CARACTERIZACIÓN DE LAS FORMACIONES VEGETALES DE LA CAATINGA DEL CARIRÍ (PARAIBA, BRASIL)

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1 CARACTERIZACIÓN DE LAS FORMACIONES VEGETALES DE LA CAATINGA DEL CARIRÍ (PARAIBA, BRASIL) De Lima, R. (1), Cámara, R. (2) (1) Universidad Estadual da Paraiba. Campus III, Guarabira (2) Dpto. Geografía Física y Análisis Geográfico Regional, Universidad de Sevilla. rcamara@us.es Resumen: Se realiza una caracterización de las formaciones vegetales de caatinga en el Carirí, situado en la pedillanura de la Borborema, al Noreste de Brasil. Se realizan para ello 35 parcelas según el método MIFC, a partir de las cuales, por agrupamiento cluster y por análisis de su posición geomorfológica se establecen tres tipologías: formación vegetal en llanura, en vertiente y en vertientes altas húmedas y somital, que están relacionadas con el manejo y su posición geomorfológica. Se realiza a partir de los sitios muestreados y de la clasificación supervisada de una imagen de satélite ETM+ del año Palabras clave: caatinga; Paraiba; MIFC; geobotánica Abstract (Characterization of caatinga plant formations in the Carirí (Paraiba, Brasil)): In this paper, we characterize the caatinga vegetation in the Carirí, within the pedillanura of the Borborema, in the Northeast of Brazil. According to the MIFC method, thirty-five plots are analyzed and classified into three groups using cluster analysis and based on their geomorphological position: plain, slope and, humid upper-slope and top formations, which are related to their management and geomorphological position. The characterization is supported by the analysis of the plots and a supervised classification of EMT+ satellite image of Key words: caatinga; Paraiba; MIFC; geobotany. INTRODUCCIÓN La bibliografía científica durante muchos años ha propagado una visión general de la Caatinga como un bioma con formaciones vegetales xerófilas con baja diversidad biológica y estructural. A pesar de tener espacios muy modificados por la acción antrópica, en particular en relieves llanos, y ubicaciones locales con condiciones bioclimáticas de vegetación xerófila, las investigaciones más recientes están demostrando que el bioma tiene una gran diversidad y núcleos de vegetación con bosques mesófilos y tropófilos bien preservados, que incluyen un número significativo de taxas y endemismo. El bioma Caatinga cubre 11% del todo territorio nacional, 45% de la región Noreste de Brasil y en 92% del Estado de Paraíba. La cuenca hidrografía del río Paraíba en su sector semiárido sufre muchas presiones antrópicas por abarcar ciudades de pequeño y medio porte, algunas importantes como Campina Grande, con, industrias y actividades agrícolas y ganaderas que constityen a la vez que el desarrollo económico de la región, una amenaza para el bioma Caatinga. SITUACIÓN Los estudios desarrollados por Sarmiento (1975) y Ab sáber (1977), analizaron las zona intertropical del continente sudamericano, donde se sitúan áreas de núcleos áridos y semiáridos, distribuidos en provincias con condiciones ombrotérmicas diferentes. Estos núcleos se localizan en Argentina (Chaco seco), el Golfo de Guayaquil (Ecuador), Norte de Chile, dominio semiárido del Guajira - Colombia en la fachada caribeña de Venezuela en el extremo noroeste del continente, y el noreste de Brasil donde predomina la vegetación caatinga. Para Ab saber (2003), el mejor delimitador del noreste semiárido más allá de los valores climáticos, son los límites de la vegetación de caatinga, en la cual su dinámica está muy asociado a los regímenes de lluvia. Las razones de la existencia de una gran área de clima semiárido, aislado en un cuadrante de un continente predominantemente húmedo son relativamente complejas (Ab Saber, 2003). El fenómeno se presenta en Brasil, por el efecto de que las masas de aire en la zona tropical del Atlántico (incluido el funcionamiento dinámico de los vientos alisios), en determinados periodos del año, pierden fuerza y no son capaces de penetrar de Este a Oeste en el noreste de Brasil. La mayoría de las zonas áridas o semiáridas están localizadas en células anticiclónicas dinámicas dentro del sistema de circulación

