SYLLABUS Profesor Responsable : Blgo. Miguel Neira Gonzales Profesor de Teoría : Blgo. Miguel Neira Gonzales

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1 UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE SAN MARCOS (Universidad del Perú, Decana de América) FACULTAD DE CIENCIAS BIOLOGICAS ESCUELA PROFESIONAL DE DE CIENCIAS BIOLÓGICAS DEPARTAMENTO ACADÉMICO DE BIOLOGÍA CELULAR Y GENÉTICA SYLLABUS Semestre Académico II I. DATOS GENERALES 1.1. Nombre del Curso : Fundamentos de Ingeniería Genética 1.2. Código del Curso : B Número de Créditos : Duración del Curso : 17 Semanas 1.5. Año de Estudios : Electivo 1.6. Número de Horas Teoría : Práctica : Pre Requisito : Biología Molecular Fundamentos de Biotecnología Microbiología General 1.8. Profesor Responsable : Blgo. Miguel Neira Gonzales Profesor de Teoría : Blgo. Miguel Neira Gonzales Profesor de Prácticas : Blgo. Miguel Neira Gonzales Profesores Invitados : Mag. Gustavo Sandoval Peña Blgo. Alberto López Sotomayor Blgo. Daniel Oré Chavez Mag. Diana Vegas Albino Blga. Kattya Zumaeta Sánchez 1.9 Horarios y Ambientes : II. SUMILLA Teoría : Martes 08:00-09:00 hrs. Aula Seminarios : Martes 09:00-13:00 hrs. Aula Laboratorios : Martes 09:00-13:00 hrs. Lab. S14 El curso ofrece los conceptos básicos de la Ingeniería Genética y sus aplicaciones en las áreas de la alimentación, agricultura, medicina, investigación, en ciencias de la vida, etc. Presenta al estudiante el conjunto de técnicas usadas en la obtención del ADN recombinante, en la manipulación genética de los organismos y sus genes y de los fundamentos que la sustentan desde puntos de vista tradicionales, como de uso actual.

2 III. OBJETIVOS OBJETIVO GENERAL Se pretende introducir al alumno en el concepto y objetivos de la ingeniería genética, llamando la atención sobre las posibilidades y repercusión de esta tecnología. Se contemplan, también, las principales técnicas de manipulación genética en bacterias, levaduras, plantas y animales, así como las técnicas básicas que sustentan aquellas. OBJETIVOS ESPECÍFICOS Al finalizar el curso el alumno será capaz de: Analizar el proceso de clonación de genes mediante la técnica del ADN recombinante. Conocer el papel de las enzimas de restricción y los tipos de vectores utilizados en esta tecnología. Demostrar el potencial de aplicación de la tecnología del ADN recombinante, para el estudio de la estructura, localización y expresión de un gen clonado. Aplicar la técnica de clonación de genes en la investigación y como nueva biotecnología. Destacar las ventajas de aplicación de la clonación de genes en procariontes y eucariontes, en la industria y en la medicina. Conocer los diversos métodos de purificación de proteínas recombinantes. Interpretar las diferentes normas que rigen la utilización de organismos genéticamente modificados IV. EVALUACIÓN Teoría: Comprende dos exámenes teóricos cancelatorios que serán evaluados de la siguiente forma: Primera Evaluación Segunda Evaluación Sustitutorio Octava Semana Decima Sexta Semana Decimo Septima Semana Promedio de Teoría : Exámen 1 + Exámen 2 2 Práctica: Comprende la realización de seminarios y laboratorios. Seminarios: Comprende la exposición de los temas designados, siendo la proporción de la nota de la siguiente forma: Exposición del tema (60%) (12 Puntos) Review (25%) (5 Puntos Presentación (ppt) (15%) (3 Puntos)

3 Laboratorios: Comprende la presentación de informes de todas las sesiones de laboratorio programadas. Promedio de Práctica: Promedio de Seminarios + Promedio de Laboratorios 2 Promedio Final: Promedio de Práctica + Promedio de Teoria 2 En la teoria, el alumno sólo tendrá derecho a sustituir una de las dos evaluaciones teóricas, por el unico exámen sustitutorio que se tomará correspondiente a todo el curso. La asistencia a las clases de laboratorios y seminarios es obligatoria por parte del alumno. La inasistencia que supere el 30% de las clases programadas, hacen que el alumno desapruebe el curso por INASISTENCIAS, correspondiéndole una nota de CERO de acuerdo al reglamento vigente. V. METODOLOGIA : El desarrollo del curso comprenderá clases teóricas, seminarios y laboratorios. Clases teóricas: Serán expositivas, utilizando como material didáctico auxiliar la pizarra y equipos multimedia. Se abordarán los distintos temas propuestos en el curso, impulsando la participación activa de los alumnos. Las clases serán dictadas por especialistas en los distintos temas. Clases de laboratorios: Se desarrollará y explicará las técnicas actuales para la manipulación génetica y clonamiento molecular, con los fundamentos correspondientes según sea el caso. Clases de seminarios: Se formarán grupos de 2-3 alumnos, cada uno los cuales estará a cargo de un seminario correspondiente. Los grupos expositores harán entrega el día de su exposición de un CD con una carpeta que tendrá el nombre del tema asignado (Ejm: Vacunas de ADN) conteniendo los siguientes archivos: Presentación de su exposición en un solo archivo (PPT) Artículo de revisión científica Review (PDF) Documentos o papers más importantes utilizados para su exposición (WORD o PDF). Incluye los artículos de aplicación actuales sobre el tema.

