Inseminación Artificial en Aves Departamento de Industria Pecuaria Recinto Universitario de Mayaguez Héctor L. Santiago, Ph.D. Investigador Auxiliar
Historia 1677 - Leeuwenhook Observó espermatozoides por primera vez bajo el microscopio 1780 - Spallenzani Perros Semen podia fertilizar Espermatozoides Efecto de temperatura en espermatozoides Efecto del enfriamiento y calentamiento sobre metabolismo
1900 - Ivanov Rusia Desarrolló un programa de IA en caballos 1933 Desarrolló métodos de colección de semen e inseminación en caballos, ganado vacuno, ovejas y cerdos. 1933 - Sorenson Dinamarca Estableció la primera cooperativa de IA 1937 - USA Comienzo de IA comercial en USA 1937 -USA Primera cooperativa de IA 1939 - USA 7 cooperativas de IA
1960 - Presente Consolidación de cooperativas Grandes empresas de IA Select Sires American Breeders Service Goal 1960 Presente IA en pavos 1990 Aumento en el uso de IA en caballos y cerdos
Uso actual de IA en USA Ganado de Leche 7 millones 50 % Ganado de Carne 1.3 millones 3% Cerdos 20 30 % Pavos 100%
Inseminación Artificial Herramienta Accelerar el mejoramiento genético Aumentando el diferencial de selección Un macho altamente seleccionado es apareado con miles de hembras Aves 10 % superior de 40 % superior de
Ventajas del uso de IA en el número de / servidas bajo IA cuando se compara con monta natural Mantener de alta calidad Aumento en presión de selección para razgos de importancia económica Rápido mejoramiento genético Ahorro indirecto en costos de alimentación Menor cantidad de Confinamiento en jaulas Concepto de Stud Farms utilizado en pavos
Mejor garantía de fertilidad en Siempre habrá un descenso en fertilidad debido a edad pero la inseminación de todas las está asegurada Se asegura que todas las están en postura Capacidad de transportar semen a otras localidades Disminuir enfermedades transmitidas sexualmente
Desventajas Costo de labor adicional requerida para la IA de es mas alto Necesidad de tener empleados qualificados manejando los galpones de IA Labor intesiva, repetitiva, además de ser un trabajo tedioso y aburrido Posibilidad de alterar el comportamiento de apareamiento y anidado de parentales en piso Percepción pública negativa En la industria de pollos parrilleros solo se utiliza en algunas compañias genéticas a nivel de pedigree
Sistema Reproductor Femenino El tracto reproductivo de la gallina es diferente al de los mamíferos y cada segmento del tracto reproductivo tiene una función particular Compuesto por: Ovario Oviducto Solo el lado izquierdo es funcional
Sistema Reproductor Femenino
Ovario Hacinamiento de folículos (1000-3000) en forma de racimo Folículos inmaduros y maduros Diámetro fluctúa a de 1-35 mm Crecimiento folicular es debido a la acumulación n de ácidos grasos Orden jerárquico rquico de folículos FSH controla el crecimiento folicular LH controla la ovulación
Ovario
Jerárqu rquía Folicular
Oviducto Tubo largo y convoluto Ocupa gran parte del lado izquierdo de la cavidad abdominal Su extremo anterior se encuentra cerca del ovario y su extremo posterior desemboca en la cloaca Longitud: Gallina: Gallina: 70-80 cm Pava: Pava: 90-115 cm Ancho: 1-5 cm Esta compuesto por 5 regiones Anatomía: a: específicas y bien definidas Fisiología: función n específica
Oviducto I Infundíbulo M Magno Is Istmo U Utero UVA Unión Uterovaginal
Infundíbulo Atrapar la yema después s de la ovulación Aproximadamente 15 min Lugar donde ocurre la fecundación Magno Mide aproximadamente 13 de largo La yema permanece casi 3 h en el magno Lugar donde se secreta la clara y se deposita alrededor de la yema
Istmo Mide aproximadamente 4 4 de largo La yema con la clara permanece aproximadamente 1 ¼ de h Ocurre la formación n de las membranas del huevo (interna y externa) Útero Mide aproximadamente de 4 a 5 5 de largo La yema, clara y membranas permanecen aproximadamente de 16 a 21 h Lugar donde se produce o se deposita el cascarón, pigmentos, y cutícula cula
