CONTENIDO PROGRAMÁTICO TEÓRICO

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1 Universidad Central de Venezuela Facultad de Ciencias Escuela de Biología Programa de la asignatura PARASITOLOGIA Tipo de asignatura: Electiva Código: 1620 Unidades de crédito: 5 Requisitos: Horas semana: Vigencia: unidades crédito aprobados 1818 Biología Animal 1819 Laboratorio de Biología Animal 3 h/sem teoría 6 h/sem de laboratorio OBJETIVO DE LA ASIGNATURA Conocer y manejar los conceptos básicos de parasitología. Estudiar los principales agentes patógenos productores de enfermedades parasitarias del hombre y animales domésticos, sus ciclos de vida y los aspectos médicos implicados en las parasitosis. El estudiante adquirirá destrezas en la aplicación adecuada de análisis parasitológicos y distintas técnicas para el diagnóstico de las parasitosis. CONTENIDO PROGRAMÁTICO TEÓRICO Tema 1: Introducción al estudio de los organismos parásitos. Mutualismo, Comensalismo y Parasitismo como tipos de simbiosis. El concepto de dependencia en las asociaciones animales. Tema 2: Parasitismo monoxeno y heteroxeno. Parasitismo eurixeno y estenoxeno. Tipos de hospedadores. El concepto de vector. La importancia del reservorio en las parasitosis.

2 Tema 3: Características generales del Subreino Protozoa. Sarcodina. Los Entamoebidae. Entamoeba histolytica: distribución geográfica; reservorios. Ciclo de vida: la E. histolytica como un parásito facultativo; discusión sobre los factores señalados como responsables de la invasión tisular por este protozoario. Parasitismo intestinal y extraintestinal. La E. ginginalis. Tema 4: Amibas comensales del hombre. Dimastigamoebidae. Detalles sobre especies de amibas de vida libre que se pueden comportar como patógenos humanos. Tema 5: Mastigophora. El complejo kinetosomal. Flagelados cavitarios. Giardia intestinalis como un parásito facultativo. Comensalismo y actividad parasitaria de especies humanas de Trichomonas. Chilomastix mesnili. Tema 6: Flagelados sanguícolas y tisulares. Orden Kinetoplastida. Detalles de los Trypanosomatidae inferiores. Polimorfismo. Características generales del Género Trypanosoma. Stercoraria y Salivaria. Estudio del Trypanosoma cruzi: distribución geográfica; ciclo de vida del parásito en sus hospedadores mamíferos y en sus vectores. Reservorios y vectores. Actividad parasitaria de T. cruzi en sus fases aguda y crónica. Importancia del Rancho en la epidemiología de la Tripanosomiasis. La enfermedad de Chagas en América Latina. Tema 7: Trypanosoma rangeli. Distribución geográfica; ciclo de vida en sus hospedadores vertebrados e invertebrados. Reservorios y vectores. Detalles del comportamiento conocido del T. rangeli en mamíferos. Tema 8: El Genero Leishmania. Ciclo de vida en el vertebrado y en el vector. Viscerotropismo. Leishmaniasis como una zooantroponosis. Dificultades para una clasificación apropiada de las especies que parasitan el tegumento y las vísceras de mamíferos. Leishmaniasis en Venezuela. Tema 9: Caracteres generales de los Apicomplexa. Patrones de desarrollo de Coccidia en general y de los Coccidios formadores de quistes tisulares. Toxoplasma gondii: particularidades de su ciclo de vida. Actividad parasitaria. Reservorios. Toxoplasmosis como una zooantroponosis. Tema 10: El Genero Plasmodium. Ciclos vitales de los parásitos maláricos en hospedadores vertebrados y en vectores. Reservorios y vectores de Malaria humana. Distribución geográfica, actividad parasitaria de las especies importantes para Venezuela. Focos maláricos. Tema 11: Los Ciliophora. Parasitismo por Balantidium coli como una zooantroponosis. Tema 12: Metazoa parásitos. Características generales y clasificación de los helmintos. Platyhelminthes. Detalles sobre su morfología y clasificación. Los Cestoidea. Ciclos de vida monoxenos y heteroxenos. Parasitismo por Hymenolepis nana e H. diminuta. Tema 13: El Genero Taenia. Distribución geográfica; ciclos de vida de las especies importantes para Venezuela. Cisticercosis y Teniasis. Otras larvas metacíclicas productoras de zooantroponosis: hidátide, cenuro, espargano. Tema 14: Caracteres particulares de los Trematoda. Estadios de desarrollo en los ciclos vitales de Monogenea y Digenea. El Genero Schistosoma: distribución geográfica; especies importantes. Schistosoma mansoni: ciclo vital y parasitismo en mamíferos y hospedadores invertebrados. Esquistosomiasis (Bilharzia) en Venezuela.

