100% mix de hueso cortical y esponjoso GRANDES O MEDIANOS DEFECTOS A DOS PAREDES AUMENTO DEL SENO MAXILAR

Transcripción

1 Biomateriales

2 Apatos 100% mix de hueso cortical y esponjoso Fotografía cortesía del Dr. Carlos Cruz Rodríguez Indicaciones clínicas ELEVACIÓN DE SENO MAXILAR GRANDES O MEDIANOS DEFECTOS PERI- IMPLANTARIOS AUMENTO DEL SENO MAXILAR GRANDES O MEDIANOS DEFECTOS A DOS PAREDES ALVEOLOS POST-EXTRACCIÓN GRANDES O MEDIANOS DEFECTOS INFRAÓSEOS 11

3 Apatos Sustituto óseo en grano micras Similar al hueso humano Apatos es un biomaterial de origen heterólogo con características similares al hueso humano mineralizado. Puede ser utilizado como alternativa al hueso autólogo. La consistencia natural y microporosa de Apatos facilita la formación de nuevo tejido óseo en el área del defecto, acelerando el proceso fisiológico. MODO DE EMPLEO: Apatos tiene que ser siempre rehidratado mezclándolo con unas pocas gotas de solución fisiológica; puede ser también mezclado con la sangre del paciente. Imagen SEM de gránulos esponjosos OsteoBiol Apatos. Fotografía cortesía del Prof. Ulf Nannmark. Composición 100% granulado mix Tiempo de reentrada Aprox. 5 meses A1005FS Apatos Mix Envase 0,5 gr. (Aprox. 0,9 c.c.) A1010FS Apatos Mix Envase 1 gr. (Aprox. 1,8 c.c.) A1020FS Apatos Mix Envase 2 gr. (Aprox. 3,6 c.c.) TSVA05 TSVA10 A0210FS Kit Apatos + TSV Gel Kit Apatos + TSV Gel Apatos Mix micras Apatos 0,5 gr. + TSV Gel 0,5 c.c. Apatos 1 gr. + TSV Gel 1 c.c. Envase 1 gr. (Aprox. 2 c.c.) 12

4 Gen-Os 100% hueso cortical y esponjoso colagenado Fotografía cortesía del Dr. Antonio Armijo Salto Indicaciones clínicas PEQUEÑOS O MEDIANOS DEFECTOS A DOS PAREDES PEQUEÑOS O MEDIANOS DEFECTOS PERI- IMPLANTARIOS PEQUEÑOS O MEDIANOS DEFECTOS INFRAÓSEOS AUMENTO DEL SENO MAXILAR ALVEOLOS POST-EXTRACCIÓN 13

5 Gen-Os Sustituto óseo en grano micras Ventajas de los Dual-phase Gen-Os se reabsorbe gradualmente y asegura una acción de soporte para la formación ósea, contribuyendo a preservar la forma y el volumen del injerto original (propiedad osteoconductiva). Además, gracias a su contenido de colágeno, el producto facilita la formación del coágulo hemático y la consiguiente invasión de las células reparadoras y regeneradoras, favoreciendo la completa "restitución e integración" del déficit óseo. MODO DE EMPLEO: Debe estar siempre hidratado y bien mezclado con unas gotas de solución fisiológica estéril para activar su matriz de colágeno y aumentar su adhesividad; también puede ser mezclado con la sangre del paciente. Imagen SEM de un gránulo OsteoBiol Gen-Os colonizado por los osteoblastos a partir de una línea celular. Fotografía cortesía del Prof. Ulf Nannmark. Composición 100% granulado mix Tiempo de reentrada Aprox. 5 meses M1052FS M1005FS M1010FS TSVG05 TSVG10 Gen-Os Gen-Os Gen-Os Kit Gen-Os + TSV Gel Kit Gen-Os + TSV Gel Envase 0,25 gr. (Aprox. 0,4 c.c.) Envase 0,5 gr. (Aprox. 0,8 c.c.) Envase 1 gr. (Aprox. 1,6 c.c.) Gen-Os 0,5 gr. + TSV Gel 0,5 c.c. Gen-Os 1 gr. + TSV Gel 1 c.c. 14

6 Mp3 Hueso cortical y esponjoso con 10% de colágeno Fotografía cortesía del Dr. Alvaro de la Riva Indicaciones clínicas ELEVACIÓN DE SENO MAXILAR ALVEOLOS POST-EXTRACCIÓN DEFECTOS A DOS PAREDES REG. VERTICAL TÉCNICA INLAY (CON SP-BLOCK) 15