2 global atmosférico, donde las precipitaciones son escasas y dentro de éste se limitan a las precipitaciones esporádicas de frentes de borrascas, que son débiles y normalmente producen pocas lluvias (Elorza, 2001). La Caatinga ha sido incluida como unidad dentro de las grandes clasificaciones mundiales bioclimáticas o de vegetación, bien directamente con su propia denominación o indirectamente como la formación vegetal de la que forma parte. Su denominación regional transciende, por su extensión y características al marco local brasileño. La vegetación de caatinga sufre una clara dificultad en su ubicación en el marco climavegetación desde: la clasificación climática de Köppen (1936), que enmarca la caatinga en el tipo BSh, de climas secos, semiáridos cálido;, a la más bioclimáticas de Whittaker (1972), donde la caatinga, pertenece a los bioma tipo de sabana, desiertos suptropicales y bosques tropicales estacionales; y de Walter (1977) que la situó inicialmente dentro del zonobioma ecuatorial, y más tarde en un zonoecotono entre el zonobioma tropical con lluvias de verano (húmedo clima árido) y los desiertos subtropicales. La clasificación de Holdridge (1987), la sitúa en la zona tropical entre la floresta espinosa tropical, la selva muy seca tropical, y la selva seca tropical representada por sus núcleos de vegetación tropófilo. La última aportación en esta línea es la Clasificación de ecorregiones de World Wide Fund for Nature que en 1995 identifica a la caatinga como ecorregión. Otras clasificaciones como la fisionómica de Brockmann-Jerosch y Rübel de Unesco. Ellenberg & Mueller- Dombois o la de o el Atlas biogeográfico de Smichtüsen atienden más a las formaciones vegetales y sus elementos constitutivos más que a las condiciones bioclimáticas. El conjunto de la cuenta alta y media del río Paraíba está configurado por la presencia de superficies de erosión que constituyen episodios de evolución del cratón desde el Proterozoico hasta el Cuaternario. Estas superficies han evolucionado a penillanuras por procesos alternantes de alteración y evacuación de la alterita que se relaciona con periodos cálidoshúmedos y cálido secos (Peulvast, 2004) respectivamente. Han sido estudiadas por investigadores brasileños (Andrade, 1965; Bigarella, 1964, Castro, 1979, Ab Saber, 2000) y extranjeros (King, 1956; Mc Connell, 1968; Demangeot, 1960, Mabessone, 1975, Peulvast, 2004) y han identificado tres grandes superficies que se desarrollan en el conjunto del ámbito de la cuenca, según la tipología de Bigarella y Andrade (1964), reafirmada por Mabesoone (1974, 1975) (Figura 1): Pd3: superficie Gondwana del Cretáceo Superior Albiense-Turoniense ( m.) Pd2: superficie Sudamericana/Cariris Velhos, del Cenozoico Inferior (Oligoceno) ( m.) Pd1: superficie de la Borborema del Cenozoico Medio (Mio-Plioceno) ( m.) La superficie Pd3 queda representada en la cuenca al Suroeste, al sur de Sao Joao do Tigre, con un escarpe muy claro que la separa de la superficie Pd2. Sobre ella se encuentran releieves residuales como inselberg de resistencia (härtlinge) de Serra do Paulo próximo a la población de Santa María. La superficie Pd2 se sitúa en la cuenca al oeste donde se asientan las poblaciones de sur a Norte Sao Sebastiao do Umbuzeiro, Sao Joa do Tigre, Monterio, Prata y Ouro Velho, y al Noreste en Puxinana. Presenta relieves residuales, generalmente del tipo inselbergs de resistencia, ya que estos sueles estar vinculados a rocas intrusivas de granitos frente a las circundantes que son de gneis. El paso de la Pd2 a la Pd1 se resuelve con un pedimento, más pronunciado hacia el norte y sobre el cual se encuentra la ciudad de Campina Grande. En este pedimento se sitúan varios inselbergs de posición, entre los que podemos citar al sur la Serra das Umberanas, Serra de Alcantil, Serra da Oratoria, al centro de la cuenca al norte de la población de Coxixola, y al oeste la Serra da Quixabeira.

