Qué es Salmonella. Zoonosis. Historia y situación actual

Qué es Salmonella. Zoonosis. Historia y situación actual Ramon Porta URV Tarragona 22 Junio 2011

1.- Qué es Salmonella

QUÉ ES SALMONELLA Enterobacteriacea 2 especies genómicas Más de 2.000 serotipos Biotipos Fagotipos Tipos genéticos Gran diversidad genética y molecular

Situación actual de la Salmonellosis Las Salmonellas son enterobacterias y, por tanto, imposibles de erradicar en la su totalidad. S.pullorum-gallinarum. Erradicada? en Europa Occidental y América del Norte S.enteritidis. Presente en todo el mundo. S.typhimurium. Escasa incidencia en España en la actualidad. Otros serotipos. Hadar, Virchow, Infantis CÓMO Y POR QUÉ SE HA LLEGADO A LA SITUACIÓN ACTUAL?

SALMONELLA ENTERITIDIS. Su historia 1880 Años 60 Años 70 1984 1988 1992 2003 Primer aislamiento. Alemania. Vacas. Estudios ingleses sobre transmisión vertical. U.S.A. Inyectar antibióticos contra infecciones paratifoideas. Primeros brotes clínicos en aves a España y otros países europeos. Difusión prácticamente mundial. Primer Programa de erradicación a nivel comunitario. Nuevas Directiva y Reglamento de control de zoonosis.

Características básicas de la infección por Salmonella enteritidis. Vía de transmisión: Vertical Horizontal = Vía digestiva Vía aerógena Localización en el ave: Sistémica... Sangre, hígado, corazón Acantonada... Intestino, ovario, oviducto Localización en el huevo: Cáscara Clara Yema

MECANISMO DE PATOGENICIDAD Infección por fases gastroenteritis bacteriemia primaria bacteriemia secundaria Desconocimiento actual de este mecanismo Capacidad de crecimiento en diversas condiciones ambientales

PROBLEMÁTICA DE LA DETECCIÓN DE SALMONELLA Tres son las técnicas básicas para la detección de Salmonella 1.- Aglutinación Rápida en Placa - Efectiva al 100% para S. Pullorum - Poco efectiva para S. Enteritidis y otras Salmonella 2.- Técnica oficial en Europa: Aislamiento e identificación en cultivo - No es efectiva al 100% - La toma de muestras es fundamental 3.- PCR, Minividas, otros - Algunos ya comerciales - Otros en fase de estudio y perfeccionamiento

MEDIDAS DE CONTROL DE SALMONELLA ENTERITIDIS Dirigidas a controlar Transmisión vertical Transmisión horizontal Limpieza, desinfección y desinsectación de los gallineros Desratitzación Vacunación Tratamiento térmico del pienso Tratamiento biocida del pienso Irradiación de los canales Descontaminación de los canales Otros Está prohibida la medicación de las aves

2- Origen socioeconómico de los programas de control

Por qué estos programas de control Marco del control de Zoonosis Normativa y Planes nacionales de control Directiva y reglamento de control de Zoonosis Control por parte de la Comisión Europea y presión de Salud Pública Inspecciones de la FVO Toxiinfecciones alimentarias Condicionantes comerciales Exigencias de las grandes superficies Exigencias de las exportaciones Protección de las marcas Condicionantes del control de Salmonella Ubicuidad del microorganismo Reservorios animales y resistencia ambiental No hay seguridad de negativización, sólo contención

Anim. Salvajes; 1% Ovino; 2% Conejos; 2% Otros; 10% Avicultura; 41% Toxiinfecciones UE OMS Bovino; 20% Porcino; 24% S. hadar; 0,50% Otros serotipos; 20,10% Distribución de serotipos que mas afectan a humana S. infantis; 0,50% Fuentes y tendencias UE S. virchow; 0,60% S. typhimurium; 16,50% S. enteritidis; 61,80%

Prevalencia Zoonosis UE Datos de casos humanos 250.000 200.000 150.000 100.000 50.000 0 2003 2004 2005 2006 Salmonel losis Campylobacterias

Prevalencia Zoonosis España Datos de casos humanos 9.000 8.000 7.000 6.000 5.000 4.000 3.000 2.000 1.000 0 2003 2004 2005 2006 Salmonelosis Campylobacterias

