MICROPROPAGACIÓN A PARTIR DE EMBRIONES CIGÓTICOS DE LA PAPAYA (Carica papaya L.) var. 'MARADOL ROJA'

Documentos relacionados
UNIVERSIDAD NACIONAL DE LOJA

Aclimatización de plantas de Carica papaya var. Maradol roja obtenidas por embriogénesis somática

Empleo de Sistemas de Inmersión Temporal como alternativa para la multiplicación in vitro del cultivar de plátano vianda INIVITPV06-30 (Musa AAB)

Capítulo 6 Micropropagación y otros métodos de propagación vegetativa

Reproducción clonal in vitro de plantas de Jatropha curcas para el establecimiento del cultivo en el CNEABR. Ing. Carmen Gutierrez Córdoba

Embriogénesis somática en Carica papaya L. var. Maradol rojo

Propagación in vitro de Carica papaya var. PTM-331 a partir de meristemos apicales

ADAPTACIÓN, MICROPROPAGACIÓN Y CONSERVACIÓN DE ORQUÍDEAS (Cattleya sp) NATIVAS DE CLIMA TROPICAL HÚMEDO LLUVIOSO. LAMBAYEQUE PERÚ

Regeneración de plantas de un híbrido de papaya (IBP 42-99) a partir de callos obtenidos de ápices de plantas in vitro

UNIVERSIDAD JUÁREZ AUTÓNOMA DE TABASCO

2. Materiales y Métodos. 3. Resultados y Discusión 3.1. Primera propagación

Curso: Crecimiento y cultivo vegetal Integrantes:Garcia Luciana Perez Diaz Juan Pablo

Revista Electrónica Granma Ciencia. Vol.11, No.2, Mayo - Agosto 2007 ISSN X

6. Efecto de estrés salino (NaCl) e hídrico (manitol) en tres variedades de papa (Solanum tuberosum) in vitro

AVANCES EN LA PROPAGACIÓN POR ENRAIZAMIENTO DE ESTACAS SEMI-LEÑOSAS DE GUAYABO DEL PAÍS (ACCA SELLOWIANA (BERG) BURRET)

UNIVERSIDAD NACIONAL PEDRO RUIZ GALLO FACULTAD DE AGRONOMIA SYLLABUS DE TUBEROSAS Y RAICES

Propagación in vitro de Pilosocereus sp.

JORNADAS TÉCNICAS DE PAPAYA

Carlos Alvarado Ulloa Cultivo de Tejidos II (Teoría)

Num Art.6 Producción de plantas de mora de castilla

EFECTOS DE LA DENSIDAD DE SIEMBRA SOBRE EL CULTIVO DEL GARBANZO (CICER ARIETINUM. L.) EN UN AGROECOSISTEMA DE LA PROVINCIA GRANMA.

Estrategias para incrementar la productividad de plantaciones forestales. Marzo

UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA LA MOLINA FACULTAD DE AGRONOMÍA Programa de Hortalizas

EMPLEO DE LA BIOTECNOLOGIA PARA LA PRODUCCIÓN DE SEMILLA CATEGORIZADA EN MALANGA

Propagación in vitro de explantes de Teca obtenidos a partir de semillas

Reguladores Hormonales. Angela Blanco Balbontín

Autores: ing. Marisleydis Cutiño Escalona. MsC Ernesto Nápoles Gallardo. Universidad Vladimir I. Lenin de Las Tunas. Facultad de Ciencias Agrícolas.

Micropropagación de Gerbera jamessonii H. Bolus

CULTIVO IN VITRO DE PLANTAS

CALIDAD AGROALIMENTARIA DE LOS HIGOS AMPARADOS BAJO LA FUTURA MARCA DE GARANTÍA HIGO DE GREDOS

MINISTERIO DE AGRICULTURA Y GANADERÍA ESCUELA NACIONAL DE AGRICULTURA ROBERTO QUIÑÓNEZ

Técnicas de cultivo en la producción de antioxidantes. María Antonieta Reyes C INIA, CRI La Platina

EFECTO DEL CRECIMIENTO DETERMINADO E INDETERMINADO EN LA CALIDAD DE LA SEMILLA EN AMARANTO (Amaranthus hypochondriacus L.)