3 Fig. 1: Mapa Geomorfológico sintético de la cuenca media y alta del río Paraíba Fig. 2: Relación con las paleosuperficies Pd3, Pd2 y Pd1 y sus formaciones correlativas en el litoral de Paraíba. En en esquema quedán reflejadas las posiciones relativas de los inselbergsa de resistencia y posición con respecto a las superficies. A la derecha escala altimétrica sobre el nivel del mar en metros. La superficie Pd1, ocupa la mayor extensión de la cuenca, tendida hacia el Este con una pendiente suave, en la que esta encajado (en progresión cuanto más hacia el Este) el río Paraíba. En ella destacan en el paisaje los inselbergs de resistencia (härtlinge) de Serra de Queimadas (con un Boqueirao que comunica Campinas con la cuenca del Paraíba), Serra de Caturité, Serra do Monte, y Serra de Boqueirao. Al este la serra de Uruçu y Serra de Umbuzeiro y al Oeste desde el Sur de la población de Coxixola al conjunto que va de noreste a suroeste desde Congo a Camalau. En el centro de la cuenca entre Barrra de Sao Miguel y

4 riacho de Sao Antonio hay algunos inselbergs de posición (fernlinge). El objetivo de este trabajo es aportar una caracterización de las formaciones vegetales que constituyen la caatinga en el Carirí, en el Estado de Paraiba (Brasil) que se desarrolla sobre las superficies antes citadas y los relieves residuales (inselbergs), y que conforman junto a la vegetación el paisaje característico de la caatinga brasileña. METODOLOGÍA Para el levantamiento de la información de campo de las formaciones vegetales se ha utilizado el método de inventario de fanerófitos y caméfitos (MIFC) (Cámara, 2013). El desarrollo de la técnica se apoya en el método ecodinámico y el resultado de la aplicación de la técnica presenta características ecodinámicas. El objetivo de esta nueva técnica es caracterizar la dinámica geobotánica de las formaciones vegetales de fanerófitos y caméfitos. El interés en la aplicación del método MIFC se centra en analizar la estructura verticalhorizontal y fisonomía de las formaciones vegetales, sus características de biodiversidad, así como los factores que explican su distribución, atributos que constituyen científicamente en el campo de investigación de la Biogeografía. Este método ha sido desarrollado por el grupo de investigación Cuaternario y Geomorfología (PAI RNM273) con experiencia de aplicación en los medios tropicales y subtropicales a través del grupo de trabajo Estudios Tropicales y Cooperación al Desarrollo en base a la experiencia de investigación en materia de medios naturales y elementos frágiles del ecosistema, incorporando indicadores de ciencia básica (Geomorfología, Bioclimatología, Biogeografía, Paleogeografía y Cuaternario) con resolución cartográfica. Los transectos realizados mediante éste método se relacionan con los perfiles de suelos, sus características texturales y profundidad de las raíces, para la caracterización de las formaciones superficiales y la capacidad de campo asociada, así como los procesos hídricos de funcionamiento mesogénicos (aguas subsuperficiales), que determinan las sinecias propias de cada formación vegetal. La técnica que hemos identificado parte del método utilizado por A. H. Gentry (1982, 1996), modificado por el grupo para adaptarlo al estudio de los matorrales y ante las deficiencias de otros métodos aplicados para el estudio de formaciones arbustivas y arbóreas: Las especies arbustivas y subarbustivas (fanerófitos y caméfitos) que no poseen DAP superior a 2,5 cm quedan fuera del inventario, y estos tipos biológicos son característicos de las formaciones vegetales mediterráneas, incluidos los bosques mediterráneos. No se dispone de una estimación de la cobertura horizontal y por lo tanto no es posible determinar el en Índice de Valor de Importancia (IVI), más que con los DAP si existieran, y no se puede caracterizar la cobertura horizontal de la formación vegetal, especialmente si ésta es de carácter arbustivo. No se puede cartografiar el transecto, por lo que el inventario queda solo en un listado de individuos/especies con su DAP y altura. No es posible establecer un sistema de análisis dinámico entre formaciones vegetales relacionando la diversidad de sus estratos (estructura vertical) y la cobertura horizontal de cada uno de ellos Para hacer frente a estas carencias se define la unidad básica de parcela en 50x2 metros de transecto lineal a semejanza del método de A. H. Gentry en un censo de plantas leñosas fanerófitos y caméfitos. Se considera para cada individuo la altura, el diámetro mayor y menor si no posee un DAP superior a 2 cm, y el radio medio de la copa si posee un DAP igual o superior a 2 cm para establecer la estructura vertical y horizontal de las especies leñosas arbustivas, subarbustivas. Se ha añadido en la toma de datos la posición del individuo identificado y medido, tanto en su distancia longitudinal en el transecto lineal de 50 metros, como su separación a derecha o izquierda de la cinta métrica, a partir de esa posición. Para sitios como la Caatinga brasileña, la toma de datos para las Cactáceas, fue realizada de acuerdo con la morfología de cada individuo. Algunas especies como: Melocactus zehntneri (Britton & J. N. Rose) Luetzelb. Procedemos a la toma de datos de la altura, el diámetro mayor/menor del individuo. Para especias como: Pilosocereus gounellei (F.A.C. Weber) Byles & G.D. Rowley, para algunos individuos con ramas extendidas fueron tomadas medidas de la altura y el diámetro mayor/menor. Sin embargo, para otros individuos de la misma especie con estructura única, fueran tomadas medidas de la altura y DBH, considerando el radio medio igual al DBH.

