Las nuevas plantas cultivables sustituyen a las nativas, uniformizando la agricultura y destruyendo la diversidad genética. Sólo en Indonesia se han extinguido 46

1,500 variedades de arroz en los últimos 15 años; esto es lógico porque a medida se incrementa la uniformidad, aumenta la vulnerabilidad. Por tanto, lo mejor es tener mayor diversidad de plantas, insectos, aves, etc., y de esta manera será mas difícil tener plagas serias compitiendo por el alimento de la población humana. Auque aproximadamente 200 especies de insectos son realmente plagas serias, su impacto es enorme. En realidad podemos responsabilizarlos de la pérdida de al menos el 30% de todas las cosechas mundiales. Actualmente se estima que el número de plagas potenciales ronda las 10,000 especies de insectos. Incluso así, esto es menos del 1% de las especies descritas. No menos agresivos parecen desde el punto de vista médico y veterinario como insectos vectores de graves enfermedades, algunas incluso mortales: malaria, dengue, leismaniasis, mal de chagas, enfermedad del sueño, fiebre amarilla, etc., como se muestra en el siguiente cuadro. Además de la preocupación con este número de plagas, existe una gran dificultad para percibir la importancia de los insectos en los procesos y dinámica de los ecosistemas. Sin embargo, cualquier plan global de conservación debe tener en cuenta las necesidades de supervivencia en términos de funcionamiento ecológico, del conjunto de la biota terrestre (incluyendo nuestra propia especie) los insectos, son el componente cuantitativamente más importante de los ecosistemas terrestres, auque la funcionalidad de la mayoría de las especies, nos es aún completamente desconocida. QUE ES PLAGA El concepto de plaga es antropocéntrico, generado por los intereses del humano. Por tanto es un concepto artificial que puede ser circunstancial. Es así que el concepto de plaga puede variar en el tiempo o en el espacio. El concepto de plaga se puede definir de acuerdo al impacto directo o indirecto sobre el humano: a) Directo: Plaga urbanas o plagas caseras. b) Indirecto: Las plagas que afectan los bienes del humano, por ejemplo, las plagas agrícolas y forestales. Con todo lo explicado anteriormente daremos varios conceptos de plaga, algunos muy sencillos y otros mas completos: Plagas: Organismos perjudiciales al humano, sus bienes y su ambiente. Plagas: Organismos que compiten con el humano por alimento y fibra. Plagas: Especies de organismos que debido a sus altas densidades poblacionales son capaces de producir daños substanciales al humano, animales domésticos o a sus cultivos. Plagas: Es una asociación o población de individuos de la misma especie que causan perdidas económicas en los cultivos manejados por el humano. Plagas: Todas las especies de organismos para las cuales es necesario tomar medidas de manejo o control ya sea por razones sociales o económicas. Plagas: Son organismos que interfieren con el valor de los productos de los cultivos donde están asociados, aunque en algunos casos pueden llegar a la eliminación total de dichos productos. Plagas: Densidades de población de organismos que han alcanzado el umbral económico. Plagas: Son organismos (virus, protozoarios, bacterias, hongos, nematodos, moluscos, ácaros, insectos, peces, reptiles, aves, mamíferos o plantas), que aumentan su densidad o incidencia hasta niveles suficientes para afectar a la especie humana en forma importante, directa o indirectamente. Es por lo 47

tanto, un concepto antropocéntrico y relativo. Plagas: Densidad poblacional de algún organismo que al persistir en un tiempo determinado durante el estado susceptible del cultivo, es capaz de causar un daño económico. ALGUNAS CAUSAS DEL APARECIMIENTO DE LAS PLAGAS El origen de las plagas surge desde el momento en que el humano requiere de un recurso que también es necesario por otro organismo. El humano empeora el problema de plagas cuando: - Transforma el medio (ejemplo, monocultivo). - Fertilización. - Mejoramiento genético. - Riego. - Uso de plaguicidas. - Eliminación de enemigos naturales de las plagas, etc. Según el Dr. Clark et al, el estatus de plaga se origina de cuatro maneras que son las siguiente: 1. A través de la entrada de una especie a una región que no coloniza previamente (plagas exóticas), como por ejemplo, la broca del café, mosca del mediterráneo, etc. 2. A través de cambios en las características de la especie que antes no competía directamente con el humano. 3. Por el incremento en la abundancia de especies a las cuales el humano era indiferente antes, debido a sus poblaciones bajas. 4. Por cambios en la actividad o hábitos del humano, que lo hacen sensitivo a especies a las cuales antes era indiferente. Dependiendo de la naturaleza del organismo: a) Insectos. b) Malezas. c) Nemátodos. d) Hongos. e) Bacterias. f) Virus. g) Algas. h) Ratas. i) Aves, etc. De acuerdo al sistema en el cual ocurren: a) Plagas agrícolas. b) Plagas forestales. c) Plagas urbanas. d) Plagas veterinarias, etc. De acuerdo a la parte de la planta afectada: a) Plagas rizófagas. b) Plagas de los tallos y troncos. c) Plagas del follaje. d) Plagas del fruto. e) Plagas de la semilla, etc. CLASIFICACION DE LAS PLAGAS 48

De acuerdo al lugar de origen: a) Plagas autóctonas o nativas. b) Plagas exóticas o no nativas. Según el hospedero: a) Plagas del cafeto. b) Plagas de la caña de azúcar. c) Plagas del maíz. d) Plagas del aguacate. e) Plagas del tomate. f) Plagas del cocotero, etc. Según la naturaleza del daño: a) Plagas desfoliadoras. b) Plagas barrenadoras. c) Plagas minadoras. d) Plagas formadoras de agallas. e) Plagas noduladoras de raíces. f) Plagas manchadoras de fibras. g) Plagas descortezadoras. h) Plagas succionadoras de savia. i) Plagas succionadoras de sangra. j) Plagas vectores de enfermedades, etc. Según el número de plantas hospederas: a) Monofagas. b) Oligofagas. c) Polífagas. De acuerdo a la conducta, importancia, magnitud y persistencia del daño a los cultivos: a) Plaga primaria (constante, clave perenne o severa). a.1. Plaga clave introducida. a.2. Plaga clave inducida. b) Plaga secundaria (de irrupción u ocasional). c) Plaga potencial (de bajo nivel o sub-económica). d) Plaga migrante. NIVELES DE PLAGA Los criterios económicos y ecológicos, permiten hacer distinciones para categorizar a las plagas. No todos los insectos fitófagos que eventual o constantemente se encuentran en un cultivo causan daños económicos. El desconocimiento de este hecho, induce a ejecutar exageradas medidas de control. La importancia económica de una "plaga" requiere de conocimientos de su nivel o Umbral Económico para un cultivo. Con base a la magnitud y persistencia de daños de poblaciones de insectos, la mayoría clasifica a las plagas en diferentes niveles: Plaga potencial (plaga sub-económica) 49

Son plagas (en un sentido verdadero), aún sin causan pérdidas insignificantes. El Nivel General de Equilibrio (NGE, nivel promedio de las variaciones en densidad poblacional de una especie) en este tipo de plaga, está muy por debajo del Nivel económico de Daño (NED). Grafica mostrando el comportamiento de una plaga potencial La constituyen la mayoría de especies fitófagas que se encuentran en un campo de cultivo. Son caracterizadas por sus bajos niveles poblacionales (pasan desapercibidas); no afectan la cantidad ni calidad de la cosecha. Su control cuesta más que las pérdidas. Los bajos niveles poblacionales se deben a: enemigos naturales, clima, prácticas culturales, variedades tolerantes, etc. Plaga secundaria (plaga ocasional) Es un tipo muy común de plaga. Tienen su NGE, substancialmente debajo del NED; pero, fluctuaciones mayores, exceden este nivel ocasionalmente y normalmente en forma esporádica. Grafica mostrando el comportamiento de una plaga secundaria 50

Representada por especies, que se presentan en poblaciones perjudiciales solo en ciertas épocas del año, o aún, sólo en algunos años. No causan daño económico. Plaga primaria (plaga clave natural, plaga perenne o plaga severa) Causan los problemas más serios y difíciles en la producción de cultivos. Está representado por especies dominantes que se dan en condiciones normales dentro de un agroecosistema. Poseen un NGE que está por encima del NED, lo que los convierte en un problema constante. Solo pocas especies pertenecen a esta categoría. Su condición es debida a que no se dan factores de represión eficientes (enemigos poco eficientes, variedades susceptibles, condiciones climáticas favorables). Grafica mostrando el comportamiento de una plaga clave Plaga clave introducida Especies introducidas al agroecosistema, zona, región o país, donde se tornan dominantes, especialmente debido a la ausencia de enemigos naturales. Con frecuencia, después de un tiempo reducen su NGE, a menos que las nuevas condiciones les sean favorables. Plaga clave inducida Se tornan dominantes como consecuencia de perturbaciones más o menos permanentes en el agroecosistema (usualmente por el uso indiscriminado de plaguicidas). Plagas migrantes Especies no residentes en el agroecosistema, pero que ingresan a él, generalmente causando daños de magnitud. DAÑOS Y PERDIDAS CAUSADAS POR LAS PLAGAS A LOS CULTIVOS ALIMENTICIOS QUE ES DAÑO?. Es la lesión producida en la planta por un agente causal biótico o abiótico. El agente causal puede se, por ejemplo, el insecto; en tal sentido la planta es lesionada por el insecto. 51

Las pérdidas causadas por plagas en el mundo son aproximadamente del 30-35% de la producción bruta; se incrementaron las perdidas luego de la Revolución Verde, debido a que las variedades de mayor rendimiento son las mas susceptibles, la uniformidad genética es una condición ecológica ideal para el desarrollo de los patógenos. Las pérdidas post-cosecha a nivel mundial han sido estimadas en un 20%; en países en vías de desarrollo alcanzan el 40-50% de la producción. Pérdidas causadas por plagas en cultivos alimenticios Grupo de cultivos % de perdidas causadas por: Insectos Patógenos Malezas Total Cereales 15 9 11 35 Tubérculos y hortalizas 10 15 8 33 Plantas con fuente de aceite y proteínas 12 10 11 33 Estimación en porcentaje de las pérdidas regionales por plagas Región Insectos Patógenos Malezas Total Europa 5 13 7 25 Norte y Centro América 9 11 8 28 Sur América 10 15 8 33 Africa 13 13 16 42 Asia 21 11 11 43 El conocimiento sobre la magnitud del daño, es de gran importancia para cualquier Programa de Manejo Integrado del Cultivo. El costo de una medida es justificable esencialmente por la magnitud del daño de la plaga, si esta no fuera controlada. El uso de Límites económicos, es el primer principio del Manejo Integrado de cualquier cultivo en cualquier parte del mundo. El estimado de la magnitud de las pérdidas que ocurren en los cultivos es de interés general, tanto para agricultores como para los consumidores y el Estado. Las pérdidas económicas promedio de la producción agrícola mundial, con respecto a diversos problemas biológicos se muestran en la siguiente figura. La evaluación del daño a las plantas y perdida del potencial del cultivo, requiere de experimentación, principalmente sobre: a) Densidad de las poblaciones de insectos; b) Grado de daño a la planta; c) Estimado exacto de la cosecha, tanto en cantidad como en calidad; d) Tiempo de cosecha. Las variables ambientales pueden modificar el grado final de los daños. La evaluación sobre la calidad debe hacerse preferentemente en grados. El destino o uso final del producto puede alterar la 52

cuantificación del daño. El así llamado, daño aparente o daño al ojo, generalmente no esta relacionado con la pérdida final en la cosecha. Es importante y factible en ciertos casos, establecer los daños antes y después de la introducción de una plaga exótica. Igualmente son de gran valía las evaluaciones del daño antes y después de la introducción de procedimientos exitosos de control o manejo. La composición de los diferentes grupos biológicos que ocasionan pérdidas en la agricultura se muestran en la siguiente figura. Los daños a las plantas cultivadas se clasifican en cinco categorías (Tipos), para tener una adecuada comprensión en su interpretación y análisis. Daño Tipo I: Pérdida de la capacidad productiva Afectan partes de la planta (raíces, tallo, hojas, etc.), pero no las matan. La capacidad productiva de la planta se reduce. Area foliar: en pocos cultivos existe una estrecha relación, ya que en la mayoría de las plantas, el área foliar es excedente. Los artropodos fitosuctivoros, reducen la capacidad fotosintética, como por ejemplo Cicadellidae, Delphacidae, Aphididae, Aleyrodidae, Acarina. Maduración: el daño tipo I puede retardar la maduración. El retraso en la maduración puede causar aumento o reducción en la cosecha, llevando el cultivo a épocas mas o menos apropiadas para madurar (mayor o menor efecto de lluvias, presencia de insectos, etc.). Daño Tipo II: Pérdida de plantas Los insectos destruyen la totalidad de la planta y reduce la densidad de la plantación. El periodo en que ocurre este tipo de daño es critico. En algunos cultivos las plantas adyacentes pueden suplir la perdida con un mejor desarrollo, si es que la perdida de las plantas se produce en una etapa fisiológica temprana del cultivo. Si esta perdida se produce temprano, la resiembra puede cubrir cualquier deficiencia. El tipo de cultivo tiene gran trascendencia, en arbustos y árboles, el daño de esta naturaleza es generalmente mas significativo. Daño Tipo III: Daño directo Los insectos afectan directamente o destruyen los órganos motivo de la cosecha (raíz, hoja, tallo, flor, fruto, etc.). En este caso la compensación es menos probable. Algunas veces la compensación es probable, pero es de asumir un alto riesgo de probabilidad de retraso en el tiempo de cosecha o de la maduración de los órganos a cosechar. En ciertos casos, la perdida prematura de órganos tales como flores y frutos, reduce la carga energética de la planta y los frutos que se forman posteriormente son mas grandes y de mejor calidad. 53

La evaluación de este tipo de daño es relativamente fácil de cuantificar, a veces sin embargo, se subestima el daño total. Daño Tipo IV: Contaminación del producto Los insectos contaminan el producto que sale para el mercado. La contaminación afecta la apariencia y por lo tanto la calidad. Algunas especies contaminan el producto después de la cosecha. En ciertas oportunidades la contaminación no es detectable por el consumidor, en este caso los determinantes son las regulaciones gubernamentales. Daño Tipo V: Destrucción de productos almacenados Usualmente no afecta al productor sino a los canales de comercialización. Esta condición implica cambios en la economía de control. Frecuentemente son influenciados por la contaminación inicial, que en muchos casos se da en los campos de cultivo. Las condiciones y el tiempo de almacenamiento, son los factores que tienen mayor incidencia en este tipo de daño. Algunos autores identifican las siguientes formas en que los insectos causan daños: A. Insectos que destruyen toda clase de cultivos y otras plantas valiosas. A.1. Cuando masticar las hojas, yemas, tallos, corteza, semillas o frutos de las plantas. A.2. Cuando succiona la savia de las hojas, yemas, tallos o frutos. A.3. Cuando barrenan o taladran la corteza, tallo o ramas (barrenadores); frutos, nueces o semillas (gusanos o picudos); o entre el haz y el envés de las hojas (minadores de hoja). A.4. Cuando provocan crecimientos cancerosos en las plantas (insectos formadores de agallas). A.5. Cuando atacan las raíces y tallos subterráneos en cualquiera de las formas antes mencionadas. A.6. Cuando depositan su huevos en alguna parte de la planta. A.7. Cuando utilizan parte de la planta para la construcción de nidos o refugios. A.8. Cuando transportan y establecen a otros insectos en las plantas. A.9. Cuando diseminan microorganismos patógenos, causantes de enfermedades (hongos, bacterias, protozoarios, nematodos, virus, etc.), inyectándolos a los tejidos de las plantas cuando se alimentan, transportándolos a sus galerías o haciendo heridas a través de las cuales los microorganismos penetran. A.10. Provocando fertilización cruzada de ciertas royas que causan enfermedades de las plantas, sin cuya ayuda la enfermedad no prosperaría. B. Destruyendo o depreciando el valor de los productos almacenados y pertenencias incluyendo alimentos, ropa, medicamentos, colecciones de animales y plantas, papel, libros, muebles, puentes, edificios, madera, postes telefónicos, durmientes, armaduras o estructuras de maderas y objetos semejantes. B.1. Cuando devoran dichos objetos como alimento. B.2. Por contaminación de los productos con sus secreciones, excreciones, huevos o con sus propios cuerpos, aunque no se alimenten del producto. B.3. Cuando construyen túneles y nidos, o cuando buscan protección en los objetos o productos citados. B.4. Cuando incrementan el trabajo y costos de selección, envasado y conservación de los alimentos. 54

COMPOSICIÓN DEL ESPECTRO DE PLAGAS SEGÚN EL TIPO DE DAÑO POR CULTIVO AGRÍCOLA (SEGÚN PUBLICACIONES DE KORYTKOWSKI, CH., 1995) Lechuga (Lactuca sativa) Organo afectado Tipo de daño Masticador Suctivoro Minador Oviposición Total Raíz 6 6 Tallo-Tronco-Peciolo 11 2 1 14 Hojas 20 11 1 32 Total 37 13 2 52 Camote (Ipomoea batatas) Organo afectado Tipo de daño Masticador Suctivoro Minador Oviposición Total Raíz 22 1 6 29 Tall-Tronco-Peciolo 9 3 7 19 Hoja 49 25 1 75 Total 70 39 14 123 Coliflor, Brócoli, Repollo, Mostaza (Brassica spp.) Organo afectado Tipo de daño Masticador Suctivoro Minador Oviposición Total Raíz 2 2 Tallo-Tronco-Peciolo 3 1 1 5 Hoja 26 7 2 35 Flor 1 1 Fruto 1 1 2 Total 37 10 5 52 Sandía (Citrullus spp.) Organo afectado Tipo de dano Masticador Suctivoro Minador Oviposición Total Raíz 2 2 Tallo-Tronco-Peciolo 3 1 4 8 Hoja 17 10 1 28 Flor 2 2 Fruto 4 1 4 9 Total 28 12 9 49 Tomate (Lycopersicon esculentum) Organo afectado Tipo de daño Masticador Suctivoro Minador Oviposición Total Raíz 20 20 Tallo-Tronco-Peciolo 10 11 9 1 31 Hoja 46 37 6 89 Flor 5 5 Fruto 15 12 3 30 Total 96 60 18 1 174 55

Papa (Solanum tuberosum) Organo afectado Tipo de daño Masticador Suctivoro Minador Oviposición Total Raíz 43 1 9 53 Tallo-Tronco-Peciolo 11 12 9 52 Hoja 58 48 4 1 111 Flor 13 2 15 Fruto Total 125 63 22 1 211 Arroz (Oryza sativa) Organo afectado Tipo de daño Masticador Suctivoro Minador Oviposición Total Raíz 29 9 1 39 Tallo-Tronco-Peciolo 20 14 7 41 Hoja 61 49 110 Flor 1 2 3 Fruto 5 22 27 Total 116 96 8 220 Maíz (Zea mays) Organo afectado Tipo de daño Masticador Suctivoro Minador Oviposición Total Raíz 53 3 1 57 Tallo-Tronco-Peciolo 25 23 15 63 Hoja 110 78 2 190 Flor 2 3 5 Fruto 13 2 3 18 Total 203 109 21 333 Sorgo (Sorghum bicolor) Organo afectado Tipo de daño Masticador Suctivoro Minador Oviposición Total Raíz 16 1 3 20 Tallo-Tronco-Peciolo 12 2 6 20 Hoja 22 13 35 Flor 3 3 Fruto 9 7 16 Total 59 26 9 94 ALGUNAS ENFERMEDADES INFECCIOSAS TRANSMITIDAS POR PICADURAS O MORDEDURAS DE INVERTEBRADOS Ecología con respecto al humano El humano sirve de hospedero accidental, no de reservorio Enfermedad Tipo de microorganismo Vector Reservorio Peste Bacteria Pulga Ratas y otros roedores Tularemia Bacteria Garrapata Roedores y también la propio garrapata Tifus Riquetsia Pulga Ratas endémico 56

El humano es uno de los dos o más reservorios El humano es el único reservorio El humano es reservorio Enfermedad del sueño Fiebre amarilla Fiebre recurrente Protozoo Mosca tsétsé Humanos y animales salvajes Virus Zancudo Humanos y monos Bacteria Piojo Humanos, garrapatas y roedores Malaria Protozoo Zancudo Humanos Tifus epidémico Riquetsia Piojo Humanos Dengue Virus Zancudo Humanos Mal de Protozoo Chinche Humanos chagas Leismaniosis Protozoo Mosca de Humanos los arenales Kala-azar Protozoo Mosca de Humanos los arenales ARTROPODOS ASOCIADOS CON ENFERMEDADES VEGETALES INFECCIOSAS NOMBRE CIENTÍFICO ORDEN FAMILIA ENFERMEDADES ASOCIADAS 1. Aphis gossypii Homoptera Aphidae Marchites bacteriana de cucurbitáceas; mosaico de la sandía; mosaico de la caña de azúcar; mosaico de las cucurbitáceas; mosaico e la papaya; mosaico del fríjol; tristeza de los cítricos; virus del anillado del papayo. 2. Mysus persicae Homoptera Aphidae Virus 1 del mosaico de la sandía; virus Y de la papa; enrollamiento de las hojas de la papa y del tabaco; mosaico de la papaya; mosaico del fríjol; virus del mosaico enanismo amarillo de la cebolla; mosaico de la caña de azúcar. 3. Brevicoryne brasicae Homoptera Aphidae Virus del mosaico del tabaco; mosaico de las crucíferas; enanismo amarillo de la cebolla. 4. Rhopalosiphum Homoptera Aphidae Mosaico de la caña de azúcar. maidis 5. Picturaphis Homoptera Aphidae Mosaico común del fríjol. vignaphilus 6. Toxoptera citricidas Homoptera Aphidae Virus de la tristeza de los cítricos. 7. Toxoptera aurantii Homoptera Aphidae Virus de la tristeza de los cítricos. 8. Empoasca papayae Homoptera Cicadellidae Arrepollamiento de la papaya 9. Dalbulus maidis Homoptera Cicadellidae Acaparamiento del maíz; virus del rayado fino. 10. Dalbulus alimatus Homoptera Cicadellidae Acaparamiento del maíz; virus del rayado fino. 11. Dalbulus guevarai Homoptera Cicadellidae Acaparamiento del maíz; virus del rayado fino. 57

12. Dalbulus tripsaci Homoptera Cicadellidae Acaparamiento del maíz; virus del rayado fino. 13. Graminella nigrifrons Homoptera Cicadellidae Acaparamiento del maíz; virus del rayado fino; virus del enanismo clorótico del maíz; mosaico estirado de la avena. 14. Graminella Homoptera Cicadellidae Acaparamiento del maíz. (Deltocephalus) sonora 15. Euscelidius Homoptera Cicadellidae Acaparamiento del maíz. variogatus 16. Existianus existiasus Homoptera Cicadellidae Acaparamiento del maíz. 17. Stirollus bicolor Homoptera Cicadellidae Acaparamiento del maíz. 18. Draeculacephala Homoptera Cicadellidae Enfermedad de Pierce de la vid. minerva 19. Draeculacephala portola Homoptera Cicadellidae Enfermedad de Pierce de la vid; virus de la roya clorótica de la caña de azúcar. Homoptera Cicadellidae Enfermedad de Pierce de la vid. 20. Carneocephala fulgida 21. Orosius argontatus Homoptera Cicadellidae Enanismo amarillo del tabaco; virus de la yema gigante del tomate. 22. Colladonus Homoptera Cicadellidae Enfermedad X del durazco. gominatus 23. Agallia sp. Homoptera Cicadellidae Virus del enanismo amarillo de la papa. 24. Acorafagallia sp. Homoptera Cicadellidae Virus del enanismo amarillo de la papa. 25. Deltocephallus Homoptera Cicadellidae Virus del enanismo del arroz. dorsalis 26. Nephotettia apicalis Homoptera Cicadellidae Virus del enanismo del arroz. 27. Circulifer (Eutottix, Homoptera Cicadellidae Cogollo rizado de la remolacha. Neoaliturus) tonellus 28. Acinopterus angulatus Homoptera Cicadellidae Amarillamiento del Aster de Norte América. 29. Homalodisca insolita Homoptera Cicadellidae Enfermedad Pony del duraznero. 30. Peregrinus maidis Homoptera Delphacidae Achaparramiento del maíz; mosaico del maíz; virus de la hoja blanca del maíz. 31.Sogatella kolophon Homoptera Delphacidae Virus del mosaico estirado de la Digitaria. 32. Sogatodes orizicola Homoptera Delphacidae Virus de la hoja blanca del arroz. 33. Sogatodes cubanus Homoptera Delphacidae Virus de la hoja blanca del arroz. 34. Bemisia tabaci Homoptera Aleyrodidae Mosaico dorado del fríjol; mosaico del kenaf; clorosis infecciosa de las malvaceas; mosaico de las Euphorbiaceas; enrollamiento de la hoja del tabaco. 35. Philaenus leucophtnalmus Homoptera Cercopidae Enfermedad de Pierce de la vid. 36. Clastoptora brunnea Homoptera Cercopidae Enfermedad de Pierce de la vid. 37. Pseudococcus brevipes Homoptera Pseudococcidae Virus de la marchites de la piña. 38. Microtalis calva Homoptera Memoracidae Falso curly top (cogollo rizado) del tomate. 58

