Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia. Diagnóstico de Situación Sobre Coccidias en Ganado Bovino del Municipio de Ignacio de la Llave, Veracruz

Transcripción

1 UNIVERSIDAD VE RACRUZANA Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia Diagnóstico de Situación Sobre Coccidias en Ganado Bovino del Municipio de Ignacio de la Llave, Veracruz TESIS PROFESIONAL QUE PARA OBTENER EL TITULO DE MEDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA PRESENTA Garlos c/ínlonio 3tuezo ^ovet H. VERACRUZ, VER. 1984

2 DIAGNOSTICO DE SITUACION SOBRE COCC1DIAS EN GANADO BOVINO DEL MUNICIPIO DE IGNACIO DE LA LLAVE, VER.

3 INDICK I. INTRODUCCION II. JUSTIFICACION III. OBJETIVOS IV MATERIAL Y METODOS V. RESULTADOS VI. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES VII. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS

4 INTRODUCCION

5 Este trabajo de investigación sobre coccidias fue realizado en el municipio de Ignacio de la Llave, en el Estado de Veracruz. Ignacio de la Llave está situado en la zona central del listado, limitando al norte con el municipio de Alvarado, al sur con el municipio de Tierra Blanca, al este con los municipios de Acula e Ixmatlahuacán y al oeste con el municipio de Tlalixcoyan. Cuenta con una superficie de hectáreas dedicadas a la explotación ganadera, con una población de ganado bovino de aproximadamente. Referencia: Censo del Distrito de Temporal No. 5. Esta enfermedad parasitaria está distribuida en todo el mundo. La Coccidiosis es una enteritis contagiosa provocada por infección con especies de Eimeria y afecta a todos los animales domésticos. Puede haber una gran tasa de infecciones subclínicas diarrea y disentería, en algunos casos hay anemia y la forma crónica de la enfermedad se caracteriza por

6 disminución en las lasas de crecimiento y producción. La Coccidiosis afecta principalmente a los animales jóvenes que son confinados para el destete o desplazamiento principalmente a mediados de invierno. Las principales especies de coccidia que se consideran patógenas en el ganado bovino son Eimeria Zurnii, Eimeria bovis, aunque se han encontrado además trece tipos de Eimeria en el ganado vacuno. En la Eimeria Zurnii los oocistos son esféricos y de color violeta verduzco, miden de 15 a 22 por 13 a 18 mieras. Se presenta en los becerros de cuatro meses de edad o mayores y también en terneras y oros jóvenes, manifestándose en debilidad, pérdida de apetito, emaciación y diarrea sanguinolenta, si la enfermedad es severa aparecerá diarrea hemorrágica, si la pérdida de sangre es bastante seria y continuada, se presenta anemia pero es probable que la enfermedad mate al animal antes que la anemia se desarrolle. En ganado adulto se desarrolla inmunidad a la infestación, pero ésta se presenta en- forma crónica atacando por cualquier factor que reduzca el estado general de salud del animal. La Eimeria bovis presenta sus oocistos en forma de huevo, aunque ésta puede variar generalmente son de color verdoso o café claro; miden aproximadamente 28 por 17 a 23 mieras y en el huésped se encuentran prin-

7 cipalmente en las glándulas del ciego y del colon. La sintomalología que se presenta es inapetencia, diarrea sanguinolenta, tenesmo frecuente, debilidad y deshidratación, pudiéndose acontecer la muerte en un mes aproximadamente. Cuando hablamos de parásitos o de enfermedades parasitarias, nos vemos obligados a describir su ciclo biológico para poder observar, qué caminos nos conducen a la enfermedad, hacia dónde pueden ser dirigidas las medidas de control y evitar los trastornos patológicos que causan las coccidias. La infestación comienza con la ingestión de los ooquistes que se encuentran en los forrajes y agua contaminada con heces de animales enfermos. Por lo general en las infecciones naturales interviene más de una especie de coccidia. CICLO BIOLOGICO: Los géneros Eimcria e Isospora son los agentes etiológicos de la coccidiosis, son esporozoarios localizados en el intestino de su huésped. Su ciclo biológico se compone de 3 fases que son: fase asexual o agamogonia y fase sexual o gametogonia que se llevan dentro del huésped y la Esporogonia que