5 DATOS Se realizaron 35 parcelas con el método MIFC, en los lugares de Boquerao BOQv (1), Camalau CAMv (2), Sao Domingo do Cariri SDCv (2), Coxixola COXv (1), Caturité CATv (13), Sume ALMv (2) y Sao Joao do Tigre SJTv (13). A partir de una clasificación cluster por el método de Ward y relacionándolo con la posición geomorfológica de los transectos, se han identificado tres grandes conjuntos de formaciones vegetales (Figura 3) que agrupa: 1) los transectos BOQv 1, CAMv 1 y 2, SJT 14 y CATv 11, 12 y 13 2) los transectos CATv 1 a 6, y SJT 1 a 6 y 9 a 11. 3) Los transcetos ALMv 1 y 2, CATv 7, 8, 9 y 10, y SJTv 7, 8, 12 y 13. El primer grupo se relaciona con parcelas que se encuentran en la llanura del pedimento. El segundo grupo en las vertientes de los inselbergs y las superficies de enlace entre pedimentos diferentes, y el tercero con las superficies somitales de los inselbergs. Estas tres formaciones son identificadas en una cartografía de vegetación realizada a partir de la clasificación de la imágens de satélite ETM+ de fecha 12 de noviembre del año 2000, por el método de máxima verosimilitud y utilizando como training sites las parcelas realizadas en Fig. 3: Análisis Cluster por el método Ward para el agrupamiento de parcelas en funicón de las especies que contiene

6 campo. Estos grupos, en sus atributos, ha sido caracterizados por el Indice de Valor de Importancia (IVI) que es la media de la suma de la dominancia relativa, la abundancia relativa y la presencia relativa (Tabla 1, 2 y 3). Este índice nos expresa cuales son las especies que por abundancia, cobertura y presencia son más importante en una muestra. Estas muestras son deseables que tengan al menos 10 parcelas. especie familia IVI Poincianella pyramidalis (Tull) L.P. Queiroz Fabaceae-Caesalpinioideae Croton sonderianus Müll Arg. Euphorbiaceae Mimosa ophthalmocentra Mart. ex Benth. Fabaceae-Mimosoideae Jatropha mollissima (Pohl) Baill. Euphorbiaceae 6.48 Aspidosperma pyrifolium Mart. Apocynaceae 5.93 Croton echioides Baill. Euphorbiaceae 5.01 Guapira pernambucensis (Casar.) Lundell Nyctaginaceae 4.13 Ziziphus joazeiro Mart. Rhamnaceae 3.29 Sida sp. Malvaceae 3.23 Tacinga palmadora Britton & Rose Cactaceae 2.61 Manihot glaziovii Mull. Arg. Euphorbiaceae 2.33 Cnidosculus urens (L.) Arthur. Euphorbiaceae 2.16 Pilosocereus pachycladus F. Ritter Cactaceae 1.90 Prosopis juliflora DC. Fabaceae-Mimosoideae 1.84 Commiphora leptophloeos (Mart.) J.B.Gillett Burseraceae 1.82 Peltophorum dubium (Spreng) - Taub. Fabaceae-Caesalpinioideae 1.74 Prockia sp. Salicaceae 1.62 Bromelia laciniosa Mart. ex Schult. & Schult f. Bromeliaceae 1.59 Ocotea sp. Lauraceae 1.58 Neoglaziovia variegata (Arruda) Mez Bromeliaceae 1.57 Myracrodruon urundeuva Allemão Anacardiaceae 1.43 Mimosa tenuiflora (Willd.) Poir Fabaceae-Mimosoideae 1.26 Croton tricolor Klotzch ex Baill. Euphorbiaceae 1.19 Pilosocereus gounellei (F.A.C. Weber) Byles & G.D. Rowley Cactaceae 1.16 Combretum duarteanum Cambess. Combretaceae 0.96 Anadenanthera colubrina (Vell.) Brenan Fabaceae-Mimosoideae 0.90 Capparis