39. Diabrotica balteata Coleoptera Chrysomelidae Mosaico rugoso del fríjol; virus ampollado del fríjol; virus del caupi. 40. Diabrotica adelpha Coleoptera Chrysomelidae Mosaico rugoso del fríjol. 41. Cerotoma ruficarnis Coleoptera Chrysomelidae Mosaico rugoso del fríjol; mosaico de la vigna; virus del ampollado del fríjol; mosaico suave del fríjol 42. Chaetocnema pulicaria Coleoptera Chrysomelidae Marchites bacteriana del maíz (enfermedad de Stewart) Bacterium stavarti; moteado clorótico del maíz. 43. Sistema sp. Coleoptera Chrysomelidae Mosaico de la vigna; mosaico del fríjol. 44. Nodonota sp. Coleoptera Chrysomelidae Virus del ampollado del fríjol. 45. Diphaulaca sp. Coleoptera Chrysomelidae Virus del ampollado del fríjol. 46. Colaspia sp. Coleoptera Chrysomelidae Moteado de la vaina del fríjol. 47. Acalymma sp. Coleoptera Chrysomelidae Marchites bacteriana de las cucurbitáceas (Erwinia sp.). 48. Epitrix cucumeris Coleoptera Chrysomelidae Roña de la papa (Actinomyces scabies) 49. Leptinotarsa decemlineata Coleoptera Chrysomelidae Marchites bacteriana en solanaceas; virus X de la papa; virus del tubérculo alargado. 50. Anthonomus grandis Coleoptera Curculionidae Pudrición de la bellota del algodonero. 51. Rhynchophorus palmarum Coleoptera Curculionidae Anillado rojo del cocotero (Radiphelenchus cocophilus). 52. Rhynchophorus barbirostris Coleoptera Curculionidae Anillado rojo del cocotero (Radiphelenchus cocophilus). 53. Cosmopolites sordidus Coleoptera Curculionidae Mal de Panamá; moko del guineo, Rhadopholus similis. 54. Epilachna varivestis Coleoptera Coccinellidae Moteado clorótico de la vigna; mosaico rugoso del fríjol; mosaico de la vigna; mosaico sureño del fríjol; virus del enanismo rizado del fríjol. 55. Podishnus agenor Coleoptera Scarabaeidae Muermo rojo de a caña de azúcar. 56. Plattipus sp. Coleoptera Platypodidae Mal del machete en cacao (Ceratocystis sp.). 57. Xyliborus sp. Coleoptera Scoliitidae Mancha parda del tallo del cocotero (Ceracystis paradoxa); mal del machete en cacao (Cerocystis fimbriata). 58. Ips sp. (I. Pini; I. grandicollis) Coleoptera Scoliitidae Mancha azul del pino Noruego (Ceratostomella ips). 59. Anastrepha sp. Diptera Tephritidae Pudrición del tallo de la yuca (Erwinia carotovora). 60. Drosophila sp. Diptera Drosophilidae Moko del guineo. 61. Hymelia cilicrura Diptera Anthomyidae Marchites bacteriana del maíz (Bacterium stewarti). 62. Hymelia brassicae Diptera Anthomyidae Pierna negra de las cruciferas (Phoma lingam). 63. Trigona sp. Hymenoptera Aphidae Moko del guineo. 64. Polybia sp. Hymenoptera Vespidae Moko del guineo. 65. Diatraea saccharalis Lepidoptera Pyraliadae Muermo rojo de la caña de azúcar. 59

66. Chapulines Orthoptera Acrididae (Locustidae) Marchites del algodonero (Fusarium vasinfectum); virus del marchites manchado del tomate. 67. Frankliniella lycoperasi Thysanoptera Thripidae Virus del marchites manchada del tomate. 68. Frankliniella moultoni Thysanoptera Thripidae Virus del marchites manchada del tomate. 69. Frankliniella occidentalis Thysanoptera Thripidae Virus del marchites manchada del tomate. 70. Frankliniella insularis Thysanoptera Thripidae Virus del marchites manchada del tomate. 71. Anaphothrips obscuras Thysanoptera Thripidae Marchites bacteriana del maíz (Bacterium stewarti) 72. Thrips tabaci Thysanoptera Thripidae Virus del marchites manchada del tomate; mildiu polvoriento de rosal, melom, fresa, vid. 72. Euphysothrips (Megaphysothrips) subramani 73. Scirtothrips (Dentrothrips) bispinosus Thysanoptera Thripidae Roya del cafeto (Hemileia vastatrix). Thysanoptera Thripidae Roya del cafeto (Hemileia vastatrix). 74. Pediculopsis graminum Acarina Pudrición de la yema del clavel (Sporotrichum poae). 75. Eryophes (Aceria) Acarina Eriophydae Mosaico rayado del trigo tulipae 76. Eryophes insidiosus Acarina Eriophydae Mosaico del duraznero. INSECTOS DEL ORDEN HOMOPTERA Debido a las características muy diversas en el grupo, es prácticamente imposible establecer una condición predominante de reproducción. Se presentan casi todas las formas de reproducción: oviparidad, viviparidad, partenogénesis, etc. La forma mas frecuente de metamorfosis es la paurometábola. Todas las especies del Orden Homoptera son fitófagas, alimentándose de la savia de las plantas, pudiendo representar plagas de considerable importancia económica, ya que debido a sus hábitos fitosuctivoros en muchas ocasiones son capaces de transmitir enfermedades, particularmente virus de naturaleza diversa. El mayor número de especies del Orden Homoptera parece corresponder a zonas templadas del Holártico. Según Borror & White, se conocen cerca de 32,000 especies, en tanto que Borror, DeLong & Tripplehorn, reportan 33,000 especies. Tal como es conceptualizado en la actualidad, el Orden Homoptera comprende tres Sub Ordenes y 32 familias que la mayoría de autores separan en Superfamilias, aunque varias de ellas comprenden tan solo un taxón. El Sub Orden Sternorrhyncha comprende los insectos de la Familia Pseudococcidae. En el cuadro siguiente se muestran las principales características morfológicas de las Familias relacionadas con los Pseudococcidae. 60

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Principales características morfológicas que permiten separar las familias de insectos del Orden Homoptera en los diferentes Sub-Ordenes Orden: Homoptera Sub-orden: Auchenorrhyncha Sub-orden : Coleorrhyncha Patas Tórax Alas Familias Tarsi de 3 Segmentos Tarsi de 1 segmento Sin lóbulos pronotales expandidos Pronotum expandido lateralmente (paranota) con toscas celdas que les dan aspecto de pequeñas alas protorácicas Normales en hembras y machos Plegadas en forma plana sobre el abdomen, cortas (usualmente las alas posteriores ausentes) y con numerosas celdas 1)Cicadidae; 2)Cicadellidae; 3)Membracidae; 4)Aethalionidae; 5)Cercopidae; 6)Flatidae; 7)Tropiduchidae; 8)Acanalonidae; 9)Issidae; 10)Nogodinidae; 11)Fulgoridae; 12)Delphacidae; 13)Derbidae; 14)Achilidae; 15)Cixiidae; 16)Kinnaridae; 17)Dictyopharidae; 1)Peloridiidae Sub-Orden: Sternorrhyncha Patas presentes o ausentes; cuando presentes los tarsi de 1 ó 2 segmentos Sin lóbulos pronotales expandidos Frecuentemente las hembras ápteras y sesiles; los machos frecuentemente alados 1)Psyllidae; 2)Aleyrodidae; 3)Aphididae; 4)Eriosomatidae; 5)Adelgidae; 6)Phylloxeridae; 7)Pseudococcidae; 8)Dactylopiidae; 9)Asterolecaniidae; 10)Coccidae; 11)Diaspididae; 12)Conchaspidae; 13)Ortheziidae; 14)Margarodidae 61

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Principales características morfológicas que permiten separar las Superfamilias de insectos del Sub-Orden Sternorrhyncha SUB ORDEN STERNORRHYNCHA Superfamilia: Psylloidea PATAS ANTENAS ALAS FAMILIAS Tarsi de 2 segmentos; 2 garras; patas posteriores saltatorias 5-10 segmentos (usualmente 10) Anteriores endurecidas con venas M y Cu bifurcadas. 1) Psyllidae Superfamilia: Aleyrodoidea Tarsi de 2 segmentos; 2 garras; patas cursorias 7 segmentos Membranosas y cubiertas de pulverulencia blanca; venación muy reducida y absoluscente 1)Aleyrodidae Superfamilia: Aphidoidea Superfamilia: Coccoidea Tarsi de 1 ó 2 segmentos, en el último caso el segmento basal pequeño y usualmente triangular; 2 garras; patas cursorias. Patas reducidas, obliteradas ó bien desarrolladas. Tarsi de 1 segmento y 1 garra 1-6 segmentos usualmente 5 ó 6, el último segmento usualmente termina más estrecho Hembra ápteras ó aladas, ala anterior más grande con Pterostigma, Vena M ramosa y Cu simple 1-9 segmentos Hembras ápteras; machos ápteros ó alados (un par de alas) 1)Aphididae; 2) Eriosomatidae; 3)Adelgidae; 4) Phylloxeridae 1)Pseudococcidae;2)Dactylopiidae 3)Asterolecaniidae; 4)Coccidae; 5) Diaspididae; 6)Conchaspidae; 7)Ortheziidae; 8)Margarodidae 62

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Principales características utilizadas para separar las Familias de insectos relacionadas con los Pseudococcidae FAMILIAS PATAS ESPIRACULOS ABDOMINALES Ortheziidae Margarodidae Bien desarrolladas y sobrepasan los márgenes del cuerpo Bien desarrolladas y no sobrepasan los márgenes del cuerpo ANILLO ANAL ESTRUCTURA IMPORTANTE Presente Con 6 setas Segmento apical de la antena con una seta fuerte Presentes Reducido, sin poros ó setas Segmento apical de la antena con varias setas, ninguna fuerte o larga OVISACO DE LA HEMBRA Formado por cera blanda de color blanco con lados rectos Formado por cera blanda de color blanco y curvado Coccidae Muy reducidas ó más frecuentemente ausentes Ausentes Placa anal triangulares cubriendo completamente la apertura anal que se encuentra alejada de la cauda y con una larga y profunda incisión caudal Cerarii uni ó bi-poros Formado por cera endurecida que cubre completamente el cuerpo de la hembra Diaspididae Ausentes ó vestigiales Ausentes Placa anal definida ó los últimos segmentos abdominales fusionados Antena de la hembra adulta atrofiada; cuerpo dividido en prosoma y pygidium Conchaspididae Presentes Ausentes Ausente Antena de 3 segmentos en la hembra adulta; cuerpo dividido en prosoma y pygidium Formado por cera endurecida, formado debajo de la 1 y 2 exuvia ninfal, en forma concéntrica (Aspidiotinae) ó alargado (Diaspidinae). No dejando evidencia de la exuvia de los primeros estadíos ninfales. 63

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Pseudococcidae Bien desarrolladas y no sobrepasan los márgenes del cuerpo Ausentes Ubicado caudalmente y provisto de 2 lobulos caudales Usualmente 2 ostiolos dorsales ó 1 a 4 circuli ventrales; cerarii uniporos Formado por cera blanda de color blanco Dactylopiidae Bien desarrolladas y no sobrepasan los márgenes del cuerpo Asterolecaniidae Ausentes ó vestigiales Ausentes Ubicado caudalmente y provisto de 2 lóbulos caudales Ausentes Placa anal ausente; lóbulos caudales muy pequeños, con una corta y débil seta apical Ostiolos dorsales Formado por cera ausente y sin circuli; polvorulenta y cerarii uni-poros y filamentosa dispuestos en grupos Cerarii bi-poros en Formado por cera forma de 8 en los filamentosa de color márgenes del cuerpo blanco ó amarillo CARACTERISTICAS PARA IDENTIFICAR LOS INSECTOS ADULTOS DEL ORDEN HOMOPTERA (Sub- Orden Sternorrhyncha) C-Sub.Orden: Sternorrhyncha Superfamilia: Psylloidea 1. Fam.: Psillidae Super Familia: Aleyrodoidea 1. Fam: Aleyrodidae PATAS TORAX ANTENAS Pronotum sin lóbulos paranotales Presentes o ausentes tarsi 1- ó 2 seg. 2 Segmentos 2 Uñas Patas posteriores saltatoria 2 segmentos 2 uñas Patas cursorias Variables a veces casi completamente obliterales. TARSI ANTENAS ALAS 5-10 seg. Usualmente 10 Anteriores endurecidas con venas muy cubifurcada 7 Seg. Membranas y cubiertas de pulverulencia blanquizca; venación muy reducida y obsoluscente 64

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 SuperFam: Aphidoidea 1. Fam: Aphididae 2. Fam. Eriosomatidae 3. Fam. Adelgidae 4. Fam. Phylloxeridae Super Fam: Cocoidea 1. Fam: Ortheziidae 1 ó 2 segmentos en el último caso el seg. Basal muy pequeño y usualmente triángulo 2 uñas patas cursorias ANTENAS 1-6 segmento usualmente 5 ó 6, el último seg. Usualmente con un largo proceso terminal más estrecho VENAS DETRÁS DEL SPTEROSTIGMA 6 Seg. (raras veces 4 ó 5) 5 a 6 Vena M con 2 ó 3 ramas. Hembra aladas apteras ala anterior más grande con pterestigma Vena M ramosa y la Cu simple. CURNICULI ALAS PLACAS DE CERARII Usualmente bien desarrolladas (raras) veces reducidos a pequeñas oficios) 6 seg. (raras veces 4 ó 5) 4 Vena M simple Ausentes ó reducidos a pequeños orificios. 3 a 5 seg. 3 Venas Cu y C 2 Ausentes naces independiente 3 a 5 segm. 3 Venas Cu y C 2 nacen de una base común 1 Segmento 1 uña Patas reducidas obliteradas ó bien desarrolladas PATAS Ausentes TARSI ANTENA ALAS 1-13 seg. Hembras apteras Machos apteros ó alados (un para alar) Bien desarrolladas sobrepasan los márgenes del cuerpo ESPIRACULOS ABDOMINALES Presente 6 setas ANILLO ANAL 2. Fam. Bien desarrolladas no Presentes Reducido sin puror o Dispuestas a modo de techo de 2 aguas sobre dorsal Dispuestas en forma plana sobre el dorso OSTIOLOS DORSALES Dispuestas en una hilera de 3 placas por segmento CERARII OVISACO DE LA HEMBRA 65

DIPLOMADO EN PROTECCION DE PLANTAS CURSO 6 Margarodidae 3. Fam: Pseudococcidae 4. Fam: Dactylopiidae 5. Fam. Asterolecaniidae sobrepasan los márgenes del cuerpo Bien desarrolladas no sobrepasan los márgenes del cuerpo Bien desarrolladas no sobrepsando el margen del cuerpo Ausentes ó representadas por pequeños tubérculos 6. Fam. Coccidae Muy reducidas ó mas frecuentemente ausentes 7. Fam: Diaspididae Ausentes Ausentes setas. Ubicados caudalmente y provisto de 2 lóbulos caudales Ubicado caudalmente y provisto de 2 lóbulos 2 ó 1 a 4 circuliventrale s Ausente y sin circuli Uni-poros Uni-porus y dispuestos en grupos. caudales Ausentes Placa anal ausente Bi-proso en forma de 8 ubicados en los márgenes del cuerpo Ausentes Triangulares cubriendo completamente la apertura anal que se encuentra alejada de la cauda y con una larga y profunda incisión caudal. Formado por cera endurecida que cubre completamente el cuerpo de la hembra. Ausentes ó vestigiales Ausentes Formado por cera endurecida formado debajo de la 1º y 2º exuvia ninfal, en forma concéntrica (Aspidiotinae) ó alargado 66

SUPERFAMILIA COCCOIDEA 1. Familia Ortheziidae Las escamas blancas móviles como se les conoce comúnmente comprenden un numeroso e importante grupo de insectos, muchos de ellos de gran importancia económica; son relativamente fáciles de reconocer por que las hembras producen un ovisaco blando, blanco, alargado y con lados rectos. Aunque la mayor parte de las especies conocidas son neotropicales, este grupo se encuentra ampliamente distribuido en otras regiones biogeográficas. Estos insectos son más frecuentes en ramas de árboles, localizándose en el nacimiento de ramas u otros lugares protegidos formando colonias numerosas, algunas especies habitan en el suelo localizándose en el cuello o raíces de las plantas de diversas especies. En El Salvador, se les encuentra en pequeños brotes en plantas herbáceas. El cuerpo de la hembra es de forma oval, verde obscura o parda, toda orlada de filamentos cerosos por el borde, con una doble hilera por el dorso. El adulto es móvil, conservando sus patas y antenas de color castaño. Los machos por lo general están provistos de ojos compuestos bien desarrollados, y en algunos casos presentan tres ocelli; las antenas setiformes y la funda del aedeagus dividida y el atilus reducido en tamaño. Esta familia está representada por el género Orthezia, que comprende especies relativamente frecuentes e importantes como: O. insignis que aparentemente es polífaga y O. olivicola que constituye una de las principales plagas del olivo. En la actualidad para el Perú, además de O. olivicola Beingolea, se ha registrado la sub-especie O. pseudoinsignis Morrison con la sub-especie peruviana, descrita por Beingolea en 1971. La escama blanca móvil de los cítricos, O. praelonga Douglas, que es una plaga de cítricos en el Brasil, ha sido registrada en el Perú sobre el mismo cultivo, que también es atacado por O. citricola Beingolea. La escama blanca móvil del arroz, O. paragraminis Beingolea, que ataca al cultivo de arroz y caña brava (Arundo donax), en la costa norte del Perú, es la especie que fue citada en 1959 como O. graminis Tinsley entre las plagas del arroz en dicho país. La escama blanca móvil del algodonero, O. aurea Beingolea, es una plaga del algodonero en la costa norte del Perú. Además de estos registros de importancia económica se puede citar a O. capparisi Beingolea que ataca al zapote en los desiertos del norte del Perú. Otros registros para dicho país son: O. nigrispinus Beingolea, O. subnigrispinus Beingolea, O. grindaliae Beingolea y O. sclerotica Morrison. La especie, O. urticae L., se encuentra en los márgenes de los bosques (particularmente cerca del agua), en las riberas de los ríos y estanques, allí donde crece su planta hospedera favorita, la ortega. También se encuentra sobre otras plantas herbáceas. Es un insecto que está distribuido en una gran parte de la región Paleártica. 2. Familia Margarodidae Las escamas algodonosas comprenden un reducido número de especies, su distribución es prácticamente cosmopolita. Fácil de reconocer por su ovisaco blando; blanco y curvado a modo de una bolsa oval proyectada caudalmente al cuerpo de la hembra; está bolsa ó saco ovígero que segrega, en cuyo interior se albergan huevos y crías, hace que el insecto quede dispuesto formando un ángulo con Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 67

la superficie en que se asienta, lo que le da un aspecto característico. Esta familia incluye los Coccoidea gigantes, las hembras se caracterizan por su gran tamaño y por presentar cuerpo con segmentación definida. Los ojos compuestos están ausentes. Es una rareza encontrar a los machos que pareciere que las bajas temperaturas y la humedad propician su aparición. Los así llamados halteres presentan 4 a 6 espinas apicales. La especie más conocida y ampliamente distribuida es la escama algodonosa Icerya purchasi Maskell, insecto originario de Australia y que afecta principalmente a los cítricos, aunque también se le encuentra en plantas de mango. El nombre de escama algodonosa se debe al color blanco de las hembras adultas que presentan un aspecto de borlas de algodón, lo cual corresponde al ovisaco ceroso en el cual se incuban entre 500 1,000 huevos. Pueden llegar a medir hasta 10 mm. Aún cuando esta escama puede ser una plaga severa de los cítricos, su control por medios biológicos es perfecto. En California, en 1879, se hicieron famosos su depredador Rodolia cardinalis (Muls) y su parasitoide Chyptochaetum iceryae (Williston) que salvaron la industria de los cítricos de un verdadero colapso. En El Salvador, I. purchasi Maskell se mantiene más bien en pequeñas colonias en plantas ornamentales, sobre todo en las casuarinas ó pinos Casuarina equisetifolia Forster, y en donde es controlada por un pequeño Coccinellidae, Rodolia sp. y por un parasitoide Diptera, Syneura cocciphila Coq. La escama algodonosa es una plaga potencial que debe vigilarse para evitar cualquier perturbación en los cultivos de cítricos que puedan favorecer su invasión a los mismos. Se le ha observado en pequeñas colonias en cítrico y mango, pero invariablemente sus enemigos naturales la siguen hasta allí y controlan sus poblaciones rápidamente. Icerya similis: es otra escama algodonosa, similar a la anterior, pero en ella los ovisacos tienen una prolongación característica, cerosa y enrollada. Se le encuentra en ornamentales como palmas y en varío, Celophylum brasiliensis. También en la literatura se mencionan otros géneros importantes como: Aspidoproctus Newstead, Kuwania Cockerell, Llavexia Signoret, Margarodes Guilding, Matsucoccus Cockerell, Monophlebus Burmeister, Xilococcus Loew. Los especimenes más grandes que incluye esta familia miden hasta 25 mm y pertenecen a los géneros Llavexia Signoret y Callipappus Guerin. El género Llavexia existe en América Tropical, siendo una de las especies más típicas L. axin (Llave), que ocurre en México y es usada para la extracción de sustancias medicinales y lacas. El género Margarodes incluye especies que viven sobre las raíces de las plantas presentando patas anteriores del tipo fosorias. Las hembras de las especies de este género frecuentemente están encerradas en quistes de cera que presentan colores bronceados o dorados, por tanto son comúnmente llamadas perlas de tierra. Bajo condiciones desfavorables las hembras de estas especies pueden permanecer en un estado de latencia por uno o más años. Una vez que las condiciones ambientales se vuelven favorables las hembras emergen del estado de quiste y adquieren un aspecto similar al de las cochinillas ó piojos harinosos del género Pseudococcus y continúan su vida activa. Los miembros de este género pueden ser encontrados en la mayoría de las regiones tropicales del mundo, pero su detección es frecuentemente dificultada por los hábitos subterráneos. Existe información sobre la longevidad de la especie Margarodes vitis Giard (insecto presente en Chile y Venezuela como plaga de las raíces de la vid), indicando que entre los quistes colectados en 1899 y 1900 que fueron abiertos en 1917 se constató una hembra que aparentemente estaba con vida. De acuerdo a estos datos se puede establecer que la hembra en mención puede haber presentado una longevidad de por lo menos 17 años, situación muy importante que se tiene que tomar en cuenta en los trabajos cuarentenarios en los diferentes países. El género Eurhizococcus Morrison y Morrison, está representado en el Perú con la especie E. brasilienses (Hempel) registrada en plantaciones de té. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 68

