Cambios anatómicos durante. formación de raíces

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Carmelo Contreras Castellanos
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2 Cambios anatómicos durante Dediferenciación formación de raíces Formación de nuevos sitios meristemáticos Marcado por división anticlinal Divisiones celulares iniciales Grupos de células sin polaridad, simétricas, no determinadas Divisiones laterales para formar meristema radical determinado 1500 células, simetría bilateral Crecimiento y emergencia (división y alargamiento) Unión vascular con tallo Raíz es visible

6 Cambios fisiológicos durante Iniciación día 0 a día 3 formación de raíces Divisiones anticlinales en periciclo Depende de AIA del ápice de raíz primaria Emergencia: día 3 a día 10 Salida de raíces Requiere de fuente diferente de auxina (ápice y hojas jóvenes) Duplica la concentración en forma de pulso (alta conc/corto tiempo) No ocurre si se decapita planta, si al adicionar auxina Independencia Crecimiento de raíz Independiente de auxina de ápice y de raíz primaria - Dosis discretas de auxina controlan el desarrollo de raíces - Indica importancia de transporte

7 Clasificación de plantas de acuerdo a facilidad de enraizamiento Fáciles de enraizar Difíciles de enraizar Recalcitrantes Ausencia de enzimas para conjugados Ausencia de activadores Presencia de inhibidores enzimáticos Ausencia de sustratos fenólicos Separación física de enzima

8 Criterios para selección de Fácil de preparar enraizador Disuelto en agua o alcohol Fácil y rápido de aplicar Spray, inmersión, talco Rentable (relación costo-beneficio) Incremento en enraizamiento Efectivo (alto porcentaje de enraizamiento)

9 Por qué usar hormonas 1) incrementa el porcentaje de esquejes que forman raíces 2) acelera el enraizamiento 3) mejora la calidad y cantidad de raíces por esqueje 4) mejora la uniformidad de las raíces

10 AIA vs AIB y ANA AIA es degradado por AIA oxidasa, no AIB o ANA Auxina sintéticas no son conjugadas, AIA si. AIA es fotosensible, AIB y ANA no AIA degradado por actividad microbiana AIA solo se formula en forma ácida, soluble en alcohol, puede causar quema

11 Presentación de hormonas AIB o ANA Presentaciones: Polvo, líquida o pura Pura Difícil de preparar (disolución) Polvo: Hormodin, Hormo-Root, Rootone Diferentes concentraciones Usadas en plantas no leñosas o leñosas de fácil enraizamiento Líquida: C-mone, Dip 'N Grow, Wood's Rooting Comp. Concentración alta que se diluye De mayor uso, y más efectivas en especies difíciles

12 Factores que afectan Tipo auxina Concentración de auxina Modo de aplicación de auxina Temperatura de solución de enraizador Genotipo ph de solución de enraizador Tiempo de exposición al enraizador Estado fisiológico del explante Edad fenológica del explante

13 a. Tipo de auxina b. Concentración de auxina

14 Enraizamiento en Cordyline # primordios radicales Cordyline sp TESTIGO 2,4 D (1,25 g/l) 2,4 D (2,5 g/l) 2,4 D (5 g/l) 2,4 D (10 g/l) AIB (1,25 g/l) AIB (2,5 g/l) AIB (5 g/l) AIB (10 g/l) ANA (1,25 g/l) ANA (2,5 g/l) ANA (5 g/l) ANA (10 g/l) tratamiento

Escala de evaluación 1 2 3 4 apariencia 4.0 3.5 3.0 2.5 2.0 1.5 1.0 0.5 0.0 Cordyline sp.

