Patologías del eucalipto en Brasil Eugenio Sanfuentes VS Laboratorio Patología Forestal

Transcripción

1 Patologías del eucalipto en Brasil Eugenio Sanfuentes VS Laboratorio Patología Forestal XVII SILVOTECNA Amenazas fitosanitarias presentes y potenciales para las plantaciones de Pino y Eucalipto en Chile Concepción, 13 noviembre de 2012

2 Cancro de eucalipto (Cryphonectria cubensis) Ataque puede ocurrir a partir del sexto mes de la plantación. En plantas jóvenes, adultas de diámetro pequeño o minicepas de jardín clonal, provoca la muerte por anillamiento del tallo.

3 Los cancros pueden ocurrir a varias alturas del tronco, pero en mayor frecuencia en las porciones basales, causando lesiones superficiales o profundas e la corteza y circundadas por callo. E. propinqua E. grandis Afecta a Eucalyptus spp. e incide severamente en procedencias de E. grandis y E. saligna. También afecta diferentes Melastomateaceas

4 Cuando la lesión es profunda y localizada en un punto específico del tronco, existe formación del cancro típico.

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6 En lesiones superficiales, sin alcanzar el cambium, la respuesta de la planta es evidenciada por la formación de nuevos tejidos (engrosamiento del tronco y rajaduras en punto de infección)

7 Los signos de la enfermedad son fructificaciones correspondientes a peritecios (picnidios menos comunes), formados sobre la corteza muerta.

8 La enfermedad ocurre en la mayoría de las áreas donde crece el eucalipto. En Sudamérica, Surinam, Brasil, Bolivia, Colombia, Venezuela, y Uruguay. Ocurre ampliamente en plantaciones de especies susceptibles. Los daños mayores ocurren en las regiones cálidas y húmedas, con temperatura media anual de 23 o C y precipitaciones mm. Regiones con déficit hídrico acentuado, seguido por estación lluvias intensas favorecen la incidencia de la severidad del cancro.

9 Control de la enfermedad Plantación con clones o especies resistentes. Entre las especies más resistentes estan: Eucalyptus cloeziana, E. pilularis, E. paniculata, E. pellita, E. urophylla, E. robusta, E. resinifera y E. microcorys. Existe amplia variabilidad intraespecífica en cuanto a resistencia (clones resistentes). En jardín clonal el control es mediante colectas selectivas y continuas, reduciendo el estrés (predisposición).

10 Marchitamiento vascular (Ceratocystis fimbriata) Die-back, cancros, decoloración del leño y marchites, muerte de la planta. En leño, causa decoloración radial a partir de la medula. Ceratocystis fimbriata es un patógeno variable en agresividad.

11 Infección de raíces progresa hasta el cuello, y continua colonización vía parénquima medular y radialmente alcanza el cambium vascular y corteza, originado externamente una lesión (longitudinal), café, coriácea, continua. Después la lesión se torna oscura. Problema especialmente en estado fenológico B.

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13 Infecta varias especies de plantas, como acacias, álamo, mago, café, cítricos, crotalaria, cacao, ficus, higo, inhame, plátano oriental, mandioca y otros frutos tropicales. Posee gran variabilidad fisiológica, determinado especificidad de hospederos entre aislamientos. En Brasil es de importancia en clones de Eucalyptus urophylla. En Uruguay fue determinado en E. grandis.

14 Alta humedad y temperatura. Requiere heridas para establecimiento del patógeno (insectos, heridas de poda). Estrés hídrico y periodos lluviosos favorecen al patógeno.

15 Control de la enfermedad Amplia variabilidad genética inter e intraespecífica en resistencia a la enfermedad determina posibilidad de selección y uso de genotipos resistentes. Se desconoce base genética de la resistencia.