La especie Paracoelastoma peruviana Morrison, se encuentra en la costa norte del Perú infestando árboles de zapote; también Margarodes vitis (Giard), es reportada para dicho país. 3. Familia Dactylopiidae Esta es la familia de la escama del carmin, según Ferris (1937) comprende solo el género Dactylopius Costa con un total de 4 especies, en tanto que de Lotto (1974) reconoce 9 especies, todas las cuales son específicas para cactaceae del género Opuntia. Las especies de esta familia son muy semejantes a la familia Pseudococcidae en apariencia general y sólo pueden ser diferenciadas mediante micro-preparados. Las hembras que miden 2 a 6.5 mm de longitud, son anchas y ovaladas, dorsalmente convexas y ventralmente aplanadas, con segmentación definida. Son de color rojo-brumo y están cubiertas de abundantes excreciones cerosas pulverulentas y filamentosas, observándose en muchos casos que las hembras reposan sobre una capa cerosa polvorulenta sobre la cual ovipositan. Las antenas cortas de 6 a 7 segmentos. Los machos que pueden ser ápteros o alados, presentan stylus diminuto y dos filamentos caudales. Como se dijo anteriormente, usualmente viven en cactaceae, donde son criadas desde épocas ancestrales por los indígenas de América, ya que de ellos se obtienen colorantes, especialmente el carmin, por lo que su cría se ha desarrollado industrialmente en diversas partes del mundo, siendo una de las especies más utilizadas Dactylopius cacti que es originaria de la cordillera de los Andes. Otra especie importante es D. coccus Costa, que se desarrolla sobre cactus del género Opuntia cacti. Fue empleada desde épocas pre-colombinas para preparar tintes y colorantes. Con la llegada de los españoles se organizó la fabricación de estos productos que progresivamente desplazaron a los colorantes obtenidos de Kermes ilicis. En 1826 los españoles la llevaron a las Islas Canarias para multiplicarla en escala industrial. La importancia de estas escamas se redujo drásticamente con el descubrimiento de los colorantes a base de anilinas; recientemente se ha renovado el interés en estos insectos para obtener colorantes para cosméticos y alimentos. La especie está ampliamente difundida en el Perú, especialmente en los Departamentos de Ayacucho, Cusco y Huánuco, donde se le explota industrialmente. También para el Perú se cita la especie D. confusus Cockerell sobre cactus de la especie O. exaltata. Estos insectos han sido utilizados en el control biológico de malezas. Varias especies de Dactylopius, entre las cuales se puede citar D. opuntiae (Cockerell) y D. ceylonicus Green, han sido introducidas con diversos grados de éxito a Australia, África, India y Hawai para erradicar diferentes especies de cactus que se desarrollan en aquellas zonas con carácter de plaga (maleza) en pastizales y bosques. 4. Familia Asterolecaniidae Estas escamas estacionarias, son poco frecuentes en nuestro medio; habitan plantas arbustivas de diferentes especies y en ocasiones forman agallas. Son en general insectos pequeños de forma oval, alargados mas bien cubiertos por secreciones o hundidos en una masa cerosa o con las secreciones sumamente largas, filamentosas, como hebras formando una madeja enredada. Son insectos que carecen de ojos y patas (las patas pueden ser vestigiales, representadas por pequeños tubérculos). Las antenas son cortas, la mayoría de estos insectos son especies con abundantes individuos que llegan a cubrir el tallo de las plantas atacadas, como sucede en el bambú que es afectado por Asterolecanium bambusae Bdv.; otro ejemplar muy raro lo constituye Capulinia sallei que se caracteriza por sus secreciones tan largas, fuertes y persisten, se les conoce popularmente como escamas de filamentos blancos. En el Perú, se reporta la escama amarilla, Asterolecanium pustulans Cockerell que es pequeña, amarilla de forma ovalada que está provista de filamentos de color amarillo. Puede ser observada en los tallos del algodonero. Existen especies aún no determinadas de Asterolecanium que han sido Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 69

registradas sobre cítricos y Orchidaceae en Perú. También especies no determinadas de Lecaniodiaspis han sido registradas sobre cacao y cítricos en dicho país. 5. Familia Coccidae Conocidos por algunos con el nombre de casco de soldado, que se caracterizan por ser escamas sésiles ó escamas estacionarias, siendo la segunda familia en importancia por el número de especies conocidas y por los daños que causa (la familia número uno es Pseudococcidae). Estos insectos su forma puede ser estrellada (Género Vinsonia), lisa y oval (Género Coccus), cubiertas de una serosidad notable (Género Ceroplastes) o desarrollando un saco ovigero algodonoso y grande que las desprende del hospedero (Género Pulvinaria); pero estos insectos se diferencian del resto de familias por la presencia de una escotadura abdominal, en cuyo fondo u origen se encuentra el ano, cubierto por dos placas triangulares. El tegumento puede ser apergaminado o cubierto de secreciones cerosas con o sin patas, y antenas muy reducidas. Los machos ápteros o alados, con stylus corto y comprenden gran número de especies de amplia distribución, muchas de ellas son consideradas plagas de primer orden, especialmente en plantas frutales. Usualmente causan una severa pérdida en el vigor de la planta, lo cual es seguido de la defoliación y finalmente la muerte del hospedero severamente afectado. Los daños indirectos por efectos de Fumagina ocasionan daños en la calidad y presencia de producto para consumo fresco. A continuación se mencionan algunas especies ampliamente distribuidas y de importancia económica: Coccus hesperidium L.: es la Escama parda blanda ó Escama café blanda, que ataca al caimito, cítricos, mango, zapote y muchos otros frutales y ornamentales. En El Salvador se le puede encontrar en frutos de papaya y en cítricos. Esta especie de escama afecta en las zonas tropicales y sub-tropicales del mundo a una gran variedad de plantas y es considerada una de las principales plagas de los cítricos. La Escama del mango, Coccus mangiferae Green, ataca al mango en el Perú; mientras que la Escama verde, C. viridis Green (fig. 8), es reportada sobre cafeto y cacao. Otra especie muy importante en Estados Unidos es, C. pseudomagnoliarum. El género Saissetia es una escama blanda que incluye una serie de plagas, como S. nigra (Nietner) y S. oleae (Bernard), que son de amplia distribución y atacan una serie de plantas tropicales, mientras que la Escama hemisférica, S. coffeae (Walker), es una escama común sobre cafeto, líquenes y plantas ornamentales y puede presentarse como plaga en cítrico y mango. Otra especie es S. hemisphaerica (Targ.), que también es llamada vernaculamente como Escama hemisférica tan perjudicial que se relacionan más de 45 hospederos, a los cuales en muchos casos les causa serios daños; es muy visitado por la hormiga brava, según reportes de Cuba. En el Perú, la Escama negra lisa, S. nigra ataca el árbol de anona, y en El Salvador se puede encontrar en plantas ornamentales y ocasionalmente en cítricos. La Escama negra, S. oleae Bern. es una Escama blanda de unos 5mm de diámetro, y notable por la presencia en el dorso de los adultos de una marca en forma de H. Protopulvinaria pyriformis Cockerell, es la Escama piriforme, una de las plagas más importantes del árbol del palto en Perú, causando en casos de ataques severos la defoliación de la planta. También se ha encontrado en laurel, mango, canela, alcanfor, jazmín del cabo, júpiter, cerezo y otras plantas. Lecanium corni (Bouché), es la Escama omnivora, afecta al manzano, perales y membrilleros, pero sus ataques en el Perú en contraste con lo que sucede en otros países, no son de mayor importancia económica, lo cual probablemente se puede atribuir a las condiciones ecológicas existentes y a la acción de una serie de enemigos naturales que afectan a la Escama en este país. Sin embargo la escama de la canela, L. perlatum Ckll, es un insecto que frecuentemente causa en esta el desarrollo de un fuerte ataque fungoso sobre los árboles de canela. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 70

Parthenolecanium corni Bouché, probablemente se trate de Lecanium corni (Bouché) pero algunos autores las separan. La hembra adulta tiene un cuerpo globoso, de consistencia dura y adquiere un color oscuro. El macho presenta alas y su cuerpo es amarillo. Es un insecto polífago y abundante en plantas de acacia y ciruela; en las regiones en las que se cultivan árboles frutales puede ocasionar graves daños. Vinsonia stellifera (Westw), es la Escama estrellada, que por su forma es fácil de identificar. Ataca pocas plantas, pero se le puede encontrar en aguacate. En Cuba, carece de importancia económica hasta el momento. Toumayella sp., es la Escama lomo de tortuga, que en Cuba se reporta asociada con la hormiga brava. En algunos casos es bastante perjudicial. Ceroplastes spp., incluye algunas especies que producen cera de color blanco. Así en la India y la China, la especie C. ceriferus Anderson produce cera que en la India es utilizada con fines medicinales, mientras en algunas regiones de la China, Japón, Australia y otras regiones del mundo la misma especie se ha desarrollado como una terrible plaga. La especie C. floridensis Comstock es la Escama de cera, se desarrolla en forma de plaga sobre cítricos, mango, té y otros cultivos tropicales y sub-tropicales del mundo; en El Salvador se encuentra esporádicamente en los cítricos. Es una plaga potencial de valor económico en Florida e Israel. Las formas juveniles tienen aspecto de rosetas y los adultos, recubiertos de abundante cera, adquieren un tono rosado. A veces se encuentran en colonias abundantes en plantas ornamentales tales como Terminalia sp. Desde el punto de vista histórico se debe mencionar la Escama de la cera China o pe-la, Ericerus pe-la Chavannes. Los machos de esta especie excretan cera blanca que fue colectada antiguamente para la industria de velas. 6. Familia: Diaspididae Al igual que la familia Coccidae, comprende numerosas especies de Escamas sésiles o escamas armadas ó cubiertas que causan severos daños a la fruticultura. Las hembras tienen las antenas y las patas vestigiales, o faltan en el insecto completamente desarrollado, y carecen de espiráculos abdominales y de opérculo anal. La cubierta escamosa está formada por las secreciones y las exuvias; el cuerpo blando se protege bajo la mencionada escama cobertora que adopta multitud de formas: alargadas, elípticas, ovales, redondeadas. Su reproducción puede ser sexual o partenogenética, ovíparas u ovovivíparas. Son muy dañinas y atacan multitud de plantas útiles, dispersándose las formas sobre sus hospederos jóvenes y entre otras plantas mediante los agentes naturales. Los machos son pequeños ápteros o alados, con antenas y patas bien desarrolladas; en el ápice caudal generalmente presentan dos filamentos relativamente largos (stylus). A continuación se mencionan algunas especies: Ischnaspis longirostris Sign.: es la Escama negra de hilo que se caracteriza porque se orienta en el sentido de las venas de las hojas. Es muy fácil de reconocer por su figura estrecha y alargada. Ataca plantas de jazmín, aunque suele ser más abundante en el mango, ya que también ataca a los frutales, incluso a las palmeras. Insulaspis gloverii (Pack.): es la Escama larga, que ataca a los cítricos y otros frutales; cuando daña el fruto, le da mala apariencia para el comercio sobre todo si se exporta. Xanthophthalma concinnum Ckll. y Parr: es una Escama rara, sin nombre vulgar ó común, que ataca a los cocoteros. Aspidiotus permiciosus Comstock (=Quadraspidiotus permiciosus), es la Escama de San José que es originaria del norte de China, fue dispersada por el hombre y hoy es una importante plaga en ramas y troncos de frutales, especialmente del manzano, peral, durazno, ciruela y cerezo; han sido reportadas Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 71

aproximadamente en 700 plantas hospederas. En Chile, es un insecto importante que ha ocasionado graves daños al sector frutícola desde 1930; fue declarada plaga de control obligatorio en el año 1933 debido a la magnitud de su dispersión y a la densidad del ataque. Las formas móviles del insecto corresponden tanto a la ninfa juvenil migratoria como al macho adulto y las formas fijas a los estadíos y estados que se protegen bajo una cubierta o escudo. Los estadíos que aquí se presentan no corresponden rigurosamente a la división de estados biológicos, sino más bien se han separado de acuerdo a características resaltantes que pueden ser fácilmente reconocidas por el técnico o agricultor en el campo. Lo que es importante porque están vinculadas a las decisiones de control, tales como monitoreo de machos mediante feromonas y posterior control de ninfas migratorias, control de estados fijos en invierno y evaluación del control biológico. Los notables avances logrados en la investigación de los enemigos naturales en Europa y Estados Unidos, han estimulado el estudio de la efectividad de los agentes nativos de control de la Escama de San José. En California se observó hasta un 75% de control por Aphytis aonidiae. A su vez en Alemania se encontró hasta un 90% de control por Encarsia perniciosi (=Prospaltella perniciosi), la cual fue criada en laboratorios y liberada durante 20 años. En Chile, desde 1982 se ha iniciado la introducción, multiplicación masiva y liberación del parasitoide E. perniciosi. Lepidosaphes ulmi (L.): es la Escama coma ó Escama ostreiforme, originaria del Oriente, en la actualidad está ampliamente difundida en el mundo, hospedera de una gran variedad de plantas, y en casos de ataques severos puede causar la muerte de las plantas. Lepidosaphes beckii (Newman) (=Mytilococcus beckii (Newman)), la Escama coma ó Escama púrpura, que en el pasado fue la más seria plaga de los cítricos en el Perú, en la actualidad con la introducción en 1958 de su enemigo natural Aphytis lepidosaphes Compere, ha pasado a un plano secundario. Esta Escama en casos de ataques severos pueden formar densas costras sobre tallos, ramas jóvenes, hojas, frutos, provocando el decaimiento de las plantas. Las hembras se caracterizan por presentar una Escama alargada, en forma de coma, de 2 a 3mm de largo, de color rojo púrpura o bruno negro; en cambio la escama de los machos es más corta y también más angosta que la de las hembras. Lepidosaphes gloverii: (Packard) es muy parecida L. beckii, pero su cuerpo es más delgado y menos curvo, ataca plantas de cítricos; L. alba (Cockerell) (=Aonidomytilus alba (Cockerell)) registrada en yuca; así como Lepidosaphes (Opuntiaspis) carinatus (Cockerell) que infesta el cacao. Unaspis citri Comstock, es la Escama nieve considerada la plaga que más daños causa a los cítricos de cualquier edad, atacando sus troncos, ramas, follaje y frutos. Su nombre común alude al aspecto blanco que presentan las partes del árbol infestado, por los numerosos cuerpos de los machos que son blancos. Los escudos de las hembras son oscuros y se confunden con el color de los troncos. Las infestaciones de este insecto pueden ser muy severas, al grado que los árboles pierden ramas enteras o mueren gradualmente por completo. Estas infestaciones en El Salvador ocurren generalmente al final de la época seca. Este insecto normalmente inicia las infestaciones por el tronco de los cítricos y ramas principales, pasando luego a ramas secundarias, hojas y frutos. Se alimentan como todas las escamas succionando la savia de los árboles, llegando en algunos casos a causar serios daños como rajaduras de las ramas y caída de frutos pequeños. Pinnaspis aspidistrae (Signoret), es la Escama coma blanca de los cítricos. En esta especie las hembras están cubiertas por una escama alargada en forma de coma, 1 mm de longitud, de color bruno con las exuvias ninfales en posición marginal. Los machos que son más pequeños tienen una forma alargada con una cubierta tricarinada de cera blanca; los machos permanecen reunidos en grandes colonias y llaman la atención al formar manchas blancas típicas sobre las hojas de los cítricos. Esta especie también ha sido registrada sobre las hojas de olivos provocando su defoliación y el debilitamiento general de las plantas. En cambio, en anona y palto, aparentemente es de menor importancia en el Perú. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 72

Chionaspis salicis L., son polífagas y atacan diferentes árboles y arbustos de hoja caducifolia. Las hembras miden 1.5 mm, son amarillas en su estado juvenil y después rojas, estando siempre recubiertas por un escudo de cera y quitina. Son insectos completamente inmóviles, no poseen patas ni ojos, y sus antenas están reducidas a unas minúsculas protuberancias. Las ninfas de primer estadío se pueden desplazar activamente, caminando sobre la planta y se fijan en un lugar preciso en el que muda y se transforman en ninfas inmóviles. Los machos adultos presentan un par de alas, ojos, antenas y patas pero carecen de piezas bucales desarrolladas; su periodo de vida es tan corto que no necesitan alimentarse. Pseudaulacaspis pentagona (Targioni), fue citada por Wille en 1952 como Diaspis (Aulacaspis) pentagona Targioni, es conocida comúnmente como escama blanca del melocotón. Este insecto es la principal plaga del melocotón, durazno, ciruela y de una serie de especies de la familia Rosaceae, al formar densas costras sobre las partes leñosas de los hospederos, produciendo su debilitamiento y en casos severos su muerte. Las hembras presentan una escama ovalada o circular. Selenaspidus articulatus Morg., es la Escama roja de las Indias ó Escama parda, que es una plaga potencial que fácilmente pasa al estado real de plaga, ya sea por variaciones climáticas que le son favorables o por prácticas agrícolas (residuos de insecticidas, presencia de polvo, etc.) que eliminan o interrumpen la acción de sus enemigos naturales. Su color rojo pálido y su forma redondeada se destacan en el follaje, atacando principalmente el haz de las hojas, auque puede encontrársele en los frutos. A menudo sus poblaciones explotan después que un cultivo de cítricos ha sido tratado con insecticidas para controlar otros insectos, tal como ocurrió en una plantación de la Escuela Nacional de Agricultura (ENA) y en Aguilares. Los árboles se pueden debilitar mucho con su ataque, el follaje se vuelve amarillento, y la cosecha es afectada. Chrysomphalus dictyospermi (Morgan), es conocida como Escama chata y en los países de habla Inglesa es citada como Escama roja española, se parece a la escama roja de las Indias, pero no se ha encontrado con mucha frecuencia en naranjales de El Salvador. Las hembras forman una Escama circular, muy aplanada, de color bruno a amarillento, de 1.5 mm de diámetro, con la exuvia en posición central, infesta las hojas de cítricos en Perú, causando fuertes daños sobre hojas y frutos al no contar con un control biológico adecuado. Aonidiella aurantii (Maskell), conocida en los países de habla inglesa como Escama roja de California; es mencionada en Perú, como una plaga de menor importancia en plantas de limón. Para Estados Unidos es una Plaga de gran importancia en los cítricos. En California ejercen un control los parasitoides, Camperiella bifasciata y Aphytis melinus. Chrysomphalus aonidium (Linnaeus), que es citado por Ferris en 1938 como C. ficus Ashmead, su nombre vulgar Escama redonda marrón y en los países de habla Inglesa conocida como escama roja de florida, infesta una gran variedad de hospederos y tiene una amplia dispersión, especialmente en zonas tropicales y sub-tropicales del mundo. Las hembras se caracterizan por algunas forma circular, con un punto oscuro característico en el centro de su escudo. Esta escama es un buen ejemplo de lo que es una plaga potencial. Normalmente es difícil recoger una muestra grande de esta escama, ya que el parasitoide Aphytis holoxanthus De Bach la mantiene bajo control biológico completo, este parasitoide ha sido usado con éxito en Israel y Florida, en donde sí tiene estatus de plaga. En El Salvador, pueden darse brotes fuertes cuando sus enemigos naturales son eliminados. Tal como ocurrió en una plantación de cítricos de la ENA en Junio de 1970, cuando se aplico un insecticida para el control de otro insecto. Para el Perú están reportadas las siguientes especies: C. (Acutaspis) perseae (Comstok) sobre hojas de tamarindo; C. (Acutaspis) reniformis (Cockerell) sobre hojas de cacao; C. (Acutaspis) scutiformis (Cockerell) sobre hojas de guanábana. Aspidiotus hederae (Vallot), es llamada Escama redonda del laurel, produce graves daños en los árboles de laurel; la hembra se caracteriza por presentar una escama circular, aplanada, de color blanco grisáceo con las exuvias en posición subcentral. También es hospedero del olivo. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 73

7. Familia Conchaspididae Esta es una pequeña familia que comprende aproximadamente 12 especies que provienen de las regiones tropicales del mundo. Estos insectos forman una escama similar a la de los insectos de la familia Diaspididae, pero se diferencian por el hecho que en este caso las exuvias ninfales no son incorporadas en la escama. Las hembras se caracterizan por retener las patas y antenas; por no presentar anillo anal y por presentar solo los espiráculos meso y metatorácicos. El género dominante de la familia es Conchaspis Cockerell, el cual está representada en el Perú con la especie C. angraeci Cockerell que infesta al tronco y ramas gruesas del anona, mango y rosales. 8. Familia Pseudococcidae Los Pseudococcidae también llamados Cochinillas ó piojos harinosos ó algodonosos comprenden muchas especies (solo del sur de Asia se conocen mas de 600 especies). Esta familia esta típicamente representada por el género Pseudococcus Westwood, el cual incluye un elevado número de especies que causan considerables daños tanto en la parte aérea como también en las raíces de plantas alimenticias y ornamentales. Estos insectos se pueden identificar por que en su cubierta corporal hay glándulas que segregan un material polvoriento o algodonoso ceroso de color blanco. Las hembras poseen antenas que pueden presentar en las diferentes especies un variado grado de desarrollo con un máximo de 9 segmentos. En el ovisaco depositan varios cientos de huevos (especies ovíparas) o de ninfas de primer estadío (especies ovovivíparas). Al completar la oviposición la hembra muere; el saco que contiene los huevos se encontrarán en las axilas de los tallos que se ramifican o en las hojas, ramas, yemas, botones florales, frutos y hasta en las raíces; los huevos inicialmente son de color anaranjado pero se vuelven rosados al madurar. El desarrollo de los huevos toma de 3-9 días, según las condiciones climáticas. El macho de Pseudococcidae, cuando está casi desarrollado forma una cápsula blanca algodonosa alrededor de él y dentro de ésta cápsula se transforma en adulto que es muy pequeño y débil, por lo tanto es difícil de localizar o se puede confundir con otros insectos, pues es generalmente alado (dos alas), con sus halteres peculiares, semejantes a lenguitas, por lo que puede ser fácilmente confundido con diminutas mosquitas. Sus partes bucales no están desarrolladas y son incapaces de alimentarse. Los ojos aparecen constituidos por un corto número de omatidios, confundibles con ocelos, y cuando aparecen son dos, rara vez tres ocelos, y situados en el vertex. Las antenas multisegmentadas ubicadas por delante de la cabeza, muy cercanas entre sí, a veces son plumosas. La venación de las alas, muy reducidas y rudimentarias con una vena subcosta poco evidente y corta. Las patas, sin embargo están bien desarrolladas con un solo tarso y una garra ornadas con cerdas especiales capituladas, llamadas digitules (algunas no presentan patas). El abdomen se prolonga por detrás en un órgano copulador llamado stylus, apareciendo a veces un par de apéndices caudales, sedosos, alargados y ondulados como un par de flecos. Una de las actividades importantes del macho es la copula de las hembras. El género Pseudococcus es uno de los más importantes desde el punto de vista económico, pero a la vez es preciso indicar que muchas especies antiguamente consignadas en él, en años recientes han sido reubicadas; es un género que contiene unas 157 especies. Entre las más conocidas se puede citar P. comstocki (Kuwana), plaga de cítricos oriunda de China y Japón que ha sido dispersada a diversas partes del mundo y según Lima (1942), es una importante plaga de cítricos en el Brasil, que afecta tanto a las partes aéreas de las plantas como también las raíces produciendo agallas sobre estas. Según Goncalvez (1940) la forma radicícola vive asociada con la hormiga Solenopsis saevissima var. moelleri Forel que le brinda cuidados y a la vez la dispersa. Se conocen catorce especies Pseudococcus de países del Caribe, siendo la más común y más ampliamente distribuida P. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 74

longispinus (Targioni Tozzetti), una especie polífaga con filamentos de cera posteriores muy largas, con frecuencia se le encuentra en árboles frutales, palmas y ornamentales. P. cryptus Hempel es una especie polífaga (en ocasiones se alimentan en las raíces) conocida de pocos países del Caribe; se han registrado en árboles frutales, palma y ornamentales, en ocasiones es plaga en naranjo. Existen registros de especies muy peligrosas como P. njalensis que es vector del virus del Swollen Shoot del cacao y alcanza gran importancia en las zonas donde abunda este cultivo. Las especies peruanas fueron catalogadas por Morison & Morrison (1959) y posteriormente analizadas por Salazar (1972), quien cita a P. adonidum (Linnaeus) como plaga del olivo y mango así como de diversos ornamentales. Esta especie, de amplia dispersión en el mundo, fue citada por Wille (1952) como P. longispinus (Targ.) entre las plagas del mango. Se aclara que P. neomaritimus Beardsley fue separada por Beardsley (1966) del complejo P. maritimus Ehrh., mencionado por Wille (1952) entre las plagas del algodonero, té cítricos, higuera, piña y ornamentales. Salazar (1972) cita como hospederos de esta especie al algodonero, vid y manzano así como diversas plantas ornamentales, en tanto que sobre higuera el mencionado autor constató a P. obscurus Essig. Además, Morrison & Morrison (1959) citan para el Perú al Piojo harinoso de la raíz P. probrevipes Morrison, que afecta al cafeto en la zona de Tingo María, y P. nipae (Maskell) sobre Psidium guava y palmeras; y P. gahani Green sin indicación de hospederos. Pseudorhizoecus proximus Green, es la única especie descrita y se caracteriza por tener un cuerpo robusto con antenas de 5 segmentos aguzadas hacia el ápice; sin ojos, cerarii ó lóbulos anales. Puede ser común en las raíces de plantas en Centro y Sur América; los hospederos registrados son café, cacao y banano. En género Plotococcus comprende tres especies conocidas que son del Neotropico, dos de ellas en países caribeños. P. eugeniae Miller & Deno se conoce de Costa Rica sobre Laureles, Myrtaceae y Oleaceae. P. neotropicus Williams & Granara de Willink tiene una distribución un poco más amplia y se ha registrado sobre mamey, mango, banano, cocotero, naranjo, cacao y ornamentales. P. minutus (Hempel), reportada en plantas de cítricos en Brasil. El género Planococcus es originario del viejo mundo y contiene 39 especies descritas. El Piojo harinoso de los cítricos, P. citri (Risso), es una especie cosmopolita que afecta a una gran variedad de hospederos entre los cuales los cítricos y diversos frutales son atacados seriamente. Willi (1952) mencionó esta especie con el nombre de P. citri (Risso) entre las plagas del algodonero, cacaotero, cítricos y ornamentales. Lima (1942) citó a esta especie como plaga en raíces del cafeto en Brasil y Africa Oriental. Este insecto no es una plaga real en los cítricos de El Salvador, aunque sí lo es en otros como Israel y Líbano. Forma colonias en los gajos de frutas verdes, o en los puntos de contacto entre fruto y fruto, o de los frutos con las hojas, por la protección que le ofrecen esos microclimas. Sus colonias se forman también en las depresiones de las naranjas Washington. P. kraunhiae (Kuwana), según Salazar (1972), ataca en el Perú a la Grama china, Sorghum halepense, en el cuello de la raíz. El Piojo harinoso de la piña, Dysmicoccus brevipes (Cockerell), es una importante plaga de piña ampliamente difundida en el mundo. Willi (1952) la cita para el Perú como Pseudococcus brevipes (Cockerell) entre las plagas de la palma aceitera africana, donde se desarrolla sobre las raíces, en tanto que Lima (1942) la menciona para el Brasil como importante plaga de la piña, que además ataca las raíces y la parte aérea de la caña de azúcar, plátano, palto y otros. En El Salvador, se reporta en piña infestando las raíces, provocando amarillamiento de las hojas, necrosis en los extremos y debilitamiento general de la planta. Por regla general transmite un virus conocido como Wilt o marchites, no observado aún en El Salvador. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 75