INIVIT, 44 años de resultados científicos para impulsar el desarrollo de una Agricultura Sostenible

Evaluación del enraizamiento en estaquillado semileñoso de castaño. Adrián López Villamor Josefa Fernández López

Efecto de los Reguladores de Crecimiento para la Propagación in vitro de la Malanga (Xanthosoma sagittifolium (L) Schott)

Gel de Aloe vera (L.) N.L. Burm. y harina de sagú como soporte sólido de medio de cultivo para plantas medicinales

Efecto de Pectimorf en el enraizamiento in vitro de plantas de FHIA-18 (Musa AAAB)

Int. Cl. 7 : A01H 4/00

Determinación de las concentraciones adecuadas de 2,4-D y 6-BAP para la inducción de callos morfogénicos de boniato

Evaluación de clones de yuca (Manihot esculenta Crantz) en Chiriquí 1 Edwin Lorenzo H. 2 INTRODUCCIÓN

Propagación Clonal in vitro de Piña (Ananas comosus L. Merr) Variedades Champaka y Hawaiana

ESTABLECIMIENTO DE AGAVE (Agave tequilana Weber var. azul) EN UN SISTEMA DE INMERSIÓN TEMPORAL (SIT)

Técnica Eficiente para una Multiplicación con Calidad Productiva y Sanitaria

Nombre : Julio Roger Chico Ruíz. Fecha de nacimiento : 21 de mayo de Domicilio : Elvira García y García No 583-Las Quintanas.

Multiplicación clonal y enraizamiento in vitro de Ananas comosus L. "Queen Australia"

G estión y. organización de viveros

Cultivo in vitro de tejidos vegetales

JORNADAS TÉCNICAS DE PAPAYA

ESTABLECIMIENTO Y PROPAGACIÓN IN VITRO DE ZANAHORIA (DAUCUS CAROTA L.).

Proceso de Obtención de Plantas Madres Iniciales de Fresa

NÚCLEO. AGROPECUARIO SUBSECTOR AGRICULTURA

Cambios anatómicos durante. formación de raíces

GERMINACIÓN Y CRECIMIENTO IN VITRO DE EMBRIONES INMADUROS DE MAÍZ (ZEA MAYS L.).

Int. Cl. 7 : A01H 4/00

Artículo Científico Biotecnología Vegetal Vol. 6, No. 1: 23-28, enero - marzo, 2006

UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA LA MOLINA

REGENERACIÓN DIRECTA A PARTIR DE COTILEDONES MADUROS DE GENOTIPOS CUBANOS DE GIRASOL (HELIANTHUS ANNUUS).

Herbertia lahue lahue (Iridaceae)

Cafe Arcila-Pulgarín et al., 2002

Cultivo in vitro. Definición

CRECIMIENTO INICIAL DEL ALMENDRO (Dipteryx panamensis) EN ERAS DE VIVERO EN EL TROPICO HUMEDO

EFECTO FITOHORMONAS EN GRUN. Comercializadora Vigia Ing.Brenda Sánchez

LA BIOTECNOLOGÍA EN LA MEJORA DEL AZAFRÁN (CROCUS SATIVUS)

Influencia del tipo de explanto para la inducción in vitro de callo de melocotón (Prunus persica L.).

Medio de cultivo y reguladores de crecimiento en la multiplicación in vitro Psidium guajava L.

KELPAK ENSAYO KELPAK

Una metodología para la propagación in vitro de Aloe vera L. Resumen

ETIOLACIÓN: ESTRATEGIA PARA INCREMENTAR EL ENRAIZAMIENTO DE MINI-ESQUEJES DE Pinus leiophylla Schiede ex Schltdl. et Cham.