16 Roya del eucalipto (Puccinia psidii) Principal característica es la esporulación uredosporica, pulverulenta, coloración amarilla sobre los órganos afectados. En materiales altamente susceptibles causa necrosis, hipertrofia, minicancros, y muerte de porciones terminales de crecimiento. En épocas mas cálidas también pueden observarse teliosporos (bicelulares).

17 En especies de Eucalyptus el patógeno ha sido registrado en Argentina (2004), y Uruguay (2002). E. cloeziana E. globulus

18 Eucalyptus grandis, E. cloeziana, E. phaetotricha, E.globulus y E. nitens son las especies más susceptibles a la royas. También la roya incide en varias especies nativas o exóticas de la familia. Pitangeira Jabuticabeira Pitangeira Jambeiro Jambeiro Melaleuca

19 La roya incide en plantas jóvenes en vivero y plantación. Las condiciones favorables para infección son; temperaturas o C (optimo 23 o C), periodos prolongados de mojamiento foliar (rocío nocturno o llovizna por periodos superiores a 6 h por 5-7 d consecutivos), existencia de órganos juveniles (hojas jóvenes y terminales de crecimiento).

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21 Control de la enfermedad La existencia de amplia variabilidad genética inter e intra-específica para resistencia a la roya permiten el control por medio de plantación de clones, progenies o especies resistentes. Dentro de las especies resistentes se encuentran: Eucalyptus camaldulensis, E. microcorys, E. pellita, E. pilularis, E. propinqua, E. resinifera, E. robusta, E. saligna, E. tereticornis y E. urophylla. Pruebas de patogenicidad efectuadas con E. globulus, E. nitens e E. regnans (1999)

22 En E. grandis la resistencia es dominante y es controlada por un gen Ppr-1. De esta forma el control puede efectuarse con progenies resistentes (matrices homocigotas). Otra estrategia es seleccionar genotipos de rápido crecimiento (escape), como también clones de E. globulus, E. nitens, que precozmente pasen del estadio de hojas juveniles a hojas adultas (resistentes).

23 Enfermedad rosada del eucalipto (Erythricium salmonicolor (=Phaenochaete salmonicolor) Lesiones y anillamiento de tallos y ramas en plantas de 1 a 3 años. En lesiones recientes se desarrolla micelio de coloración rosada. Posteriormente, las lesiones se secan y pierden la coloración típica, quedando cancros en tallos y ramas no anillados, quiebre de tallos y perdida de dominancia apical.

24 Mayoría de las especies de eucalipto son susceptibles (E. grandis, E.alba y E. tereticornis, etc.) También afecta Hevea brasiliensis (caucho), Casuarina equisitifolia, Theobromae cacao, Acacia mearnsii, Malus sp., Podocarpus henkellii y P. latifolius, entre otros cultivos (te, café, etc). Se registran sobre 141 especies en 104 géneros de plantas (importante como fuente de inóculo).

25 Ocurre normalmente en regiones con precipitaciones anuales superiores a mm. La enfermedad esta distribuida principalmente regiones tropicales y subtropicales de Asia, África (Sudáfrica), América Latina, Australia, Nueva Zelandia y Japón. En Brasil ha limitado el uso de algunos clones de E. grandis e híbridos.

26 Control de la enfermedad En plantaciones de caucho y árboles frutales, la enfermedad puede ser controlada, cuando se detecta precozmente, mediante aplicaciones de fungicidas. En plantaciones forestales no es aplicable, siendo la estrategia más promisoria el uso de especies resistentes (E. tolleriana, E. deglupta y E. tereticornis en India), proveniencias y clones resistentes, especialmente en áreas de alto riesgo.

27 Marchitamiento vascular (Ralstonia solanacearum) Marchitamiento del follaje, posteriormente las hojas vuelven amarillentas o de color rojo, con la muerte de la plantas las hojas adquieren color pajizo o café-claro.