La Cochinilla rosada de la caña de azúcar, Saccharicoccus sacchari (Cockerell), está ampliamente difundida en las zonas cañeras del mundo. Esta especie que afecta la base de las hojas de la caña fue citada por Wille (1952) como Pseudococcus sacchari (Cockerell), y por otros con el nombre de Trionymus sacchari Ckll. El género Phenacoccus contiene 178 especies y está representado en el Perú por 5 especies de las cuales El Piojo harinoso del algodonero, P. gossypii Townsend & Cockerell es la más importante. Según Salazar (1972) esta especie desde 1965 se presenta con carácter de plaga en los algodonales de los valles de la costa norte del Perú. Posteriormente se le ha encontrado también en otros valles y en diversos ornamentales, tanto al aire libre como en invernaderos. Morrison & Morrison (1959) citan además a P. herbarum Lindinger y P. solani Ferris que fueron registra en Solanaceae. P. selenopsis Tinsley, reportada para varios países (Cuba, R. Dominicana, Ecuador, México y Panamá). El género Paracoccus es muy difícil de identificar. De las 79 especies, cuatro han sido registradas de países del Caribe, aún cuando es probable que sus distribuciones originales estuviesen confinadas a Centro y Norte de Sur América. De éstas especies, P. marginatus Williams & Granara de Willink, está en Belice, Costa Rica y Guatemala, y se ha convertido en una plaga en las Islas Vírgenes, Antigua, St Kitts y Nevis. Ataca yuca, papaya y la planta silvestre Parthenium hysterophorus, causando síntomas que pueden confundirse por Maconellicoccus hirsutus (Green); no obstante, el cuerpo de P. marginatus es de color amarillo in vivo y no rosado. Ferrisia virgata (Cockerell), tiene un amplio rango de hospederos y está muy dispersada en cultivos del algodonero en las zonas tropicales y sub-tropicales del mundo. Según Lima (1942), causa serios daños en este cultivo en el noroeste del Brasil. Morrison & Morrison (1959), la registraron para el Perú sobre el algodonero en el Valle de Piura, e indicaron además que la especie ha sido registrada sobre Tectona grandis en la zona de Tingo María. Salazar (1972) anotó que esta especie puede ser observada en forma esporádica en campos abandonados del algodonero en el Valle de Piura, por lo que se considera que no tiene mayor importancia económica en nuestro medio. En El Salvador ya fue reportado en plantas de cítricos en 1970. El género Trionymus Berg, comprende un amplio número de especies que generalmente infestan gramíneas. Morrison & Morrison (1959) citan para el Perú a T. sacchari (Cockerell), la cual según Wille (1952) infesta a la caña de azúcar, pero indica que por la falta de hormigas simbióticas en nuestro medio es mucho más rara que en otros países. A su vez, Salazar (1972) cita a T. vallis Ferris que ocurre en las vainas de las hojas del gramalote, Panicum barbinode, en el valle del Rimac y Acarí. T. radicicola (Morrison), se alimenta en las raíces de caña de azúcar y ha sido registrada de Antigua, Colombia, Cuba, Jamaica, Puerto Rico y St Kittsi; en Cuba causa la muerte de las plantas de caña de azúcar por sus actividades alimentarías en las raíces. Del género Palmicultor se han descrito cuatro especies, alimentándose principalmente en palma (una especie en bambú). P. palmarum Ehrhom, es nativa de la India y Sur de Asia, se conoce también de Centro América, Bahamas, Bermuda y Jamaica en palmas y Pandanaceae; puede producir daños de importancia a brotes de cocotero en vivero. El género Antonina consta de 17 especies de las cuales sólo A. graminis (Maskell) está presente en el Caribe. Es originaria de China, de donde se dispersó a Hawai, U.S.A y Panamá, fue registrada por Salazar (1972) en toda la costa del Perú sobre Grama China Sorghum halepense. Esta Cochinilla apoda con antenas de dos segmentos puede llegar a ser dañina, si no se maneja adecuadamente. El género Puto Signoret está representado en el Perú con P. usingeri Mackenzie registrada por Salazar (1972) en Cusco y Palpa, infestando en esta última localidad al follaje de Pájaro Bobo, Tessaria integrifolia. Morrison & Morrison (1959) mencionaron una especie no identificada de este género pero sin consignar el hospedero; y recientemente en 1979, D.R. Miller del U.S.D.A. identificó una nueva plaga en las raíces del cafeto, registrada por R. Yaya en la zona de Jaén, como P. ulter Ferris. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 76

La única especie de amplia distribución es P. barberi (Cockerell), la cual es polífaga sobre hospederos en su mayoría leñosos, incluyendo Persea, cafeto, naranjo, cacao y varios ornamentales. Actualmente 56 especies son incluidas en este género. Nipaecoccus es un género cuyos cuerpos se tornan pardos o negros en KOH y son difíciles de preparar en laminillas. Con frecuencia tienen el cuerpo azul-verdoso a violáceo en vida (volviéndose negros en alcohol etílico). De las 42 especies descritas, 25 son conocidas de Centro y Sur América y 11 del Caribe. N. nipae (Maskell), la única especie con distribución amplia en el Caribe, es polífaga, alimentándose en plantas de 43 familias, y es común sobre palmas y árboles frutales. N. coffeae (Hempel), es reportado en plantas de cafeto en Brasil. El género Rhizoecus comprende 118 especies descritas; existen muchas especies por descubrir y describir. Según Lima (1942) R. coffeae Laing, es una importante plaga del cafeto en el Brasil; ataca las raíces causando la muerte de las plantas, y según Pickel (1927-1929) y Lima (1928) conviven en forma simbiótica con la hormiga Rhizomyrma pickeli Borgmeier. Morrison & Morrison (1959) citan además una especie no identificada que fue registrada sobre raíces de Piperaceae. Neochavesia es un género que vive en estrecha asociación con hormigas, su extraña apariencia de forma aperada y lóbulos anales muy prominentes. Cuatro especies ocurren en el Caribe y se alimentan en las raíces de los hospederos. N. caldasiae (Balachowsky), registrada en banano y daña el cafeto, ocurre en Colombia y Trinidad. N. eversi (Beardsley) se alimenta de los mismos hospederos en Colombia y Panamá, mientras que N. trinidadensis (Beardsley) se encuentra en cafeto y cacao en Colombia y Trinidad; el hospedero de N. weberi (Beardsley), de Guyana, es desconocido. Geococcus es un género de cochinillas pequeñas de lóbulos anales prominentes, se alimentan en las raíces de las plantas; los lóbulos anales están esclerotizados con gruesas setas dándole al ápice del abdomen una apariencia de pinzas. De las siete especies conocidas, sólo G. coffeae Green está en el Caribe, con una amplia distribución; es polífaga registrándose en 29 familias de plantas incluyendo el cafeto, papa, soya, naranja, chile picante, tabaco, cacao, uvas, etc. Hypogeococcus sus cuerpos se tornan pardos ó negros en KOH y son difíciles de preparar en laminillas. Once especies se han registrado, de las cuales cuatro están presentes en el Caribe. H. pungens Granara de Willink, forma colonias densas en masas de cera blanca lanosa muy similar a Maconellicoccus hirsutus (Green), pero se diferencia por la ausencia total de poros triloculares y la presencia de 2 ó 3 circuli en una fila cerca de la línea central del vientre. Esta especie suramericana ha sido registrada recientemente de varias islas del Caribe; tiene preferencia por plantas suculentas, pero también se le ha registrado en vegetación silvestre herbácea y plantas ornamentales. Maconellicoccus son insectos que su cuerpo se torna pardo ó negro en KOH y son difíciles de preparar en laminillas. Comprende ocho especies y sólo M. hirsutus (Green) está presente en el Caribe y el Norte de Sur América, donde fue introducida accidentalmente desde el sudeste asiático. En el Caribe es fácil reconocerla por sus antenas de 9 segmentos, más de una fila de conductos tubulares con anillo oral a través de cada segmento y la presencia de la barra del lóbulo anal. Como insecto exótico en la región las perspectivas de control biológico clásico son buenos. Las especies caribeñas que pueden ser confundidas en el campo con dicha cochinilla son: Hypogeococcus pungens Grada de Willink, Paracoccus marginatus y Phenacoccus solenopsis. Otras familias que pueden confundirse en el campo con M. hirsutus (Green) son: Coccidae (Acanthococcus dubius, con frecuencia encontrado en Hibiscus pero tienen una cubierta cerosa más dura) y la Familia Margarodidae representada por Icerya purchasi, la cual se alimenta de plantas leñosas incluyendo Hibiscus, produciendo un ovisaco esculpido que deja el cuerpo naranja parduzco del insecto expuesto; el género Margarodes, bajo condiciones desfavorables las hembras forman un estado de quiste y cuando los factores ambientales son favorables adquieren un aspecto similar al de los Pseudococcidae. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 77

Chorizococcus comprende unas 47 especies descritas, muchas se alimentan en gramíneas. Las tres especies conocidas para la región del Caribe son: C. caribaeus Williams & Granara de Willink, C. rostellum (Lobdell) y C. nakaharai Williams & Granara de Willink. Chaetococcus se conocen cinco especies que son apodas de antenas de dos segmentos, se alimentan en pastos, bambú y junco. Sólo C. bambusae (Maskell), que es específica en bambú, se ha registrado de países del Caribe (Jamaica, Panamá, Trinidad y las Islas Vírgenes). El género Brevennia consta de 7 especies descritas; sólo B. rehi (Lindinger), se conoce del Caribe, de Puerto Rico y las Islas Vírgenes. Se alimentan en la parte interna de las vainas foliares de gramíneas, Cyperaceae y Juncaceae. En ocasiones pueden causar daños grandes al arroz y pastos. Capitisetella migrans (Green), se encuentra en Colombia, Guyana, Surinan y Trinidad en las raíces de cafeto asociadas con hormigas, éstas últimas llevan a las cochinillas en sus mandíbulas durante las enjambrazones. El género Cataenococcus tiende a ser redondeado, con patas cortas y robustas, el ano frecuentemente está localizado en el segmento abdominal VII. Este género de 22 especies descritas necesita urgentemente una revisión; ocho especies han sido registradas para la región: C. guatemalensis (Ferris) está ampliamente distribuida sobre orquídeas y Bromelias; C. ingrandi Balachowsky, de distribución más restringida, es relativamente polífaga y ha sido registrada sobre banano; C. larai Williams también de banano; C. taylori Williams & Granara de Willink y C. theobromicola Williams & Granara de Williank han sido registradas sólo en Colombia sobre Theobroma subincanum. Los Pseudococcidae de importancia económica y los que pueden ser de amenaza cuarentenaria para la región del Caribe (Watson, G.W. & Chandler, L.R, 2000). Géneros de Especies que pueden ser Especies que pueden ser amenazas importancia amenazas cuarentenarias para la cuarentenarias dentro de la región económica en la región del Caribe. del Caribe. región del Caribe. 01- Dysmicoccus Dysmicoccus cocotis (Maskell) Dysmicoccus texensis (Tinsley) 02- Pseudococcus Pseudococcus saccharicola Pseudococcus viburni (Signoret) (Takahoshi) 03- Cataenococcus Cataenococcus hispidus Maconellicoccus hirsutus (Green) (Morrison) 04- Palmicultor Coccidohystrix insolita (Green) Palmicultor palmarum (Heron). 05- Nipaecoccus Nipaecoccus viridis (Newstead) Paracoccus marginatus (Williams & Granara de Willink.) 06- Paracoccus Rastrococcus spp. Phenacoccus solenopsis (Tinsley) 07- Phenacoccus Planococcus lilacinus (Cockerell) 08- Antonina 09- Brevennia 10- Capitisetella 11- Chaetococcus 12- Chorizococcus 13- Ferrisia 14- Geococcus 15- Hypogeococcus 16- Maconellicoccus 17- Neochavesia 18- Planococcus 19- Plotococcus Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 78

20- Pseudorhizoecus 21- Puto 22- Rhizoecus 23- Saccharicoccus 24- Trionymus PLAGAS DE LOS FRUTALES Plagas de los frutales Especies Ubicación Nombre Común taxonomica 1. Papaya Toxotrypana curvicauda Diptera, Tephritidae Mosca de la papaya Aphis citricola Homoptera, aphididae Afido, pulgones Aphis cracivora Homoptera, aphididae Afido, pulgones Aphis illinoisensis Homoptera, aphididae Afido, pulgones Rhopalosiphum maidis Homoptera, aphididae Afido, pulgones Dialerudes sp Hopoptera, Aleyodidae Mosca blanca Aleurodes sp Hopoptera, Aleyodidae Mosca blanca Empoasca papayae Hopoptera, cicadellidae Chicharrita, cigarrita Eotetranychus sp Acarina, tetranychidae Acaros Panonychus sp Acarina, tetranychidae Acaros Tetranychus sp Acarina, tetranychidae Acaros Oligonychus Acarina, tetranychidae Acaros Atta mexicana Hymenoptera, formicidae Hormigas Acromyrmex spp Hymenoptera, formicidae Hormigas Rhynchophorus palmarum Coleoptera, curculionidae Picudo del coco Piazurus sp. Coleptera, Curculionidae Picudo del Pseudotallo Phyllophaga spp Coleoptera, Gallina ciega Scarabaeidae Erinnyis alope Lepidoptera, Sphingidae Gusano cachon 2. Cítricos Unaspis citri Homoptera, diaspididae Escama nieve Selenaspidus articulatus Homoptera Escama roja de las indias Lepidosaphes bekii Homoptera Escama purpura Chrysomphalus aonidum Homoptera Escama roja de florida Chrysomphalus ficus Saissetia nigra Saissetia oleas Saissetia hemisphaerica Homoptera Escama negra lisa Coccus viridis Homoptera, coccidae Escama verde Coccus hesperidum Icerya purchasi Homoptera Escama algodonosa o australiana Icerya similis Ceroplastes floridensis Homoptera Escama cera Planococcus citri Homoptera, Piojo de los citricos pseucoccidae Dialeurodes citri Homoptera, aleyrodidae Mosca blanca Aleurothrixus floccosus Homoptera, aleyrodidae Mosca blanca lanuda Aleurocanthus woglumi Homoptera, aleyrodidae Mosca prieta de los cítricos Aphis spiraecola Homoptera, aphididae Pulgon verde Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 79

Toxoptera aurantii Homoptera, aphididae Pulgon negro Aphis gossypii Homoptera, aphididae Pulgon del algodón Anastrepha fraterculus Diptera, Tephritidae Mosca de la fruta A. mombinpraeoptans Anastrepha ludens Diptera, Tephritidae Mosca de la fruta A. striata A. serpentina Ceratitis capitata Diptera, Tephritidae Mosca del mediterraneo Atta mexicana Hymenoptera, formicidae zompopos Trigona sp Hymenoptera, Apidae Abeja negra Papilio cresponte Lepidoptera, papilionidae Perro de los citricos, mariposa amarilla Cotinis mutabilis Coleoptera, Ron Ron Scarabaeidae Phyllocoptruta oleivora Acarina Acaro tostador Poliphagotarsonemus latus Acarina Acaro blanco Phyllocnistis citrella Lepidoptera Minador de los cítricos Lonsdorphia sp Lepidoptera Gusano descortesador del tallo de los citricos 3. Mango Anastrepha ludens A. striata A. Serpentina Diptera, Tephritidae Mosca de la fruta A. fraterculus Ceratitis capitata Diptera, Tephritidae Mosca del mediterraneo Aulacaspis mangifera Homoptera, Diaspididae Escama nieve Icerya purchasi Homoptera, Escama algodonosa Margarodidae 4. Maracuya Dione Juno Juno Lepidoptera, Nynphalidae Gusano negro del maracuya Leptoglosus zonatus Hemiptera, Coreidae Chinche patas anchas Anastrepha sp Diptera, Tephritidae Mosca de la fruta Ceratitis capitata Diptera, Tephritidae Mosca del mediterraneo Myzus persicae Homoptera, aphididae Pulgones Aphis gossypii Homoptera, aphididae Pulgones Tetranychus sp Acarina Tetranychidae Araña roja Poliphagotarsonemus sp Acarina, tarsonemidae Acaro blanco 5. Coco Rhynchosphorum palmarum Coleoptera, curculionidae Picudo del coco Aspidiotus destructor Homoptera, Coccidae escama aspidiotus Chrisomphalus aonidium Homoptera Escama roja dse florida Aonidiela orientalis Homoptera Escama oriental Cerataphis letaniae Homoptera; Aphididae Afido de las palmeras Eriophys guerreronis Acarina, Eriophydae Cara del coco Myndus crudus Homoptera, Cixiidae Chicharrita pálida Rhina barbirostris Coleoptera, curculionidae Picudo barbudo del coco Xiloborus sp Coleoptera, scolytidae Escarabajo Strategus aloeus Coleoptera, Scarabaeidae Escarabajo Oryctes rhinoceros Coleoptera, Scarabaeidae Escarabajo Brontispa longissima (=B. Coleoptera fraggatti) Coelaemenodera sp Coleoptera, Hispidae Minador de la hoja Promecotheca spp Coleoptera, Hispidae Minador de la hoja del cocotero Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 80

Castnia daedalus Lepidoptera, Castniidae Gusano del tallo Setora nitens Lepidoptera, Liamcodidae Gusano babosa Tirathoba spp Lepidoptera, Galleriidae Gusano de la flor Nephantis serinopa Lepidoptera, Cryptobasiidae Gusano del enves de la hoja del cocotero Hidari irava Lepidoptera, Hesperidae Gusano de la hoja del cocotero Brassolis sophorae Lepidoptera, Brassolidae Gusano del follaje Aleurodicus destructor Homoptera, Aleyrodidae Mosca blanca Pseudotheraptus wayi Hemiptera, Coreidae Chinche Amblypelta cocophaga Hemiptera, Coreidae Chinche Graeffea crouani Orthoptera, Phasmidae Insecto alo del cocotero Seriva spp Orthoptera, Tettigonidae Grillo 6. Anona Bephrata cubensis 7. Nispero Hymenoptera, Eurytomidae Perforador del fruto Anastrepha serpentina Diptera, Tephritidae Mosca de la fruta Zamagiria laidion Gusano cogollero del nispero Callichroma vittata Barrenador del nispero Nasutitermes guayanae Isoptera, Ceratitis capitata Diptera, Tephritidae Mosca del mediterraneo Conotrachelus sp Coleoptera, Curculionidae Picudo de las sapotáceas 8. Aguacate Copturus aguacatae Coleoptera, curculionidae Barrenador de las ramas del aguacate Priomerus carinatus Coleoptera, Picudo minador de la hoja del aguacate Curculionidae Stenoma catenifer Lepidoptera, stenomidae Barrenador de la semilla Conotrachelus persea Barrenador de la semilla Heilipus lauri Barrenador de la semilla Amorbia emigratella Enrrollador de la hoja Amorbia cunneana Gracilaria sp Pegador de la hoja Trioza anceps Homoptera, Psyllidae Agalla de las hojas Oligonychus punicae Acarina, tetranychidae Araña roja Frankliniella sp Leptotrips sp Scirtothrips sp Plyllophaga spp 9. Marañon Leptoglossus zonatus (Dallas) Hemiptera, coreidae Chinche patas de hoja Atta mexicana Hymenoptera, formicidae Zompopos Selenotrips rubrocinctus Thysanoptera, Thripidae Trips de banda roja Tetranychus sp Acarina, tetranychidae Araña roja Trigona silvestrianum Hymenoptera, apidae Abeja negra Nasutitermes spp Heterotermes spp 10 Zapote Isoptera Isoptera Pseudalacaspis pentagona Escama Tetranychus bimaculatus Acarina, tetranychidae Araña roja Nasutitermes costalis termitas Atta sp Hymenoptera, formicidae zompopos Anastrepha serpentina Diptera, Tephritidae Mosca de la fruta Ceratitis capitata Diptera, Tephritidae Mosca del mediterraneo Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 81

11. Arrayan Anastrepha striata Diptera, Tephritidae Mosca de la fruta 12 Musaceas Cosmopòlites sordidus Coleoptera, curculionidae Picudo negro del banano Euphoria yucateca Coleoptera, curculionidae Escarabajo de las hojas Metamasius serius Coleoptera, curculionidae Picudo rojo del banano Metamasius hemipterus Coleoptera, curculionidae Picudo rayado del banano Corycera panamensis Hemiptera, Tingidae Chinche de encaje Corytucha gossypii Hemiptera, Tingidae Chinche de encaje Trigona sp Hymenopters, Apidae Abeja negra Frankliniella sp Trips de la flor del banano Sibine sp Lepidoptera Gusano de montura defoliador Oiketicus kirbyi Lepidoptera Gusano cartucho o de bolsa defoliador Opsiphanes tamarindi Lepidoptera Gusano defoliador Caligo memnom Lepidoptera Gusano defoliador Ceramidia sp Lepidoptera Gusano defoliador 13 Guayabo Coccus viridis Homoptera, coccidae escama verde Cleistolophus sp Coleoptera, curculionidae Ceratitis capitata Diptera, Tephritidae Mosca del mediterraneo Anastrepha sp Diptera, Tephritidae Mosca del mediterraneo Cotinus mutabilis Coleoptera, Scarabaeidae Ron Ron Leptoglosus sp Hemiptera, Cureidae Chinche patas de hoja 14. Piña Dysmicoccus (Pseudococcus) brevipes Homoptera, pseudococcidae Piojo harinoso Rynchosphorus palmarum Coleoptera, curculionidae Picudo del coco Coleoptera, Ron Ron Cotinus mutabilis Scarabaeidae Thecla sp Gusano del fruto PLAGAS RIZOFAGAS Plagas rizofagas PLAGA ORDEN NOMBRE PLANTAS REFERENCIAS COMUN HOSPEDEROS A. Familia Scarabaeidae Phyllophaga Coleoptera Gallina ciega, Maíz, fríjol, arroz, café, Berry P. (1959) menetriesi (Blanch.) chorontoco sorgo. Phyllophaga latipes Coleoptera Gallina ciega, Jocote, maíz, café Berry P. (1959) (Bates) chorontoco Phyllophaga yucateca (Bates) Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Café, jocote, aguacate, granada Andrews et al (1979) Phyllophaga dasypoda (Bates) Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Almendro, jocote, café, granada Andrews et al (1979)-King y Saunder (1984) Phyllophaga obsoleta Coleoptera Gallina ciega, Maíz, pasto, sombra Bruno (1970) Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 82

(Blanch.) chorontoco de café, almendro, fríjol, maleza, jocote Phyllophaga fulviventris (Moser) Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Phyllophaga elenans Coleoptera Gallina ciega, Maíz, fríjol, sorgo, (Saylor) chorontoco anona Phyllophaga parvisetis (Bates) Phyllophaga sanjosecola (Saylor) Phyllophaga valeriana (Saylor) Phyllophaga tumulosa (Bates) Coleoptera Coleoptera Coleoptera Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Gallina ciega, chorontoco Gallina ciega, chorontoco Gallina ciega, chorontoco Phyllophaga zunilensis (Bates) Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Phyllophaga cometes Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Phyllophaga aequata Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Phyllophaga vicina (moser) Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Cyclocephala lunulata Coleoptera Gallina ciega, (Burm.) chorontoco Cyclocephala mafaffa Coleoptera Gallina ciega, (Burm.) chorontoco Cyclocephala signata Coleoptera Gallina ciega, (Drury) chorontoco Cyclocephala multiplex Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Cyclocephala detecta Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Cyclocephala spp Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Anomala cineta Var. Coleoptera Gallina ciega, Costa Rica chorontoco Anomala foraminosa Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Anomala Coleoptera Gallina ciega, testaceipennis (Bl.) chorontoco Anomala cinsta (Say) Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Anomala inconstans Coleoptera Gallina ciega, (Burm.) chorontoco Anomala trapezifera Coleoptera Gallina ciega, (Bates) chorontoco Anomala veraecrucis Coleoptera Gallina ciega, (Bates) chorontoco Anomala cupricollis Coleoptera Gallina ciega, (Chevr.) chorontoco Anomala hitidula Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Anomala pos- flavilla Coleoptera Gallina ciega, chorontoco Anona, tamarindo Gramineas Gramineas Gramíneas Papa Cedro Café, madrecacao King A. (1984) Andrews et al (1979)-King y Saunder (1984) Andrews et al (1979)-King y Saunder (1984) King y Saunder (1984) King y Saunder (1984) Andrews et al (1979)-King y Saunder (1984) King y Saunder (1984) Andrews et al (1979) Andrews et al (1979)-King y Saunder (1984) Sorgo, maíz Merino C. (1988) Maíz, pasto, sorgo, Berry P. (1957) cítricos Gramineas Berry P. (1957) Gramineas Berry P. (1957) Gramíneas Andrews, et al (1979) Gramíneas Salazar, (1959) Fríjol, caña de azúcar Berry P. (1957) Pastos Salazar, (1959) Andrews (1979) Rosas, ornamentales, Berry P. (1957) fríjol Rosas, ornamentales Berry P. (1957) Maíz, café, fríjol Wellborn (1934) Gramíneas Berry P. (1957) Gramíneas Berry P. (1957) Café Berry P. (1957) Maíz Berry P. (1957) Maíz Andrews et al (1979) Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 83

Anomala spp Coleoptera Gallina ciega, Kenaf, cítricos, fríjol, Berry P. (1957) chorontoco caña de azúcar Lygirus (Bothynus) Coleoptera Escarabajo de la Girasol, maíz, sorgo, Berry P. (1957) nasatus (Burn) raíz lechuga, hortalizas Lygirus (Bothynus) ebanus Coleoptera Escarabajo de la raíz Gramíneas Berry P. (1957) Lygirus sp m. pygidialis Coleoptera Escarabajo de la raíz Gramineas Berry P. (1957) Lygirus sp Coleoptera Escarabajo de la raíz Algodón ESCOBAR, J.C (1984) Euetheola bidentata Coleoptera Carapachudo Maíz, arroz, sorgo Berry P. (1957) (Burm.) Canthon viridis Coleoptera Escarabajo de la Gramíneas Cruz, O. (1985) champion (Bares) raíz Canthon chevrolati Coleoptera Escarabajo de la Maíz, sorgo Berry P. (1957) (Har.) raíz Pelidnota vivescens Coleoptera Gallina ciega, Frijol Berry P. (1957) chorontoco B. FAMILIA ELATERIDAE Aeolus pictus Coleoptera Gusano de alambre Fríjol, maíz, pasto, pastos, Caña de Berry P. (1957), Procafe, 2001 azúcar, café Conoderus pilatus Coleoptera Gusano de Fríjol, maíz, sorgo Berry P. (1957) alambre Conoderus varians Coleoptera Gusano de Fríjol, maíz, sorgo Mancia,J. 1971 alambre Agriotes sp Coleoptera Gusano de Fríjol, maíz, sorgo, Mancia,J. 1971, alambre Melanotus sp Coleoptera Gusano de alambre C. FAMILIA TENEBRIONIDAE Epitragus emarginatus Coleoptera Piojos de zope, (champ.) carapachudo Epitragus sallei (champ.) Coleoptera Piojos de zope, carapachudo Epitragus aurulentus Coleoptera Piojos de zope, carapachudo Epitragus spp Coleoptera Piojos de zope, carapachudo café Fríjol, maíz, sorgo, café Procafe, 2001 Berry P. (1957), Procafe, 2001 Sorgo, maíz Berry P. (1957) Arroz, maíz, hortalizas, Berry P. (1957) fríjol, Sorgo, kenaf Caña de azúcar, fríjol Berry P. (1957) Fríjol, caña de azúcar, Berry P. (1957) algodón, cítricos, arroz, sorgo Maiz, arroz Berry P. (1957) Blapstinus interstitalis (champ.) Coleoptera Piojos de zope, carapachudo Blapstinus spp Coleoptera Piojos de zope, Maíz, arroz, algodón, Berry P. (1957) carapachudo fríjol Ulus sp Coleoptera Piojos de zope, Arroz, maíz, ajonjolí, Berry P. (1957) carapachudo sorgo, fríjol D. FAMILIA CYDNIDAE Cyrtomenus grassus Hemiptera Chinche negra de Maíz, fríjol, arroz, M,R, Cortez. 1977 Cyrtomenus bergi la raíz pastos Pangaeus rugiceps Hemiptera Chinche negra de Arroz, fríjol, pastos M,R, Cortez. 1977 la raíz Pangaeus piceatus Hemiptera Chinche de la raíz Arroz, fríjol, pastos Berry P. (1957) E. LARVAS DE Berry P. (1957) CHRYSOMELIDAE Diabrotica balteata Coleoptera Tortuguillas Berry P. (1957) Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 84