8 se realiza fuera del huésped en un término de 2 a 3 días si cuenta con un medio ambiente adecuado en lo que se refiera a temperatura (32 C), humedad y oxígeno. Una vez que el animal sano ingiera ooquistes esporulados, se rompen dejando en libertad los esporozoítos invadiendo así las células epiteliales de la mucosa intestinal (agamogonia), convirtiéndose en meronte, el cual sufre divisiones nucleares, se disponen en fila circular formando los blastóforos que en el meronte maduro produce los merozoitos. Esta multiplicación se repite formándose varias generaciones de merozoitos quedando así terminada la fase asexual. La segunda fase comienza con la penetración de los merozoitos a las células epiteliales que es donde se inicia la gametogonia, los merozoitos se convierten en individuos sexualmente diferenciados, el elemento femenino se conoce como macrogametocito y el masculino como microgamelocito. El microgametocito se divide formando un gran número de microgametos, mientras que el desarrollo del macrogameto. Posteriormente la fecundación se realiza cuando los dos gametos abandonan el microgametocito y la célula, buscando células que contengan macrogametos, una vez fecundado nos da resultado un zygote el cual secreta una pared quística transformándose en un ooquiste en el que se realiza la esporogonia.

9 La csporogonia se realiza fuera del hospedador los ooquistes son expulsados junto con las heces madurando en el suelo, formándose así los esporoblastos los cuales a su vez se dividen para formar los esporocistos. La infección del nuevo huésped ocurre con la ingestión de ooquistes intactos. El género Isospora posee dos esporocistos cada uno de los cuales contiene cuatro esporozoítos. Oíros tipos de Eimeria que atacan al ganado bovino son las siguientes: Eimeria ellipsoidalis. Eimeria cylíndrica. Eimeria alabamensis. Eimeria auburnensis. Kimeria bukidnonensis. Siendo las más patógenas las especies de Eimeria Zurnii, Bovis y Eimeria ellipsoidalis, pero otras pueden serlo si se presentan en número suficiente. Las coccidias se encuentran agrupadas de acuerdo a la siguiente clasificación zoológica: Phyllum Protozoa. Clase Esporozoa

10 Orden Coccidia. Sub-Orden Eimeridea. Familia Eimeridae.

11 JUSTIFICACION

12 El interés que me llevó a realizar este trabajo de investigación sobre coccidias, es porque he podido observar durante la realización de mi Servicio Social en el Centro de Salud Animal dependiente de la S.A.R.H. ubicado en Ilang Ilang, Boca del Río, Ver., de la gran incidencia de estos protozoarios que afectan al ganado vacuno y a todas las especies domésticas y en las aves, excepto en el caballo y sus congéneres. También he podido observar la poca importancia que se presta a esta enfermedad tanto por el Médico Veterinario, como por el productor. Por lo antes expuesto podemos constatar que las pérdidas económicas que ocasiona esta enfermedad, son en su mayoría debidas no tanto a la mortalidad, sino al retraso en el crecimiento, falta de ganancia de peso e incluso pérdida de éste que provoca graves daños económicos a los productores. Esto ocurre en hatos donde no se lleva un programa de control sobre coccidias. -H 11

13 OBJETIVOS

14 OBJETIVO GENERAL Determinar el porcentaje de infestación de coccidias en el ganado bovino en el municipio de Ignacio de la Llave, Veracruz. OBJETIVOS ESPECIFICOS I. Demostrar por ios métodos de concentración por flotación y Me. Master, presencia y grado de infestación por coccidias. II. Muestrear 500 animales de diferentes razas y edadades, en diferentes ranchos del municipio de Ignacio de la Llave, Ver.

15 MATERIAL Y METODOS

16 MATERIAL BIOLOGICO Se obtuvieron un total de 500 muestras de excremento de bovino distribuidos en diversas localidades de la región. MATERIAL DE LABORATORIO 5 hieleras. 500 bolsas de polietileno. Lápices grasos. Hielo. 500 porta objetos. 500 cubre objetos. Agitadores de cristal. Coladoras de malla metálica. Vasos de precipitado. Cámaras de McMaster. Tubo para McMaster de 28 mi. Goteros. Gasa.

17 1 balanza. 1 centrífuga. Microscopio óptico. Cinta engomado. Guantes de goma. Solución saturada de azúcar cuya fórmula es la siguiente: Azúcar Agua destilada Formaldehído al 10^ gr ce. 25 ce.