7 Mp3 Sustituto óseo en jeringa micras Máximo rendimiento y manejo Mp3 está compuesto de gránulos prehidratados colagenados córtico-esponjosos pertinentemente mezclados con OsteoBiol Gel 0. Gracias a esta característica, es posible omitir la fase de hidratación y así reducir el riesgo de una exposición accidental del material a agentes patógenos durante la fase de preparación. Gradualmente reabsorbible, preserva la forma y el volumen del injerto original (propiedad osteoconductiva). MODO DE EMPLEO: Mp3 está disponible en jeringas listas para su utilización y puede ser injertado fácilmente omitiendo las fases de hidratación y manipulación. Después de adaptar el material a la forma del defecto, es necesario eliminar los residuos no estables antes de proceder a la sutura de los tejidos blandos. Histología de una biopsia a 24 meses. 48% hueso neoformado, 13% biomaterial residual. Fotografía cortesía del Dr. Roberto Rossi. Composición Hueso porcino esponjoso y cortical prehidratado con 10% de colágeno. Tiempo de reentrada Aprox. 5 meses, dependiendo de la zona en la que se produzca la regeneración y el volumen. A3075FS A3005FS A3015FS A3010FS A3210FS Mp3 Mp3 Mp3 Mp3 Mp micras Jeringa 0,25 c.c x 3 ud. Jeringa 1 c.c Jeringa 0,5 c.c x 3 uds. Jeringa 2 c.c Jeringa 2 c.c 16

8 Putty Pasta de mix de hueso con un 20% de colágeno Fotografía cortesía del Dr. Antonio Armijo Salto. Indicaciones clínicas ALVEOLOS POST-EXTRACCIÓN AUMENTO DEL SENO MAXILAR. ACCESO CRESTAL DEFECTOS PERIIMPLANTARIOS DEFECTOS PERIIMPLANTARIOS SI LAS PAREDES SON PRESERVADAS SPLIT CREST 17

9 Putty Sustituto óseo en jeringa 300 micras Diseñado para defectos periimplantarios Se produce mediante un proceso exclusivo que otorga al producto una plasticidad y maleabilidad excepcional, facilitando su aplicación en alveolos y en defectos con paredes. El éxito del injerto necesita una completa estabilidad del biomaterial: por éste motivo, Putty tiene que ser utilizado solo en una cavidad capaz de contenerlo de modo estable. En ningún caso tiene que ser injertado en defectos a dos paredes o en procedimientos de elevación de seno con acceso lateral. MODO DE EMPLEO: Inyectar el producto y adaptarlo a la morfología del defecto sin comprimirlo; todos los residuos no estables deben retirarse antes de suturar los tejidos blandos. Hueso recién formado después del tratamiento con Putty. HTX - eosina. Aumento x20. Fotografía cortesía del Prof. Ulf Nannmark. Composición Mix de hueso porcino esponjoso y cortical con un 20% de colágeno. Tiempo de reentrada Aprox. 4 meses HPT52S HPT32S HPT09S HPT35S HPT61S Putty Putty Putty Putty Putty Jeringa 0,25 c.c. Jeringa 0,25 c.c. x 3 uds. Pack ahorro Jeringa 0,5 c.c. Jeringa 0,5 c.c. x 3 uds. Pack ahorro Jeringa 1 c.c. 18

10 Gel 40 Diseñado para defectos periimplantarios Fotografía cortesía del Dr. Walter Rao. Indicaciones clínicas DEFECTOS INFRA- ÓSEOS Y RECESIÓN GINGIVAL MINIELEVACIÓN DE SENO MAXILAR. ACCESO CRESTAL 19