D. viridula Coleoptera Tortuguillas Berry P. (1957) D. adelpha Coleoptera Tortuguillas Berry P. (1957) D. nummuralis Coleoptera Tortuguillas Berry P. (1957) D. porracea Coleoptera Tortuguillas Berry P. (1957) D. fuscumaculata Coleoptera Tortuguillas Mancia,J. 1971 Cerotoma ruficornis Coleoptera Tortuguillas Mancia,J. 1971 C. salvini Coleoptera Tortuguillas Mancia,J. 1971 C. atrosfasciata Coleoptera Tortuguillas Berry P. (1957) Colaspis spp Coleoptera Tortuguillas Berry P. (1957) Nodonota sp Coleoptera Tortuguillas Berry P. (1957) Diphaulaca sp Coleoptera Tortuguillas Berry P. (1957) F. FAMILIA PSEUDOCOCCIDAE Dysmicoccus bispinosus Homoptera Piojo blanco de la raíz principal y secundarias del cafeto Geococcus coffeae Homoptera Piojo blanco de la cabellera G. FAMILIA CURCULIONIDAE Listronotus dietrichi Coleoptera Picudo de la raíz y el tallo del maíz Cosmopolites sordidus Coleoptera Anacentrinus subnudus H. FAMILIA NOCTUIDAE Agrotis subterranea Agrotis ipsilon Agrotis malefida Agrotis repleta Spodoptera spp Coleoptera Picudo de las musaceas Picudo de los brotes y raíz de la caña de azúcar Lepidoptera Gusanos tierreros, hacheros Lepidoptera Gusanos tierreros, hacheros Lepidoptera Gusanos tierreros, hacheros Lepidoptera Gusanos tierreros, hacheros Lepidoptera Gusanos tierreros, hacheros Heterotermes sp Isoptera Termitas Café Procafe, 2001 Café Procafe, 2001 Maíz, pastos Escobar, B. 1988 Musaceas Caña de azúcar, fríjol BERRY, 1959 Sandia, tabaco, arroz, maíz, tomate, café repollo, algodón Berry P. (1957), mancia, 1971, Procafe, 2001 Frijol, maíz, hortalizas BERRY, 1959 Fríjol, maíz, hortalizas BERRY, 1959 Sandia, tomate, hortalizas, papa BERRY, 1959 Café, cacahuate BERRY, 1959 Caña de azúcar, maíz, Sorgo, Jícama Sermeño, J. M., 2003 PLAGAS DE LAS LEGUMINOSAS Plagas de Legumninosas Phyllophaga menetriesi Coleoptera, Scarabaeidae Gallina ciega Phyllophaga spp Coleoptera, Scarabaeidae Gallina ciega Macrodactylus sp Coleoptera, Scarabaeidae Frailecillo Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 85

Apion godmani Coleoptera, curculionidae Picudo de la vaina del frijol Chalcodermus anneus Coleoptera, curculionidae Picudo de la vaina de la vigna Epicauta sp Coleoptera, meloidae Chinche botijonas Lytta sp Coleoptera, meloidae Chinche botijonas Pyrota sp Coleoptera, meloidae Chinche botijonas Diabrotica balteata Coleoptera, Chrysomelidae Tortuguillas Diabrotica ocellata Coleoptera, Chrysomelidae Tortuguillas Diabrotica nummuralis Coleoptera, Chrysomelidae Tortuguillas Diabrotica porracea Coleoptera, Chrysomelidae Tortuguillas Diabrotica adelpha Coleoptera, Chrysomelidae Tortuguillas Diabrotica atrofasciata Coleoptera, Chrysomelidae Tortuguillas Cerotoma sp Coleoptera, Chrysomelidae Tortuguillas Cerotoma ruficornis Coleoptera, Chrysomelidae Tortuguillas Colaspis hypochlora Coleoptera, Chrysomelidae Tortuguillas Colaspis lebasi Coleoptera, Chrysomelidae Tortuguillas Lema sp Coleoptera, Chrysomelidae Tortuguillas Typophorus sp Coleoptera, Chrysomelidae Tortuguillas Epilachna varivesti Coleoptera, coccinellidae Conchuela del frijol Trigona sp Hymenoptera, apidae Abispa negra Bemisia tabaci Homoptera, aleyrodidae Mosca blanca Aphis craccivora Homoptera, aphididae Pulgon negro Aphis fabae Homoptera, aphididae Pulgon Empoasca kraemeri Homoptera, cicadellidae Chicharrita del frijol Hortensia similis Homoptera, cicadellidae Saltahojas spissistilus festinus Homoptera, menbracidae Lorita Anasa andresi Hemiptera, Coreidae Chinche Prepops latipennis Hemiptera, miridae Chinche de las manchas blancas del frijol Acrosternum sp Hemiptera, pentatomidae Chinche apestosa del frijol Nezara viridula Hemiptera, pentatomidae chinche verde Corythuca gossypii Hemiptera, Tinguidae chinche de encaje Eotetranychus lewisi Acarina, tetranychidae Araña roja Tetranychus ludeni Acarina, tetranychidae Araña roja Tetranychus cinnabarinus Acarina, tetranychidae Araña roja Oligonychus sp Acarina, tetranychidae Araña roja Polyphagotarsonemus latus Acarina, tarsonemidae Acaro blanco Vaginulus plebeius Pulmonata, veronicellidae Babosa Urbanus proteus Lepidoptera, hesperidae Enrrollador de la hoja del frijol Heliotis zea Lepidoptera, noctuidae Gusano de la vaina del frijol Pseudoplusia includens Lepidoptera, noctuidae Gusano patas negras Trichoplusia ni Lepidoptera, noctuidae Gusano falso medidor Spodoptera dolichus Lepidoptera, noctuidae Gusano negro Spodoptera exigua Lepidoptera, noctuidae gusano soldado Spodoptera sunia Lepidoptera, noctuidae Gusano Spodoptera Spodoptera eridania Lepidoptera, noctuidae Gusano negro Spodoptera latifascia Lepidoptera, noctuidae Gusano cortador Stigmene acraea Lepidoptera, arctiidae Gusano peludo Etiella zinckenella Lepidoptera,Pyralidae Gusano de la vaina del frijol y el gandul Elasmopalpus lignosellus Lepidoptera, Pyralidae Coralillo Lamprosema indicata Lepidoptera, pyralidae Gusano pegador de hojas del frijol y la soya Maruca sp Lepidoptera, pyralidae Taladrador de la vaina del frijol Asphondilia sp Diptera, Cecidomyiidae Mosquita de la vaina del frijol Liriomyza sp Diptera, agromyzidae minador serpentina Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 86

PLAGAS DE LAS HORTALIZAS Plagas de hortalizas Cruciferas ORDEN Y FAMILIA NOMBRE COMUN Trichoplusia ni (Hubner) Lepidoptera, noctuidae Gusano medidor Plutella Maculipennis (Curtis) Lepidoptera plutellidae Palomilla del dorso diamante Leptophobia Aripa (boisd) Lepidoptera, pieridae Gusano del repollo Pieris Monusta (l) Lepidoptera, pieridae Gusano del repollo Diabrotica balteata Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Estigmene acraea Lepidoptera, arctiidae Gusano peludo Spodoptera frugiperda Lepidoptera, noctuidae Gusano cogollero Spodoptera spp Lepidoptera, noctuidae Gusanos spodoptera Liriomyza sativae Diptera, agromyzidae minador serpentina Thrip tabaci (Lindeman) Thysanoptera, thripidae Trips Brevicoryne brasicae (Linneo) Homoptera, aphididae Pulgon de las cruciferas Cucurbitaceas Diaphania nitidalis (Stoll) Lepidoptera, pyralidae Gusano barrenador del pepino Diaphania hyalinata (Linneo) Lepidoptera, pyralidae Gusano barrenador del melon Epilachna borealis Coleoptera, coccinellidae Conchuela Aphis gossypii (Glover) Homoptera, aphididae Pulgon de las cucurbitaceas Myzus persicae (sulzer) Homoptera, aphididae pulgon verde Adetus sp Coleoptera, curculionidae Barrenador de la guia de las cucurbitaceas Bemisia tabaci Homoptera, aleyrodidae Mosca blanca Anasa tristi Hemiptera, coreidae Chinche de las calabazas Phthia picta Hemiptera, coreidae Chinche negra Leptoglossus zonatus Hemiptera, coreidae Chinche patas de hoja Diabrotica balteata Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Diabrotica adelpha Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Cerotoma ruficornis (Jac) Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Colaspis sp Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Acalymma vittata Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Chaetocnema sp Coleoptera, chrysomelidae pulga negra del arroz Chaetocnema confinis Coleoptera, chrysomelidae pulga saltona del camote Pycnoderes sp Hemiptera, miridae Chinche negra pequeña Tetranychus cinnabarinus Acarina, tetranychidae Araña roja Tetranychus ludeni Acarina, tetranychidae Araña roja Oligonychus sp Acarina, tetranychidae Araña roja Tetranychus sp Acarina, tetranychidae Araña roja Liliaceas Thrip tabaci (Lindeman) Thysanoptera, thripidae thrips de la cebolla Spodoptera sp Lepidoptera, noctuidae Gusano spodoptera Grillotalpa sp Orthoptera, Grillotalpidae Grillotopo Tetranychus cinnabarinus Acarina, tetranychidae Araña roja Euphorbiaceas Erynnis Ello (L) Lepidoptera, Sphingidae Gusano cachon de la yuca Silba pendula (Bezi) Diptera, Lonchaeidae Mosca del cogollo de la yuca Anastrepha manihoti Diptera, tephritidae Mosca de la yuca Oligonychus Spp Acarina, tetranychidae Araña roja Mononychellus caribbeanae Acarina, tetranychidae Araña roja Oligonychus peruvianus Acarina, tetranychidae Araña roja Tetranychus Spp Acarina, tetranychidae Araña roja Tetranychus cinnabarinus Acarina, tetranychidae Araña roja Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 87

Eutetranychus Spp Acarina, tetranychidae Araña roja Phyllophaga spp Coleoptera, Scarabaeidae Gallinas ciegas Solanaceas Scrobipalpopsis solanivora Lepidoptera, gelechidae Polilla guatemalteca de la papa (Pol) Phthorimaea operculella Lepidoptera, gelechidae Minador comun de la papa (Zeller) Keiferia Lycopersicella Lepidoptera, Gelechidae Gusano alfiler del tomate y la papa (busck) Spodopteria sunia (Hubner) Lepidoptera, noctuidae gusano prodenia Spodopteria frugiperda Lepidoptera, noctuidae cogollero Spodoptera eridania Lepidoptera, noctuidae gusano negro Spodopteria exigua (Hubner) Lepidoptera, noctuidae gusano soldado Agrotis Ipsylon (Hyfn) Lepidoptera, noctuidae gusano cortador Feltia subterranea (Fab) Lepidoptera, noctuidae Gusano cortador Heliothis zea (Boddie) Lepidoptera, noctuidae Gusano del fruto del chile y tomate Protoparse quinquemaculata Lepidoptera, Sphingidae Gusano cachon Protoparse sexta Lepidoptera, Sphingidae Gusano cachon Trichoplusia ni (Hubner) Lepidoptera, noctuidae Gusano medidor Pseudoplusia includens Lepidoptera, noctuidae Gusano medidor de patas negras Estigmene acraea Lepidoptera, arctiidae Gusano peludo Anthonomus Eugenii (Cano) Coleoptera, curculionidae Picudo de la vaina del frijol Colaspis parsina Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Leptinotarsa decemlineata Cantarinita de la papa Diabrotica balteata Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Diabrotica spp Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Disonycha glabrata Coleoptera, chrysomelidae Pulga saltona del tomate Systena sp Coleoptera, chrysomelidae Pulga saltona Chaetocnema confinis Coleoptera, chrysomelidae Pulga saltona Epitrix cucumeris Coleoptera, chrysomelidae Pulga saltona Tetranychus ludeni Acarina, tetranychidae Araña roja Polyphagotarsonemus Latus Acarina, tarsonemidae Acaro blanco Aculops lycopersici Acarina, Eriophydae Acaro tostador del tomate Liriomyza Sp Diptera, agromyzidae Minador serpentina Agromiza Sp Diptera, agromyzidae Mosca minadora Bemisa tabaci (Genn) Homoptera, aleyrodidae Mosca blanca Myzus persicae Homoptera, aphididae pulgon verde Macrosiphum euphorbiae Homoptera, aphididae afido de la papa Sarasinula plebeia Veronicelidae Atta mexicana Hymenoptera, formicidae zompopos Nezara viridula Hemiptera, pentatomidae Chinche verde Phthia picta Hemiptera, coreidae Chinche negra Leptoglossus zonatus Hemiptera, coreidae Chinche patas de hoja Thrip tabaci (Lindeman) Thysanoptera, thripidae Trips Leguminosa (Ejote) Bemisia tabaci Homoptera, aleyrodidae Mosca blanca Hoetensia sp Homoptera, cicadellidae Cigarrita Empoasca krameri Homoptera, cicadellidae Chicharrita del frijol Aphis fabae Homoptera. Aphididae pulgon verde Macrosiphum euphorbiae Homoptera. Aphididae Pulgon de la papa Vaginilus plebeius Pulmonata, veronicellidae Babosa Liriomyza spp Diptera, agromyzidae minador serpentina Diabrotica balteata Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Diabrotica Viridula Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Cerotoma spp Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Nodonota sp Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Spodoptera sunia Lepidoptera, noctuidae Gusano prodenia Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 88

Spodoptera exigua Lepidoptera, noctuidae gusano soldado Trichoplusia ni Lepidoptera, noctuidae Gusano medidor Pseudoplusia includens Lepidoptera, noctuidae Gusano medidor de patas negras Estigmene acraea Lepidoptera, arctiidae gusano peludo Phyllophaga obsoleta Coleoptera, Scarabaeidae Gallina ciega Phyllophaga zulinensis Coleoptera, Scarabaeidae Gallina ciega Phyllophaga menetriesi Coleoptera, Scarabaeidae Gallina ciega Anomala sp Coleoptera, Scarabaeidae Gallina ciega Aeolus sp Coleoptera, Elateridae Gusanos de alambre Conoderus sp Coleoptera, Elateridae Gusanos de alambre Melanotus sp Coleoptera, Elateridae Gusanos de alambre Loroco Aphis gossypii Homoptera, Aphididae Áfido o pulgon Aphis nerii Homoptera, Aphididae Áfido o pulgon Ceroplaste floridensis Homoptera, Coccidae Escama de cera Coccus hesperidum Homoptera, Coccidae Escama parda blanca Taumeyella liriodendri Homoptera, Coccidae Escama lomo de tortuga Mesolecanium nigrofasciatum Homoptera, Coccidae Escama tortuga Partenolecanium corni Homoptera, Coccidae Escama suave convexa Chionaspis sp Homoptera, Diaspididae Escama suave convexa Pseudococcus longispinus Homoptera, Pseudococcidae Piojo o cochinilla harinosa (algodonosa) Bemisia tabaci Homoptera, Aleyrodidae Mosca blanca Phyllophaga elenans Coleoptera, Scarabaeidae Gallina ciega, Chicote Ciclocephala lunulata Coleoptera, Scarabaeidae Gallina ciega, Chicote Agallador flor loroco Diptera, Cecidomyiidae Mosca agalladora de la flor Liriomyza sp Diptera, Agromyzidae Mosca minadora Frankliniella sp Thysanoptera, Thripidae Trips Atta mexicana Hymenoptera, Formicidae Zompopo, Hormiga cortadora Acromyrmex sp Hymenoptera, Formicidae Zompopo, Hormiga cortadora Poliphagotarsonemus latus Acari, Torsonemidae Acaro bloanco o acaro tropical Tetranichus urticae Acari, Tetranichidae Acaro de dos manchas o araña roja Sarasinula plebeya Soleolifera, Veronicellidae Babosa o ligosa Caracol Stymmatophora, Helicidae Caracol PLAGAS DE AGROINDUSTRIALES Plagas de agroindustriales Plagas del algodonero ORDEN Y FAMILIA NOMBRE COMUN Anthonomus grandis Coleoptera, Picudo del algodonero curculionidae Heliohis zea Lepidoptera, noctuidae Gusano bellotero Heliothis virescens Spodoptera sunia Lepidoptera, noctuidae Gusano prodenia Spodoptera exigua Lepidoptera, noctuidae Gusanpo soldado Alabama argillacea Lepidoptera, noctuidae Medidor del algodón Trichoplusia ni Lepidoptera, noctuidae Gusano falso medidor Pseudoplusia includens Lepidoptera, noctuidae Gusano falso medidor patas negras Bucculatrix thurberiella Lepidoptera, Lyonetiidae Minador del algodón Aphis gossypii Homoptera, aphididae Pulgon del algodonero Bemisia tabaci Homoptera, aleyrodidae Mosca blanca Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 89

Estigmene acraea Lepidoptera, Arctiidae Gusano peludo Tetranychus sp Acarina, tetranichidae Araña roja Feltia subterranea Lepidoptera, noctuidae Gusanos cortadores Agrotis sp Lepidoptera, noctuidae Gusanos cortadores Loxostege similalis Lepidoptera, pyralidae Gusano telarañero Ligyrus sp Coleoptera, Escarabajo de la raiz scarabaeidae Dysdercus spp Hemiptera, Pyrrocoridae Chinche manchadora de la fibra Gusano rosado (importancia cuarentenaria) Pectinophopora Lepidoptera, Gelechidae gossypiella Plagas del café Idiarthron subquadratum Orthoptera, Tettigonidae Chacuatete Congrocnemis sp Orthoptera, Tettigonidae Chacuatete Coccus viridis Homoptera, coccidae Escama verde Saissetia sp Homoptera, coccidae Escama negra Toxoptera aurantii Homoptera, aphididae Pulgones Planococcus citri Homoptera, Piojo blanco aereo pseudococcidae Gongrocnemis sp Orthoptera, Tettigonidae Chacuatete Plagiohamus maculosus Coleoptera, Cerambycidae Barrenador del tronco del café Paroecanthus niger Orthoptera, Gryllidae Grillo indianohypothenemus hampei Hypothenemus hampei Coleoptera, scollitidae Broca del fruto del café Oligonychus punicae Acarina, tetranichidae Araña roja Hemicera sp Lepidoptera, Gusano de la hoja Maconellicoccus hirsutus Homoptera, Pseudococcidae Cochinilla rosada (importancia cuarentenaria, El Salvador) Leucoptera coffeella Ledipoptera, Lyonetiidae Minador de la hoja del café Ceratitis capitata Diptera, Tephritidae Mosca del mediterraneo Epicaerus capetillensis Coleoptera, Picudo de la hoja curculionidae Plagas de la soya Epilachna varivcestis Coleoptera, Conchuela del frijol coccinellidae Nezara viridula Hemiptera, Pentatomidae Chinche verde Diabrotica balteata Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Diabrotica viridula Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Diabrotica spp Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Cerotoma ruficornis Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Cerotoma salvini Coleoptera, Tortuguilla Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 90

chrysomelidae Nodonota Coleoptera, chrysomelidae Tortuguilla Anticarsia gemmatalis Lepidoptera, noctuidae medidor de la soya Liriomyza sp Diptera, agromycidae Minador Bemisia tabaci Homoptera, Aleyrodidae Mosca blanca Empoasca sp Homoptera, cicadellidae Chicharrita Leptoglossus zonatus Hemiptera, coreidae Chinche patas anchas Spodoptera exigua Lepidoptera, noctuidae gusano soldado Spodoptera sunia Lepidoptera, noctuidae gusano prodenia Pseudoplusia sp Lepidoptera, noctuidae falso medidor Plagas del Maní Spodoptera sunia Lepidoptera, noctuidae Prodenia Barrenador menor de la caña de azucar Elasmopallpus lignosellus Lepidoptera, pyralidae Spodoptera eridania Lepidoptera, noctuidae Gusano spodoptera Anticarsia gemmatalis Lepidoptera, noctuidae medidor de la soya Stigmene acraea Lepidoptera, arctiidae Gusano peludo Coleoptera, Tortuguilla Diabrotica balteata Chrysomelidae Coleoptera, Tortuguilla Diabrotica spp Chrysomelidae Cerotoma ruficornis Coleoptera, Tortuguilla (Oliv.) Chrysomelidae Coleoptera, Tortuguilla Cerotoma spp Chrysomelidae Coleoptera, Tortuguilla Colaspis hypochlora Chrysomelidae Coleoptera, Tortuguilla Colaspis sp Chrysomelidae Coleoptera, Tortuguilla Nodonota sp Chrysomelidae Cyrtomenus sp Hemiptera, cydnidae Chinche negra de la raiz Plagas del Henequen Scyphophorus acupunctatus Coleoptera, curculionidae Picudo barrenador del henequen Caulotops sp Hemiptera, miridae chinche Plagas del Ajonjolí Diabrotica balteata Coleoptera, Cerotoma ruficornis Oedionychus sp Chrysomelidae Coleoptera, Chrysomelidae Coleoptera, Chrysomelidae Tortuguilla Tortuguilla Pulga saltona del ajonjolí Helicoverpa (Heliohis) Gusano de la capsula zea Lepidoptera, noctuidae Spodoptera latifascia Lepidoptera, noctuidae gusano spodoptera Pseudoplusi includens Lepidoptera, noctuidae gusano medidor patas negras Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 91

Plagas de la Caña de Azúcar Feltia subterranea (F.) Noctuidae, Lep. cortador Agrotis ipsylon (Hufn.) Noctuidae, Lep. cortador Mocis latipes (Fab.) Noctuidae, Lep. Medidor de las gramíneas Diatraea saccharalis F. Pyralidae, Lep. Barrenador mayor del tallo de la caña de azucar Elasmopalpus lignosellus Coralillo, barrenador menor (Zeller) Pyralidae, Lep. Phyllophaga spp Scarabaeidae,Col. Gallina ciega Podishnus agenor Scarabaeidae,Col. Escarabajo rinoceronte Anacentrinus subnudus Curculionidae,Col. Picudo de los brotes tiernos Aeolus pictus Elateridae, Col. Gusano de alambre Conoderus spp Elateridae, Col. Gusano de alambre Melanotus sp Elateridae, Col. Gusano de alambre Agriotes sp Elateridae, Col. Gusano de alambre Aeneolamia postica Cercopidae,Homopt. Sapillo, salivazo Prosapia simulan Cercopidae,Homopt. Sapillo, salivazo Aeneolamia varia Cercopidae,Homopt. Sapillo, salivazo Tomaspis jugata(fowl.) Cercopidae,Homopt. Sapillo, salivazo Tomaspis inca (Guer.) Cercopidae,Homopt. Sapillo, salivazo Sipha flava(forbes) Aphididae, Homopt. Pulgón amarillo de la caña de azucar Oncometopia sp Cicadellidae,Homopt. Chicharrita,saltahojas, cigarritas Tylozygus fasciatus (Walk) Cicadellidae,Homopt. Chicharrita,saltahojas, cigarritas Hortensia similis (Walk) Cicadellidae,Homopt. Chicharrita,saltahojas, cigarritas Leptodictia tabida Tingidae, Hemipt. Chinche de encaje caña de azucar Schistocerca piceifrons Chapulín (Walk) Acrididae, Orthopt. Heterotermes sp Isoptera, Rhinotermitidae Termita Microcerotermes sp Termitidae Termita PLAGAS DE PRODUCTOS ALMACENADOS Plagas de Productos almacenados Nombre Científico Sitophilus orizae Sitophilus granarius Ubicación taxonómica Coleoptera, Curculionidae Coleoptera, Curculionidae Nombre común Gorgojo del arroz Gorgojo de los graneros Hospederos Arroz, Maíz, macarrones, trigo, sorgo y sus derivados Macarrones, trigo, maíz, arroz, sorgo y sus Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 92