flexuosa (L.) L. Capparaceae 0.78 Tabebuia aurea (Silva Manso) Benth. & Hook.f. ex S.Moore Bignoniaceae 0.68 Stylosanthes guianensis (Aubl.) Sw. Fabaceae-Faboideae 0.52 Opuntia palmadora Britton & Rose Cactaceae 0.40 Canavalia brasiliensis Mart ex. Benth Fabaceae-Faboideae 0.39 Cereus jamacaru DC. Cactaceae 0.38 Melochia pyramidata L. Sterculiaceae 0.37 Psittacanthus sp. Loranthaceae 0.37 Myrtaceae sp. Myrtaceae 0.37 Tabla 1. IVI de las especie del grupo 1, llanura En la Tabla 1 aparecen como especies más importantes Poincianella pyramidalis (Tull) L.P. Queiroz, Croton sonderianus Müll Arg., Mimosa ophthalmocentra Mart. ex Benth., Jatropha mollissima (Pohl) Baill., Aspidosperma pyrifolium Mart., Croton echioides Baill., Guapira pernambucensis (Casar.) Lundell, y Ziziphus joazeiro Mart., siendo las familias más importantes Euphorbiaceae, Fabaceae-Caesalpinioideae, Fabaceae-Mimosoideae, y Apocynaceae. Por su parte, la Tabla 2 muestra como especies más importantes Mimosa ophthalmocentra Mart. ex Benth., Anadenanthera colubrina (Vell.) Brenan, Croton echioides Baill., Poincianella pyramidalis (Tull) L.P. Queiroz Croton sonderianus Müll Arg., Piptadenia stipulacea (Benth.) Ducke, Bauhinia cheilantha (Bong.) Steud., Croton argyrophylloides Mull. Arg y Capparis flexuosa (L.) L., predominando de nuevo las familias Fabaceae-Mimosoideae Fabaceae-Mimosoideae, Euphorbiaceae y Fabaceae-Caesalpinioideae especie familia IVI Mimosa ophthalmocentra Mart. ex Benth. Fabaceae-Mimosoideae Anadenanthera colubrina (Vell.) Brenan Fabaceae-Mimosoideae 7.95 Croton echioides Baill. Euphorbiaceae 7.10 Poincianella pyramidalis (Tull) L.P. Queiroz Fabaceae-Caesalpinioideae 6.04 Croton sonderianus Müll Arg. Euphorbiaceae 5.52 Piptadenia stipulacea (Benth.) Ducke Fabaceae-Mimosoideae 5.03 Bauhinia cheilantha (Bong.) Steud. Fabaceae-Caesalpinioideae 4.63 Croton argyrophylloides Mull. Arg Euphorbiaceae 3.63 Capparis flexuosa (L.) L. Capparaceae 3.57 Pilosocereus pachycladus F. Ritter Cactaceae 2.90 Manihot glaziovii Mull. Arg. Euphorbiaceae 2.83 Jatropha mollissima (Pohl) Baill. Euphorbiaceae 2.79 Solanum paniculatum L. Solanaceae 2.30 Sapium glandulatum (Vell.) Pax Euphorbiaceae 2.17 Ziziphus joazeiro Mart. Rhamnaceae 1.87 Tacinga palmadora Britton & Rose Cactaceae 1.70 Cordia leucocephala Moric. Boraginaceae 1.68 Aspidosperma pyrifolium Mart. Apocynaceae 1.63 Cordia goeldiana Huber. Boraginaceae 1.43 Acacia paniculata Willd. Fabaceae-Mimosoideae 1.39 Helietta apiculata Benth. Rutaceae 1.32 Lantana camara L. Verbenaceae 1.02 Cereus jamacaru DC. Cactaceae 1.00 Cnidoscolus quercifolius Pohl. Euphorbiaceae 0.79 Mimosa bimucronata (DC.) Kuntze. Fabaceae-Mimosoideae 0.78 Erythroxylum sp. Erythroxylaceae 0.77 Neoglaziovia variegata (Arruda) Mez Bromeliaceae 0.76 Syagrus oleraceae (Mart.) Becc. Arecaeae 0.71 Croton rhamnifolioides Pax & K. Hoffm. Euphorbiaceae 0.70 Cnidosculus urens (L.) Arthur. Euphorbiaceae 0.64 Mimosa tenuiflora (Willd.) Poir Fabaceae-Mimosoideae 0.63 Myracrodruon urundeuva Allemão Anacardiaceae 0.62 Combretum leprozum Mart. Combretaceae 