11 Gel 40 Sustituto óseo en jeringa 300 micras Ideal para bolsas periodontales Gel 40 está compuesto por una matriz de colágeno (tipo I y III) obtenida mediante el exclusivo proceso de Tecnoss. El producto se encuentra en estado gel a temperaturas inferiores a 30ºC; a temperaturas más altas, la viscosidad se reduce y Gel 40 puede ser mezclado con fármacos hidrosolubles y/o liposolubles. Gel 40 facilita la formación de un coágulo hemático primario y la consiguiente invasión de células reparadoras y regeneradoras. MODO DE EMPLEO: Las particulares características de viscosidad y densidad del Gel 40 facilitan la manipulación del producto, proporcionando un soporte pegajoso. Si la viscosidad es excesiva, se deben añadir unas pocas gotas de solución salina estéril templada y remezclar todo cuidadosamente para conseguir la densidad deseada. Hueso formado después del tratamiento con Gel 40. Biopsias tomadas 5 semanas después del implantación en maxilares de conejo. Fotografía cortesía del Prof. Ulf Nannmark. Composición 60% granulado mix, 40% gel de colágeno tipo I y III. Tiempo de reentrada Aprox. 4 meses. 05GEL40S 15GEL40S Gel 40 Gel 40 Jeringa 0,5 c.c. Jeringa 0,5 c.c. x 3 Uds. Pack ahorro 20

12 TSV Gel Combinación única para la estabilización del injerto Fotografía cortesía del Dr. Roberto Rossi. Indicaciones clínicas DEHISCENCIAS DEFECTOS INFRAÓSEOS AUMENTO HORIZONTAL REGENERACIÓN ALVEOLAR 21

13 Tsv Gel Sustituto óseo + gel micras Para una mayor estabilidad del injerto La viscosidad alcanzada por TSV Gel a temperatura corporal, mejora significativamente la estabilidad de los gránulos de Gen-Os y Apatos y es beneficiosa en casos donde haya escaso soporte óseo alrededor del defecto, por ejemplo, aumento lateral, alveolos con una pared bucal comprometida, dehiscencias y defectos periodontales a una y dos paredes. Además, la viscosidad de TSV Gel mejora la estabilidad y la manipulación de las membranas Evolution durante la delicada fase de cierre del colgajo. MODO DE EMPLEO: Antes de utilizar TSV Gel, debe refrigerarse durante al menos 20 minutos a 4 C para poder alcanzar la fase de baja viscosidad, lo que facilita su mezcla con OsteoBiol Gen-Os u OsteoBiol Apatos. Hueso formado alrededor de una partícula de Gen-Os mezclada con OsteoBiol TSV Gel, 2 semanas después de injertarla en un conejo. Fotografía cortesía del Prof. Ulf Nannmark. Composición Gel de colágeno heterólogo tipo I y III y copolímero termogelificante biocompatible. Tiempo de reentrada 4/5 meses, dependiendo de las características de la zona del injerto. TSVA05 TSVA10 TSVG05 TSVG10 Kit Apatos + TSV Gel Kit Apatos + TSV Gel Kit Gen-Os + TSV Gel Kit Gen-Os + TSV Gel Apatos 0,5 gr. + TSV Gel 0,5 c.c. Apatos 1 gr. + TSV Gel 1 c.c. Gen-Os 0,5 gr. + TSV Gel 0,5 c.c. Gen-Os 1 gr. + TSV Gel 1 c.c. 22

14 Duo-Teck Membrana revestida de hueso Fotografía cortesía del Dr. José Luis Calvo Guirado Indicaciones clínicas ALVEOLOS POST-EXTRACCIÓN DEFECTOS INFRAÓSEOS 23

15 Duo-Teck Membrana Aprox. 1mm Biocompatible y de rápida absorción Duo-Teck es una membrana constituida por colágeno liofilizado de origen equino, biocompatible y con una rápida reabsorción. Duo-Teck se diferencia de otras membranas debido a que por un lado ha sido revestida con una película de hueso micronizado, también de origen equino. Este revestimiento aumenta la compactibilidad y la estabilidad. MODO DE EMPLEO: Rehidratar con solución fisiológica tibia. Posicionar directamente el lado con el hueso micronizado en contacto con el injerto y el lado liso en contacto con los tejidos blandos. Imagen SEM de OsteoBiol Duo-Teck. Fotografía cortesía del Politécnico de Torino, Italia. Composición Fieltro de colágeno y gránulos de hueso con colágeno 300 µm. Tiempo de reabsorción En los primeros 60 días, según las características de la zona del injerto. DT020 Membrana Duo-Teck 20 x 20 x (1) mm 24

16 Duo-teck Felt Colágeno liofilizado para separación de tejidos Fotografía cortesía del Dr. Antonio Murillo Rodríguez. Indicaciones clínicas SEPARACIÓN Y PROTECCIÓN DE TEJIDOS DUROS Y BLANDOS 25