3 Tema 15: Nematoda. Modalidades en los ciclos de desarrollo. Ascaris lumbricoides: ejemplo de huevos como agentes de infección. El parasitismo por Enterobius vermicularis. Tema 16: Caracteres generales de los Ancilostomideos; especies importantes. Necator americanus como ejemplo de ciclo vital que muestra penetración activa de larvas. Larva migrans como zooantroponosis. La Ancilostomosis en Venezuela. Tema 17: Nemátodos de sangre y tejidos que necesitan un vector. Filarias. Estudio de los ciclos vitales y parasitismo por Wuchereria bancrofti y Onchocerca volvulus en el mamífero y en el vector. Distribución geográfica; focos importantes para Venezuela. CONTENIDO PROGRAMÁTICO PRÁCTICO Práctica 1: Examen microscópico de la materia fecal. Reconocimiento de los elementos no parasitarios normales y anormales de origen vegetal y animal. Práctica 2: Examen microscópico de la materia fecal. Reconocimiento de protozoarios intestinales parásitos del Orden Amoebida. Estudio morfológico comparativo entre formas vegetativas y quísticas de Entamoeba histolytica y Entamoeba coli. Estudio de Entamoeba gingivalis. Práctica 3: Preparación de extendido o frotis sanguíneos. Coloración permanente empleando La tinción de May Grünwald-Giemsa Práctica 4: Flagelados cavitarios. Estudio de la morfología de trofozoitos y quistes de Giardia intestinalis. Analis coproparasitologico para la búsqueda de quistes de G. intestinalis, coloración con lugol para su observación. Estudio de Trichomonas sp. Observación del movimiento de los protozoarios parásitos obtenidos de animales experimentales infectados. Obtención de Trichomonas muris de ratones infectados por perfusión. Fijación y coloración de los trofozoitos por el método de Giemsa. Práctica 5: Observación y comparación de las principales formas o estadios de Trypanosoma cruzi: tripomastigotes sanguíneos, amastigotes intracelulares en cortes de tejido cardíaco, tripomastigotes metacíclicos en heces de chipos, epimastigotes. Estudio de las principales características morfológicas de insectos hematófagos vectores de T. cruzi y T. rangeli empleando insectos vivos (no infectados) y preservados de Rhodnius prolixus y Panstrongylus geniculatus, en fases de ninfas y adulto; adultos preservados de Triatoma phyllosoma. Demostración del xenodiagnóstico con el modelo R. prolixusratón. Observación al microscopio de tripomastigotes vivos de Trypanosoma evansi y Trypanosoma rangeli, fijación y coloración por el método de Giemsa, comparación con T. cruzi. Práctica 6: Estudio del género Leishmania. Observación de láminas con promastigotes y amastigotes de cultivo previamente teñidos con la coloración Giemsa. Observación microscópica de muestras de cultivo con promastigotes vivos de Leismania sp., preparación de extendidos en láminas, fijación y coloración por el método de Giemsa. Reconocimiento de lesiones cutáneas en animales de laboratorio infectados previamente por vía intraplantar. Preparación de frotis por aposición empleando los nódulos aislados

4 de estos animales. Obtención y observación microscópica de amastigotes intracelulares de las lesiones.tinción con Giemsa de las preparaciones. Práctica 7: Coccidios. Examen de heces de gatos preservadas en dicromatro de potasio para la búsqueda de quistes de Cyclospora cayetanensis. Observación de ooquistes de Cryptosporidium sp. en láminas preparadas con extendidos de heces de seres humanos y gatos infectados, teñidas previamente con la coloración Ziehl Nielsen y Safranina O, respectivamente. Examen de heces frescas de gatos y tinción con Safranina O. Observación microscópica de las preparaciones realizadas por los estudiantes. Toxoplasma gondii, Sarcocystis sp. Práctica 8: Plasmodium Práctica 9: Balantidium Práctica 10: Cestoda Práctica 11: Schistosoma mansoni, Fasciola hepatica Práctica 12: Nematodos Práctica 13: Filarias ESTRATEGIAS DE ENSEÑANZA 1. A través de la observación, los estudiantes diferenciaran organismos parásitos macroscópicos y microscópicos, para lo cual se empleará tanto material vivo como preservado (láminas, muestras preservadas en alcohol). 2. Se realizarán exámenes coprológicos para el reconocimiento y visualización de: restos vegetales y animales, huevos y larvas de helmintos, trofozoitos y quistes de protozoarios, en heces obtenidas de hospedadores vertebrados (animales silvestres, domésticos y seres humanos). 3. Mediante diversos métodos de coloración, se realizarán tinciones de formas parasitarias provenientes de muestras de sangre, heces y de cultivos. Coloración de Giemsa, Safranina-O, lugol. 4. Se enseñará a los estudiantes a tomar muestras de sangre de animales de laboratorio y a realizar frotis sanguíneos. Las láminas de los frotis serán fijadas y coloreadas con la tinción de Giemsa para la observación de las formas parasitarias presentes. 5. Realización de frotis de tejidos por aposición. 6. Fijación y coloración de protozoarios por distintos métodos. 7. Reconocimiento y manejo de vectores de enfermedades parasitarias (insectos, caracoles). 8. Ejecución de xenodiagnóstico empleando el modelo ratón-rhodnius prolixus. 9. Disección de insectos hematófagos (demostrativo). 10. Perfusión de diversos órganos en animales experimentales infectados, para la

5 obtención de protozoarios y helmintos. ESTRATEGIAS DE EVALUACION Tres exámenes parciales con un valor de 30% cada uno. Evaluación continúa durante las prácticas de laboratorio: 10% BIBLIOGRAFIA RECOMENDADA - Parasitología Médica. Becerril, Marco A. (2011). Tercera edición. Ed. McGraw-Hill. México Parasitosis Humanas. Botero, David y Restrepo Marcos. (2003). 4ta edición. Ed. Corporación para Investigaciones Biológicas. Medellín, Colombia. - Atlas Básico de Parasitología Médica. Traviezo, Luis E. (2010). Ed. Universidad Centroccidental Lisandro Alvarado. Barquisimeto, Venezuela. - Parasitología general. Cheng, Thomas C. Editorial AC. (1978). Madrid, España. - Atlas of Helminthology and Protozoology H. C. Jeffrey. (1975). London-England. Prof. Cristina Sanoja W. 2014