18 METODOS OBTENCION DE LA MUESTRA. Todas las muestras de excremento fueron obtenidas por estimulación direca del reflejo de la defecación mediante un masaje rectal. En otras ocasiones se aprovechó la defecación espontánea de los bovinos. La mayor parte de los animales se muestreó en su propio lugar de origen. Todas las muestras recolectadas fueron ubicadas en las hieleras, para luego ser transportadas al Centro de Salud Animal con el fin de que fueran corroboradas en el laboratorio.

19 TECNICAS DE LABORATORIO Utilizamos técnicas de flotación y McMaster que a coninuación describimos. METODO DE FLOTACION Técnica cualitativa que consiste en utilizar soluciones con peso específico mayor que el agua (1,280, 1,300), en donde los huevos flotarán a la superficie. Se toman de 2 a 4 gramos de heces en un vaso de precipitado identificados cada uno con lápiz graso. Enseguida agregamos 28 mi., de solución saturada de azúcar y con la varilla de vidrio se procede a la homogenización de las muestras se dejan reposar unos 10 minutos y pasado este tiempo se toman unas gotas de la superficie y se colocan en un porta objeto para observarla al microscopio y determinar si está positiva o negativa. METODO DE MCMASTER Técnica cuantitativa que determina el número de ooquistes de protozoarios y de huevos de helminthos por gramo de material fecal. La cámara de McMaster está constituida por portaobjeto y un cubre-objeto unidos, formando dos cámaras.

20 Cada cámara représenla un cuadro de un cm' y a su vez cada uno de éstos présenla seis divisiones, la cámara tiene una profundidad de 1.5 mm., y una capacidad de 0.15 mi., sumando ambas da un volumen de 0.30 mi. Colocar solución saturada de azúcar en la primera marca del tubo, éste tiene un volumen de 28 mi., agregar la materia fecal (2 gr.), agregar solución saturada de a/úcar hasta que ia muestra homogenice inmediatamente después utilizando una gasa y el gotero se toma líquido del tubo llenando la cámara evitando que no forme burbujas, se deja reposar tres minutos y se observa al microscopio compuesto. Se procede los huevecillos a observar con el objetivo seco débil todos los huevecillos y ooquisles que estén dentro de los cuadros de las dos cámaras, al terminar el control se suma el total de huevos encontrados, se multiplica por 100 y se divide cnlrc 2, el resultado será el número de huevos u ooquistes por gramo de materia fecal.

21 RESULTADOS

22 Nombre Animales Animales Animales % de Anidel Rancho en existen- muestrea- positivos males pocia dos sitivos Palma de Coco Zacate Colorado Cerro de la Palma Candadillo El Zapote Vainilla! Salitral Potrero Nuevo El Obispo

23 Nombre del Rancho Animales Animales Animales % de Anien existen- muestrea- positivos males pocia dos sitivos Sabanetas Moyotla Villanueva Palma Cuata El Salto Cerquilla La Campana El Aguacate Pozo de Arena

24 La población animal bovina de los ranchos muestreados en el municipio de Ignacio de la Llave, Ver., es de 3,013 de los cuales fueron muestreados un total de 528 animales los cuales representan el 17.52^. Los animales positivos fueron en total 179 lo que representa el 33.9 % de animales afectados.

25 CONCLUSIONES

26 Concluidos los estudios coproparasitoscópicos realizados en el Centro de Salud Animal Ilang-Ilang, Ver., se llegó a determinar que la incidencia de coccidías en el municipio de Ignacio de la Llave, Ver., fue de 33.9 % lo que nos demostró que existe un elevado porcentaje de estos protozoarios en la zona. De los animales positivos el mayor porcentaje de infestación de coccidias correspondió a los animales jóvenes, en los cuales se les observó algunos de los signos clínicos característicos de la enfermedad descritos anteriormente. En los animales adultos el porcentaje de positivos a la infestación por Eimeria fue relativamente bajo, en los cuales la enfermedad cursa en una forma sub-clínica o inaparente.

27 RECOMENDACIONES

28 Algunas medidas que contribuyen a disminuir la infestación de parásitos del género Eimeria son los siguientes: I. Separar a los animales sanos de los clínicamente enfermos. II. Separar a los animales jóvenes de los adultos. III. Realizar una adecuada rotación de potreros evitando así que los animales ingieran pastos contaminados con ooquistes infestantes. IV. Drenaje de potreros. V. Realizar exámenes coproparasitoscópicos cada 3-4 meses, o dependiendo de las condiciones climatológicas de la zona. Recomendar tratamiento general.

29 BIBLIOGRAFIA

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