ASPECTOS DE LA GERMINACIÓN

CUARTA UNIDAD MICROPROPAGACIÓN DE VEGETALES

COMPARATIVO DE RENDIMIENTO DE OCHO CLONES DE YUCA (Manihot esculenta, Crantz)

PROPAGACIÓN in vitro DE Hippeastrum sp. RESUMEN

TÉCNICO SUPERIOR UNIVERSITARIO EN QUÍMICA ÁREA BIOTECNOLOGÍA EN COMPETENCIAS PROFESIONALES ASIGNATURA DE FISIOLOGÍA CELULAR Y DE TEJIDOS

Control de malezas en invernadero en vitroplantas de caña de azúcar, Costa Rica. Introducción

Desarrollo de accesiones de algodón (Gossypium hirsutum)

Estudio del enraizamiento de estaquillas de Lavandula latifolia Medic. y Salvia lavandulifolia Vahl en diferentes concentraciones hormonales

DESARROLLO DEL VOLUMEN DE LA COPA Y PRODUCTIVIDAD DE PLANTACIONES NUEVAS: DATOS DE LA PRIMERA COSECHA

EFECTOS ALELOPÁTICOS DE ALISO (Alnus nepalensis D. DON) EN CUATRO CULTIVOS AGRÍCOLAS DE IMPORTANCIA SOCIOECONÓMICA EN LA ZONA DE INTAG NOROCCIDENTE

Aportes de la propagación Invitro a la agricultura campesina

BRASINOESTEROIDES Y SUS ANÁLOGOS. Aplicaciones

Resumen: Palabras Clave: Frijol, humus de lombriz, nutrición del cultivo.

Transgénicos y Cultivos de Tejidos. Autor: Lic. en Biol. Exp. Susana Gabriela Morales Vargas.

CENTRO UNIVERSITARIO DE LAS TUNAS. Vladimir I. Lenin FACULTAD DE CIENCIAS AGRÍCOLAS DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA

MICROPROPAGACIÓN COMERCIAL DE PLANTAS MEJORADAS DE CAFÉ POR EMBRIOGÉNESIS SOMÁTICA

05 tipos de acodo aéreo: Acodo por anillo completo, acodo por anillo alterno, acodo por puente, acodo por falda y acodo por estrangulamiento.

Instituto de Investigaciones Fundamentales en Agricultura Tropical Alejandro de Humboldt INIFAT

Efecto de los factores determinantes para el establecimiento de microesquejes de papaya (Carica papaya L.)

EFECTO DEL EXTRACTO DE VERMICOMPOST (LIPLANT) EN LA GERMINACIÓN DE SEMILLAS DE ESPECIES HORTÍCOLAS BAJO CONDICIONES SEMICONTROLADAS.

COMPETENCIA INTRAESPECÍFICA

UNIVERSIDAD NACIONAL DE COLOMBIA FACULTAD DE CIENCIAS AREA CURRICULAR DE BIOLOGÍA BIOLOGÍA DE PLANTAS ( )

CRECIMIENTO Y DESARROLLO DE Leucaena leucocephala EN UN SISTEMA SILVOPASTORIL BAJO DOS MÉTODOS DE ESCARIFICACIÓN

Int. Cl. 7 : A01H 4/00

Universidad Nacional Agraria La Molina

LARIO, F.J.1, OMIL, B.3 y MERINO, A.3 OCAÑA, L., S.2

TEMA 5 MICROPROPAGACIÓN

UNIVERSIDAD TÉCNICA DE COTOPAXI

Cultivo in vitro de Cactáceas con fines de conservación ex situ

Efecto del ácido indolbutírico y el sustrato en el enraizamiento ex vitro de la zábila (Aloe vera (L.) Burm. f).

RESUMEN 1. INTRODUCCIÓN 2. MATERIALES Y MÉTODOS

Transcripción:

MICROPROPAGACIÓN A PARTIR DE EMBRIONES CIGÓTICOS DE LA PAPAYA (Carica papaya L.) var. 'MARADOL ROJA' Víctor R. Medero Vega*, Yanelis Bravo Corrales, Milagros Basail Pérez, Aymé Rayas Cabrera, Jorge López Torres, Arletys Santos Pino, Sergio Rodríguez Morales, Marlenys Torres Delgado, Carmen Pons Pérez, Wilfredo Caballero Álvarez y Jesús García Ruiz. Instituto de Investigaciones de Viandas Tropicales (INIVIT). *Autor para la correspondencia: vmedero@inivit.cu INTRODUCCIÓN En Cuba, los frutales constituyen cultivos de gran importancia y dentro de estos la papaya (Carica papaya L.) es una de las especies de gran interés para la alimentación humana, motivado por su alto contenido de proteínas y vitaminas en el fruto (Lima, 1991). Según Roque y Ardisana (2006), en este cultivo existe una necesidad de un suministro constante de semillas certificadas para mantener las plantaciones activas en condiciones de campo, pero la poca homogeneidad de las plantas en cuanto a la producción de los frutos elongata para la extracción de la semilla constituye el principal problema. Por lo que se hace necesario buscar nuevas alternativas para la multiplicación de este cultivo que posibilite la obtención de un método de propagación masiva in vitro para garantizar la multiplicación de plantas plus hermafrodita. Al respecto, el uso del cultivo de tejidos posibilita no sólo la propagación masiva de plantas a partir de meristemos, sino que permite el rescate de los embriones cigóticos, lo cual constituye una alternativa para la multiplicación de plantas hermafroditas elongatas y su propagación masiva para la extracción de semillas y la comercialización. Teniendo en cuenta lo anterior, se realizó el presente trabajo con el objetivo de desarrollar un protocolo para la propagación in vitro a partir de embriones cigóticos de la variedad de papaya Maradol Roja de frutos de tipo elongata de plantas plus. MATERIALES Y MÉTODOS La presente investigación se realizó con la variedad de papaya Maradol Roja. Como material vegetal se emplearon embriones cigóticos inmaduros procedentes de frutos elongata de plantas plus sembradas en las áreas experimentales del INIVIT. Efecto del hipoclorito de sodio en la desinfección de los frutos Se estudió el efecto de diferentes concentraciones de hipoclorito de sodio (0; 0,5; 1,0; 1,5; 2,0 y 2,5%) durante 10 minutos. Se utilizaron tres repeticiones por tratamiento y cada repetición contenía 20 tubos de cultivo. A los 20 días de la implantación se cuantificó el porcentaje de supervivencia. Establecimiento in vitro de los embriones cigóticos Para lograr el establecimiento in vitro se estudió el efecto de las concentraciones de las sales del medio de cultivo MS (100 y 50%), así como la concentración del yoduro de potasio (KI) (200 y 100%), según resultados obtenidos por Roque (2006), lo cual generó cuatro variantes de medios de cultivo. Además, para determinar el tipo de explante, se estudió la influencia de la forma en que se siembra el embrión cigótico en el medio de cultivo, donde se utilizaron siete variantes (semilla entera sin sarcotesta, endospermo entero, endospermo cortado por detrás, endospermo cortado por delante, embrión con cotiledones, embrión sin cotiledones y semilla entera sin sarcotesta). Se utilizaron tres repeticiones por tratamiento y cada repetición contenía 30 tubos de cultivo. A los 30 días del subcultivo se evaluó el porcentaje de germinación en cada tratamiento.