Vagina El huevo pasa aquí de 0 a 4 horas Al momento de la oviposición útero se revierte a través s de la vagina,, cloaca y ano para expulsar el huevo. Cloaca Ano El intérvalo de ovulación entre 2 huevos sucesivos es de 24 a 26 h
Fotoperíodo odo y Regulación Hormonal del Proceso de Ovulación en Aves Pituitaria Anterior LH FSH Luz Hipotálamo (GnRH) Ovario Folículos Progesterona Ovulación
Nidos de Espermatozoides Nidos de espermatozoides Sperm nests Sperm Storage Tubules Función Almacenamiento de espermatozoides en el tracto reproductivo femenino Localización Unión útero-vaginal Infundíbulo Capacidad de mantener espermatozoides viables por 30 d luego de IA o monta natural
Nidos de Espermatozoides
Carácteristicas Sexuales Secundarias
Sistema Reproductor Masculino Consiste de 2 testículos Localizados en el área dorsal de la cavidad abdominal, justo alfrente de los riñones Testículos en aves son grandes, relativos al peso corporal, comparados a los mamiferos Como consequencia de su localización intra- abdominal, estos funcionan a la temperatura corporal cerca de 41 a 42 C en especies domésticas
Regulación de temperatura Enfriamiento de los testículos culos: Flujo de aire de los sacos aéreos Plexo panpiniforme Red de vasos sanguineos que circula alrededor de los testiculos No poseen vesícula seminal, glandulas bulbouretrales o prostata El órgano copulador (phallus) es pequeño y no funciona como órgano intromisor
Proceso de Eyaculación
Vista Lateral de la Cloaca y la Parte Interna del Ducto Deferente
Región Copuladora (Gallo)
Phallus Palmipedos (Patos y Gansos)
Colección de Semen y IA
Consideraciones Recorte de plumaje alrededor de la cloaca Deben ser entrenados Masajeados de 7-107 d para facilitar la eyaculación Alimentar después de la colección de semen para reducir la contaminación fecal Control peso corporal
Consideraciones 75% en 75% producción Inseminar en la tarde para minimizar el número de h con huevos en el tracto reproductivo Obstruye el paso de semen (reflujo( reflujo) Semen debe ser colectado en la tarde Comúnmente utilizado en 45 min para maximizar su viabilidad
Preservación de Semen Uso de semen congelado Problemas para mantener calidad Logrado grandes avances en cryoprteservación En pollos se ha obtenido niveles de fertilidad 90% inseminando con semen congelado en nitrógeno líquido Sin embargo, en pavos raramente son obtenidos niveles 10%
Diluyentes o Extensores de semen Utilizados comúnmente en aves El mas común es una solución de 1% NaCl La mayoría son mezclas de amortiguadores de diferentes sales Razón de dilución comúnmente utilizada es de 1:4 (semen:diluyente( semen:diluyente) Inseminar de 30 a 45 min luego de colectar el semen
Permiten almacenar semen hasta por 24 h sin ningún effecto en fertilidad Fertilidad excelente ha sido obtenida con semen almacenado por 6, 12, 18 y 24 h La dilución de semen aumenta la razón de : Monta natural 1:10 ( : )( IA con semen diluido 1:20 ( : )(
Evaluación de Fertilidad Evaluación de semen Tinte de vivos y muertos Live & Dead Tintes de Eosina y Nigrosina Vivos N0 tinte Muertos Color rosado Contaje de espermatozoides Hemacitómetro metro Hematocríto Cell Pack Volume
Mobilidad Procedimiento Accudenz Solución viscosa Spectrofotómetro Mide paso de luz Interacción de espermatozoide:óvulo Contaje de espermatozoides entre el espacio de las membranas vitelinas Contaje de orificios en la membrana vitelina
Membrana Vitelina Pollos: 50 / mm 2 Pavos: 100/ mm 2
Contaje de Espermatozolides Atrapados Entre las Membranas Vitelinas
Determinación de Fertilidad en Huevos Frescos
Determinación de Fertilidad en Huevos Incubados
Preguntas?????