28 En condiciones de campo, plantas de 3-4 meses de edad la enfermedad puede ser aguda o crónica. En el primer caso, el patógeno causa la muerte de 2-3 semanas. Se observa marchitamiento del follaje, los vasos del xilema se oscurecen y en la superficie de ramas y tallo surgen estrías café a café oscuro. En el tipo crónico, la muerte ocurre 2-6 meses después.

29 Forma de diagnosticar la enfermedad es a través de la exudación bacteriana (pus). Cortar tallo y dejar en condición de alta humedad

30 En minijardín clonal (canaletones), asociado a podas y colectas intensivas de estacas. Hojas con pedida de turgencia, síntomas de falta de agua ( V invertida), necrosis foliar y desfolia.

31 Eucalyptus grandis, E. urophylla y sus híbridos se han comportado como más susceptibles. Además, en E. tereticornis, E. camaldulensis, E. pellita, E. propinqua y E. saligna. Se ha registrado en diferentes países como Australia, Indonesia, China, Taiwán, Venezuela y Brasil. Plantaciones en áreas nativas recién taladas, alta humedad y temperatura. Perdidas también son asociadas al uso de plántulas viejas o con sistema radicular malformado.

32 Control de la enfermedad Uso de plantas nuevas, sistema radicular bien formado, sin heridas en cuello y raíz. Resistencia genética, aunque es difícil por la amplia variabilidad del patógeno y condiciones favorables en campo.

33 Mancha foliar de Teratosphaeria (MLD, MLB) Teratosphaeria nubilosa (=Mycosphaerella nubilosa). Las lesiones más comunes son de color amarillo a café, bordes angulares, frecuentemente coalescen para formar grandes lesiones en la superfice de la hoja. Con el tiempo, las lesiones se oscurecen y los pseudotecios son más visibles, los que se forman especialmente en en la cara abaxial de las hojas. Lesiones en los borde tienen apariencia corchosa rojiza a purpura.

34 Afecta principalmente hojas juveniles de Eucalyptus botryioides, E. bicostata, E. bridgesina, E. cypellocarpa, E. dunnii, E. globulus, E. grandis, E. gunnii, E. nitens, E. pilularis, E. quadrangulata, E. viminalis, E. grandis x E. resinifera y E. urophylla x E. globulus. Fuente: Pérez et al., 2009

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36 Distribución de Teratosphaeria nubilosa Formas de dispersión; plantas, materiales de propagación (estacas y semillas?), ramas, hojas. Fuente: Hunter et al., 2009

37 El cultivo de E. globulus en Sudáfrica fue abandonado en la década de los 30 debido a su susceptibilidad a T. nubilosa. E. globulus fue reemplazado por E. nitens, en el noroeste de Tasmania debido a MLD. Estudios en Australia demostraron que defoliaciones entre 20% a 80% reducen el crecimiento entre 11% y 73%. En plantaciones de E. globulus en Australia se han reportado brotes con defoliaciones de hasta 95% de la copa.

38 Plantaciones de E. globulus afectadas en Uruguay (2007)

39 Control de la enfermedad Plantar especies, procedencias o híbridos resistentes o tolerantes al patógeno. Seleccionar genotipos que cambien más rápido de hoja juvenil a hoja adulta Reducir la densidad de plantación, de forma que las plantas puedan disponer de más nutrientes, luz y ventilación. Fertilizar para reducir los efectos de la defoliación.

40 Manchas foliares de Cylindocladium (Cylindrocladium spp.) C. pteridis, C. candelabrum, C. floridanum, C. ovatum, C. parasiticum, C. ilicicola, C. floridanum, C. parasiticum, C. quinquesptatum, C. scoparium, C. theae y C. colhouni. Posee como teleomorfo el genero Calonectria. Se han determinado 39 especies de Cylindrocladium, siendo 24 patógenos en Eucalyptus.

