RESEARCH REPORT Title: The alien invasive legume Inga punctata in mountain range Sierra del Rosario: current distribution, impact, invasion pathways and management recommendations 1. Author: Lisbet Gonzalez-Oliva Recent Cuban inventory of invasive flora points out that our native and highly diverse riparian forests are heavily affected by plant invasions. It can found one of the best examples on the mountains of western Cuba where Biosphere Reserve Sierra del Rosario (BRSR) riparian forest has been invaded by an aggressive alien legume named Inga punctata, without records as invasive in other part of the world and no data about successful control. Information about current extent, impact and invasion pathways of Inga punctata at Sierra de Rosario, and control effectiveness by tree cutting and double girdling can be help in design an Inga punctata control/prevention strategy. As well as invaded forest restoration planning and conservation of non-invaded forests. During this project, we aimed all these matters. We did the prospection of BRSR as well as western sector of the Sierra del Rosario mountain range, further than BRSR boundaries, in order to document current distributional range of alien Inga punctata. We assessed impact of this invasive legume on riparian forest, comparing invaded and noninvaded forest and regeneration species composition under canopy. Results show Inga punctata has a more extensive distributional range than was initially suspected, going beyond BRSR. After perform several interviews to local old men, its introduction was dated from 1940s, seems due to its edible seed. First tree was planted in a former private property at the village El Roble. It is presumed that some other trees were planted later in another property of the same family in Mango Bonito, at the western boundary of BRSR. After 70 years there are more than 200 km 2 at the middle of Sierra del Rosario mountain range completely invaded by Inga puntata (Figure 1). However, current extent of invasion only compromise west and south sectors of Biosphere Reserve Sierra del Rosario (BRSR). Most infested areas were found at riparian forest of tributaries and rivers San Cristóbal, Santiago and Manantiales, but also at river Bayate inside BRSR. Forest at both sides of some main ways is also extremely affected. Inside the noninvaded matrix were also located four small and middle size patches invaded by Inga, threaten two other main rivers San Juan and San Miguel and also one of the three conservation core areas of RBSR (El Salón). 1 This research was funded by Rufford Small Grants, through the project Invasive alien legume Inga punctata in Biosphere Reserve Sierra del Rosario (Cuba): assessment and initial actions for control and native forest restoration. RSG reference 14746-1
Figure 1. Invasion map of alien tree Inga punctata in Sierra del Rosario mountain range. Figure 2. Endemic and threatened species affected by invasion of Inga punctata. (a-b) endemic species exclusive from Sierra del Rosario, (a,c,e) threatened endemic species. a, Zanthoxylum ekmanii; b, Gonzalagunia sagraeana; c, Piresiella strephioides; d, Heberstigma cubenese; e, Ardisia dentata.
The non-invaded native riparian forest shows Matayba apetala (locally named macurije) as dominant tree. Some endemic and/or threatened plants, like the local endemic Gonzalagunia sagraeana and the endangered Ardisia dentata appears as abundant (Figure 2). We recorded a total of 135 native species on assessed riparian forest (Annex 1). More than half are Caribbean endemics and 11 are endemic of Cuba, including 2 Sierra del Rosario endemics: Zanthoxylum ekmanii and Gonzalagunia sagraeana. Three of these Cuban endemics are also threatened: Ardisia dentata (EN), Piresiella strephioides (EN) and Z. ekmanii (CR). In this native riparian forest were recorded abundances between 15 and 30% of overall plants for dominant tree Matayba apetala, and other native species are common in the sample, including the local endemic Gonzalagunia sagraeana and the endangered Ardisia dentata. Although we expect found a negative impact on riparian forest invaded by Inga punctata, we never suspect its magnitude. The alien legume was recorded replacing Matayba apetala as dominant species in invaded forest (Figure 3), exceeding frequently 35% of overall plants. Also the number of species sharing the habitat was diminished, formerly common endemic and endangered species became rare, and others disappear. Same or more extreme pattern were found on plant regeneration under canopy of invaded forest (Figure 4). Matayba apetala, dominant tree in non-invaded riparian forest is native most abundant after Inga punctata and some other trees formerly abundant like Trichospermum mexicanum (a pioneer species), Calophyllum antillanum, Talipariti elatum and Trophis racemosa, also persist at low abundances. These species could be used for restoration purposes after Inga punctata control management on invaded forest (Annex 2). Figura 3. Typical species rank-abundance curve obtained for riparian forest invaded by Inga punctata.