0.47 Himatanthus lancifolius (Müll. Arg.) Woodson Apocynaceae 0.46 Commiphora leptophloeos (Mart.) J.B.Gillett Burseraceae 0.41 Peltophorum dubium (Spreng) - Taub. Fabaceae-Caesalpinioideae 0.39 Capparis yco Mart. & Eichler Capparaceae 0.39 Mauritia flexuosa L.f. Arecaeae 0.37 Caesalpinea ferrea Mart. Fabaceae-Caesalpinioideae 0.33 Piper sp. Piperaceae 0.31 Pseudobombax marginatum (A. St. -Hil., Juss &CambessMalvaceae 0.26 Croton tricolor Klotzch ex Baill. Euphorbiaceae 0.26 Conceveiba guianensis Aubl. Euphorbiaceae 0.25 Solanum sp. Solanaceae 0.23 Pilosocereus gounellei (F.A.C. Weber) Byles & G.D. Row Cactaceae 0.21 Aniba sp. Lauraceae 0.21 Bromelia laciniosa Mart. ex Schult. & Schult f. Bromeliaceae 0.18 Luetzelburgia auriculata (Allemão) Ducke Fabaceae-Faboideae 0.18 Prockia sp. Salicaceae 0.18 Sideroxylon obstusifolium (Roem. & Schult.) T.D. Penn. Sapotaceae 0.15 Aspidosperma spruceanum Benth. ex Müll.Arg. Apocynaceae 0.15 Maytenus sp. Celastraceae 0.14 Ceiba glaziovii (Kuntze) K. Schum Malvaceae 0.13 Euphorbia tirucalli L. Euphorbiaceae 0.13 Ocotea sp. Lauraceae 0.10 Melocactus bahiensis (Buining & Brederoo) Werderm. Cactaceae 0.09 Spondias tuberosa Arruda Anacardiaceae 0.09 Tabla 2. IVI de las especie del grupo 2, vertiente Finalmente, la formación vegetal correspondiente a las vertientes más altas, áreas somitales, o vertientes más húmedas está referida en la Tabla 3, con las especies más importantes Croton echioides Baill., Poincianella pyramidalis (Tull) L.P. Queiroz, Capparis flexuosa (L.) L., Myracrodruon urundeuva Allemão, Mimosa ophthalmocentra Mart. ex Benth., y Bauhinia cheilantha (Bong.) Steud., y aquí las familias cambian: Euphorbiaceae, Fabaceae-Caesalpinioideae,

7 Capparaceae, Anacardiaceae y Fabaceae- Mimosoideae. especie familia IVI Croton echioides Baill. Euphorbiaceae 9.40 Poincianella pyramidalis (Tull) L.P. Queiroz Fabaceae-Caesalpinioideae 8.16 Capparis flexuosa (L.) L. Capparaceae 5.83 Myracrodruon urundeuva Allemão Anacardiaceae 5.10 Mimosa ophthalmocentra Mart. ex Benth. Fabaceae-Mimosoideae 4.77 Bauhinia cheilantha (Bong.) Steud. Fabaceae-Caesalpinioideae 4.26 Aspidosperma pyrifolium Mart. Apocynaceae 3.62 Jatropha mollissima (Pohl) Baill. Euphorbiaceae 2.60 Maytenus sp. Celastraceae 2.57 Croton sonderianus Müll Arg. Euphorbiaceae 2.45 Pseudobombax marginatum (A. St. -Hil., Juss &Cambess)Malvaceae 2.22 Pilosocereus gounellei (F.A.C. Weber) Byles & G.D. Rowl Cactaceae 2.10 Croton tricolor Klotzch ex Baill. Euphorbiaceae 2.06 Manihot glaziovii Mull. Arg. Euphorbiaceae 1.99 Ceiba glaziovii (Kuntze) K. Schum Malvaceae 1.98 Aspidosperma spruceanum Benth. ex Müll.Arg. Apocynaceae 1.91 Combretum leprozum Mart. Combretaceae 1.74 Erythroxylum sp. Erythroxylaceae 1.72 Leucochloron sp. Fabaceae-Mimosoideae 1.65 Cereus jamacaru DC. Cactaceae 1.62 Amburana cearensis (Allemao) A.C. Sm Fabaceae-Faboideae 1.60 Anadenanthera colubrina (Vell.) Brenan Fabaceae-Mimosoideae 1.51 Commiphora leptophloeos (Mart.) J.B.Gillett Burseraceae 1.47 Sapium glandulatum (Vell.) Pax Euphorbiaceae 1.44 Tacinga palmadora