41 C. pteridis provoca machas pequeñas, circulares o alongadas, y de coloración ceniza a café-claro

42 Manchas foliares causadas por C. ilicicola, C. parasiticum, C. ovatum y C. scoparium. Causan lesiones grandes de color café-claro a oscuro, contorneadas por halo grisáceos-verdosos. E. grandis E. cloeziana

43 Manchas foliares y necrosis en tallo causadas por C. quinqueseptatum

44 Más susceptibles procedencias de E.camaldulensis, E. cloeziana, E. grandis, E. saligna, E. tereticornis, E. urophylla e híbridos de E. urophylla x E. grandis. En India y Vietnam C. quinqueseptatum causa los mayores daños. En Sudamérica es C. candelabrum y C. scoparium. En en Uruguay C. scoparium fue asociado a mortalidad de árboles en plantación de E. grandis. También existen descripciones en Argentina. Altas temperaturas (23 a 30 o C) y periodos prolongados de lluvia. Se han determinado áreas de riesgo, con temperaturas mínimas mayores a 16 o C y precipitaciones sobre mm.

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46 Control de la enfermedad Normalmente ocurre recuperación natural de las plantas infectadas. Sin embargo, cuando ocurre disminución significativa del crecimiento, la plantación de clones resistentes constituye la mejor estrategia de control.

47 Quema foliar de Rhizoctonia Manchas grandes e irregulares en hojas de diferentes edades, culminando con la quema (tizón) de las hojas (color pajizo). En campo y jardín clonal, la infección se inicia en hojas de las ramas bajas y progresa de la base hacia el ápice de la planta, causando severa quema y desfoliación.

48 Principalmente Rhizoctonia solani (AG1-1B) y especies binucleadas de Rhizoctonia no identificadas. A B A B C D C D igura 3. Características morfológicas de colônias de isolados multinucleados de Rhizoctonia solani. A- Grupo MB1, B Grupo MB2, C Grupo MB4 e D Grupo MB5. E

49 Dependiendo de la intensidad de la enfermedad, se observan ramas cubiertas con micelio blanquecino, y esclerocios de color café a caféclaro en las hojas y ramas.

50 La enfermedad es prevalente en regiones con temperaturas medias a altas y periodos prolongados de lluvia. El patógeno sobrevive en el suelo, alcanzando las hojas bajas, mediante salpique de gotas de agua, o crece epifiticamente por el tallo hasta las partes superiores de la planta

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52 Control de la enfermedad: A pesar de que no existan estudios de variabilidad genética referente a resistencia, se piensa que la plantación de ciertas especies, procedencias y clones pueden constituirse en una estrategia para el manejo de la enfermedad en terreno.

53 Manchas foliar de Cryptosporiopsis Cryptosporiopsis eucalypti varias especies de eucalipto entre estas E. camaldulensis, E. globulus, E. grandis, E. microcorys, E. nitens, E. tereticornis y E. viminalis. La enfermedad ha sido descrita en Australia, Brasil, India, Japón, Tailandia, Vietnam, Uruguay y USA.

54 Manchas foliar de Phaeopleospora (Kirramyces) Kirramyces destructans (= Phaeophleospora destructans) Atacando E. grandis, E. camaldulensis y E. urophylla E. urophylla E. camaldulensis

55 Mancha foliar de Quambalaria (Quambalaria eucalypti) Quambalaria eucalypti (=Sporotothrix eucalypti), con fase sexual no conocida. Fue descrito en Sudafrica (1993), Brasil (2000) y Uruguay (2001).

56 Manchas bacterianas en eucalipto Se han determinado varias especies: Erwinia sp., Pantoea ananatis Xantomonas axonopodis, X. campestris y Pseudomonas cichorii. E. urophylla

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58 Estados fenológicos en eucalipto y relación con enfermedades

59 COMENTARIOS FINALES Las enfermedades que parecen representar un riesgo mayor para las especies de eucalipto plantadas en Chile serían; Mancha foliar de Teratosphaeria, Roya del eucalipto y Marchitez de Ceratocysitis Conducir estudios para determinar la resistencia de genotipos a estas patologías para los especies de eucalipto cultivadas en Chile