Sitophilus zeamais Coleoptera, Curculionidae Gorgojo del maíz Cathartus quadricollis Coleoptera, Cucujidae Gorgojo cuello cuadrado Orizaephilus Coleoptera, Cucujidae Gorgojo aserrado de surinamensis los granos Orizaephilus mercator Coleoptera, Cucujidae Gorgojo aserrado de los granos Criptolestes ferrugineus Coleoptera Gorgojo plano de los granos Criptolestes filiformes Coleoptera Gorgojo plano de los granos Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado derivados Maíz, macarrones, trigo, arroz, sorgo y sus derivados Maíz, maicillo, arroz y sus derivados Granos y sus productos derivados Arroz, maíz, pastas y otros cereales Harinas, cereales, oleaginosas, cacao, frutas secas Harinas, cereales, oleaginosas, cacao, frutas secas Grano de café Araecerus fasciculatus Coleoptera, Anthribidae Gorgojo del café Lasioderma serricorne Coleoptera, Anobidae gorgojo del tabaco Tabaco, muebles, productos vegetales secos, pimienta negra, higos, cacao Anobium sp Stegobium paniceum Carpophilus hemipterus Carpophilus spp Colopterus sp Ephestia cautella Ephestia kuhniella Plodia interpunctella Sitotroga cerealella Tenebrio molitor Tribolium castaneum Tribolium confusum Gnatocerus cornutus Rhyzoperta dominica Coleoptera, Anobidae Gorgojo de los muebles Coleoptera, Anobidae Gorgojo del pan y abarrotes Coleoptera, Gorgojo de las frutas Nitidulidae secas Coleoptera, Gorgojo de la savia Nitidulidae Coleoptera, Gorgojo de la savia Nitidulidae Lepidoptera, Palomilla del tabaco Phycitidae Lepidoptera, Phycitidae Lepidoptera, Phycitidae Lepidoptera, Gelechidae Coleoptera, Tenebrionidae Coleoptera, Tenebrionidae Coleoptera, Tenebrionidae Coleoptera, Tenebrionidae Coleoptera, Bostrichidae Pan, pasteles, harinas, pastas, plantas secas Frutas en fermentación, sandias Maíz, sorgo, frutas fermentadas Maíz, sorgo, frutas fermentadas Tabaco curado, nueces, chocolates, productos vegetales secos Palomilla de la harina Harinas, salvado, cereales preparados, maíz y otros granos. Palomilla indiana de Granos, harinas, cereales las harinas preparados, frutas secas, semillas, raíces secas, hierbas medicinales Palomilla de los Trigo, maíz y otros granos graneros Gorgojo de la harinas Harinas, salvados, desperdicios de carne, plumas e insectos muertos Gorgojo de la harinas Gorgojo confuso de la harina Gorgojo delos cuernos de los granos Barrenador menor de los granos Harina, maíz, maicillo, salvado Granos, harinas, materiales almidonosos, fríjol, jengibre, raíces vegetales, frutas secas, chocolates, pimienta roja. Granos 93

Prostephanus truncatus Coleoptera, Bostrichidae Barrenador mayor de los granos Tenebroides mauritanicus Coleoptera, Ostomidae Gorgojo Cadela Granos, harinas y semillas almacenadas Acanthoscelides obtectus Coleoptera, Bruchidae Gorgojo del fríjol Fríjol Zabrotes subfasciatus Coleoptera, Gorgojo del fríjol Fríjol Bruchidae Callosobruchus Coleoptera, Gorgojo del fríjol Vigna maculatius Bruchidae vigna Acarus (Tyrogliphus) Acarina, Acaro del queso y Quesos, jamones, granos sirus Tyroglyphidae jamones Liposcelis Psocidae Piojo de los libros Libros, cereales, granos, museos, bibliotecas Dermestes tardarius Coleoptera, Dermestidae Gorgojo de las despensas Carnes secas, cueros, pieles, carnes ahumadas Trogoderma granarium Gorgojo Khapra Granos, semillas, harinas, heno, paja, frutas secas, leche y harina de pescado Piophila casei Piophilidae Gusanos del queso Quesos y jamones Tinea sp Lepidoptera, Tineidae Polilla de la ropa Lana, pelos, plumas, pieles, muebles tapizados, leche en polvo, harina de carne y de pescado Trichophaga sp Lepidoptera, Tineidae Polilla de la ropa Lana, pelos, plumas, pieles, muebles tapizados, leche en polvo, harina de carne y de pescado Periplaneta americana Orthoptera, Blatidae Cucaracha Ropa y todo tipo de alimentos PLAGAS DE LAS GRAMÍNEAS Plagas de las gramineas Nombre Científico Nombre común Familia y Orden Feltia subterranea (F.) cortador Noctuidae, Lep. Agrotis ipsylon (Hufn.) cortador Noctuidae, Lep. Spodoptera frugiperda (Smith) cortador Noctuidae, Lep. Spodoptera eridania (Fabric.) cortador Noctuidae, Lep. Spodoptera latisfacia (Wlk) cortador Noctuidae, Lep. Helicoverpa zea (Boddie) Gusano Elotero y la panoja Noctuidae, Lep. Mocis latipes (Fab.) Medidor de las gramíneas Noctuidae, Lep. Diatraea saccharalis F. Barrenador tallo maíz y sorgo Pyralidae, Lep. Diatraea grandiosella (Dyar) Barrenador tallo maíz y sorgo Pyralidae, Lep. Diatraea lineolata (W.) Barrenador tallo maíz y sorgo Pyralidae, Lep. Elasmopalpus lignosellus (Zeller) Coralillo Pyralidae, Lep. Loxostege similalis Telarañero Pyralidae, Lep. Moodna bisinuella (Mampson) Gusano morado Pyralidae, Lep. Ephestia cautella (Walker) Polilla de la harina mediterranea Pyralidae, Lep. Ephestia kuhniella (Zeller) Polilla de la harina mediterranea Pyralidae, Lep. Plodia interpunctella (Hibner) Polilla bandeada Pyralidae, Lep. Sitotroga cerealella (Oliv.) Palomilla de los cereales Gelechidae, Lep. Estigmene acraea (Drury) Gusano peludo Arctiidae, Lep. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 94

Sathrobrota rileyi (W.) Gusano rosado de la mazorca y panoja del sorgo Cosmopterygidae,Lep. Pococera atramentalis (Lederer) Gusano basurero Pyralidae, Lep. Pericharis coridon (F.) Enrrollador de la hoja del maíz Hesperidae, Lep. Celema (nola) sorghiella (Riley) Telarañero del sorgo Noctuidae, Lep. Pelidnota virescens (Brun.) Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Phyllophaga menetriesi (Blanchi) Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Phyllophaga latipes (Bates) Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Phyllophaga elenans (Saylor) Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Phyllophaga dasypoda (Bates) Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Phyllophaga parvisetis (Bates) Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Phyllophaga vicina (Moser) Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Phyllophaga obsoleta (Blanch) Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Phyllophaga valeriana (Moser) Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Cyclocephala lunulata (Burm.) Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Cyclocephala mafaffa (Burm.) Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Anomala inconstans (Burm.) Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Anomala nitidula Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Anomala cincta (Say) Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Anomala flavilla Gallina ciega Scarabaeidae,Col. Canton Chevrolati (Harold) Escarabajo de la raíz Scarabaeidae,Col. Macrodactylus sp Frailecillo Scarabaeidae,Col. Euetheola bidentata (Burm.) Carapachudo Scarabaeidae,Col. Ligyrus (Bothynus)nasatus (Burm.) Escarabajo negro Scarabaeidae,Col. Podishnus agenor Escarabajo rinoceronte Scarabaeidae,Col. Euphoria geminata Escarabajo Scarabaeidae,Col. Listronotus dietrichi (St.) Picudo del tallo del maíz Curculionidae,Col. Promecops sp Picudo Curculionidae,Col. Sitophilus zeamays (M.) Gorgojo del maíz y el sorgo Curculionidae,Col. Sitophilus orizae (Lin.) Gorgojo del arroz Curculionidae,Col. Calendra maidis Picudo de la hoja Curculionidae,Col. Sphenophorus sp Picudo del tallo Curculionidae,Col. Nicentrites testaceipes (Champion) Picudo chico del maíz Curculionidae,Col. Geraeus senilis (Gyllenhal) Picudo de la hoja del maíz Curculionidae,Col. Pantomorus femoratus Picudo ó gorgojo de las hojas del maíz y el sorgo Curculionidae,Col. Metamasius hemipterus (Oliv.) Picudo rojo del banano Curculionidae,Col. Omophoita aequinoctialis (L.) Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Diabrotica balteata (Leconte) Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Diabrotica nummuralis (Harold) Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Diabrotica viridula (F.) Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Diabrotica fuscumaculata Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Diabrotica adelpha (Harold) Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Diabrotica undecimpunctata (How.) Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Diabrotica porracea (Harold) Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Diabrotica octoplagiata(jac.) Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Diabrotica biannularis (Harold) Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Diabrotica spp Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Cerotoma ruficornis (Oliv.) Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Cerotoma spp Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Colaspis hypochlora Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Colaspis sp Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Nodonota sp Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Acalymma sp Tortuguilla Chrysomelidae,Col. Chaetocnema confinis (Crotch) Pulga saltona Chrysomelidae,Col. Tetragonete sp Pulga saltona Chrysomelidae,Col. Aeolus pictus Gusano de alambre Elateridae, Col. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 95

Conoderus pilatus Gusano de alambre Elateridae, Col. Conoderus varians (Stein) Gusano de alambre Elateridae, Col. Melanotus sp Gusano de alambre Elateridae, Col. Agriotes sp Gusano de alambre Elateridae, Col. Epitragus emarginatus (Champ.) Piojo de zope Tenebrionidae, Col. Epitragus sallei (Champ.) Piojo de zope Tenebrionidae, Col. Blapstinus interstitalis (Champ.) Piojo de zope Tenebrionidae, Col. Ulus sp Piojo de zope Tenebrionidae, Col. Tribolium castaneum (Herb.) Gorgojo de la harina Tenebrionidae, Col. Tribolium confusum (Duval) Gorgojo de la harina Tenebrionidae, Col. Tenebrio molitor(linneo) Gusano amarillo de la harina Tenebrionidae, Col. Orizaephilus surinamensis (Linneo) Gorgojo aserrado de los granos Curcujidae,Col. Rhyzoperta dominica (Fab.) Barrenador menor de los granos Bostrichidae, Col. Prostephanus truncatus (Horn.) Barrenador mayor de los granos Nitidulidae, Col. Carpophilus latinasus Gorgojo de la savia Nitidulidae, Col. Carpophilus dimidiatus (Fab.) Gorgojo de la savia Nitidulidae, Col. Carpophilus hemipterus Gorgojo de la savia Nitidulidae, Col. Conotelus stenoides (M.) Gorgojo de la savia Nitidulidae, Col. Colopterus macropterus (Fab.) Gorgojo de la savia Nitidulidae, Col. Colopterus posticus (Erichson) Gorgojo de la savia Nitidulidae, Col. Cathartus quadricollis (Guerin- Meneville) Gorgojo cuello cuadrado Silvanidae, Col. Laemophloeus spp Gorgojo aplanado de los granos Curcujidae,Col. Brachytarsoides alternatus Gorgojo del carbón del sorgo Anthribidae,Col. Aeneolamia postica Sapillo, salivazo Cercopidae,Homopt. Prosapia simulan Sapillo, salivazo Cercopidae,Homopt. Aeneolamia varia Sapillo, salivazo Cercopidae,Homopt. Tomaspis jugata(fowl.) Sapillo, salivazo Cercopidae,Homopt. Tomaspis inca (Guer.) Sapillo, salivazo Cercopidae,Homopt. Rhopalosiphum maidis (Fitch) Pulgón del cogollo del maíz Aphididae, Homopt. Sipha flava (Forbes) Pulgón amarillo de la caña de azúcar Aphididae, Homopt. Oncometopia sp Chicharrita,saltahojas, cigarritas Cicadellidae,Homopt. Tylozygus fasciatus (Walk) Chicharrita,saltahojas, cigarritas Cicadellidae,Homopt. Dalbulus maidis (Delong & Wolcott) Chicharrita,saltahojas, cigarritas Cicadellidae,Homopt. Hortensia similis (Walk) Chicharrita,saltahojas, cigarritas Cicadellidae,Homopt. Erythrogonia sp Chicharrita,saltahojas, cigarritas Cicadellidae,Homopt. Draeculacephala minerva (Ball) Saltahojas, Chicharrita Cicadellidae,Homopt. Draeculacephala clypeata (Osborn,) Saltahojas, Chicharrita Cicadellidae,Homopt. Draeculacephala portola (Ball) Saltahojas, Chicharrita Cicadellidae,Homopt. Agallia sp Saltahojas, Chicharrita Cicadellidae,Homopt. Agrosoma proxima Saltahojas, Chicharrita Cicadellidae,Homopt. Chlorotettix sp Saltahojas, Chicharrita Cicadellidae,Homopt. Carneocephala sp Saltahojas, Chicharrita Cicadellidae,Homopt. Nersia florens Saltahojas, Chicharrita Dictiopharidae, Homopt. Peregrinus maidis (Ashm.) Saltahojas Delphacidae,Homopt. Leptoglossus zonatus (Dallas) Chinche patas de hoja Coreidae, Hemiptera Phthia picta (Drury) Chinche patas de hoja del sorgo Coreidae,Hemipt. Cyrtomenus bergi (Froeschner) Chinche negra de la raíz Cydnidae,Hemipt. Cyrtomenus crassus (Walk) Chinche negra de la raíz Cydnidae,Hemipt. Nezara viridula (L.) Chinche de la panoja del sorgo Pentatomidae,Hemipt. Solubea insularis (Stal.) Chinche de la panoja del sorgo Pentatomidae,Hemipt. Solubea ornata (Sailer) Chinche de la panoja del sorgo Pentatomidae,Hemipt. Solubea poecilla (Dallas) Chinche de la panoja del sorgo Pentatomidae,Hemipt. Proxys victor Chinche de la panoja del sorgo Pentatomidae,Hemipt. Thyanta perditor (F.) Chinche de la panoja del sorgo Pentatomidae,Hemipt. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 96

Mormidea sp Chinche de la panoja del sorgo Pentatomidae,Hemipt. Leptodictia tabida Chinche de encaje de la caña de azúcar Tingidae, Hemipt. Blissus leucopterus (Say) Chinche de las gramíneas Lygaeidae, Hemipt. Paromius longulus (Dallas) Chinche negra del sorgo Lygaeidae, Hemipt. Pachybrachius sp Chinche Lygaeidae, Hemipt. Collaria oleosa (Distant) Chinche de las manchas blancas del maíz y el sorgo Miridae, Hemipt. Creontiades rubrinervis (Stal) Chinche rápida Miridae, Hemipt. Lygus sp Chinche Miridae, Hemipt. Alkindus atratus (Distant) Chinche Corimelaenidae,Hemipt. Schistocerca piceifrons (Walk) Chapulín Acrididae, Orthopt. Tropidacris sp Chapulín, langosta Acrididae, Orthopt. Acheta assimilis Grillo Gryllidae,Orthopt. Atta mexicana (F. Smith) Zompopo Formicidae Hym. Solenopsis geminata (F.) Hormiga brava Formicidae Hym. Microcerotermes sp Termita Termitidae, Isoptera Heterotermes convexinotatus (S.) Termita Rhinotermitidae,Isoptera Euxesta major (Wulp.) Mosca del tallo del maíz Otitidae,Diptera Euxesta stigmatias (Loew) Mosca de la mazorca Otitidae,Diptera Euxesta sororcula (Wied) Mosca de la mazorca Otitidae,Diptera Eumecosomyia nubila (Wied) Mosca del tallo del maíz Otitidae,Diptera Contarinia sorghicola (Corguillet) Mosquita de la panoja del sorgo Cecidomyiidae,Dipt. Forficula auricularia Tijereta Forficulidae,Dermaptera Doru taeniatum Tijereta Forficulidae,Dermaptera Frankliniella sp Trips Thripidae Olygonychus pratensis (Banks) Araña roja, acaro Tetranychidae,Acarina Olygonychus stickneyi (McGregor) Araña roja, acaro Tetranychidae,Acarina Olygonychus zeae (McGregor) Araña roja, acaro Tetranychidae,Acarina Tetranychus cinnabarinus (Boisd.) Araña roja, acaro Tetranychidae,Acarina Aleurodicus occides Mosca blanca del arroz Aleyrodidae, Homoptera Stenodiplosis (Contarinia) sorghicola Mosquita del sorgo Cecidomiidae, Diptera Rupela albinella Novia del arroz Pyralidae, Lepidoptera DESCRIPCION DE LOS GENEROS FITOPARASITOS DE NEMATODOS ENCONTRADOS EN LAS PLANTACIONES DE CITRICOS DE EL SALVADOR 1 Aphelenchus sp Clase: Tylenchida Orden: Aphelenchina Superfamilia: Aphelenchoidea Familia: Aphelenchidae 1.1. Descripción Hembra: Cuerpo cilíndrico, con una ligera curvatura ventral, disminuyendo anteriormente, cutícula transversalmente estriada. La parte más ancha del cuerpo esta exactamente frente a la vulva, posteriormente el cuerpo se estrecha abruptamente después de la vulva. Deiridios presentes casi al nivel del poro excretor, cabeza ligeramente sobresaliente, suavemente redondeada o aplanada, guía del estilete con un ligero engrosamiento en la base. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 97

Procorpus cilíndrico, constreñido en la parte donde se une con el bulbo medio que es de forma ovoide a rectangular. Con prominentes platos valvulares. Glándula esofágica con o sin, un lóbulo traslapando el intestino dorsolateralmente. Poro excretor opuesto al anillo nervioso. Intestino juntándose con el bulbo medio por un isthmus pequeño. Vulva localizada en la parte posterior del cuerpo, ovario prodelfico, extendido. Fásmidos sub-terminales. Macho: Existe un dimorfismo sexual, espiculas delgadas, pareadas, separadas, con cabeza, curvadas ventralmente, disminuyendo en forma gradual hacia la parte distal. Gubernaculum con una terminación proximal estrecha en vista lateral. Cola cónica cubierta por una bursa o ala caudal, que surge opuesta a las cabezas de las espiculas. Son extremadamente raros. 1.2. Hospederos Es cosmopolita, ocurriendo en la mayoría de suelos, láminas foliares, corona de plantas, y en el cortex de algunas raíces, especialmente si estas están infectadas con hongos. Este nematodo es esencialmente fungívoro, prefiriendo los fitopatógenos como: Fusarium solani, F. lateritum, F oxysporium, Pericona sp., Rhizoctonia solani, Pyrenochaeta sp, Sclerotium sp., Armellaria mellea, Thielaviopsis basicola. También se reporta en siete especies de micorrizas, hongos capturadores de nematodos. Mientras en plantas superiores son pocos los registros de patogenicidad Cucumis melo y Capsicum anuum. 1.3. Biología y relación Hospedero/parásito La reproducción es generalmente por partenogénesis, sosteniéndose que es del tipo meiótica. La relación de machos varía desde un rango de muy raro hasta muy común, cuando son cultivados a una temperatura de 30 C. Se alimenta de hifas fungales, y aunque se ha registrado atacando plantas superiores, su principal papel ecológico es de fungívoro. 2. Cacopaurus sp Clase: Tylenchida Orden: Criconematoidea Familia: Paratylenchidae Subfamilia: Paratylenchinae 2.1. Descripción Hembra: Cuerpo cilíndrico, obeso, con una anchura equivalente a un séptimo de su longitud. Con un termino ampliamente cónico, Inmóvil, muy pequeña, generalmente unido al hospedero por un estilete inusualmente largo. Cabeza suave con región labial diminuta, débilmente desarrollada, y trama cefálica oscura, poro excretor en la región del bulbo medio esofágico. Estilete muy largo y curvado, a juzgar por el tamaño del cuerpo. Esófago con el procorpus fuertemente separado del metacorpus el cual tiene un aparato valvular bien desarrollado, el istmo esta cubierto por el anillo nervioso. Vulva situada muy posteriormente, y dirigida anteriormente, parte post-vulval corta. Macho: Delgados, cabeza redondeada, sin estilete, poseen el esófago degenerado, bursa pequeña, débilmente desarrollada, en posición ad anal. 2.2. Hospederos Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 98

Citrus aurantium, Juglans sp., Rosa indica. 2.3. Biología y relación hospedero/parásito La hembra es un parásito sedentario de la raíz, el estadio larval es escasamente encontrado en el suelo, lo que sugiere que solo pasan un escaso tiempo viviendo libremente. Su reproducción es anfimictica. Las hembras, puncionan las células epidermales ocasionando que se hinchen y rompan, entonces los nematodos se alimentan de los exudados producidos. Las raíces afectadas pueden morir. En experimentos se ha demostrado que Citrus aurantium no es un buen hospedero de Cacopaurus sp., aunque se piensa que una infestación simultanea con Tylenchulus sp. puede haber influido negativamente en los resultados. 3. Criconemoides sp Clase: Tylenchida Orden: Tylenchina Super familia: Criconematoidea Familia: Criconematidae Subfamilia: Criconematinae 3.1. Descripción Hembra: Cuerpo ahusado, robusto, ligeramente curvado ventralmente, casi completamente cilíndrico aunque disminuyendo un poco en los bordes. Con toscas anulaciones, de bordes finamente aserradas. Anulaciones de la cabeza no sobresalientes, disco labial no proyectándose. El estilete es fuerte, los nódulos basales con procesos dirigidos anteriormente dándole una apariencia de ancla, bulbo medio esofageal grande y amplio, istmo corto y grueso. Poro excretor por debajo de la base del esófago. Cola corta, cónica o ampliamente redondeada, termino truncado. Vulva lineal, oblicuamente dirigida anterior. En hembras adultas el ovario alcanza más allá de la base del esófago. Macho: Cuerpo casi lineal, la mayor parte de este, cilíndrico. Fin de la cabeza ampliamente redondeada. Estilete ausente, cavidad oral un poco ancha, esófago degenerado. Poro excretorio cerca de la base del esófago, hemizónido lineal. Cola conoide, disminuyendo hasta una punta redondeada. Bursa grande. 3.2. Hospederos No hay hospederos específicos conocidos. 3.3. Biología Aunque hay pocos datos sobre su biología, son considerados como fitoparásitos, como lo indica su estilete robusto. Los miembros de este género tienen un movimiento lento, y a diferencia de los demás nematodos no es serpentino, sino que el cuerpo es alternativamente alargado y contraído, por el turgor y relajamiento de los músculos. Las características que hacen fácil su reconocimiento bajo el microscopio son: la ausencia de movimiento y la apariencia robusta que indica su anulación muy marcada. 4. Dorylaimus sp Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 99

Clase: Adenophorea Orden: Dorylaimina Familia: Dorylaimidae Superfamilia: Dorylaimoidea Los nematodos del género Dorylaimus sp son de vida libre, y se les encuentra como habitantes del suelo y algunos habitats acuáticos. El esófago consiste en una delgada porción anterior, algunas veces con pequeñas protuberancias musculares, seguida por una porción ensanchada, que puede reducirse a una simple válvula esofágica. La cavidad estomática presenta un odontoestilete, no existen nódulos basales. La apertura de este estilete se sitúa dorsalmente. El poro excretor es rudimentario o puede estar ausente. 5. Helicotiylenchus sp Clase: Tylenchida Orden: Tylenchoidea Familia: Hoplolaimidae Subfamilia: Rotylenchoidinae (Siddiqi, M. R., 1972), Hoplolaiminae (Mai, W. F., 1975) 5.1. Descripción Hembra: Cuerpo vermiforme, variando desde arqueado con forma de C, a espiralado, acentuándose en la parte posterior, estriaciones distintivas. Región labial, continua o ligeramente separada, hemisférica, redondeada o aplanada lateralmente, generalmente anulada pero nunca longitudinalmente estriado. Trama labial promedio aunque sus bordes externos son conspicuos y fuertemente esclerotizados; estilete bien desarrollado con nódulos basales prominentes con los márgenes externos dirigidos hacia delante pareciendo que la superficie anterior es plana o cóncava. Guía del estilete prominente con superficies de unión para los músculos protrudores des estilete. Bulbo medio esofageal redondeado a oval, poro excretor cerca de la juntura esófago-intestinal. Campos laterales con cuatro líneas. Fásmidos pequeños, cerca del ano, cefalidos y caudalidos presentes. Cola con una longitud de 1 a 2 ½ veces el ancho del cuerpo, más curvada dorsalmente, disminuyendo ligeramente con un termino hemisférico redondeado, con o sin un proceso terminal ventral. Dos ramas genitales, estando la posterior reducida a veces a un saco post- uterino. Macho: Dependiendo de la especie puede ser extremadamente raro o abundante, similar a la hembra excepto en lo correspondiente al dimorfismo sexual observado en el pequeño fin anterior. Testículo simple, anteriormente expandido, bursa corta, no conspicuamente proyectándose mas allá del contorno del cuerpo en vista lateral, crenada y cubriendo la cola, la espículas ligeramente cefaladas; gubernaculum simple. 5.2. Hospederos Es un género cosmopolita y polífago, entre los principales hospederos están: Citrus sp., Sacharum offinarum, Solanum tuberosum, Cyperus rotundus, Musa sp., Persea americana, Zea mays, Phaseolus vulgaris, Arachis hipogea, Cajanus cajan, Carica papaya, Ceiba pentandra, Crotolaria sp, Panicum maximun, Paspalum notatum, Mangifera indica, Gossypium hirsutum. 5.3. Biología y relación hospedero/parásito Es un parásito de las raíces, que puede ser ectoparásito, o semi-endoparásito, así como en las capas exteriores del cortex y en el suelo adyacente. No hay evidencias de migración del Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 100

nematodo dentro del cortex. Su reproducción varía según la especie, de bisexual y fertilización cruzada o anfimixis a partenogénesis mitótica. Los nematodos atacan y se alimentan del cortex radical produciendo pequeñas lesiones necróticas. Unas especies, muestran que las células infectadas y adyacentes tienen paredes fuertemente lignificadas pero sin indicios de proliferación nuclear o formación de células gigantes. 6. Hemicriconemoides sp Clase: Tylenchida Orden: Criconematoidea Familia: Criconematidae Subfamilia: Criconematinae 6.1. Descripción Hembra: Cuerpo recto a ligeramente arqueado luego de la relajación, cilíndrico, encerrado en una cubierta cuticular la cual esta unida solo en el extremo anterior, poro excretor, vulva y ano. Región cefálica truncada, ligeramente sobresaliente. Trama labial fuertemente esclerotizada. Estilete fuerte, largo, con nódulos basales grandes redondeados, con la parte anterior cóncava, nunca dirigidos hacia atrás, intestino traslapando la base del esófago. Vulva prominente, deprimida, transversa. Vagina dirigida hacia adentro y hacia delante. Ovario simple, anteriormente extendido. Cola corta conoide a redondeada. Macho: Delgado, esófago degenerado, estilete ausente. Espículas delgadas, ligeramente curvadas; gubernaculum corto y plano. Ala caudal raramente presente, si esta es débilmente desarrollada. 6.2. Hospederos Camellia japónica. 6.3. Biología y relación hospedero/parásito Es un ectoparásito, la primera muda se realiza dentro del huevo, y los restos de la cuarta, es lo que forma la cubierta cuticular mencionada en la descripción. Solo los estadios larvales y las hembras se alimentan de las raíces, los machos carecen de estilete. No hay conocimiento detallado de las relaciones hospedero/parásito. 7. Hoplolaimus sp Clase: Tylenchida Orden: Tylenchoidea Familia: Hoplolaimidae Subfamilia: Hoplolaiminae 7.1. Descripción Hembra: Cuerpo recto, largo, cilindroide, en forma de C cuando esta relajado. Región cefálica o labial, separada del cuerpo, hemisferoide o en forma de un cono bajo con lados aplanados, y anteriormente también aplanado, con anulaciones claramente marcadas, y estrías longitudinales. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 101