Britton & Rose Cactaceae 1.40 Piper sp. Piperaceae 1.33 Cnidosculus urens (L.) Arthur. Euphorbiaceae 1.33 Pilosocereus pachycladus F. Ritter Cactaceae 1.25 Pectis alongata Kunth Asteraceae 1.04 Chamaecrista hispidula (Vahl) H.S.Irwin & Barneby Fabaceae-Caesalpinioideae 1.04 Syagrus oleraceae (Mart.) Becc. Arecaeae 1.03 Enterolobium contortisiliquum (Vell.) Morona Fabaceae-Mimosoideae 1.03 Melocactus bahiensis (Buining & Brederoo) Werderm. Cactaceae 0.90 Caesalpinea ferrea Mart. Fabaceae-Caesalpinioideae 0.90 Ziziphus joazeiro Mart. Rhamnaceae 0.86 Maytenus rigida Mart. Celastraceae 0.85 Euphorbia tirucalli L. Euphorbiaceae 0.81 Tocoyena formosa (Cham & Schltdl)K.Schum. Rubiaceae 0.78 Peltophorum dubium (Spreng) - Taub. Fabaceae-Caesalpinioideae 0.70 Cassia tetrafila Linn. Fabaceae-Caesalpinioideae 0.69 Ocotea sp. Lauraceae 0.64 Myrtaceae sp. Myrtaceae 0.64 Helietta apiculata Benth. Rutaceae 0.63 Euphorbia phosphorea Mart. Euphorbiaceae 0.61 Nocotiana sp. Solanaceae 0.60 Allamanda blanchett A. DC. Apocynaceae 0.57 Melissa officinalis L. Lamiaceae 0.57 Guapira venosa ( Choisy ) Lundel Nyctaginaceae 0.54 Senna sp. Fabaceae-Caesalpinioideae 0.49 Croton argyrophylloides Mull. Arg Euphorbiaceae 0.49 Prockia sp. Salicaceae 0.49 Schinopsis brasiliensis Engl. Anacardiaceae 0.47 Ximenia americana L. Olacaceae 0.46 Acacia paniculata Willd. Fabaceae-Mimosoideae 0.40 Piptadenia stipulacea (Benth.) Ducke Fabaceae-Mimosoideae 0.39 Himatanthus lancifolius (Müll. Arg.) Woodson Apocynaceae 0.38 Conceveiba guianensis Aubl. Euphorbiaceae 0.36 Cordia leucocephala Moric. Boraginaceae 0.35 Hymenaea coubaril L. Fabaceae-Caesalpinioideae 0.34 Randia armata (Sw.) DC Rubiaceae 0.34 Helicteres sp. Sterculiaceae 0.28 Bromelia laciniosa Mart. ex Schult. & Schult f. Bromeliaceae 0.28 Tabla 3. IVI de las especie del grupo 3, vertiente altas-húmedas También se ha utilizado los índice de diversidad alfa de Shanon, Simpson y de Equitabilidad, para cada una de las tres formaciones identificadas (tabla 4). Destaca la alta dominancia que queda referida por índice de Simpson, y un valor alto de Shannon llanura vertiente somital Taxa_S Individuals Simpson_1-D Shannon_H Equitability_J Tabla 4. Indices de diversidad alfa de los tres grupos identificados INTERPRETACIÓN En la llanura dominan especies que denotan una destrucción del bosque de caatinga con la aparición de especies colonizadoras como las euphorbiaceas Croton sonderianus Müll Arg., Jatropha mollissima (Pohl) Baill., y Croton echioides Baill., a la que acompaña la fabácea dominante en estas formaciones degradadas Poincianella pyramidalis (Tull) L.P. Queiroz, acompañada de especies más propias de los bosques de caatinga menos alterados como Mimosa ophthalmocentra Mart. ex Benth., Aspidosperma pyrifolium Mart., Guapira pernambucensis (Casar.) Lundell, y Ziziphus joazeiro Mart. Es la formación con menos especies, pero con más individuos relativos con respecto a las otas formaciones. Presenta un índice de Shannon de 2.55 nats, el menor de las formaciones. En las vertientes de los inselbergs queda