17 Duo-Teck Felt Membrana Aprox. 0,2 mm Para una separación de tejidos con una consistencia diferente Duo-Teck Felt es una membrana constituida por colágeno liofilizado equino, biocompatible y con una rápida reabsorción. Se trata de una membrana para separar los tejidos, entre los bordes gingivales reposicionados y el tejido óseo que se encuentra debajo. De hecho, Duo-Teck Felt se puede utilizar en todos los casos que necesiten de una simple separación entre tejidos con una consistencia diferente y durante un corto espacio de tiempo. MODO DE EMPLEO: Duo-Teck Felt debe ser retirada del envase con pinzas estériles y ser colocada sobre la zona receptora. En caso de exposición accidental de la membrana, solamente se recomienda su extracción en caso de evidente superinfección, debido a que la consistencia y plasticidad del producto permiten una curación de la herida por segunda intención. Membrana Duo-Teck Felt fijada con chinchetas. Fotografía cortesía del Dr. Antonio Murillo Rodríguez Composición Fieltro de colágeno liofilizado equino. Tiempo de reabsorción En los primeros 60 días, según las características de la zona del injerto. DTN625 Caja 6 Uds Membrana Duo-Teck felt 25 x 25 x (0,2) mm 26

18 Evolution Membrana 100% pericardio Fotografía cortesía del Dr. Rosario Sentineri Indicaciones clínicas DEFECTOS INFRAÓSEOS. EVOLUTION FINA DEFECTOS PERIIMPLAN- TARIOS. DEHISCENCIA Y FENESTRACIÓN REGENERACIÓN VERTICAL TÉCNICA INLAY. EVOLUTION STANDARD ELEVACIÓN DE SENO MAXILAR. ACCESO CRESTAL ALVEOLOS POST- EXTRACCIÓN DEFECTOS A DOS PAREDES. EVOLUTION STANDARD 27

19 Evolution Membrana X-Fina: 0,2 mm/ Fina: 0,4 mm / Std: 0,6 mm Elevada consistencia y resistencia Obtenidas de tejidos mesenquimales las membranas Evolution son completamente reabsorbibles. Su estructura constituida por densas fibras de colágeno ofrece: >> la máxima adaptabilidad >> seguridad a la hora de suturar >> estabilidad y protección prolongada MODO DE EMPLEO: La membrana puede ser modelada con la forma deseada con unas tijeras estériles; posteriormente debe ser hidratada con solución fisiológica estéril tibia. Imagen SEM del lado rugoso de una membrana Osteobiol Evolution. Cortesía del Prof. José Luis Calvo Guirado. Composición Equino (fina) / Porcino (standard y X-fina) Tiempo de reabsorción X-Fina: aprox. 2 meses. Fina: aprox. 3 meses. Standard: aprox. 4 meses. EM02XS Evolution X-FINA 20 x 20 x (0,2) mm EV02LLE Evolution FINA 20 x 20 x (0,4) mm EV03LLE Evolution FINA 30 x 30 x (0,4) mm EV04LLE Evolution FINA 40 x 40 (0,4) mm EVOLLE Evolution FINA Oval 25 x 35 x (0,4) mm EV06LLE Evolution FINA 80 x 60 (0,4) mm EM02HS Evolution STD 20 x 20 x (0,6) mm EM03HS Evolution STD 30 x 30 x (0,6) mm EMOHS Evolution STD Oval 25 x 35 x (0,6) mm 28

20 Derma Diseñada para defectos periimplantarios Fotografía cortesía del Dr. Pablo Bustillo Hernández Indicaciones clínicas ALVEOLOS POST-EXTRACCIÓN RECESIÓN GINGIVAL DEFECTOS A DOS PAREDES 29