Figure 4. Typical species rank-abundance curve obtained for regeneration under invaded riparian forest canopy. In addition, were documented primary dispersal vectors, invasion pathways and Inga punctata life traits that favor the rapid spread and its high densities in riparian forest (Figure 5). This species takes advantage from natural or human-made forest gaps. Adults produce many fruits with 6-12 seed each one. Seed germination takes place even inside the fruits and before dispersal (Figure 5b). That increase speed of seedling establishment, which occur over the ground or even inside the water at high survivorship percentage (Figures 5d and 6). As consequence, the area around parental plants become in dense nurseries of Inga punctata after fruits dropping (Figure 5e), then established individuals grow as monospecific stand and become reproductive adults in less than 1 year, faster than any of native pioneer of that forest like Trichospermum mexicanum and Cecropia peltata. All these improve invasion capacity of Inga punctata and vulnerability of Sierra del Rosario's riparian forest to its invasion. Not less important is people behaviour as invasion pathway. Local people, especially children, like to eat Inga punctata seed wrapping. After eaten these viable seeds are dropped anywhere. That can explain all monospecific Inga punctata belt forests recorded to main ways sides. For same reason people keep introducing and planting Inga punctata on new and non-invaded places of Sierra del Rosario. The most recent introduction (less than 10 years) were reported to us by local people of Los Cayos village at the margins of still non-invaded San Miguel river.
Figure 5. Documented life traits of Inga punctata that promote the rapid spread and transformation of riparian forests in Sierra del Rosario. Figure 6. Seedlings established even into the stream at Sierra del Rosario.
As results of control experiment were found both, tree cutting (Figure 7a) and double girdling (Figure 7b), could be drive to the dead of treated tree if are followed by resprouts removing 3, 6 and 9 month after first treatment (also a new tissue produced by plants in the girdles area, Figure 7c). However, they showed significant differences in term of management effort and effect on surrounding forest. Figure 7. Mechanical treatments used in control experiment of Inga punctata. a, trunk and removed re-sprouts after tree cutting; b, trees treated by double girdling; c, new tissue produced by plants in the girdles area that also must be removed. Tree cutting promote reinvasion of the made gaps, at least without parallel effective reforestation actions. Twelve months after experiment beginning, in the former gap the number of reproductive adults of this alien legume was increased 7 times and more than 80% of forest regeneration belongs to this Inga punctata. Tree cutting also needed more effort during maintenance phase due to many more produced re-sprouts. In contrast, with double girdling was registered an abundance decrease of Inga punctata adults (Figure 8), together with a significant increase in number of native species in the regeneration (Figure 9), including endemics and threatened as Ardisia dentanta and Gonzalagunia sagraeana. Figure 8 (left). Progressive reduction of Inga punctata adults on forest after treat 12 individual by double girdling. Figure 9 (right). Richness on forest regeneration, increasing after double girdling management and decreasing after tree cutting.
MANAGEMENT RECOMMENDATIONS BASED IN RESEARCH RESULTS Intensification of a control/prevention strategy using all state management resources and all local farmers that can be involve. Eradication of invaded small patch on the boundary of BRSR's conservation core reserve El Salon, and two others small patches at the upper stream of Bayate river and close to river San Miguel. Amplify and intensify the awareness campaign for responsible management of the seeds remaining after eaten and prevention of intentional introduction or propagation. Implement a girdling campaign and plan from inside to outside of BRSR, beginning at middle size patch close to Las Terrazas town and at the upper sector of Bayate river. Avoid to do gaps and opened areas in the forest promoting invasion by Inga punctata. We strongly recommend double girdling and not tree cutting as control/eradication method for alien invasive Inga punctata. For be effective both girdling and tree cutting must be followed by removing re-sprouts 3, 6 and 9 months. Also new tissue should be removed if double girdling. If tree cutting is used as management action, simultaneously gaps reforesting are needed for avoid re-infestation. For this reforesting purpose we recommend the use of natives trees Matayba apetala, Trophis racemosa, Trichospermum mexicanum, Calophyllum spp and Talipariti elatum. That will be first step to restoration riparian forest. Monitoring the diminish population of critical endangered and local endemic Zanthoxylum ekmanii, as well as endangered Ardisia dentata and Piresiella strephioides, and local endemic Gonzalagunia sagraeana. Also perform propagation assays of these species in order to reinforce its populations. Take into account the other alien species considered as invasive in Cuba found during this research, emphasizing in frequent and transformers as Trimezia steyermarkii, Syzygium jambos, Cyperus alternifolius and Oeceoclades maculata (Annex 3).