15 Escala de evaluación apariencia Cordyline sp. TESTIGO 2,4 D (1,25 g/l) 2,4 D (2,5 g/l) 2,4 D (5 g/l) 2,4 D (10 g/l) AIB (1,25 g/l) AIB (2,5 g/l) tratamiento AIB (5 g/l) AIB (10 g/l) ANA (1,25 g/l) ANA (2,5 g/l) ANA (5 g/l) ANA (10 g/l)

16 ANA en el enraizamiento de acodos de D. deremensis var. Janet Craig # de raíces ANA ppm

17 c. Metodos de Aplicación Formulaciones en polvo Inmersión basal en solución diluida 20 a 500 ppm Inmersión rápida, solución concentrada 500 a ppm Herbáceas 150 a 500 ppm Crisantemo 400 a 500 ppm Estacas herbáceas ppm Estacas leñosas ppm Estacas difíciles a ppm

18 d. Temperatura de enraizador e. genotipo

19 Efecto de la temperatura del sustrato sobre la concentración de IBA requerida para alcanzar 100% de enraizamiento en estacas de Hbiscus cv. "Pink Versicolor" Temperatura Sustrato C Concentración IBA mg / L Carpenter y Cornell (1992)

20 Capacidad natural de enraizamiento de tres cultivares de Hibiscus rosa - sinensis L teniendo en el sustrato una temperatura de 26 C. Cultivar % Enraizamiento Pink Versicolor 73 Jim Hendry 60 Silver Anniversary 41 Carpenter y Cornell (1992)

21 Número de raíces f. ph. Malus domestica Var. Triple Red Malus domestica Var. Gala

23 Conclusiones ph si afecta la acción de las Auxinas ph ácido es beneficioso, facilita Movimiento de AIA a través de membranas (transportadores) Determinar efecto en cada cultivo

24 g. Estado de desarrollo del explante APICE (AUXINA) RAIZ

25 H. Tipo de explante

28 i. Efecto de la época del año

29 j. Estado del esqueje Varía según: ambiente tipo de planta tipo de regulador tipo de

30 k. Tipo de esqueje

31 Síntomas de Toxicidad Formación excesiva de callo Muerte de base del esqueje Necrosis de tallo Amarillamiento y caída del follaje Inhibición del crecimiento aéreo y radical Epinastia Deformación en ápice

34 Causas para variabilidad de enraizamiento Condiciones ambientales y de nutrición de la planta y de los esquejes Manejo de los esquejes luego de su separación de la planta madre Concentración, método de aplicación y tipo de sustancia reguladora Interacción entre sustancias RC Edad de los esquejes

Efecto de antagonistas de auxinas (BA) 12.0 Cordyline sp. # primordios radicales 10.0 8.0 6.0 4.0 2.0 BA inhibe y no daña. 0.

35 Efecto de antagonistas de auxinas (BA) 12.0 Cordyline sp. # primordios radicales BA inhibe y no daña. 0.0 Testigo BA (50 g/l) BA (500 g/l) tratamiento 4.0 Cordyline sp. 3.0 apariencia Testigo BA (50 g/l) BA (500 g/l) tratamiento

36 Experimentación

37 Variables evaluadas Las estacas fueron evaluadas a los 28 y a los 56 días después de tratadas (DDT). Se midió la cantidad de raíces por estaca, la uniformidad en la distribución de las raíces y la longitud de la raíz más larga.

38 Uniformidad de emergencia Figura 2. Escala pictórica para cuantificar la uniformidad de la emergencia de las raíces alrededor del tallo. 40 %

39 Cantidad de raíces por estaca Cuadro 1. Efecto de la aplicación de distintas dosis de AIB sobre la cantidad de raíces en estacas de D. deremensis. Tratamiento AIB (mg/l) Número de raíces por estaca 28 días 56 días 0 5,72c* 8,07c 500 6,39c 8,68c ,47a 9,93bc ,51b 9,26bc ,82bc 11,19a *Letras distintas indican diferencias significativas (p 0,05)

40 Longitud de raíces por estaca Cuadro 2. Efecto de la aplicación basal de AIB en la longitud de raíces de estacas de D. deremensis. Tratamiento AIB (mg/l) Longitud de raíces (cm) 28 días 56 días 0 1,37b 10.71ab 500 2,49a 11,26a ,45a 11,10a a 9,48b a 11,19a *Letras distintas indican diferencias significativas (p 0,05)

41 Uniformidad de emergencia Cuadro 3. Efecto de la aplicación basal de distintas dosis de AIB en la uniformidad de las raíces en estacas de D. deremensis. Tratamiento AIB Uniformidad (%) (mg/l) 28 días 56 días c 79.2b b 91.7a a 92.7a bc 83.7ab c 92.7a *Letras distintas indican diferencias significativas (p 0,05)

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