21 Derma Membrana X-Fina: 0,6mm / Fina 0,8-1mm / Std: 2mm 100% dermis. Std, Fina, Oval y X-Fina Obtenida de la dermis de origen porcino, es completamente reabsorbible. Su fuerte consistencia y resistencia permiten una estabilización perfecta y una protección prolongada del injerto subyacente en los procedimientos de grandes regeneraciones, junto con una acción de fuerte barrera para guiar el crecimiento del tejido epitelial y previniendo su invaginación. MODO DE EMPLEO: La membrana Derma puede ser modelada con tijeras hasta alcanzar las dimensiones deseadas, tiene que ser hidratada durante 15 min. con solución fisiológica estéril tibia. Imagen SEM de OsteoBiol Derma. Fotografía cortesía del Politécnico de Torino, Italia. Composición 100% Dermis porcina Tiempo de integración X-Fina: 2 meses. Fina: 3 meses. Std: 4 meses ED02LS ED25FS ED05FS ED21FS ED03SS ED05SS ED75SS ED15SS Derma X-FINA Derma FINA Derma FINA Derma FINA Derma STD Derma STD Derma STD Derma STD 20 x 20 x (0,6) mm 25 x 25 x (0,8-1) mm 50 x 50 x (0,8-1) mm Oval 12 x 8 x (0,8-1) mm 30 x 30 x (2) mm 50 x 50 x (2) mm 7 x 5 x (2) mm 15 x 5 x (2) mm 30

22 Lámina cortical 100% hueso cortical Lámina cortical. Fotografía cortesía del Dr. Antonio Armijo Salto Indicaciones clínicas REG. HORIZONTAL DEFECTOS A DOS PAREDES. (L.CURVA) ELEVACIÓN DE SENO ACCESO LATERAL AUMENTO DE CRESTA. (L.CURVA) 31

23 Lámina cortical Lámina Fina 0,5mm / Curva: 0,9mm / Medium: 1mm / Std: 2mm Márgenes suaves para evitar microtraumas Las Láminas Corticales OsteoBiol son fabricadas con hueso cortical producidas con un método exclusivo de Tecnoss que evita la ceramización de los cristales de hidroxiapatita, acelerando la reabsorción fisiológica. Después de un proceso de descalcificación superficial, adquiere una consistencia elástica, manteniendo la compatibilidad típica del tejido óseo original; los márgenes son suaves para no causar microtraumas a los tejidos circundantes. MODO DE EMPLEO: Puede ser injertada sin hidratación aunque es recomendable humedecerla levemente para que su forma se adapte a la morfología del defecto. Normalmente debe inmovilizarse con microtornillos de titanio. En caso de exposición, permite lograr una completa curación por segunda intención de la herida. Imagen LM de Lámina OsteoBiol hidratada con sangre: vascularización aumentada por la presencia de canales vasculares originales. Fotografía cortesía del Prof. Ulf Nannmark. Composición Hueso cortical porcino con colágeno Tiempo de reabsorción Fina: 5 meses. Curva y Medium: 6 meses. Std: 8 meses. LS23FS LS25FS LS10HS LS24LS LS03SS Lámina cortical oval fina Lámina cortical fina Lámina cortical curva Lámina cortical medium Lámina cortical standard 35 x 25 (0,5) mm 25 x 25 x (0,5) mm 35 x 35 x (0,9) mm 20 x 40 x (1) mm 30 x 30 x (2) mm 32

24 Lámina Rígida Diseñada específicamente para técnica de encofrado Fotografía cortesía del Dr. Angel Manchón Indicaciones clínicas TÉCNICA DE ENCOFRADO 33

25 Lámina Rígida Lámina Rígida: 1mm 100% hueso cortical La Lámina rígida ha sido diseñada para la reconstrucción del suelo orbital y para la reconstrucción de la pared después de un trauma. Una de las indicaciones clínicas para la que está recomendada es la técnica de encofrado, documentada por el Prof. Khoury, que ha supuesto una revolución en el campo de la regeneración ósea. Puede cubrirse con membranas Derma X-Fina, Evolution X-Fina o Duo Teck felt para asegurar mayor cobertura tisular. MODO DE EMPLEO: La Lámina rígida tiene una consistencia totalmente rígida, se puede cortar hasta conseguir el tamaño deseado y no es necesario que se hidrate previamente. Imagen regeneración ósea con Lámina Rígida OsteoBiol Fotografía cortesía del Dr. Jesús Torres. Composición Hueso cortical porcino con colágeno Tiempo de reabsorción De 4-8 meses para conseguir una nueva cresta. LS35LS Lámina cortical rígida 35 x 35 (1) mm 34

26 Sp-Block Bloque rígido 100% hueso esponjoso Sp-Block. Fotografía cortesía del Dr. Pietro Felice Indicaciones clínicas AUMENTO VERTICAL EN MANDÍBULA MEDIANTE TÉCNICA INLAY DEFECTOS ÓSEOS DE GRAN TAMAÑO 35

