www.albertojimenez.net

www.albertojimenez.net Título: Informe Técnico N 2: Comportamiento de oryza sativa inti en los estadios de plántula y planta adulta Autores: Ing. MSc. Alberto T. Jiménez Saavedra Universidad Nacional Pedro Ruiz Gallo Lambayeque Perú

UNIVERSIDAD NACIONAL PEDRO RUIZ GALLO FACULTAD DE AGRONOMIA DEPARTAMENTO ACADEMICO DE SANIDAD VEGETAL INFORME TECNICO N 2 : COMPORTAMIENTO DE ORYZA SATIVA L.CV. INTI EN LOS ESTADIOS DE PLANTULA Y PLANTA ADULTA ANTE MAGNAPORTHE SALVINII (Catt) KRAUSE & WEBSTER Alberto Jiménez Saavedra I. INTRODUCCION MAGNAPORTHE SALVINII causa en el arroz la pudrición del tallo conocida también como enfermedad esclorotial, la cual se ha hecho notoria en el Perú a partir de los años 1968 1970 especialmente en las áreas de bajo riego y suelo mal drenado. En la actualidad se realizaran estudios para precisar los daños y pérdidas económicas que causa la enfermedad. Uno de los principales métodos de control de la pudrición del tallo es la resistencia genética, la cual se busca haciendo cruces y evaluaciones en porciones de tallo y plantas adultas. Los estudios acerca de la resistencia varietal a la pudrición del tallo se iniciaron en países asiáticos a mediados de los años 1920-1940 (8,10). En el Perú en 1972, Lapoint y Huerta (5) hicieron el primer trabajo sobre resistencia varietal a la pudrición del tallo en condiciones de laboratorio, empleando la técnica del IRRI (7), que consiste en inocular tallos cortados de plantas adultas al momento de la floración y posteriormente puestos en cámara húmeda. En el extranjero la mayoría de los estudios sobre resistencia (9) se realizan en parcelas inoculadas y las evaluaciones de la respuesta de la planta se realizan al momento de la cosecha. Entre los criterios para evaluar la resistencia tenemos: el porcentaje de área necrótica y el porcentaje de tallos podridos (9). Cralley citado por Ou (9) clasificó a las plantas, según el ataque de pudrición del tallo, en cuatro grupos: a) aquellos que presentaban las vainas enfermas; b) aquellas que presentaban el tallo ligeramente afectado; c) aquellas que presentaban el tallo moderadamente afectado y d) aquellas que presentaban el tallo severamente afectado. Entre los años 1949-61 (3,9,11) se han empleado la escala siguiente: 1. Con lesiones en la vaina de la hoja 2. Con esclorotis en la vaina 3. Con lesión en el tallo 4. Con esclorotis en el tallo

El tiempo que la planta necesita llegar a la madurez fluctúa entre 4 a 6 meses, según el cultivar, lo cual redunda en una demora en la búsqueda de líneas o cultivares de arroz resistentes a la enfermedad. Por lo expuesto se ejecutó el presente trabajo con el objetivo de conocer el comportamiento de plántulas y plantas adultas frente a M.Salvinii a fin de determinar si este comportamiento es igual en ambos estadios de planta, lo cual permitiría seleccionar material genético sólo en estadios de plántula. II. MATERIALES Y METODOS A. Ensayo N 1.- Para determinar el comportamiento al estadío de plántulas, el procedimiento fue el siguiente: a) Preparación de las terrinas.- El suelo utilizado fue franco arcilloso que fue esterelizado por solarización. Se emplearon macetas de arcilla de 10 x 15 x 20 cms de diámetro menor, altura y diámetro mayor respectivamente. En cada maceta se colocó 1 kg. de tierra aproximadamente. b) Preparación de inóculo.- Cultivos monoesclorotiales de 10 días de edad en PDA, fueron repicados al medio trigo avena cebada (TAC) donde se dejó que el hongo desarrolle durante 30 días. c) Inoculación de las macetas.- A cada maceta se le incorporó 2,4,6 gramos de inóculo respectivamente, para lo cual previamente se humedeció el suelo a capacidad de campo, se dispersó uniformemente el inóculo y con la ayuda de una espátula se incorporó, cubriéndose luego la maceta con plástico y se le dejó así por 48 horas. Se utilizaron 5 repeticiones por tratamiento incluido un testigo sin inóculo. d) Siembra.- La siembra se realizó colocando la semilla a una profundidad de 1 cm por cada maceta. Los riegos y cuidados de las plántulas se hicieron hasta los 40 días de edad. e) Evaluaciones al estado de plántula.- Al cumplir 10 días de edad, se evalúo la germinación, y a los 40 días todas las plántulas fueron observadas con la finalidad de buscar signos y síntomas en la raíz, tallo, vainas y hojas. B. Ensayo N 2.- Comportamiento de plantas adultas de arroz ante M. SalviniiL La metodología empleada en este ensayo fue la siguiente: a) Tratamiento del suelo.- El suelo utilizando para este ensayo fue frnaco arcillosooscuro obtenido del fundo el Ciénago de la UNPRG. El cual fue puesto en las pozas de esterilización y fue tratado con Vapam a la dosis de 1 litro por metro cúbico de suelo, colocándose luego en sacos de plástico donde se le dejo durante 15 días, luego de los cuales se extrajo y se dejó airear por 15 días. b) Preparación de las macetas.- Se emplearon macetas de arcilla de 35 cms de diámetro mayor por 20 cm de diámetro menor y 30 cm de altura, las cuales fueron