3.- Normativa legal

Marco Normativo Real Decreto 328/03 de 14 Marzo. 2003. Plan Sanitario Avícola Directiva (CE) 2003/99 de Dic. 2003. Vigilancia de Zoonosis Reglamento (CE) 2160/2003 de Dic.2003. Control de Salmonella Reglamento (CE) 1003/2005 de Junio de 2005. Objetivo comunitario y plazos para reducción de prevalencia en reproductoras Reglamento (CE) 1168/2006 de Julio de 2006. Objetivo comunitario y plazos para reducción de prevalencia en ponedoras Reglamento (CE) 646/2007 de Mayo de 2007. Objetivo comunitario y plazos para reducción de la prevalencia en broilers Reglamento (CE) 584/2008 de 20 de Junio de 2008. Objetivo comunitario y plazos para reducción de la prevalencia en pavos Reglamento (CE) 200/2010 que continua el 1003/2005

40 35 30 25 20 15 10 5 0 35 30 25 20 15 10 5 0 BELG ALEM DINAM ESP GREC FRANC FINL ITAL IRL HOL PORT UK TOTAL 22,8 % S. typm. Reproductoras en producción Salm. Total 21,6 % S. infan. Pollos S. enterit. 1,4 1,2 1 0,8 0,6 0,4 0,2 0 Prevalença UE 100 % S. living. 30,8 % S. grupo B 80 70 60 50 40 30 20 10 0 Reproductoras en recría España Rep. 1 d Recria Ponedoras en producción Europa ESP BELG PORT UK FRAN HOL ITAL GREC SLOV HUNG ALEM FIN EU BELG ALEM CZ DINAM ESP FRANC FINL ITAL HOL POL PORT UK TOTAL S. ent./s. typm. Salm. Total S. ent/s. typm.

Planes de control de Salmonella S.E, S.T., S.H., S.V., S.I. S.E, S.T. Gallinas reproductoras de carne y puesta Gallinas ponedoras Selección, multiplicación y recría. Incubadoras Producción de huevos (recría y puesta) CE 1103/05 (julio de 05) Máximo 1% CE 1168/06 (agosto de 06) 1/enero/2007 (Hasta 31/dic./2009) 1/enero/2008 (Hasta 31/dic./2010) S.E, S.T. Pollos de engorde Producción de carne CE 646/07 (mayo de 07) 1/enero/2009 (Hasta 31/dic./2011) S.E, S.T. Pavos Reproductoras y Producción de carne CE 584/08 (junio de 08) 1/Enero/2010 (Hasta 31/dic./2012)

AUTOCONTROL CONTROL OFICIAL GALLINAS REPRODUCTORAS Categoría de aves Tipo de muestra Categoría de aves Tipo de muestra I. Pollitas de1 día II. Pollitas de 4 semanas de vida y pollitas 2 semanas antes entrar en puesta III. manadas reproductoras adultas (cada 2 semanas) 10 revestimientos de cajas de transporte o cadáveres de pollitas 2 muestras de heces de diferentes localizaciones, o 5 pares de patucos (2 muestras) Manadas reproductoras adultas (3 controles oficiales) I. Dentro de les 4 semanas posteriores a la entrada en puesta. II. Muestreo intermedio entre I-III III. En las 8 últimas semanas del ciclo productivo 2 muestras de heces frescas, o 5 pares de patucos (mínimo 2 muestras) Otros muestreos: pienso, detección de antimicrobianos

AUTOCONTROL CONTROL 0FICIAL Categoría de aves Tipo de muestra Categoría de aves Tipo de muestra GALLINAS PONEDORAS I. Pollitas de 1 día II. Pollitas 2 semanas antes de entrar en puesta III. manadas ponedoras adultas (cada 15 semanas) 10 revestimientos de cajas de transporte o hígado, vitelo y ciego de 60 pollitas o meconio de 250 pollitas 2 muestras de heces frescas o 2 pares patucos Manadas ponedoras adultas a partir de las 24 +/- 2 semanas: Al menos 1 manada/explotac ión preferiblemente final de período productivo Muestras adicionales 2 muestras de heces frescas o 2 pares de patucos 1 muestra de polvo (100 g.) Muestreos de confirmación Otros muestreos: pienso, detección de antimicrobianos

AUTOCONTROL CONTROL 0FICIAL Categoría de aves Tipo de muestra Categoría de aves Tipo de muestra POLLOS BROILERS DE ENGORDE Todas las manadas de pollos dentro las 3 últimas semanas antes del sacrificio 2 pares de patucos Muestreo ambiental para verificar limpieza en vacío sanitario Manadas de pollos dentro las 3 últimas semanas antes del sacrificio (muestreo estadístico aleatorio. ) 10 % 2 pares de patucos (1 muestra)

PAVOS Reproductores Como en la especie Gallus gallus, pero control cada 3 semanas. Engorde Como en pollos.