27 Sp-Block Bloque rígido Soporta la formación de nuevo hueso Sp-Block soporta la formación de nuevo hueso: gracias a su consistencia rígida y a su forma, es capaz de mantener en el tiempo el volumen del injerto original, lo cual es particularmente importante en los casos de grandes regeneraciones. Es recomendable rellenar los huecos del bloque con un biomaterial en gránulos para lograr el volumen y contorno deseado. MODO DE EMPLEO: Debe ser hidratado durante 5/10 min. para después adaptarse al sitio receptor, el cual debe estar correctamente decorticado para garantizar el máximo contacto. Debe fijarse con tornillos de osteosíntesis y podría ser protegido con una barrera reabsorbible (Evolution). Imagen SEM de un bloque esponjoso OsteoBiol Fotografía cortesía del Prof. Ulf Nannmark, Univ. Gotemburgo. Composición Hueso esponjoso heterólogo Tiempo de reentrada Aprox. 6 meses, variable según las características y la vascularización de la zona del injerto, además de las condiciones clínicas del paciente BN0E BN1E BN2E BN8E Sp-Block Sp-Block Sp-Block Sp-Block Bloque 10 x 10 x 10 mm Bloque 10 x 10 x 20 mm Bloque 10 x 20 x 20 mm Bloque 35 x 10 x 5 mm 36