Influencia de la combinación de reguladores del crecimiento sobre la multiplicación Se utilizó el medio de cultivo MS y se estudió el efecto de diferentes concentraciones de las hormonas 6-Bencilaminopurina (6-BAP) (0,22 mg.l -1 ), Ácido Naftalen Acético (ANA) (0,05 mg.l - 1 ), Ácido Giberélico (AG 3 ) (0,5 y 1,0 mg.l -1 ) y sus combinaciones. Se utilizaron tres repeticiones por tratamiento y cada repetición contenía 24 tubos de cultivo. A los 30 días del subcultivo se cuantificaron la presencia de callos basal, diámetro del callo, longitud de la plántula, número de tallos y de explantes finales. Efecto de la combinación de reguladores del crecimiento sobre la elongación Teniendo en cuenta los resultados del experimento anterior, se estudió el efecto de otras concentraciones de 6-BAP (0,1 mg.l -1 ), ANA (0,1 mg.l -1 ) y del AG 3 (1,0 mg.l -1 ) y sus combinaciones. Se utilizaron tres repeticiones por tratamiento y cada repetición contenía 30 tubos de cultivo. A los 30 días del subcultivo se evaluaron las variables siguientes: diámetro del callo y número de explantes de más de 2 cm de longitud. Efecto de la concentración de las sales del medio de cultivo sobre el enraizamiento Con el objetivo de lograr el enraizamiento de las plantas producidas in vitro de papaya como etapa esencial antes de la aclimatización ex vitro, se estudió el efecto de la concentración de las sales MS (100, 75 y 50%) y 2,0 mg.l -1 de Ácido Indol Butírico (AIB). Se utilizaron tres repeticiones por tratamiento y cada repetición contenía 30 tubos de cultivo. A los 30 días del subcultivo se evaluó el porcentaje de formación de raíces. Respuesta de las plantas obtenidas en la fase de aclimatización En esta etapa se realizaron estudios sobre diferentes factores que influyen en la supervivencia de las plantas producidas in vitro, se experimentó el empleo de cobertores durante los primeros 15 días de aclimatización, para esto se utilizó un cobertor forrado con nylon transparente que permitió cubrir las bandejas recién plantadas. También se analizó el tamaño de las plantas producidas in vitro, donde se establecieron tres categorías: inferior a 2,5 cm, entre 2,5 y 3,9 cm e iguales o superiores a 4 cm. Se utilizaron tres repeticiones por tratamiento y cada repetición contenía 70 plantas producidas in vitro. A los 15 días de cultivo se evaluó el porcentaje de supervivencia. Respuesta en campo de las plantas obtenidas in vitro Las plantas aclimatizadas fueron identificadas con un número en las bolsas para su monitoreo en campo y conocer su correspondencia con la copia dejada en el laboratorio. Las plántulas que alcanzaron una altura entre 15 y 20 cm fueron plantadas sobre un suelo Pardo mullido carbonatado (Hernández et al., 1999). Se le aplicaron las atenciones culturales recomendadas por el Instructivo técnico de la papaya (MINAG, 2011) y a los 60 días de la plantación se evaluó el número de plantas hermafroditas, teniendo en cuenta el tipo de flor. Análisis estadístico Se utilizó el paquete SPSS, versión 15.0. Para los modelos paramétricos se realizó un análisis de varianza de clasificación simple y la comparación múltiple de medias según las dócimas de Tukey o Dunnett C. En los no paramétricos se empleó Kruskall-Wallis y Mann-Whitney para la comparación de medias de rango. RESULTADOS Y DISCUSIÓN Efecto del hipoclorito de sodio en la desinfección de los frutos Con el empleo de concentraciones de hipoclorito de sodio al 1% se alcanzaron los mayores porcentajes de supervivencia de las semillas cigóticas extraídas, sin diferencias estadísticas entre las concentraciones que variaron desde 1% hasta el 2,5%.