4 VI. PROGRAMACIÓN PRIMERA SEMANA: Blgo. Miguel Neira Gonzales Presentación del curso y lineamientos. Introducción a la Ingeniería Genética, antecedentes históricos. SEGUNDA SEMANA: Blgo. Miguel Neira Gonzales Tecnología del ADN recombinante. Aplicaciones en diversas áreas de interés. TERCERA SEMANA: Blgo. Miguel Neira Gonzales Clonamiento molecular. Vectores de clonamiento, principales vectores procarióticos y eucarióticos. Sistema TA Cloning. CUARTA SEMANA: Blgo. Daniel Oré Chavez Enzimas usadas para manipulación del ADN. Endonucleasas de restricción, ADN ligasas, fosfatasas, ADN polimerasas. QUINTA SEMANA: Mag. Gustavo Sandoval Peña Preparación de librerias genómicas. Tipos de librerias. Detección con sondas. SEXTA SEMANA: Mag. Gustavo Sandoval Peña Preparación de células bacterianas y levaduras, uso en la manipulación de ADN. Subclonaje y paseo cromosómico. SEPTIMA SEMANA: Blgo. Daniel Oré Chavez Secuenciamiento de ADN y su aplicación en la caracterizacion de genomas. Sintesis de ADN y construcción de genomas artificiales. OCTAVA SEMANA: Blgo. Miguel Neira Gonzales Primer Examen Teórico. NOVENA SEMANA: Blga. Kattya Zumaeta Sánchez PCR.y sus variantes. PCR en Tiempo Real, aplicaciones y uso en la detección de organismos genéticamente modificados (OGM). DECIMO SEMANA: Mag. Gustavo Sandoval Peña Sistemas de expresión y purificación de proteínas recombinantes. DECIMO PRIMERA SEMANA: Mag. Diana Vegas Albino Transformación en plantas por Agrobacterium tumefasciens. Vectores binarios y cointegrados. DECIMO SEGUNDA SEMANA: Blga. Diana Vegas Albino Sistemas de transferencia directa. Métodos de selección de plantas transgénicas. DECIMO TERCERA SEMANA: Blgo. Miguel Neira Gonzales Aplicaciones de la Ingeniería Genética en la Salud. Producción de compuestos terapéuticos en microorganismos, plantas y animales.

5 DECIMO CUARTA SEMANA: Blgo. Alberto Lopez Sotomayor Propiedad Intelectual.Importancia. Patentes, características, ventajas y excepciones. Tratados administrados por la OMPI relativos al sistema de registro internacional y PCT. DECIMO QUINTA SEMANA: Blgo. Alberto Lopez Sotomayor La protección de las obtenciones vegetales. Particularidades del registro de variedades transgénicas. DECIMO SEXTA SEMANA: Blgo. Miguel Neira Gonzales Segundo Examen Teórico. DECIMO SEPTIMA SEMANA: Blgo. Miguel Neira Gonzales Examen Sustitutorio de Teoría. SEMINARIOS Y LABORATORIOS PROGRAMADOS SEMINARIOS 1. Distribución y explicación del desarrollo de los seminarios 2. Avances de la elaboración de los seminarios 3. Silenciamiento génico en la obtención de transgénicos 4. Obtención y aplicación de las vacunas de ADN LABORATORIOS 1. Cálculos en la preparación de soluciones y buffers 2. Cálculos sobre materiales y reactivos de uso en ingeniería genética 3. Extracción y purificación de ADN genómico 4. Extracción y purificación de ADN plasmídico 5. Electroforésis de ADN en gel de agarosa 6. Digestión del ADN genómico usando enzimas de restricción 7. Actividad de la enzima fosfatasa alcalina en ADN genómico 8. Actividad de la enzima ligasa en ADN genómico 9. Reacción en cadena de la polimerasa (PCR) 10. Electroforesis de productos de PCR VII. BIBLIOGRAFÍA BAINS, W Ingeniería genética para todos. Alianza Editorial. CUBERO, J Introducción a la mejora de la genética vegetal. Ediciones Mundi- Prensa. España. DESMOND, S.T An introduction to genetic engineering. 3 ra edición. Editorial Cambridge University Press. GLICK, B.R. Y PASTERNAK, J Molecular Biotechnology. Principles and applications of recombinant DNA. 4 ta edición. ASM Press. GRIFFITHS, A., GELBART, W., MILLER, J. Y LEWONTIN, R. 7 ma edición. Genética

6 Moderna. Mc Graw-Hill. Interamericana. HERRÁEZ, A Texto Ilustrado e Interactivo de Biología Molecular e Ingeniería Genética. 2 da Edición Editorial Elsevier. Barcelona, España. IZQUIERDO, M Curso de Genética Molecular e Ingeniería Genética. 1 ra Edición. Ediciones Pirámide, Madrid, España. LEWIN, B. Y KREBS J Genes X. Volumen 10. Jones & Bartlett Learning. NAIR, A.J Introduction to Biotechnology and Genetic Engineering. Laxmi Publications. OLD Y PRIMROSE Principles of gene manipulation. An introduction to genetic engineering. 3 ra Edición, Vol. 2. Editorial. Blackwell Scientific publications. Oxford. PALLADINO, M.A. Y THIEMAN, W.J Introducción a la Biotecnología. 2 da Edición Editorial Pearson. Madrid, España. SAMNBROOK AND RUSSELL Molecular cloning a laboratory manual. Cold Spring Harbor Lab. Press. New York. SOBERON, F La Ingeniería Genética. La nueva biotecnologia y la era genómica. Fondo de Cultura Económica. México. Ciencias 145. STEPHENSON, F.H Cálculo en Biología Molecular y Biotecnología. 2 da Edición. Editorial Elsevier. Barcelona, España. VICENTE, M. Y RENART, J Ingeniería genética. Consejo Superior de Investigaciones Científicas. WALKER, J.M. Y RAPLEY R Molecular biology and biotechnology. Royal Society of Chemistry.