Trama cefálica masiva, amarillenta y fuertemente esclerotizada. Estilete masivo, con nódulos básales con procesos proyectándose anteriormente. Glándula dorsal del esófago abriéndose cerca de la base de los nódulos basales. Glándula esofageal traslapando el intestino dorsal y lateralmente. Bulbo meso esofageal esferoide localizado a la mitad del esófago con un aparato valvular bien desarrollado. Campos laterales con cuatro líneas o menos, generalmente areoladas a nivel de los fásmidos o anteriormente, con estrías irregularmente colocadas en los campos. Poro excretor por debajo de la glándula esófago intestinal, hemizonion pocas veces visto, el intestino traslapando el recto y usualmente extendiéndose dentro de la cola. Cola corta y redondeada, fásmidos alargados al nivel del ano y a veces anterior al nivel de la vulva. Macho: Región cefálica del macho más o menos conoide que en la hembra, hemisférica con lados convexos, testículo simple extendido. Espiculas ventralmente arquedas, cefaladas. Gubernaculum acanalado, bursa grande, con margenes crenados, originada cerca del nivel de las espiculas cuando están retraídas, el ala caudal cubriendo la cola, que por lo general es conoide. 7.2. Hospederos Glycine max, Sorghum halepense, Sorghum vulgare, Cyperus esculentum, Cyperus rotundus, Lepidium virgincum, Amaranthus sp, Cassia sp, Crotolaria sp, Echinochloa, Ipomoea, Vigna unguiculata, Cynodon dactilon, Zea mays, Sacharum officinarum, Panicum miliaceum, Phaseolus sp, Hibiscus esculentus, Pinus sp, Quercus sp, Musa sp, Psidium guajava, Mangifera indica, Oryza sativa, Cucumis melo, Allium cepa, Licopersicon esculentum, Brassica oleracea, Carica papaya, Capsicum anuum, Zingiber officinale, Coccus nucifera y Teobroma cacao. 7.3. Biología y relación hospedero/patógeno Es un parásito de la raíz, inicialmente aparece como ectoparasito, pero luego se embebe desde el nivel de la glándula media esofágica o totalmente en el tejido radical (endoparásito), alimentándose de células corticales en la zona de maduración de las raíces, la mayoría se reproducen partenogenéticamente. Tiene una gran capacidad de sobrevivir condiciones adversas. Los síntomas que inducen en las plantas afectadas pueden ser enanismo, amarillamiento, y defoliación, las raíces se necrosan siendo destruido la mayor parte del cortex. Los daños más considerables los efectúan durante su migración siguiendo paralelamente el largo del eje longitudinal de la raíz. Las poblaciones de algunas especies de Hoplolaimus spp parecen estar correlacionadas muy cercanamente con el contenido de humedad del suelo, y la interacción con otros factores, como la temperatura. Se ha visto que el efecto sobre parámetros de crecimiento de seis especies de Citrus spp fue directamente proporcional a la población de nemátodos, determinándose que 2,000 nemátodos por 500g de suelo ocasionan síntomas de ataque y reducción de crecimiento, también se observo que C. limon es más tolerante que otras especies del mismo género. 8. Meloidogyne sp Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 102

Clase: Tylenchida Orden: Tylenchina Super Familia: Heteroderoidea Familia: Meloidogynidae Subfamilia: Meloidogyninae 8.1. Descripción Las hembras, machos y larvas de las especies de Meloidogyne spp, tienen estiletes con punta cónica, una columna derecha y tres nódulos basales. Este estilete tiene una abertura cerca de la punta que conduce al lúmen del estilete adherido a los nódulos. Tienen un marcado dimorfismo sexual, las hembras adultas tienen forma de pera o esferoide, con cuello largo. Poro excretor anterior al bulbo medio. Vulva terminal o subterminal. El cuerpo de la hembra no es simétrico. Macho: Elongado y cilíndrico, cabeza baja con forma de cono truncado. Estilete y nódulos basales fuertemente desarrollados, bursa ausente, espiculas y gubernaculum presente; cola redondeada. Larva de segundo estadío (infectiva); región labial bien definida, estilete delgado con nódulos bien definidos, poro excretor opuesto e inferior al istmo y el bulbo esofageal muscular ahusado. Cola estrecha, elongada, disminuyendo hasta una punta ligeramente afilada. 8.2. Hospederos Incluye una gran cantidad de plantas cultivadas; Citrus aurantium, Brassicas spp, Daucus carota, Cucúrbita spp, Allium cepa, Capsicum sp, Solanum tuberosum, Lycopersicon esculentum, Zea mays, Musa sp, Begonia sp, Dalia sp, Philodendron, Sanseviera, Arachis hipogea, Gossypium hirsutus, Coffea arabica, Eleusine indica, Echinochloa colonum, Phaseolus vulgaris, Cyperus rotundus, C. imbricatus,, pastos, etc. 8.3. Biología y relación hospedero/parasito Las especies de Melodogyne spp.; son parásitos obligatorios de las plantas, ocurriendo su reproducción solo cuando el segundo estadío larval penetra en las raíces u otras partes subterráneas de una planta apropiada, incita el desarrollo de células gigantes en las que se alimenta y desarrolla hasta convertirse en hembras que producen huevos. El ciclo de vida se puede dividir en: i) Preparasítico; que va desde la etapa de huevo, hasta la eclosión de este en una larva de segundo estadío (la primera muda ocurre dentro del huevo). ii) Parasítico; que va desde la penetración en las raíces; que se lleva a cabo sobre la caliptra, penetrando hasta la zona de elongación, perforan las células con sus estiletes e inyectan secreciones a través de las glándulas esofágicas, causando un agrandamiento en estas, y aumentan la proporción de división celular en el periciclo, dando lugar a la formación de células gigantes o sincitos, por hipertrofia, posible disolución de las paredes celulares, agrandamiento del núcleo y cambios en la composición de contenidos celulares. También se produce hiperplasia o intensa multiplicación de células vegetales. Por lo general acompañado por el engrosamiento de la raíz para la formación de una agalla conteniendo una hembra. Otra fase dentro del ciclo parasítico, es el desarrollo de estadíos parasíticos; donde Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 103

sufre una serie de cambios morfológicos (pasa de ser vermiforme y elongado para ser periforme. La reproducción puede ser por partenogénesis mitótica; consistente en que las células se dividen formando oogonios diploides (2n), los oocitos dejan de divirse y pasan por una zona de crecimiento hasta que al llegar al oviducto, se dividen mitóticamente (conservando 2n) y se tornan ovalados, para luego ser depositados. La relación macho/hembra, depende fuertemente de la disponibilidad de alimento, así; cuando hay abundancia, la mayoría de larvas se desarrollan como hembras, y cuando hay escasez, en hospederos viejos, o en altas infecciones, un gran porcentaje de larvas se convierten en machos. La producción de esperma es similar a la de huevos, solo que hay reducción en los cromosomas (meiosis). Se conoce que puede haber reproducción amfimixis facultativa, conociéndose solo una especie que se reproduce exclusivamente por este método. Las larvas de Meloidogyne spp, tienen poca dificultad para encontrar las raíces, siendo atraídas hacia ellas. Estando el desarrollo y reproducción determinado por la interacción compatible con el hospedero. Si el hospedero y el nematodo no son compatibles se forma una pequeña cantidad de células gigantes y muchas menos larvas siendo menos aun las que se desarrollan hasta la fase adulta. Pudiendo ser esta resistencia una gran diferencia entre las poblaciones de Meloidogyne spp en pocas generaciones. 9. Paratylenchus sp Clase: Tylenchida Orden: Tylenchina Familia: Tylenchuloidea Subfamilia: Paratylenchidae 9.1. Descripción Hembra: Cuerpo cilíndrico elongado, en forma de C después de la muerte, cutícula anulada transversalmente, y campo lateral con cuatro incisuras. Región labial sobresaliente, concoide redondeada a ligeramente truncada, delicadamente anulada. Estilete bien desarrollado, nódulos basales redondeados. Esófago elongado y valvulado. Istmo largo, delgado. Vulva usualmente con membrana lateral cuticular, cuerpo ventralmente contraído por detrás del cuerpo, cola curvada, terminus suave, redondeada. Macho: Con estilete reducido o ausente, esófago pobremente definido o ausente. Cola usualmente con una vaina corta y proyectada. Espiculas delgadas y apuntadas; gubernaculum corto. 9.2. Hospederos Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 104

Se encuentra en plantas pertenecientes a las familias, Cruciferacea, y Umbelliferacea como: Daucus carota, Apium graveolens, Petroselinum sativum, Brassica oleracea, Brassica napus, Cynodon dactylon. Es raro encontrarlo en Papilionacea, Solanacea, Asteracea, y otras graminacea. 9.3. Biología y relación hospedero/parásito Por lo general son ectoparásitos sedentarios, aunque algunas veces se pueden encontrar alimentándose en capas ligeramente inferiores de tejido; son atraídos por zonas jóvenes maduras de las raíces, y se alimentan insertando el estilete en las células epidermales de la base de los pelos radicales. Los únicos estadíos que se alimentan son las hembras adultas, y las larvas 2 y 3. El estadío larval 4, es persistente, no se alimenta y puede pasar de esta manera hasta cuatro años, la muda de este estadío es estimulada por exudados radicales de plantas determinadas y por las temperaturas, aunque algunos estudios sugieren que la correlación entre estos factores es imperfecta. Algunas especies no producen daños visibles, por ejemplo, en Cucúrbitas, en las que solo disminuye ligeramente el peso fresco de las partes áreas. Una población de 70/100 cc de suelo, es el limite de tolerancia, para destruir el sistema radical, y causar necrosis. 10. Pratylenchus sp Clase: Tylenchida Orden: Tylenchoidea Familia: Pratylenchidae Subfamilia: Pratylenchinae 10.1. Descripción Cuerpo menor de 0.8 mm, cilindroide. Sin dimorfismo sexual en la parte anterior del cuerpo. Deiridos ausentes, o escasamente visibles cerca del poro excretor. Área labial baja, aplanada anteriormente, no ó débilmente separada. Trama cefálica fuerte; campos laterales con cuatro incisuras, poro excretor prominente, casi opuesto al anillo nervioso. Hemizonidos ligeramente anterior al poro excretor. Estilete con nódulos básales robustos de forma redondeada a oblongos. Glándulas esofageales traslapando el intestino ventralmente por una distancia media. Válvula esófagointestinal no bien desarrollado. Vulva en la parte posterior del cuerpo. Tracto genital femenino con una rama posterior reducida a un saco post-vulval. Cola de la hembra 2 ó 3 veces el diámetro del cuerpo a nivel anal, terminus redondeado (raramente apuntada). Fásmidos situados a la mitad de la cola o ligeramente posterior. Macho: Gubernaculum plano y simple, no proyectándose. Ala caudal cubriendo la cola, espiculas arqueadas y cefaladas. Cola conoide, lisa y ampliamente redondeada, truncada o espatulada, a veces suavemente crenado. En algunas especies cola disminuyendo con una punta estrechamente redondeada o suavemente sub aguda. 10.2. Hospederos Cítricos, pinos, aguacate, piña, caña de azúcar, maíz, pastos, soya, frijol. 10.3. Biología y relación hospedero/patógeno La reproducción, dependiendo de la especie puede ser, sexual o por partenogénesis mitótica. La larva pasa por cuatro mudas, la primera de las cuales es en el huevo. El tiempo Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 105

de generación varia influenciado fuertemente por la temperatura. El porcentaje de sobre vivencia a periodos secos y de alta temperatura es mayor en los rastrojos del cultivo. Por lo general los adultos son más efectivos en el establecimiento de infecciones a hospederos susceptibles. La migración dentro del campo se lleva a cabo en mejor forma en suelos areno-limosos; cuando el contenido de humedad deja un 8 a 12% del volumen del suelo ocupado por aire. Es un parásito obligado cuya diseminación puede ocurrir en las raíces de las plantas infestadas, transporte de suelo infestado y por el agua de escorrentía. Las raíces son invadidas por la punta, en la región de los pelos radicales, y en la unión de las raíces laterales. Primero se alimentan externamente y luego se convierten en endoparásitos migratorios, que se alimentan del cortéx radical; aunque algunas especies pueden, en estadíos posteriores, alimentarse de los tejidos vasculares, produciendo cavidades o túneles en el cortéx, que en etapas avanzadas ocasiona la ruptura de la epidermis dejando expuesto el tejido en forma de lesiones elongadas de color café, que pueden convertirse en la entrada de patógenos secundarios. En infestaciones severas sobre hospederos susceptibles hace que el sistema radical completo se vea afectado, volviéndose poco denso y necrótico. Algunas especies al atacar preferentemente las puntas de las raíces principales o secundarias y destruir el meristemo, pueden inducir la proliferación de raicillas, encima de donde se encontraba el meristemo original. Los síntomas de la parte superior de las plantas afectadas incluyen el retardamiento del crecimiento, el enanismo, amarillamiento, y como el nematodo incrementa la tasa de transpiración de las plantas, puede ocasionar el marchitamiento. 11. Rotylenchus sp. Clase: Tylenchida Orden: Tylenchoidea Familia: Hoplolaimidae Subfamilia: Hoplolaiminae 11.1. Descripción Hembra: Después de la relajación el cuerpo toma una forma de espiral simple o de C, campos laterales irregularmente areolados en la mitad del cuerpo. Región labial, hemisférica, separada del cuerpo por una ligera constricción o siguiendo una linea continua con el contorno del cuerpo, anteriormente aplanada, y generalmente anulada. Trama labial, estilete, y nódulos del estilete de tamaño promedio (para Hoplolaiminae), estilete bien desarrollado, disminuyendo en la parte anterior. Los nódulos con una superficie anterior que varia de redondeada a indentada. Bulbo medio esofageal oval, muy muscular y con un aparato valvular en el centro. Glándula esofageal extendiéndose sobre el intestino dorsal y dorso lateralmente. Hemizoniones indistintos. Intestinos simétricamente arreglados entre las glándulas subventrales. Dos ramas genitales extendidas, igualmente desarrolladas, rama posterior raramente degenerada. Vulva como una hendidura deprimida, epiptigma corto doble pero a veces apareciendo simple en vista lateral. Intestino parcialmente traslapando el recto. Cola hemisférica, regularmente anulada, raramente con una pequeña proyección ventral; fásmidos como poros, pequeños, cerca del nivel del ano. Macho: Cuando son relajados, el cuerpo adopta una forma de C abierta, región labial mas distintamente separada del cuerpo que en la hembra. Bursa crenada, cubriendo la cola. Espiculas ligeramenten cefaladas, y arqueadas ventralmente, gubernaculum protrusible. Testículo simple, expandido. 11.2. Hospederos Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 106

Sorghum sp, Glycine max, Daucus carota, Brassica spp, Mangifera indica, Lycopersicon esculentum, Psidium guajava y Eucalyptus sp, Naranja Navel, Confieras. 11.3. Biología y relación hospedero/parásito Los miembros de este género son ectoparasitos migratorios de la raíz que a la hora de alimentarse se embeben parcialmente en el tejido radical; Las raicillas son las que se ven mas fuertemente afectadas. Prefieren en suelo arenosos ligero, pudiendo vivir en este sin crecimiento de plantas por más de seis meses, con una mortalidad que no excede el 50% de su población. Puede poseer una reproducción sexual o partenogenética, dependiendo de la especie. Entre los daños visibles ocasionados por Rotylenchus sp, están: el achaparramiento, amarillamiento de las hojas, perdida de vigor, pudrición y pérdida de peso del sistema radical y la aparición de numerosas, lesiones necróticas pequeñas. Se pueden distinguir tres tipos de daño directo que el nematodo puede ocasionar a las raíces: i) Mecánico, por la destrucción de células, dejando huecos en las raíces. ii) Químico, probablemente por la inyección de enzimas digestivas. iii) Por la remoción de los contenidos celulares para la alimentación. Todo esto las hace mas susceptibles al ataque por otro organismos patógenos. 12. Trichodorus sp. Clase: Adenophorea Orden: Dorylaimida Suborden: Diphterophorina Familia Trichodoridae 12.1. Descripción Hembra: Región anterior similar a la del macho, gónadas pareadas, opuestas. Engrosamiento esclerotizado refractivo en la vulva, es conspicuo, de forma casi triangular en vista lateral. Macho: Cuerpo un poco robusto, con forma de cigarro, curvado ventralmente, disminuyendo suavemente hacia la parte anterior, hacia una región labial ligeramente sobresaliente. Aperturas anfidicas sublabiales, y elipsoides. Faringe con un diente mural, ventralmente curvado, o onchiostilo, que esta unido por la parte dorsal a la pared dorsal de la faringe. Este onchiostilo estrecho en la parte anterior pero gradualmente se ensancha. Esta rodeado por un anillo guía indistinto, rodeado todo por una cubierta muscular densa. Lumen faringeal ventral al onchiostilo, llevando a un isthmus estrecho, que gradualmente se expande a un bulbo basal piriforme a espatulado. Testículo simple, espiculas pareadas, sin estrias transversas, curvadas ventralmente el fin distal. Gubernaculum de forma característica. 12.2. Hospederos Se ha encontrado asociado con Maíz, Algodón, Pino, Brassica spp, Daucus carota, Poa annua, Lollium perenne. 12.3. Biología y relación hospedero/parásito Se encuentra comúnmente en suelos arenosos o areno-limosos, comparativamente con los Tylenchida (Meloidogyne sp, Pratylenchus sp, Tylenchus sp, Tylenchulus sp, etc) es mas susceptible a la desecación del suelo. Se reproduce aparentemente en forma bisexual. Se Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 107

ha notado en otros países que los suelos infestados con Trichodorus spp, inherentemente deficientes en cobre y manganeso. son Alcanza la mayor densidad de población a profundidades de 25 30 cm, es decir por debajo de la profundidad de cultivación. Son ectoparasitos que se agregan cerca de las raíces de las plantas alimentándose de las células epidermales principalmente las que están por encima de las puntas radicales. Luego se mueven a la zona de elongación, donde la intensidad de la alimentación es más pronunciada, llevando a una gran reducción en la tasa de crecimiento radical, causando raíces en forma de tocones, y torna el tejido radical de color café, y la cesación del crecimiento. Se ha observado que las raíces atacadas, muestran unas ruptura que permite a los nematodos acceder al tejido cortical, más profundo. 13. Tylenchorrinchus sp Clase: Tylenchida Orden: Tylenchina Superfamilia: Tylenchoidea Familia: Dolichoroidea Subfamilia: Tylenchorhychinae (Siddiqi, M. R., 1972), Tylenchinae (Mai, W. F., 1975). 13.1. Descripción Hembra: Cuerpo de tamaño medio, cilindroide débilmente curvado ventralmente cuando es relajado o en especimenes montados, disminuyendo levemente hacia ambos lados. Campos laterales con dos, tres, cuatro o cinco líneas algunas veces areolados. Sin dimorfismos sexuales. Región labial redondeada, separada por una constricción leve, o continua con el cuerpo; la esclerotización puede ser débil o prominente (depende de la especie). Estilete bien desarrollado, delgado, con los nódulos basales que pueden ser redondeados, o con la parte anterior en forma de copa, pero igualmente conspicuos, el estilete disminuye anteriormente siendo aciculado en lugar de tubular. Bulbo medio, grande y oval con un aparato valvular refractivo en el centro. Istmo largo y estrecho, bulbo terminal piriforme. Válvula esófago intestinal, hemisferoide. Fásmidos conspicuos cerca de la mitad de la cola. Poro excretor cerca de la base del isthmus. Vulva localizada cerca de la mitad del cuerpo, ovarios dos y expandidos. Cola cilíndrica, conoide con termino usualmente redondeado, no agudo. Macho: Espiculas arqueadas, gubernaculum prolongable, con fin proximal redondeado. Cola ligeramente arqueda, cubierta por la bursa, raramente lobulada. 13.2. Hospederos Ageratum sp, Sacharum officinarum, Poa spp, Pinus spp, Oryza sativa, Sorghum sp, Zea mays, Brassicas spp, Raphanus sativus,, pastos y muchas plantas de la familia Asteracea. 13.3. Biología y relación hospedero/parásito Son ectoparasitos siendo observados en las células epidermales, y en los pelos radicales, aunque puede, bajo algunas condiciones, entrar en las raíces y ser endoparásito. Se reconocen tres fases de su proceso de alimentación: i) La penetración del estilete en la célula hospedera. ii) Salivación. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 108

iii) Ingestión. La primera es lograda mediante la rápida presión ejercida por el estilete, la salivación es caracterizada por la cesación de las otras actividades del cuerpo, y las incoordinadas contracciones de los músculos del bulbo medio. Son bisexuales reproduciéndose por anfimixis. Pueden sobrevivir hasta 10 meses sin hospederos, pudiendo ser erradicada en suelo seco después de 19 semanas; la frecuencia con que aparecen en el campo esta relacionada al ph del suelo, siendo más frecuentes en suelos ácidos, sospechándose que este factor afecta al nematodo en forma indirecta, debido a la influencia sobre la planta hospedera. 14. Tylenchulus sp Clase: Tylenchida Superfamilia: Tylenchoidea Familia: Tylenchulidae 14.1. Descripción Hembra inmadura: Cuerpo vermiforme estriado transversalmente, disminuyendo en ambos extremos, región labial conoide redondeado, suave, continua con el cuerpo, disco labial ausente, trama labial moderadamente esclerotizado; estilete con nódulos bien desarrollados, redondeados. Metacorpus con bulbo medio fuertemente muscular, oval. Istmo elongado y cilindrico. Cardia presente; recto y ano atrofiados, vulva cerca del fin posterior, con labios gruesos. Ducto excretorio cerca del frente de la vulva. Fin de la cola redondeado. Hembra madura; Cuerpo hinchado después de la nuca, ventralmente arqueado, después de la vulva es digitado; ovario enrollado, recto y ano ausente. Cubiertas por una matriz gelatinosa que es producida por el poro excretor. Macho: Cuerpo delgado, con la cola ligeramente arqueada durante la relajación, campos laterales inconspicuos. Región labial suave, conoide; trama labial ligeramente esclerotizada. Estilete y esófago degenerados, nódulos basales pequeños, bulbo medio no muscular, ahusado. Poro excretor a la mitad del cuerpo. Testículo simple y extendido, bursa ausente, espiculas delgadas y arqueadas, La apertura cloacal se encuentra en un protuberancia corporal conoide cerca del final de la cola. Cola elongada, conoide con termino redondeado. 14.2. Hospederos La especie T. semipenetrans, tienen una gran coincidencia con la citricultura en el mundo, reconociéndose que ataca 29 especies de Citrus spp, 21 híbridos, y otras once especies dentro de la familia Rutaceae. Además de contar con razas especiales que atacan otros hospederos fuera de esta familia. 14.3. Biología y relación hospedero/parásito La hembra adulta es un parásito obligado de la raíz con vida semi-endoparasitica sedentaria, con la parte anterior embebida en el tejido radical, manteniendo la parte hinchada posterior libre. Se encuentran generalmente en pequeños grupos en la superficie de las raíces fibrosas de Citrus spp., embebidos dentro de una matriz gelatinosa. Las larvas de hembras se alimenta superficialmente, pero las hembras jóvenes pueden penetrar más profundo llegando hasta el cortex, o hasta el periciclo. Mientras que los machos adultos y larvas no se alimentan. Se reproducen en forma amfimictica o partenogenética (partenogénesis facultativa). El nematodo es muy susceptible a la sequía, siendo la disponibilidad de oxigeno muy determinante para su reproducción y desarrollo, por tanto prefiere suelo ligeros. La multiplicación se ve favorecida por ph alcalinos, (por que el cultivo de citrus sp Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 109

crece en mejor forma en estos suelos). Cuando es atacado Citrus spp tiene una reacción morfológica (reacción hipersensitiva celular, con la formación de una herida peridermal en el tejido radicular) y un efecto toxico, lo que retarda el desarrollo de los estados tempranos. El desarrollo de las hembras depende de éxito del establecimiento y mantenimiento de los sitios de alimentación, los cuales están compuestos de células guardas con citoplasma denso, paredes gruesas, núcleo agrandado, nucleolos y careciendo de vacuolas. Sin que se observe hiperplasia o hipertrofia. Los síntomas aéreos aparecen de cinco a diez años después que ha ocurrido la infestación y consiste en un aspecto de mala nutrición (follaje amarillo); puntas de las ramas defoliadas y formación de frutos pequeños. El nematodo no mata al árbol pero reduce seriamente su vigor. Los que son atacados por altas poblaciones de nematodos pueden presentar amarillamiento en las hojas, escaso follaje y frutos pequeños, siendo estos síntomas más visibles en la parte superior del árbol. Los árboles infectados no responden a la fertilización y son más susceptibles a la sequía, que los árboles sanos. Las poblaciones de Tylenchulus sp, pueden cambian grandemente de árbol a árbol, entre diferentes partes del mismo huerto, de acuerdo a la época del año. Por lo general las condiciones favorables para el hospedero también son favorables para el nematodo. Se desarrolla en la mayoría de tipos de suelos, pero el desarrollo más rápido y las poblaciones mayores se ven favorecidas por texturas finas y suelos orgánicos. 15. Tylenchus sp Clase: Tylenchida Orden: Tylenchoidea Familia: Tylenchidae Subfamilia: Tylenchinae 15.1. Descripción Nematodos pequeños, raramente mayores de 1.0 mm de longitud, colas filiformes similares en ambos sexos, región labial estriada. Cutícula estriada, trama cefalica no esclerotizada, estilete bien desarrollado, con nódulos redondeados, bulbo medio ovalado con aparato valvular refractivo, istmo largo, delgado, terminando en un bulbo basal piriforme. Cardia presente. Vulva posterior a la mitad del cuerpo. Ovario anterior expandido. Rama uterina posterior rudimentario. En el macho la bursa es ad-anal. Universidad de El Salvador, Facultad de Ciencias Agronómicas, Unidad de PoSgrado 110