En este cultivo varios autores han empleado el hipoclorito de sodio para la desinfección de los brotes o yemas de plántulas en invernadero o de plantas de campo, con porcentajes diferentes en su utilización (Reuveni et al., 1990; Kataoka e Inove, 1991). Establecimiento in vitro de los embriones cigóticos Se encontraron diferencias altamente significativas entre las combinaciones estudiadas (tipo de explante-medio de cultivo) en cuanto al porcentaje de germinación donde la mejor respuesta (100% de germinación de los embriones cigóticos) se alcanzó con la variante (Embrión con cotiledones - Medio de cultivo formado por el 50% de las sales y el doble de la concentración de KI), así como la mejor respuesta cualitativa en cuanto al desarrollo de los embriones. Resulta importante definir el medio de cultivo y su suplemento para las diferentes fases del protocolo que permita la diferenciación de los meristemos (Alvarado, 1992 y Baca, 2002), quienes emplearon el medio de cultivo basal Murashige y Skoog (1962) con diferentes concentraciones de BAP, ANA, AIA, AG 3 y adenina. Influencia de la combinación de reguladores del crecimiento sobre la multiplicación Un problema para la multiplicación in vitro de este cultivo lo constituye la formación de callos basales y su diámetro. El mejor resultado se alcanzó con el medio MS suplementado con 0,22 mg.l -1 de 6-BAP y 0,5 mg.l -1, al presentar el menor diámetro basal del callo (0,42 cm 2 ). Además, al evaluar otras variables se encontró que el mayor valor (5,6 explantes por explante inicial) se alcanzó con este mismo tratamiento (tabla 1). Los resultados alcanzados desde el punto de vista cualitativo y cuantitativo coincidieron con la misma combinación de reguladores del crecimiento para la multiplicación in vitro de esta variedad. En otros trabajos realizados se plantea que con el suplemento de la riboflavina en los medios de cultivo a concentraciones entre 1,1 y 1,3 mg.l -1 se logra evitar la formación de callos en la base de las plantas in vitro (Gallardo et al., 2004). Tabla 1. Efecto de las combinaciones de reguladores del crecimiento sobre la longitud de la planta, número de tallos y número de explantes finales. Variables Tratamientos Longitud de la Explantes No. de tallos planta finales 6-BAP (0,22 mg.l -1 ), ANA (0,05 m g.l -1 ) 1,42 c 4,40 ab 4,40 b 6-BAP (0,22 mg.l -1 ) 1,68 bc 5,20 a 4,10 bc ANA (0,05 mg.l -1 ) 1,50 c 1,80 c 1,20 d 6-BAP (0,22 mg.l -1 ), AG 3 (0,5 mg.l -1 ), 1,53 c 5,00 ab 5,60 a 6-BAP (0,22 mg.l -1 ), AG 3 (1,0 mg.l -1 ) 2,17 ab 3,60 b 4,90 ab AG 3 (1,0 mg.l -1 ) 2,30 a 1,60 c 3,10 c ES ± 0,13* 0,37* 0,28* CV (%) 14,10 12,98 12,90 s con letras desiguales dentro de columna difieren para p < 0,05, según dócima de Dunnett C. Efecto de la combinación de reguladores del crecimiento sobre la elongación La papaya se multiplica bien in vitro y con coeficientes aceptables, pero con tallos pequeños y de entrenudos cortos por lo que se requiere de una etapa o fase de elongación para incrementar su longitud como antesala al enraizamiento y salida para la fase de aclimatización. El diámetro de callo fue más alto (0,84 cm) en el tratamiento (T2) y con diferencias significativas respecto a la media más baja (0 cm) para el tratamiento (T4), que no formó callos (tabla 2). Además, el número de explantes de más de 2 cm de longitud fue mayor en los tratamientos (T3) y (T4) sin diferencias estadísticas y sí respecto a los tratamientos (T1) y (T2) donde ningún explante alcanzó más de 2,0 cm de longitud.

Tabla 2. Efecto de la combinación de reguladores del crecimiento sobre el diámetro de callo y número de explantes de más de 2 cm de longitud. No. de Explantes Diámetro del callo (cm) con más de 2 cm de Tratamientos longitud transformada transformada T1: 6-BAP (0,1 mg.l -1 ), ANA (0,1 mg.l -1 ) 0,68 1,06 ab 0,00 0,71 b T2: 6-BAP (0,1 mg.l -1 ) 0,84 1,15 a 0,00 0,71 b T3: 6-BAP (0,1 mg.l -1 ), AG 3 (1,0 mg.l -1 ) 0,14 0,78 bc 0,70 1,04 a T4: AG 3 (1,0 mg.l -1 ) 0,00 0,71 c 0,50 0,95 ab ES ± 0,04* 0,07* CV (%) 15,37 16,80 s con letras desiguales dentro de columna difieren para p < 0,05, según dócima de Dunnett C. En la Fig. 1 se puede observar la elongación de las vitroplantas y el poco callo basal formado. Otros autores, han alcanzado la elongación de las plantas in vitro con el suplemento al medio de cultivo de ácido giberélico (AG 3 ) en concentraciones entre 1,0 5,0 mg.l -1 durante 15 días de cultivo (Banerjee, 2002). También, se han obtenido plantas con un 92% de brotes alongados y altura entre los 3,0 a 3,8 cm (Posada, 2005). Figura 1. Elongación de las plantas producidas in vitro de papaya a los 30 días de cultivo. Efecto de la concentración de las sales del medio de cultivo sobre el enraizamiento En la tabla 3, se pueden apreciar los bajos porcentajes de enraizamiento que se obtienen con las tres variantes de medios de cultivo estudiadas. Las variantes con el 100 y 75% de las sales MS alcanzaron la mejor respuesta en el porcentaje de formación de raíces sin diferencias estadísticas entre ellos, pero sí con el resultado obtenido con 50% de las sales MS. Tabla 3. Efecto de la concentración de las sales del medio de cultivo de enraizamiento sobre el porcentaje de formación de raíces. Tratamientos Formación de raíces (%) de rangos Sales MS (100%) 15,32 9,63 a Sales MS (75%) 13,15 7,00 ab Sales MS (50%) 11,00 2,88 b KW = 7,17*