Objectivos de las normativas y planes de control de Salmonella Control de la transmisión vertical mediante certificados sanitarios de suministro. Control de la transmisión horizontal mediante condiciones mínimas y GBPH Vacunación de ponedoras

4.- Realidad práctica

Vectores animales Pienso y agua Limpieza y desinfección Movimento de animales Vacunación Personas y vehículos

BIOSEGURIDAD Proceso continuo para preservar las granjas de su entorno y viceversa Es una filosofía de trabajo Bioseguridad pasiva - Zona geográfica y zona ganadera Bioseguridad activa - Aislamiento - Vacío sanitario - Vacunación

Medidas de bioseguridad MEDIDAS GENERALES DE BIOSEGUREDAD Vallado perimetral y control de accesos, mantenimiento de instalaciones, higienización del aigua y pienso, eliminación de cadáveres SUMINISTRO DE POLLITOS Documentos sanitarios de movimiento, sistema todo dentro - todo fuera PROTOCOLOS - De limpieza, desinfección y desinsectación - De control de roedores y otros animales CODIGOS DE BUENAS PRACTICAS - De manejo - De higiene

LIMPIEZA Y DESINFECCIÓN Preparación final para la siguiente manada

Antes de despoblar Despues de desinfectar Jaula 67,7 % 36,6 % Suelo Suelo 45,6 % 10,1 % Campers 38,6 % 3,3 % Jaula 53,4 % 18,1 % Jaulas/esquinas ( Slats ) Suelo Camperas ( tierra ) 42,9 % 46,3 % 10,5 % 30,0 % Equipo (Comederos, bebederos, cintas ( huevos Jaula Suelo Camperas 37,9 % 57,0 % 28,2 % 26,0 % 12,3 % 0 Davies y Breslin (03) Granges de ponedores positives a S. e.

Modelos de desinfección Modelo 1 Formaldehido (12-22 ppm) a 60º C 100% HR durante 24 h. Modelo 2 Formaldehido (30 ppm) a 60º C 100% HR durante 24 h. Modelo 3 Fumigación térmica (23 % Glutaraldehido + 5 % Amonio Q)(2,7 L./5,5 L.) durante 25 min. Modelo 4 Fumigación térmica (23 % Glutaraldehido + 5 % Amonio Q) (15 L./500 L.) durante 3h. Oren,K., 04 Disinfection of S. poultry house Thesis

Eficacia del formol 60º C con 100 % HR durante 24 h. con 30 ppm. de formaldehido Si se utilizan 70º C puede dañarse el material Punto débil el suelo, ya que a 60º C de temperatura ambiente, la el suelo es inferior Zona Suelo metálico de las jaulas Cintas de heces Bebederos de tetina Comederos ( esquinas ) Cinta recogida ( final ) huevos Suelo corredores Paredes Antes desinfección 4,1 % 10,4 % 23,5 % (% (18 6% (% (30 12% 22,1-24,2 % 3,4 % Despues desinfección 2 % Base ventanas 12,2 % Oren,K., 04 Disinfection of S. poultry house Thesis Salas auxiliares ( almacem ) 31,3 %

Desinfección en granja Experiencia de eficacia 1. Fumigación con formaldehido después de desinfección en spray 2. Pulverizado o termofumigación con glutaraldehido (10-25 %) + Amonio Q (5-18 %) 0,5 1 % vacío sanitario 0,1 % en presencia de animales 3.- Pulverizado o termofumigación con peróxido de hidrógeno (25 %) + Paracético (5 %) 0,5 1 % vacío sanitario 0,2 % en presencia de animales

Prevalencia reservorios animales 50 45 40 35 30 25 20 15 10 5 0 29 30 S. enteritidis Salmonella + Perros Gatos Roedores Aves salvajes Moscas

CONTROL DEL PIENSO Elección de materias primas de bajo riesgo Subproductos animales (hasta un 75 % de positividad) Aceites vegetales (hasta un 5 % de positividad) Cereales (muy baja positividad) Descontaminación de producto acabado Uso de Ac. Propiónico (0.2%) junto con un tratamiento térmico (71.1ºc, 80 sec.) reduce en 2 log 10 el recuento de Salmonela si lo comparamos con el tratamiento térmico solamente (Matlho, 1997) Prevención de la recontaminación Roedores, insectos, aves silvestres, corrientes de aire Pienso residual en silos Monitoreo del proceso