BIBLIOGRAFIA ALUJA SCHUNEMAN,M 1994. Manejo Integrado de la Mosca de la fruta. Editorial Trillas. México, D.F. 251p. ANAYA ROSALES, S.; ROMERO NÁPOLES, J. 1999. Hortalizas plagas y enfermedades. Editorial Trillas, México, D.F. 544p. ANDOW, D.; ROSSET, P. M. 1990. Integrated pest management. In: Agroecology. Ed. Carrol, C.R.; Vandermeer, J.H.; Rosset, P. University of Califormia, Berkeley. P. 413-439. ANDREWS, K. 1984. El manejo integrado de plagas invertebradas en cultivos Agronómicos hortícolas y frutales. Escuela Agrícola Panamericana, Zamorano. EAP/AID. Honduras ANDREWS, K.L.; RUTILIO QUEZADA, J.R. 1989. Manejo Integrado de Plagas Insectiles en la agricultura: Estado actual y futuro. Departamento de Protección Vegetal, Escuela Agrícola Panamericana El Zamorano, Honduras, C.A. 623p. BERG, G. 1990. Informe de actividades de trabajo en visita a Panamá OIRSA. BERG, G.H. 1989. La cuarentena vegetal, teoría y práctica. Organismo Internacional Regional de Sanidad Agropecuaria (OIRSA). San Salvador, C.A. 440p. BERG, G.H. 1993. Hojas de datos sobre plagas y enfermedades agrícolas de importancia cuarentenaria para los países miembros del OIRSA. Volumen II. Nueva San salvador, El salvador, C.A. 157p. BERG, G.H. 1994. Hojas de datos sobre plagas y enfermedades agrícolas de importancia cuarentenaria para los países miembros del OIRSA. Volumen I. Impresos Maya, Nueva San salvador, El salvador, C.A. 138p. BERG, G.H. 1994. Hojas de datos sobre plagas y enfermedades agrícolas de importancia cuarentenaria para los países miembros del OIRSA. Volumen III. Nueva San salvador, El salvador, C.A. 157p. BERG, G.H. 1996. Hojas de datos sobre plagas y enfermedades agrícolas de importancia cuarentenaria para los países miembros del OIRSA. Volumen IV. Nueva San salvador, El Salvador, C.A. 132p. BERG, G.H. 1999. Hojas de datos sobre plagas y enfermedades de productos almacenados de importancia cuarentenaria y/o económica para los países miembros del OIRSA. Volumen V. Nueva San salvador, El salvador, C.A. 132p. BERRY P.A. (1957). Lista de insectos clasificados de El Salvador, Ministerio de Agricultura y Ganaderia. Servcicio Cooperativo agrícola salvadoreño americana, boletín No. 21, Santa Tecla, El Salvador. BERRY P.A. 1959. Entomología económica de El Salvador. Servicio Cooperativo Agrícola Salvadoreño. Boletín N 24, Santa Tecla. El Salvador. BERRY P.A.; SALAZAR VAQUERAZO, M. (1959). Entomología económica de El Salvador. Ministerio de Agricultura y Ganaderia. Servcicio Cooperativo agrícola salvadoreño americana, boletín No. 24, Santa Tecla, El Salvador. BIRD, G.W. 1987. Role of nematology in integrated pest management programs. In Vistas on Nematology. Society of Nematologists. Edit. VEECH, J.A.; DICKSON, D.W. 1987. U.S.A. BORROR, D.J.; TRIPLEHORN, C.A. AND JOHNSON, N.F. 1989. An introduction to the study of insects. 6 th ed. New York, USA. Saunders College Publishing. P. 341-47. CENTA. 2003. El cultivo de la Anona. Guía técnica N 10 Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria y Forestal. MAG. San Andrés. El Salvador. CENTA. 2003. El cultivo de la Maracuyá. Guía técnica N 1 Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria y Forestal. MAG. San Andrés. El Salvador. CENTA. 2003. El cultivo de la Papaya. Guía técnica N 5 Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria y Forestal. MAG. San Andrés. El Salvador. CENTA. 2003. El cultivo del Cocotero. Guía técnica N 14 Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria y Forestal. MAG. San Andrés. El Salvador. 111

CENTA. 2003. El cultivo del Limón pérsico. Guía técnica N 3. Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria y Forestal. MAG. San Andrés. El Salvador. CENTA. 2003. El cultivo del Marañón. Guía técnica N 11 Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria y Forestal. MAG. San Andrés. El Salvador. CENTA. 2003. El cultivo del Níspero. Guía técnica N 12 Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria y Forestal. MAG. San Andrés. El Salvador. CENTA. 2003. El cultivo del zapote. Guía técnica N 13 Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria y Forestal. MAG. San Andrés. El Salvador. CHRISTIE, J.R. 1991. Nematodos de los vegetales: su ecología y control. LIMUSA. México. 275p. CISNEROS, F. 1995. Control de plagas agrícolas. 2 a ed. Full Print, La Molina, Perú. 313p. COULSON, R.N.; WITTER, J.A. 1990. Entomología forestal, ecología y control. Editorial Limusa, S.A. de C.V. México, D.F. p. 477-490. CROZZOLI, R. ; FUNES, C. 1992. Presencia del nematodo Tylenchulus semipenetrans en las principales zonas productoras de cítricos del estado Aragua, Venezuela. Fitopatología Venezolana 5(1):17-20. CUBILLO, D.; HILJE, L.; CARTIN, V.M. 1996. Distribución espacial y coparación de métodos de muestreo de larvas de Keiferia lycopersicella (Lepidoptera: Gelechiidae), en Alajuela, Costa Rica. Manejo Integrado de Plagas (Costa Rica) 39:10-16. DE BACH, R. 1985. Control Biológico de las plagas de insectos y malas hierbas. Editorial Continental, S.A. de C.V., México, D.F. p. 528-530, 792-800. DE FAZ, A.; DE CASIO, F. 1991. Principios de protección de plantas. Editorial Pueblo y Educación. Ciudad de La Habana, Cuba. 601p. De Zayas, F. 1988. Entomofauna Cubana. Tópicos entomológicos a nivel medio para uso didáctico. Primera parte: orden homóptera. Editorial científico-técnica, La Habana, Cuba. P. 95-115. DEN BELDER, E.; SIDILES, A. 1985. Control integrado de plagas. Tomo I y Tomo II. Instituto Superior de Ciencias Agropecuarias, Escuela de sanidad Vegetal (Nicaragua, C.A.) 227p. DIÁZ, A. D J. (1969) Estudio de la población de Dalbulus maidis vector del virus causante del acaparamiento del maíz. Memoria de la XV reunión anual del PCCMA. San Salvador, El Salvador. DROPKIN, V. H. 1980. Introduction to plant nematology. John Wiley & Sons. University of Missouri, Columbia. 6-26pp. Duarte, J.O. y otros. 1974. Combate Integrado de las plagas del algodón en El Salvador. Departamento del Algodón. Ministerio de Agricultura y Ganadería. Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria. Santa Tecla, El Salvador. ESCOBA B.J.C. (1984) Introducción al Manejo Integrado de Plagas del Maíz y el Sorgo. Memoria del curso sobre manejo integrado de plagas agrícolas. Dirección de Defensa Agropecuaria y el IICA. San Salvador, El Salvador. ESCOBAR B, J.C. 1984. Introducción Al manejo integrado de plagas del maiz y el sorgo. Memoria del curso sobre manejo integrado de plagas agrícolas. Dirección de Defensa Agropecuaria y el IICA. San Salvador. El Salvador. ESCOBAR B, J.C. 1990. Fluctuación poblacional y daños del picudo del tallo del maíz Listronotus dietrichi en El Salvador. Memoria de resúmenes de la XXXVI reunión anual del PCCMCA. San Salvador, El Salvador. ESCOBAR B, J.C. 1998. Manejo Integrado de Plagas del maíz y el Sorgo. Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria y Forestal. Proyecto Agricultura Sostenible en Zonas de Laderas. Fase II. CENTA-FAO-HOLANDA. San Salvador El Salvador. ESCOBAR B, J.C. 2003. Manejo Integrado de Plagas de cultivos Hortícolas. Proyecto Agricultura Sostenible en Zonas de Laderas. Fase II. CENTA-FAO- HOLANDA. San Salvador El Salvador. 112

ESCOBAR B, J.C. Y OTROS. 1989. Estado actual de las plagas del suelo en El Salvador. Memoria de resúmenes del taller regional Panamá y México de manejo integrado de plagas insectiles del suelo, con énfasis en Phyllophaga. CENTA-CATIE. San Salvador, El Salvador. ESCOBAR B, J.C. Y S.P. BONILLA.1986. Identificación y fluctuación poblacional de insectos y hongos poscosecha en el cultivo del maíz. Memoria de resúmenes de la XXXII reunión anual del PCCMCA. San Salvador, El Salvador. ESCOBAR B.J.C. (1990) Fluctuación poblacional y daños del picudo de l tallo del maíz Listronotus dietrichi (st) en El Salvador. Memoria de resúmenes de la XXXVI reunión del PCCMA, San Salvador, El Salvador. ESCOBAR B.J.C. (1990). Estado actual de las plagas del maíz en El Salvador. Memoria de resúmenes de la XXXVII reunión del PCCMA, Panamá, Panamá. ESCOBAR B.J.C. (1990). Fluctuación poblacional y daños del picudo del tallo del maíz Listronotus dietrichi (st) en El Salvador. Memoria de resúmenes de la XXXVI reunión del PCCMA, San Salvador, El Salvador. ESCOBAR B.J.C. Y BONILLA P. (1986). Identificación y fluctuación poblacional de insectos y hongos postcosecha en el cultivo del maíz. Memoria de resúmenes de la XXXII reunión anual del PCCMA realizada en San Salvador., El Salvador. ESCOBAR B.J.C. Y BONILLA P. (1987). Identificación y fluctuación poblacional de insectos y hongos postcosecha en el cultivo del maíz. Memoria de resúmenes de la XXXIII reunión anual del PCCMA realizado en Guatemala, Guatemala. Escobar, B. J. C. 1992. Plagas de Hortalizas. Bon Appetit S. A. de C. V., Departamento de Agricultura. Boletín Técnico número 2. Lourdes, Colón, El Salvador. 26 pp. Escobar, B. J. C. 2000. Las plagas claves del chile dulce. Proyecto Agricultura Sostenible en Zonas de Ladera. Centro Nacional de Tecnología Agropecuaria y Forestal, CENTA-FAO, Nota Técnica número 30, San Andrés, El Salvador. 9 pp. FAO. s.f. Integrated pest management (IPM). The way forward for the crop protection industry. Global crop protection federation. Brussels, Belgium. 22p. FASSULIOTIS, G. 1976. Descriptions of plant-parasitic nematodes. Set 6, no. 81. Commonwealth Institute of Helminthology. 3p. FERNÁNDEZ, A.; CLAVIJAS, S. 1990. Muestreo de la chicharrita del maíz, Peregrinus maidis (Homoptera: Delphacidad) e Venezuela. Rev. Fac. Agron. (Maracay) 16:1-3. FERNÁNDEZ, M. 1967. Lista de nematodos de Cuba. 1ª. Contribución. Revista Agricultura, Vol. 1(2). Academia de Ciencias de Cuba. pp 74-88. GRAIN. 1998. Los tomates: el mundo los aprecia y las multinacionales los codician. Biodiversidad, No. 15-16, junio 1998. p. 25-28. HERNÁNDEZ, D.; GONZÁLEZ, C. 1986. Cochinillas de los cítricos. Boletín de reseñas cítricos y otros frutales. Centro de información y documentación agropecuario, La Habana, Cuba. P. 16-67. King A.B Y J.L. Saunders. 1984. Las plagas invertebradas de cultivos anuales alimenticios en América Central. TDRI-CATIE. Turrialba, Costa Rica. Korytkowski, C.A. 1995. Apuntes del curso de sistemática de insectos. Orden homoptera. Vicerrectoria de investigación y postgrado, Universidad de Panamá, Panamá. KORYTKOWSKI, CH. A. 1998. Morfología de insectos. Curso de maestría en entomología agrícola. Vicerrectoría de Investigación y post-grado, Universidad de Panamá, Panamá. 100p. KORYTKOWSKI, CH. A. 1998. Notas sobre manejo integrado de plagas para el curso de maestría en entomología agrícola. Vicerrectoría de Investigación y Post-grado, Universidad de Panamá, Panamá. 123 p. MARTÍN PIERA, F.; GUTIERREZ ABASCAL, J. 1999. Apuntes sobre biodiversidad y conservación de insectos: Dilemas, ficciones y soluciones?. Aracnet, Bol. S.E.A., No. 2. Madrid España. 53p. 113

MELIA, A. 1993. Evolución poblacional de Toxoptera aurantii (Homoptera: Aphididae). España. Bol.San. Veg. Plagas., 19:609-617. MENDOZA HERNANDEZ, F.; GOMEZ SAUSA, J. 1982. Entomología general. Editorial Pueblo y Educación (Cuba). 300p. MENJIVAR, R.A.; SERMEÑO, J.M.; RIVAS, A.W. 2003. Afidos asociados al cultivo de cítricos de El Salvador. Consultorio OIRSA a través del proyecto VIFINEX. 2003. El Salvador, C.A. MEYERDIRK, D.E.; WARKENTIN, R.; ATTAVIAN, B.; GERSABECK, E.; FRANCISCA.; ADAMS, M.; FRANCIS, G. 1999. Manual del proyecto para el control biológico de la Cochinilla rosada del hibisco. Traducido al español por IICA. USDA, Estados Unidos. p-a.1- G.4. MICHELENA, J.M.; SANCHIS, A.; GOMZALES, P. 1994. Aphidiinos sobre pulgones de frutales en la comunidad Valenciana. España. Bol. San. Veg. Plagas., 20:465-470. MILLER, D.R. Identificación manual of the Pink Hibicus Mealybug, Maconellicoccus hirsutus. Systematic Entomology Laboratory, Beltsville, Maryland, U.SA. p. 18. NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES. 1971. Manejo y control de plagas de plantas y animales. Vol. III. LIMUSA-NORIEGA EDITORES. México. NATIONAL ACADEMY OF SCIENCES. 1989. Control de nematodos parásitos de plantas. Control de Plagas de Plantas y Animales Vol. 4. LIMUSA. México. 219p. PARADA JACO, M. E. SERMEÑO, J.M.; RIVAS, A.W. 2002. Cultivo del Loroco (Fernaldia pandurata) en El Salvador. Consultorio OIRSA a través del proyecto VIFINEX. El Salvador, C.A. PARADA JACO, M. E. SERMEÑO, J.M.; RIVAS, A.W. 2003. Enfermedades y Artropodos asociados al cultivo de loroco en El Salvador. Consultorio OIRSA a través del proyecto VIFINEX. El Salvador, C.A. PEDIGO, L.P. 1996. Entomology and pest management. 2 a ed. Prentice Hall, New Jersey, USA. 678 p. PETIT, P. 1992. Presencia del nematodo de las cítricas (Tylenchulus semipenetrans) en la zona citricola del centro de Venezuela. Fitopatología Venezolana 4(1):10-12. PINOCHET, J. 1988. Manejo integrado de nematodos en viveros de plátano. In Seminario de Nematología. Proyecto Manejo Integrado de Plagas, CATIE. Memoria de los trabajos presentados en el seminario de manejo integrado de nematodos en hortalizas y frutales. Del 17 al 19 de Noviembre de 1987. Panamá. PINOCHET, J. 1988. Nematodos en viveros frutales, su introducción, dispersión y manejo. In Seminario de Nematología. Proyecto Manejo Integrado de Plagas, CATIE. Memoria de los trabajos presentados en el seminario de manejo integrado de nematodos en hortalizas y frutales. Del 17 al 19 de Noviembre de 1987. Panamá. PINOCHET, J. 1987. Management of plant parasitic nematodes in Central America: The Panama Experience. In Vistas on Nematology. Society of Nematologists. Edit. VEECH, J.A.; DICKSON, D.W. 1987. U.S.A. Quezada J.R y otros. Principales especies de insectos asociados a los cultivos de cítricos en El Salvador. Ministerio de Agricultura y Ganadería. San Salvador, El Salvador QUEZADA J.R. Y A. DÍAZ CHÁVEZ (1978). Hallazgo del parásito Agonotopus sp (Hym. Dryniidae) de Dalbulus maidis en El Salvador. Memoria de resúmenes de la XXIV reuníon anual del PCCMCA, San Salvador, El Salvador. QUEZADA J.R. Y A. DIÁZ CHÁVEZ (1978). Poblaciones remanentes de barrenadores en cañas de maíz. Memoria de resúmenes de la XXIV reunión anual del PCCMCA, San Salvdor, El Salvador. RAVEN, K.G. 1993. Orden Homoptera II: Sternorrhyncha. Universidad Nacional Agraria La Molina, Departamento de entomología. Lima, Perú. P. IX-1-IX-46. REUTHER, W.; CALAVAN, E. C.; CARMAN, G. E. 1978. The citrus industry. Volume IV Crop Protection. University of California. Division of Agricultural Sciences. 114

RIVAS, A.W.; SERMEÑO, J.M.; PANIAGUA, M.R.; VILLACORTA, J.R. 2002. Manual Técnico de Nematodos de los cítricos de El Salvador. Proyecto financiado por OIRSA a través del proyecto VIFINEX.El Salvador, C.A. Rodríguez, O. y M. P. Cañas. 1986. Estudio bioecológico de algunas especies del género Spodoptera. Departamento de Ingeniería Agraria. Universidad Politécnica de El Salvador. Tesis Ing. Agr. San Salvador, El Salvador. 99 pp. ROSEN, D. 1990. Biological control. In: Armored scale insects their biology, natural Enemies and control. Volume B. The Hebrew University of Jerusalem, Faculty of Agriculture; Israel p. 413-415, 487-498. SANCHEZ, G; VERGARA, C. 1996. Manual de prácticas de entomología agrícola. Universidad Nacional Agraria La Molina, Departamento de Entomología. Lima, Perú. 172p. Scholen, S. 1997. Manejo Integrado de Plagas en Hortalizas. Un Manual para extensionistas. GTZ MBH. Tegucigalpa, Honduras. 156 pp. SERMEÑO, J. M. 1992. Método de reproducción del parasitoide Lysiphlebus testaseipes para el control de áfidos. Boletín Informativo MIP (CATIE, Costa Rica, C. A.) 26: 2-5. SERMEÑO, J. M. 1993. Enemigos naturales de Epilachna varivestis Mulsant en El Salvador. Boletín Informativo MIP (CATIE, Costa Rica, C.A.) 28:1-4. SERMEÑO, J.M.; NAVARRO, J.A. 2000. Manual Técnico de Identificación de insectos de la superfamilia Coccoidea con enfasis en Cochinilla Rosada del Hibisco Maconellicoccus hirsutus (Green). Proyecto financiado por OIRSA a través del proyecto VIFINEX. El Salvador, C.A. SERMEÑO, J.M.; RIVAS, A.W.; MENJIVAR, R.A. 2001. Manual Técnico de Manejo Integrado de Plagas. Proyecto financiado por OIRSA a través del proyecto VIFINEX. El Salvador, C.A. SERMEÑO, J.M.; JONES, D.; MENJIVAR, M.A.; PANIAGUA, M.R.; MONRO, A. 2003. Termitas de los cafetales de El salvador. Proyecto financiado por el Museo Británico, Londres, Inglaterra. SERMEÑO, J.M.; KORYTKOWSKI, CH. A. 1998. Capacidad de búsqueda de Lysiphlebus testaceipes (Hymenoptera: Aphidiidae) sobre Aphis gossypii (Homoptera: Aphididae) en Solanum melongena. Memoria II Seminario Taller Internacional Aportes del control biológico en la agricultura sostenible y I Congreso Latinoamericano de la sección regional neotropical de la organización internacional de lucha biológica. Lima, Perú. p. 97. SHESTEPEROV, A.A. 1974. Influencia de los factores ecológicos en la densidad de población de los nematodos. Sociedad Nacional de Helmintología. Academia de Ciencias de la URSS. SIDDIQI, M.R. 1972. C.I.H. Descriptions of plant-parasitic nematodes. Set 1, no. 9. Commonwealth Institute of Helminthology. 3p. SIDDIQI, M.R. 1974. C.I.H. Descriptions of plant-parasitic nematodes. Set 3, no. 55. Commonwealth Institute of Helminthology. 3p. SIDDIQI, M.R. 1974. C.I.H. Descriptions of plant-parasitic nematodes. Set 3, no. 34. Commonwealth Institute of Helminthology. 4p. SIDDIQI, M.R. 1974. C.I.H. Descriptions of plant-parasitic nematodes. Set 4, no. 41. Commonwealth Institute of Helminthology. 2p. SIDDIQI, M.R. 1976. C.I.H. Descriptions of plant-parasitic nematodes. Set 6, no. 85. Commonwealth Institute of Helminthology. 4p. SILLER, M.C. 1995. Prácticas de nematología agrícola. Universidad Autónoma Agraria Antonio Narro. México. 109p. TAYLOR, A.L.; SASSER, J.N. 1983. Biología, identificación y control de los nematodos de nódulo de la raíz (Especies de Meloidogyne). Proyecto Internacional de Meloidogyne (IMP). Universidad de Carolina del Norte y AID. 111p. THORNE, G. 1961. Principles of nematology. Mc Graw-Hill. New York. TIZADO, E.J.; NUÑEZ, E.; NIETO, J.M. 1992: Reservorios silvestres de parasitoides de pulgones del género Aphis con interés agrícola en la provincia de León. España. Bol. San. Veg. Plagas., 18:309-313. 115

TRABANINO, R. 1998. Guía para el manejo integrado de plagas invertebrados en Honduras. Zamorano Academic Press, Zamorano, Honduras. 156 pp. University of California. 1991. Integrated pest management for citrus. Second edition. Division of agriculture and natural resourses. United States. p. 56-71, 91-101. UNIVERSITY OF CALIFORNIA. 1991. Integrated pest management for citrus. Division of agriculture and natural resources, Publication 3303. Oakland California. 144p. VAN DRIESCHE, R. G.; BELLOWS, T. S. Jr. 1996. Biological control. Chapman & Hall. New York, USA. 539p. VAN DRIESCHE, R.G.; BELLOWS, T.S. 1996. Biological control. An International Thomson Publishing Company. Estados Unidos. p. 297-298. VARGAS, R. 1987. Control integrado de escama de San José In: La Platina, 50 años de VERGARA, R. 1990. El control biológico a lo largo de la historia. Colombia Ciencia y Tecnología. Universidad de Tolima; Colombia p. 6-7. VIVAS, L.E.; CLAVIJO, S.; GONZALEZ, H. 2001. Distribución temporal y espacial en poblaciones de sogata (Tagosodes orizicolus (Muir) 1926 (Homoptera: Delphacidae) y número óptimo de muestras para su estimación en el cultivo de arroz, en Calabozo, Edo. Guárico, Venezuela. Fundación para la investigación agrícola DANAC (Venezuela). Investiación Agrícola, Vol. 6:1-13. WATSON, G.W.; CHANDLER, L.R. 2000. Identificación de las cochinillas o piojos harinosos de Importancia en el Caribe. Traducido al español por Marco Goiani. Commonwealth Science Council y CAB International, London, United Kingdom. p. 7-36. WEBSTER, J. M. 1953. Economic nematology. Academic Press. Londres. WILLIAMS, D.J.; GRANARA DE WILLINK,.C. 1992. Mealybugs of central and South America. CAB International, London, United Kingdom. p. 54-609. ZAHRADNIK, J.; CHVALA, M. 1990. La gran enciclopedia de los insectos. Susaeta Ediciones S.A. Checoslovaquia. p. 104-107. ZUCKERMAN, B.M.; MAI, W.F.; HARRISON, M.B. 1985. Fitonematología: manual de laboratorio. Trad. Al español N. Marbán Mendoza (1987). Centro Agronómico Tropical de Investigación y Enseñanza (CATIE). Turrialba, Costa Rica.248p. Todos los derechos reservados Este Manual Técnico no podrá ser total o parcialmente reproducido en ninguna forma, incluyendo fotocopia, sin la autorización por escrito de la Facultad de Ciencias Agronómicas de la Universidad de El Salvador. San Salvador, El Salvador C. A., mayo 2004 116