Otros autores, han encontrado que una concentración de 2,0 mg.l -1 de AIB induce las mejores respuestas in vitro para la formación de raíces tanto en medios de cultivo en estado líquido o gelificado (Roque et al., 2001; Posada et al., 2007). Respuesta de las plantas obtenidas en la fase de aclimatización Obtener un alto porcentaje de supervivencia es importante para reducir el costo de la producción de las plantas producidas in vitro (Vento et al., 1996) y garantizar el éxito en la aplicación del protocolo. Al respecto, con el empleo del cobertor (cámara húmeda) se incrementan los porcentajes de supervivencia hasta el 42,2% con relación a un 7,1% cuando no se aplicó el cobertor y con diferencias estadísticas significativas (tabla 4). Por lo tanto, en papaya resulta fundamental mantener una alta humedad relativa durante los primeros siete a diez días después del trasplante para lograr mayor éxito en la aclimatización. Tabla 4. Influencia del cobertor en la supervivencia de las plantas producidas in vitro. Tratamientos Supervivencia (%) de rangos Con cobertor 42,20 14,00 a Sin cobertor 7,10 5,00 b U de Mann-Whitney = 0,00** Para la respuesta combinada de calibre de las plantas producidas in vitro y el empleo del cobertor (tabla 5), el resultado fue significativamente superior para todas las variantes con cobertor y se logró hasta un 58,5% de supervivencia. Tabla 5. Efecto de la combinación cobertor-calibre en la supervivencia de las plantas producidas in vitro, en la fase de aclimatización. Tratamientos Supervivencia (%) de rangos Con cobertor- Calibre (1,5-2,4 cm) 24,70 11,00 a Con cobertor- Calibre (2,5-3,9 cm) 58,50 17,00 a Con cobertor- Calibre (Más de 4,0 cm) 43,30 14,00 a Sin cobertor- Calibre (1,5-2,4 cm) 4,70 2,83 b Sin cobertor- Calibre (2,5-3,9 cm) 10,43 8,00 b Sin cobertor- Calibre (Más de 4,0 cm) 6,16 4,17 b KW = 16,23** Posada et al., (2007) obtuvieron resultados similares, cuando transfirieron a la fase de aclimatización plantas con 3,0 cm de longitud, a los 60 días habían alcanzado una altura de 10-12 cm y emitieron de 5-7 hojas, por lo que estaban listas para el transplante a condiciones de campo. La longitud de la plantas producidas in vitro es particularmente importante cuando se transfieren a la fase de aclimatización, ya que esta fase es considerada como la etapa más crítica en el proceso de propagación in vitro de especies como Carica papaya. Respuesta en campo de las plantas obtenidas in vitro El 61% de las plantas micropropagadas presentaron flores hermafroditas y en los tres lotes evaluados osciló este tipo de planta entre 56 y 68%. Esta respuesta coincide con la descrita para esta variedad (Rodríguez y Rodríguez, 2000), ya que al caracterizar la variedad 'Maradol Roja' desde el punto de vista sexual se plantea que debe presentar un 66,6% de plantas hermafroditas, 33,4% de femeninas y que en una plantación procedente de semillas básicas no deben aparecer plantas masculinas. Estos resultados son de vital importancia porque permiten definir en condiciones de campo las plantas que pueden producir los frutos aptos para la extracción de semillas y por lo tanto poder tomar la decisión de que líneas de plantas in vitro se van a multiplicar de forma masiva para producir un material de alta calidad fisiológica y fitosanitario porque estará libre de virus ya que el mismo no se trasmite por semilla.