28 OsteoBiol Literatura científica Últimas publicaciones año 2017 BARONE A, TOTI P, QUARANTA A, ALFONSI F, CUCCHI A, NEGRI B, DI FELICE R, MARCHIONNI S, CALVO-GUIRADO JL, COVANI U, NANNMARK U CLINICAL AND HISTOLOGICAL CHANGES AFTER RIDGE PRESERVATION WITH TWO XENOGRAFTS: PRELIMINARY RESULTS FROM A MULTICENTER RANDOMIZED CONTROLLED CLINICAL TRIAL JOURNAL OF CLINICAL PERIODONTOLOGY, 2017 FEB;44(2): EPUB 2017 JAN 10 J CLIN PERIODONTOL, 2017 FEB;44(2): EPUB 2017 JAN 10 BARONE A, ALFONSI F, BORGIA V, IEZZI G, PIATTELLI A, COVANI U, TONELLI P MOLECULAR, CELLULAR AND PHARMACEUTICAL ASPECTS OF FILLING BIOMATERIALS DURING THE MANAGEMENT OF EXTRACTION SOCKETS CURRENT PHARMACEUTICAL BIOTECHNOLOGY, 2017;18(1): EPUB 2016 DEC 23 CURR PHARM BIOTECHNOL, 2017;18(1): EPUB 2016 DEC 23 BARONE A, TOTI P, MENCHINI FABRIS GB, MARCHIONNI S, COVANI U EARLY VOLUMETRIC CHANGES AFTER VERTICAL AUGMENTATION OF THE ATROPHIC POSTERIOR MANDIBLE WITH INTERPOSITIONAL BLOCK GRAFT VERSUS ONLAY BONE GRAFT: A RETROSPECTIVE RADIOLOGICAL STUDY JOURNAL OF CRANIO-MAXILLOFACIAL SURGERY, 2017 SEP;45(9): EPUB JAN J CRANIO-MAXILLOFAC, SEP;45(9): EPUB JAN BARONE A, TOTI P, FUNEL N, CAMPANI D, COVANI U EXPRESSION OF SP7, RUNX1, DLX5, AND CTNNB1 IN HUMAN MESENCHYMAL STEM CELLS CULTURED ON XENOGENEIC BONE SUBSTITUTE AS COMPARED WITH MACHINED TITANIUM IMPLANT DENTISTRY, 2014 AUG;23(4): IMPLANT DENT, 2014 AUG;23(4): LOZANO CARRASCAL N, DELGADO RUIZ RA, GARGALLO ALBIOL J, MATÉ SÀNCHEZ JE, HERNANDEZ ALFARO F, CALVO GUIRADO JL XENOGRAFTS SUPPLEMENTED WITH PAMINDRONATE PLACED IN POSTEXTRACTION SOCKETS TO AVOID CRESTAL BONE RESORPTION. EXPERIMENTAL STUDY IN FOX HOUND DOGS CLIN ORAL IMPLANTS RES, 2016 FEB;27(2): ESPOSITO M, ZUCCHELLI G, CANNIZZARO G, CHECCHI L, BARAUSSE C, TRULLENQUE-ERIKSSON, FELICE P IMMEDIATE, IMMEDIATE-DELAYED (6 WEEKS) AND DELAYED (4 MONTHS) POST-EXTRACTIVE SINGLE IMPLANTS: 1-YEAR POST-LOADING DATA FROM A RANDOMISED CONTROLLED TRIAL EUR J ORAL IMPLANTOL, 2017;10(1):11-26 GIULIANI A, IEZZI G, MAZZONI S, PIATTELLI A, PERROTTI V, BARONE A REGENERATIVE PROPERTIES OF COLLAGENATED PORCINE BONE GRAFTS IN HUMAN MAXILLA: DEMONSTRATIVE STUDY OF THE KINETICS BY SYNCHROTRON RADIATION MICROTOMOGRAPHY AND LIGHT MICROSCOPY CLINICAL ORAL INVESTIGATIONS, 2017 JUN 2 EPUB AHEAD OF PRINT BARONE A, TOTI P, MENCHINI-FABRIS GB, DERCHI G, MARCONCINI S, COVANI U EXTRA ORAL DIGITAL SCANNING AND IMAGING SUPERIMPOSITION FOR VOLUME ANALYSIS OF BONE REMODELING AFTER TOOTH EXTRACTION WITH AND WITHOUT 2 TYPES OF PARTICULATE PORCINE MINERAL INSERTION: A RANDOMIZED CONTROLLED TRIAL CLINICAL IMPLANT DENTISTRY AND RELATED RESEARCH, 2017 AUG;19(4): EPUB 2017 MAY 16 CLIN IMPLANT DENT RELAT RES, 2017 AUG;19(4): EPUB 2017 MAY 16 IEZZI G, PIATTELLI A, GIULIANI A, MANGANO C, BARONE A, MANZON L, DEGIDI M, SCARANO A, FILIPPONE A, PERROTTI V MOLECULAR, CELLULAR AND PHARMACEUTICAL ASPECTS OF FILLING BIOMATERIALS DURING MAXILLARY SINUS-LIFT PROCEDCURES. PART 2: DETAILED CHARACTERISTICS OF THE MATERIALS CURRENT PHARMACEUTICAL BIOTECHNOLOGY, 2017, 18, EPUB 2016 DEC 1 CURR PHARM BIOTECHNOL, 2017, 18, EPUB 2016 DEC 1 SCARANO A, CRINCOLI V, DI BENEDETTO A, COZZOLINO V, LORUSSO F, PODALIRI VULPIANI M, GRANO M, KALEMAJ Z, MORI G, GRASSI FR BONE REGENERATION INDUCED BY BONE PORCINE BLOCK WITH BONE MARROW STROMAL STEM CELLS IN A MINIPIG MODEL OF MANDIBULAR