III CURSO DE CITOMETRÍA DE FLUJO TÉCNICAS Y APLICACIONES EN CLÍNICA E INVESTIGACIÓN

Transcripción

1 III CURSO DE CITOMETRÍA DE FLUJO TÉCNICAS Y APLICACIONES EN CLÍNICA E INVESTIGACIÓN

2 OBJETIVOS Dar a conocer los fundamentos de la citometría de flujo a los usuarios. Ofrecer una amplia perspectiva sobre su aplicabilidad en la clínica y la investigación. Fomentar el uso de la citometría de flujo en la resolución de cuestiones científicas. Hacer que la citometría de flujo sea una técnica cada vez más conocida y utilizada dada su potencialidad. Este curso está dirigido a licenciados en ciencias de la salud, MIR, BIR, FIR, QIR, personal pre- y post-doctoral, y técnicos de laboratorio de grado medio y superior. ORGANIZADORES María Paz López Mato. Responsable de la Plataforma de Citometría y Microscopía Óptica Avanzada. Inbiomed. David San Segundo. FEA Inmunología. Hospital Marqués de Valdecilla. Responsable de Citometría. Idival. María José Marín Vidalled. Responsable de Biobanco y Servicios Tecnológicos. Idival.

3 PROFESORADO Sesiones teóricas María Paz López Mato. Responsable de la Plataforma de Citometría y Microscopía Óptica Avanzada. Inbiomed. David San Segundo. FEA Inmunología. Hospital Marqués de Valdecilla. Responsable de Citometría. Idival. Gemma Coma. Soporte Científico. BD Biosciences. Mercedes Rey Rey. FEA Inmunología. Hospital Donostia. José Manuel Ligos Fernández. Supervisor de citometría de flujo, área de celómica. Centro Nacional de Investigaciones Cardiovasculares. Ander Izeta Permisán. Director del Grupo de Ingeniería Tisular. IIS Biodonostia, Hospital Universitario Donostia. Irantzu Llarena Conde. Responsable de la Plataforma de Espectroscopía Óptica. CICbiomaGUNE. Sesiones prácticas Lorea Zabaleta Lopez. Inbiomed. Idoia González Zubeldia. Inbiomed. LOCALIZACIÓN E INSCRIPCIÓN Fundación Inbiomed Paseo Mikeletegi 81 Parque Científico y Tecnológico de Gipuzkoa Donostia-San Sebastián mayo y 1-2 junio de :00 a 17:00 horas Número de plazas: 20 (limitadas por orden de inscripción) Inscripciones: Precio: 200 (hasta el 10 de abril). 250 (a partir del 11 de abril). IBAN: ES Indicar nombre y apellidos seguido de curso citometría. La inscripción no será válida hasta que se realice el ingreso. Más información: inbiomed@inbiomed.org

4 PROGRAMA DÍA 30, lunes 10:00 10: :30 13:30 14:30 Laboratorios planta 1 y sala de seminarios 16:30 Bienvenida y entrega de documentación Sesión teórica: Introducción a la citometría de flujo Fundamentos de la citometría de flujo. Principios de la separación celular. Componentes de un citómetro de flujo. Conceptos de fluorescencia y fluorocromos. Nociones básicas de inmunología. Anticuerpos, colorantes fluorescentes, principios de la inmunotinción fluorescente. Factores críticos a tener en cuenta para realizar una inmunotinción. María Paz López Mato y David San Segundo Café Visita a las salas de prácticas. Explicación y visualización de los equipos. Sesión teórica: Citometría multicolor Tipos de fluorocromos. Criterios para la selección de fluorocromos en el diseño de experimentos. Ejemplo práctico: diseño de un experimento multicolor. Gemma Coma Comida Sesión práctica: Planificación de un experimento de citometría Selección de fluoróforos y manejo de software de visión de espectros. Diseño del experimento: controles, reactivos y procesamiento de la muestra. Realización del experimento. Miniflow trivial por grupos. Ruegos y preguntas

5 DÍA 31, martes 10:00 Salas de citometría analítica, separación celular, reprogramación celular y laboratorios planta 1 11:30 12:00 Salas de citometría analítica, separación celular, reprogramación celular y laboratorios planta 1 14:00 15:00 Laboratorios planta 1 y sala de seminarios 16:30 Sesión teórico-práctica: Controles de calidad en citometría de flujo Sesión teórica: Introducción a los Controles de Calidad. Sesión práctica: Controles de Calidad realizados en diferentes tipos de equipos e interpretación. Café Sesión práctica: Ajustes del equipo, compensación y adquisición de muestras Ejemplos prácticos con las muestras procesadas el día anterior. Comida Sesión práctica: Revisión de conceptos generales Discusión en grupos de casos prácticos y presentación de soluciones a la audiencia. Ruegos y preguntas

6 DÍA 1, miércoles 10:00 11:30 12:00 Salas de citometría analítica, separación celular, reprogramación celular y laboratorios planta 1 14:00 15:00 15:45 16:30 Sesión teórica: Análisis de datos Tipos de gráficos, tipos de estadísticas y correcto uso de las mismas. Representación y descripción de datos citométricos para un artículo o presentación científica. María Paz López Mato Café Sesión práctica: Análisis de datos Análisis de diferentes tipos de archivos en diferentes plataformas analíticas. Comida Sesión teórica: Aplicaciones de la citometría de flujo en clínica Enumeración y breve explicación de aplicaciones clínicas de rutina realizadas con un citómetro de flujo. María Paz López Mato Sesión teórica: Aplicaciones de la citometría en el diagnóstico alergológico David San Segundo Ruegos y preguntas

7 DÍA 2, jueves 10:00 10:30 11:15 11:45 12:30 13:15 14:00 15:00 16:00 Sesión teórica: Introducción a las sesiones del día María Paz López Mato Sesión teórica: Citometría de flujo en el diagnóstico de las inmunodeficiencias Mercedes Rey Rey Café Sesión teórica: Aplicabilidad de la separación celular José Manuel Ligos Fernández Sesión teórica: La citometría de flujo en la identificación y caracterización fenotípica de células poco abundantes en el organismo Ander Izeta Permisán Sesión teórica: Caracterización de nanomateriales para aplicaciones médicas y biológicas por citometría de flujo Irantzu Llarena Conde Comida Mesa redonda con los ponentes. Ruegos y preguntas Evaluación del curso y despedida

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