REFERENCIAS Alvarado, M. Propagación vegetativa in vitro del papayo (Carica papaya L.). Tesis para optar por el Grado de Licenciado en Biología. Univ. Nac. Agraria La Molina. Lima, Perú. 60 p. 1992. Baca, A. Optimización de la micropropagación in vitro de Carica papaya L. Tesis para optar por el Grado de Ingeniero Agrónomo. Univ. Nac. Agraria La Molina. Lima, Perú. 107 p. 2002. Banerjee, J. Tissue culture and transformation studies in Indian cultivars of papaya (Carica papaya L.). Tesis para optar por el Grado de Doctor en Fisiología botánica. Universidad de Pune. India. 2002. Gallardo, J.; Kosky, R.; Tejeda, M.; Posada, L.; Herrera, I.; Reyes, M.; García, L. y M. Freire. Empleo de secciones de tallo de plantas in vitro de papaya (híbrido IBP 42-99) para obtener callos con estructuras embriogénicas. Biotecnología Vegetal 4(4): 213-216, 2004. Hernández, A.; Pérez, J. M. y I. D. Bosch. Nueva versión de la clasificación genética de los suelos de Cuba. Instituto de Suelos. AGROINFOR, Ciudad de la Habana. 64p. 1999. Kataoka, I. y H. Inove. Rooting of tissue cultured papaya shoots under ex vitro conditions. Japanese Journal of Tropical Agriculture. 35 (2): 127-129, 1991. Lima, H. Resultados obtenidos en las investigaciones de la Estación Nacional de frutales. Laboratorio de Cultivo in vitro y diagnóstico del Instituto de Investigaciones de cítricos y otros frutales. Laboratorio. Informe para presentar al Ministerio de la Agricultura. La Habana. pp. 15-18, 1991. MINAG. Instructivo técnico del cultivo de la papaya (Carica papaya Lin), 2011. Murashige, T. y F. Skoog. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue culture. Physiologia Plantarum. 15: 473-497, 1962. Posada, L. Aplicaciones de la Biotecnología en la propagación de la papaya (Carica papaya Lin). Biotecnología Vegetal 5 (2): 67 79, 2005. Posada, P.; Kosky, G. y M. Reyes. Embriogénesis somática en Carica papaya L. var. Maradol rojo. Biotecnología Vegetal 7(3):131-138, 2007. Reuveni, O. D.; Flinn, B.; Webb, D.; Webster, F. y B. Sutton. In vitro clonal propagation of dioecious Carica papaya L. Plan Cell Tissue and Organ Culture. 20(1): 41-46, 1990. Rodríguez, N. A. y Rodríguez A. El papayo Maradol: Un aporte cubano a la fruticultura tropical. Instituto de Investigaciones Fundamentales en Agricultura Tropical (INIFAT), Santiago de las Vegas. pp. 73-77, 2000. Roque, A. L.; Herrera, E. A.; Vento, H. D. y L. P. Godoy. Efecto de diferentes concentraciones de 6-BAP y kinetina en el establecimiento in vitro de segmentos nodales de papaya (Carica papaya Lin.), cv. Maradol Rojo. Revista Scientia et Técnica. 17: 121-124, 2001. Roque, A. Y. Obtención de posturas de papaya (Carica papaya L.) cv. Maradol Roja por cultivo in vitro de segmentos nodales de plantas jóvenes. Disponible en Internet: http://www.forumcyt.cu/userfiles/forum/textos/1050511.pdf, 2006. Roque, A. Y. y E. H. Ardisana. Propagación in vitro de papaya (Carica papaya L.) cv. Maradol Roja: una alternativa para el desarrollo local de las provincias Habaneras. Memorias del I Encuentro Internacional de Desarrollo Agrario y Rural ISBN: 959-16-0280-05, 2006. Vento, H. D.; Hernández, J. C. y B. Díaz. Cultivo de células, tejidos y órganos in vitro. Conferencia en la Universidad de Verano, Facultad de Agronomía, ISCAH. pp. 1-4, 1996.