lavadas con lejía y agua limpia y se les dejo secar. Una vez secas se les lleno con el suelo tratado. c) Siembra.- La siembra fue directa y en trasplante. Para la siembra directa se emplearon 10 semillas por maceta y para la siembra en trasplante, previamente se hizo con almacigo colocando en una maceta 24 gramos de semilla. A los 30 días se realizó el trasplante. d) Preparación del inóculo e inoculación de las plantas.- El inóculo se preparó siguiendo la misma metodología del ensayo N 1 y la inoculación de las plantas se hizo al momento del encañado o punto de algodón, distribuyéndose 3 dosis de inóculo (2,4 y 6 gramos) en cada maceta respectivamente, se emplearon 5 repeticiones por tratamiento. Luego se cuidarán las plantas hasta la cosecha. e) Evaluaciones al estado de planta.- Al momento de la cosecha, todos los macollos se extrajeron individualmente y fueron puestos en una bolsa previamente codificada. Se evalúo el tipo de panícula y la presencia o ausencia de signos. III. RESULTADOS Y DISCUSION - Ensayo N 1 Porcentaje de semillas germinadas a los 10 días después de la siembra. Los resultados de la germinación de las semillas a los 10 días, se muestra en el cuadro 1 Cuadro 1: Porcentaje de germinación de semillas de arroz a los 10 días después de la siembra DOSIS DE INOCULO REPETICIONES 1 2 3 4 5 2 g./maceta 100 100 100 100 100 4 g./maceta 100 90 100 100 100 6 g./maceta 100 100 100 100 100 Testigo 90 100 80 100 90 Según los resultados observados en el cuadro 1, se puede señalar que M. Salvinii no causó ningún efecto pre emergente en las semillas. Número de plantas enfermas: la determinación de números de plántulas enfermas se hizo a los 40 días después de la siembra, los resultados de esta evaluación se muestra en el cuadro 2. Cuadro 2: Número de plántulas enfermas de arroz extraídas de macetas inoculadas con M. Salvinii

DOSIS DE INOCULO REPETICIONES * 1 2 3 4 5 TOTAL 2 g./maceta 3 1 1 0 2 6 4 g./maceta 3 1 0 2 1 7 6 g./maceta 1 2 0 3 1 7 Testigo 0 0 0 0 0 0 *10 semillas por repetición En el cuadro 2, puede observarse en el numero de plántulas enfermas es relativamente bajo, lo cual se atribuye al tipo de inóculo utilizado que tenía un predominio micelial en vez de esclorotial. El micelio del hongo probablemente fue inactivado o destruido al momento de la incorporación al suelo o durante la exposición a las temperaturas altas de invernadero (35-40 C) por 48 horas y solo los escasos esclorotis existentes permitieron la infección de las plántulas enfermas (0). De acuerdo a Ou (9) se hace necesario continuar ampliando los estudios en patogenicidad, naturaleza de la resistencia y epidemiología, entre otros. Microorganismos aislados de las plantas enfermas.- Los Hongos encontrados en las plántulas que presentaron secado del follaje, fueron: a) Helminthosporium y curvalaria, en plántulas inoculadas con 2g./maceta b) Curvalaria y Helminthosporium, en plántulas inoculadas con 4g./maceta c) Helminthosporium, en plántulas inoculadas con 6g./maceta. En las plántulas testigo no se encontraron microorganismos. Como puede observarse, Helminthosporium sp fue el hongo que predominó en los aislamientos de las plántulas, de acuerdo a Hashioka (4) este hongo constituye el estado conidial de M.Savinii por lo que se concluye que este hongo logró infectar a las plántulas de arroz. Sin embargo teniendo en cuenta la poca cantidad de plántulas enfermas y por evitar escasas muestras para aislamiento, hay que aceptar los resultados con cierta reserva. - Ensayo N 2 Tipo de panicula y signo de M.Salvinii en plantas de arroz de siembra directa y de trasplante.- Los resultados de las evaluaciones del tipo de panícula y signo de M. Salvinii en plantas de arroz inoculadas con 2, 4 y 6g. de inóculo respectivamente, tanto en siembra directa como en trasplante, se muestran en el cuadro 3. Cuadro 3: Tipo de panícula y signo de M. Salvinii en plantas de siembra directa y de trasplante.