Tratamiento de y en el pienso Descontaminación del pienso Granulación Térmico Biocidas ( orgánicos,aldehidos (Ácidos Acético Propiónico (1 %) Fórmico (0,5 %) Fórmico + Propiónico (0,5 0,68 %) Combinaciones con formaldehido

Efecto de los Ac. orgànicos sobre microorganismos Propiónico + Fórmico reducen de 10 9 ufc/gr. de ciego a 10 2 ufc/gr. de ( 95 Berchieri, ciego en 5 días de tratamiento (Iba y Propiónico (0,68 %) + Fórmico (0,5 %) con una infección baja (S. kedougou) de < 50 ufc/gr. pienso dio como resultado 1 grup positiu de 30 grups d'animals tractats i 22 grups positius de 27 grups d'animals no ( 88 Linton, tractats. (Hinton y Pollitos tratados desde el día 1 con 1 % de mezcla de fórmico + propiónico y infectados el día 2 amb S. typhimurium con dosis de 10 6 ( 92 Shorts, ufc/ave (McHan y Reducción de >2,5 log. ufc a los 14 días Reducción de >3,5 log. ufc a los 21 días Ineficacia de 0,22% de àc. propiónico en infección de 10 4 ufc/animal de S. typhymurium a los 4 días, la muestra se tomó 6 d. post-inoculación

Plan nacional de control de Salmonela en materias primas y pienso. MAPA 2007 Salmonella MUESTRAS Salmonella spp Serotipos zoonotica Pienso Compuesto (n= 924) Materia Primera (n=924) Ambiente (n=308) 23 (3,1 %) 6 (0,6 %) 31 (3,5 %) 2 (0,2 %) 28 (11,0 %) 6 (1,9 %) S. Typhimurium (4) S. Agona (2) S. Hadar (2) S. Mbandaka (2) S. Livingstone (4) S. Mbandaka (4) S. Agona (2) S. Senftenberg (2) S. Typhimurium (5) S. Anatum (3) S. Montevideo (3) S. Mbandaka (2) S. Typhimurium con presencia de roedores

Vacuna ideal 1.Protección contra infecciones intestinales y sistémicas 2.Atenuación tanto para animales como para personas 3.Reducción eficaz de la colonización intestinal, contaminación medioambiental y infección de huevos 4.Compatibilidad con otros controles 5.Relación coste-eficacia La vacunación nunca sustituye la bioseguridad Barrow (99)

Vacunación versus desinfección Distribución de S. enteritidis en ponedoras en el suelo Manadas Antes de vacunación Despues de limpieza y antes de vacunación Despues de vacunación 6 3 Yacija Paredes Heces ratones Yacija Paredes Heces ratones 38,1% 83,3% 100,0% 27,1% 7,1% 6,3% 75,0% Yacija Antes desinfección Paredes Heces ratones Despues de limpieza y antes de desinfección Yacija Despues desinfección Paredes Heces ratones 58,0% 71,4% 100,0% 3,9% 0 0 - Vaccines never replace biosecurity Davies y Breslin (03) Granjas de ponedoras positivas a S. e.

5.- Resultados del programa

Autocontroles CESAC previos a la normativa de zoonosis del año 2003

Prevalença de Salmonella abans de la Directiva de Zoonosis del 2003 La situación europea y de cada país en particular se puede encontrar en the EU summary report of trends and sources of zoonoses and zoonotic agents and food-borne outbreaks 2006

Resultados a partir de la normativa de zoonosis del año 2003

Prevalencia de Salmonella despues de la Directiva de Zoonosis del 2003 La situación europea y de cada país en particular se puede encontrar en the EU summary report of trends and sources of zoonoses and zoonotic agents and food-borne outbreaks 2009

Conclusiones Erradicación inviable Solo control de la infección, aplicando conceptos de erradicación Actuación piramidal Control de la infección por transmisión vertical imposible? Control de la infección por transmisió horitzontal es possible Objectivo: Reducción de la prevalencia en aves Reducción de la enfermedad en personas

Gracias CENTRO DE SANIDAD AVÍCOLA DE CATALUÑA Y ARAGÓN ( Tarragona ) Ctra. Castellvell s/n. 43206-REUS cesac @cesac.org