como refugio la vegetación del bosque de caatinga sin alterar con Mimosa ophthalmocentra Mart. ex Benth., Anadenanthera colubrina (Vell.) Brenan, Piptadenia stipulacea (Benth.) Ducke, Bauhinia cheilantha (Bong.) Steud y Capparis flexuosa (L.) L., a la que acompañan ya no como dominantes sino como acompañantes las euphorbiaceas Croton echioides Baill., Croton argyrophylloides Mull. Arg y Croton sonderianus Müll Arg., y la fabácea Poincianella pyramidalis (Tull) L.P. Queiroz La formación vegetal correspondiente a las vertientes más altas, áreas somitales, o vertientes más húmedas presenta como especies más húmedas y dominantes Myracrodruon urundeuva Allemão, Mimosa ophthalmocentra Mart. ex Benth., Capparis flexuosa (L.) L., y Bauhinia cheilantha (Bong.) Steud., a la que acompaña Croton echioides Baill.y Poincianella pyramidalis (Tull) L.P. Queiroz, Las especies en estas dos formaciones van en aumento, al igual que el índice da Shannon que marca un aumento de la diversidad alfa con 3.24 y 3.55 nats.

8 Fig. 4: Mapa de vegetación del Carirí CONCLUSIONES Se ha identificado y cartografiado la vegetación de caatinga del Carirí, que está constituida por un bosque caducifolio espinoso en el que predominan las euphorbiaceas y las fabáceas. La vegetación menos alterada ha quedado recluida en las vertinetes de los inselbergs y en el enlace entre las superficies Pd2 y Pd3 al Oeste del Carirí. El sector central es el que ha sido más afectado por el aprovechamiento ganadero y sobre todo por el cultivo del algodón, que ha dado lugar en las llanuras a una vegetación secundaria en la que predominan las euphorbiaceas Pd. La vegetación somital o de vertientes húmedas, se encuentra distribuida al Suroeste sobre la Pd1 Referencias bibliográficas Ab Saber, A. N. (1977). Espaços ocupados pela expansão dos climas secos na América do Sul, por ocasião dos períodos glaciais quaternários. Instituto de Geografia / USP, São Paulo, (Série Paleoclimas, 3). Ab Saber,, A. N. (2003). O Domínio dos Sertões Secos. In: Ab Saber, A. N. Os Domínios de natureza no Brasil: Potencialidades Paisagísticas. São Paulo: Editorial Ateliê, p Ab Saber, A.N., (2000). Summit surfaces in Brazil. Rev.Bras. Geocienc. 30 (3), Andrade, G.O., Caldas Lins, R., (1965). Introducão a morphoclimatologia do Nordeste do Brasil 2a ed., revista Inst. Cien. Terra, Univ. Recife, vol. 3 4, pp Bigarella, J.J., Andrade, G.O., (1964). Consideracões sobre a estratigrafia dos sedimentos cenozoicos em Pernambuco (grupo Barreiras). Univ. Rec., Inst. Cien. Terra, Arquivos 2, Cámara, R. y Díaz del Olmo, F. (2013): Muestreo en transecto de formaciones vegetales de fanerófitos y Caméfitos (I): Fundamentos metodológicos. Estudios geográficos Vol. 74. Núm Pag Castro, C. (1979). Morfogênese e sedimentação: evolução do relevo do Nordeste e seus depósitos correlativos. Not. Geomorfol., Campinas 19 (37/38), Demangeot, J., (1960). Essai sur le relief du Nord-Est bresilien. Ann. Geogr. 69 (372), ELORZA, M. G. (2001) Geomorfología Climática. Ed. OMEGA. p

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