SIEMBRA DIRECTA TRASPLANTE DOSIS Tipo de panícula Signo Tipo de panícula Signo A B C S A B C S TOTAL 16* 23 10 29 27 41 16 52 D1 X 3.2 4.6 2.0 5.8 5.4 8.2 3.2 10.4 % 42 58 25 75 40 60 23 77 TOTAL 27 12 1 38 20 47 27 40 D2 X 5.4 2.4 0.2 7.6 4.0 9.4 5.4 8.0 % 69 31 3 97 30 70 41 59 TOTAL 31 19 2 48 13 37 12 38 D3 X 6.2 3.8 0.4 9.6 2.6 7.4 2.4 7.6 % 62 38 4 96 26 74 24 76 TOTAL 34 4 3 35 32 24 20 36 T X 6.8 0.8 0.6 7.0 6.4 4.8 4.0 7.2 % 90 10 7 93 58 42 35 65 *Número de tallos en cinco macollos Nota: D1 = Dosis 1 (2g./maceta) D2 = Dosis 2 (4g./maceta) D3 = Dosis 3 (6g./maceta) T = Testigo A = Panícula normal B = Panícula con inserción C = Con esclerotes o Micelio S = Sin esclerotes o Micelio De acuerdo a los resultados mostrados en el cuadro 3, podemos observar que tanto en las plantas de siembra directa como en las plantas se siembra indirecta la presencia de signos (esclerotes) fue mayor en estas últimas, lo cual se explicaron por la presencia de heridas que se ocasionan al momento del trasplante. El efecto de las heridas en la incidencia de ataque de M.Salvinii ha sido reportado por varios investigadores (4,5,9), pero en esta oportunidad se informa por primera vez la asociación con el efecto del trasplante. La presencia de esclerotes en plantas testigo puede explicarse ya sea por semilla o suleo contaminado o por contaminación al momento de efectuar los riegos, el predominio de plantas sin signos en todos los tratamientos indicaría que también en este ensayo el tipo de inóculo utilizado, predominante micelial, ha incidido en una baja de respuesta de patogenicidad. IV. CONCLUSION: El presente estudio ha permitido reafirmar, aunque no en forma concluyente, que M.Salvinii causa pudrición en plántulas y plantas adultas de arroz cultiva Inti.

También ha permitido sentir la necesidad de continuar estos estudios orientándolos hacia el entendimiento de la patogenecidad, naturaleza de la resistencia y epidemiología de la enfermedad en nuestra región.

REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS 1) CHAND M. and R. SINGH. 1985 Effect of planting time onstem rot (S-R.) incidence. IRRN 10 (6): 18-19 2) DE CAROLIS C. 1973. Sclerotium oryzae sawada su riso in Italia. II Riso (4): 337-339 3) NASHIOKA Y. 1951. Varietal resistence of rice to the sclorotial diseases, japanese juornal of breeding 1; 21-26 pp 4) NASHIOKA Y. 1970. Rice diseases in the world. VI Sheat spots due to sclorotial fungi (Fungal diseases-3). II Riso (2): 111-128 5) LAPOINT V. y R. HUERTA. 1972. Resistencia varietal en arroz a la pudrición del tallo incitada por Depthosphaerea salvinii catt. Ministerio de Agricultura Programa Nacional de arroz. Lambayeque, Perú, Informa técnico N 72; 17 pp 6) MATHUR S.C. 1973. Studios in seedling blight of rice caused by sclerotium rolfsii. II Riso (3): 231-237 7) MIAH S., M.A. NAHAR and M.A., MAQUE 1977. Methods to artificially inoculate and screen rice varieties for resistence to stem rot disease under field conditions. IRRN 5: 8 8) MIZUKAMI T. 1967. Problems on some rice diseases in Japan. In tropical Agriculture Resarch Series N 1 Japan. P 231-238 9) OU S.H. 1972. Rice diseases. Commonweath Mycological Institute. Kew, Surray, England. 368 p 10) SIWI, B.H. and IDA NJOMAN OKA. 1967. Breeding of rice for resistance to major diseases in Indonesia. In Proceeding of a Symposium on Tropical Agriculture Researches. September, 1967. Tropical Agriculture Research Series N 1 Japón. P. 217-230 11) SUNDER S., K.R. BATTAN, R. SINGH and R, GUPTA. 1991. Disease resitence of some promining rice cultivars. IRRN 16(3): 14 12) SUNGH R., H. CHAND and SINGH. 1965. Scented rices north stem rot (S.R.) and bacterial blight (BB) resistance. IRRN 10 (5): 8 13) SRIVASTAVA M.P. y S.C. AHUJA. 1973. Stem rot resistance in rico varieties. II Riso (3): 239-242