CRITICAL SIZE DEFECT STEM CELLS INTERNATIONAL, 2017;2017: STEM CELLS INT, 2017;2017: SCARANO A TRADITIONAL POSTEXTRACTIVE IMPLANT SITE PREPARATION COMPARED WITH PRE-EXTRACTIVE INTERRADICULAR IMPLANT BED PREPARATION IN THE MANDIBULAR MOLAR REGION, USING AN ULTRASONIC DEVICE: A RADOMIZED PILOT STUDY INT JOURNAL OF ORAL AND MAXILLOFACIAL IMPLANTS, 2017 MAY/JUN;32(3): INT J ORAL MAXILLOFAC IMPLANTS, 2017 MAY/JUN;32(3): FELICE P, BARAUSSE C, BARONE A, ZUCCHELLI G, PIATTELLI M, PISTILLI R, IPPOLITO DR, SIMION M INTERPOSITIONAL AUGMENTATION TECHNIQUE IN THE TREATMENT OF POSTERIOR MANDIBULAR ATROPHIES: A RETROSPECTIVE STUDY COMPARING 129 AUTOGENOUS AND HETEROLOGOUS BONE BLOCKS WITH 2 TO 7 YEARS FOLLOW-UP INT JOURNAL OF PERIODONTICS AND RESTORATIVE DENTISTRY, 2017 JUL/AUG;37(4): INT J PERIODONTICS RESTORATIVE DENT, 2017 JUL/AUG;37(4): IIDA T, CARNEIRO MARTINS NETO E, BOTTICELLI D, APAZA ALCCAYHUAMAN KA, LANG NP, XAVIER SP INFLUENCE OF A COLLAGEN MEMBRANE POSITIONED SUBJACENT THE SINUS MUCOSA FOLLOWING THE ELEVATION OF THE MAXILLARY SINUS. A HISTOMORPHOMETRIC STUDY IN RABBITS CLINICAL ORAL IMPLANTS RESEARCH, 2017 JUN 7. EPUB AHEAD OF PRINT CLIN IMPLANT DENT RELAT RES, 2017 JUN 7. EPUB AHEAD OF PRINT DE MARCO P, ZARA S, DE COLLI M, RADUNOVIC M, LAZOVIC V, ETTORRE V, DI CRESCENZO A, PIATTELLI A, CATALDI A, FONTANA A GRAPHENE OXIDE IMPROVES THE BIOCOMPATIBILITY OF COLLAGEN MEMBRANES IN AN IN VITRO MODEL OF HUMAN PRIMARY GINGIVAL FIBROBLASTS BIOMEDICAL MATERIALS, 2017 SEP 13;12(5): EPUB 2017 JUN 13 BIOMED MATER, 2017 SEP 13;12(5): EPUB 2017 JUN 13 MIJIRITSKY E, FERRONI L, GARDIN C, BRESSAN E, ZANETTE G, PIATTELLI A, ZAVAN B PORCINE BONE SCAFFOLDS ADSORB GROWTH FACTORS SECRETED BY MSCS AND IMPROVE BONE TISSUE REPAIR MATERIALS, 2017 SEP 8;10(9) ROSSI R, FOCE E, SCOLAVINO S THE CORTICAL LAMINA TECHNIQUE: A NEW OPTION FOR ALVEOLAR RIDGE AUGMENTATION. PROCEDURE, PROTOCOL, AND CASE REPORT JOURNAL OF THE LEBANESE DENTAL ASSOCIATION, 2017 JAN-JUN; 52(1):35-41 J LEBANESE DENTAL ASS, 2017 JAN-JUN; 52(1):35-41 CHECCHI V, FELICE P, ZUCCHELLI G, BARAUSSE C, PIATTELLI M, PISTILLI R, GRANDI G, ESPOSITO M WIDE DIAMETER IMMEDIATE POST-EXTRACTIVE IMPLANTS VS DELAYED PLACEMENT OF NORMAL-DIAMETER IMPLANTS IN PRESERVED SOCKETS IN THE MOLAR REGION: 1-YEAR POST-LOADING OUTCOME OF A RANDOMISED CONTROLLED TRIAL EUROPEAN JOURNAL OF ORAL IMPLANTOLOGY, 2017;10(3): EUR J ORAL IMPLANTOL, 2017;10(3): CRESPI R, CAPPARÈ P, GHERLONE E COMPARISON OF MAGNESIUM-ENRICHED HYDROXYAPATITE AND PORCINE BONE IN HUMAN EXTRACTION SOCKET HEALING: A HISTOLOGIC AND HISTOMORPHOMETRIC EVALUATION INT JOURNAL OF ORAL AND MAXILLOFACIAL IMPLANTS, 2011 SEP-OCT;26(5): INT J ORAL MAXILLOFAC IMPLANTS, 2011 SEP-OCT;26(5): CORBELLA S, TASCHIERI S, FRANCETTI L, WEINSTEIN R, DEL FABBRO M HISTOMORPHOMETRIC RESULTS AFTER POSTEXTRACTION SOCKET HEALING WITH DIFFERENT BIOMATERIALS: A SYSTEMATIC REVIEW OF THE LITERATURE AND META-ANALYSIS INT JOURNAL OF ORAL AND MAXILLOFACIAL IMPLANTS, 2017 SEP/OCT;32(5): INT J ORAL MAXILLOFAC IMPLANTS, 2017 SEP/OCT;32(5): RADUNOVIC M, DE COLLI M, DE MARCO P, DI NISIO C, FONTANA A, PIATTELLI A, CATALDI A, ZARA S GRAPHENE OXIDE ENRICHMENT OF COLLAGEN MEMBRANES IMPROVES DPSCS DIFFERENTIATION AND CONTROLS INFLAMMATION OCCURRENCE JOURNAL OF BIOMEDICAL MATERIALS RESEARCH. 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