Annex 1. Current composition of native riparian forest of BRSR Botanical family Scientific name IUCN Red List Category Acanthaceae Rhuellia sp Annonaceae Apocynaceae Araceae Araceae Araliaceae Arecaceae Asteraceae Oxandra lanceolata (Sw.) Baill. Forsteronia corymbosa (Jacq.) G. Mey. Anthurium cubense Engl. Philodendron clementis C. Wright ex Griseb. =Philodendron fragrantissimum (Hook.) G. Don Dendropanax arboreus (L.) Decne. & Planch. Roystonea regia (Kunth) O.F. Cook Bidens pilosa L Type of endemic Asteraceae Erigeron thrincioides Griseb. CUB Asteraceae Asteraceae Bignoniaceae Bignoniaceae Pluchea carolinensis (Jacq.) G. Don Wedellia rugosa Enallagma latifolia (Mill.) Small Tabebuia angustata Britton Boraginaceae Ehretia tinifolia L. Boraginaceae Tournefortia hirsutissima L. Bromeliaceae Bromeliaceae Burseraceae Caesalpinaceae Calophyllaceae Hohenbergia penduliflora (A. Rich.) Mez Tillandsia valenzuelana A. Rich. Bursera simaruba (L.) Sarg. Bauhinia cumanensis Kunth Calophyllum antillanum Britton Calophyllaceae Calophyllum pinetorum Bisse CUB Campanulaceae Isotoma longiflora (L.) C. Presl = Hippobroma longiflora (L.) G. Don Cecropiaceae Cecropia schreberiana Miq. subsp. antillarum (Snethl.) C.C. Berg & P. Franco Clusiaceae Clusia minor L. Clusiaceae Cyatheaceae Cyperaceae Clusia rosea Jacq. Spheropteris myriosoides Rynchospora sp. Dilleniaceae Davilla nitida (Vahl) Kubitzki = Davilla rugosa Dryopteridaceae Tectaria frimbiata Erythroxylaceae Euphorbiaceae Erythroxylum havanense Jacq. Alchornea latifolia Sw. Euphorbiaceae Sapium jamaicense Sw.
Botanical family Scientific name IUCN Red List Category = Sapium laurifolium (A. Rich.) Griseb. Fabaceae Fabaceae Andira inermis (W. Wright) DC. Desmodium sp. Type of endemic Fabaceae Hebestigma cubense (Kunth) Urb. LC CUB Fabaceae Lonchocarpus domingensis (Turpin ex Pers.) DC. Fabaceae Lonchocarpus pentaphyllus (Poir.) Kunth = Lonchocarpus heptaphyllus (Poir.) DC. Fabaceae Mucuna urens (L.) Medik. Gesneriaceae Gesneria humilis L. Grammitidaceae Micrograma pilloceroides Hymenphyllaceae Trichomane ovale CR Lamiaceae Clerodendrum grandiflorum (Hook.) Schauer CUB Lamiaceae Lauraceae Lauraceae Lauraceae Lygodiaceae Malvaceae Malvaceae Malvaceae Malvaceae Melastomataceae Melastomataceae Melastomataceae Meliaceae Meliaceae Hyptis capitata Jacq. Cinnamomum montanum (Sw.) J. Presl Licaria triandra (Sw.) Nectandra coriacea (Sw.) Griseb. Lygodium volubilis Guazuma ulmifolia Lam. Talipariti elatum (Sw.) Fryxell = Hibiscus elatus Sw. Trichospermum mexicanum (DC.) Baill. Triumfetta semitriloba Jacq. Clidemia hirta (L.) D. Don Miconia laevigata (L.) D. Don Tetrazygia sp. Guarea guidonia (L.) Sleumer Trichilia havanensis Jacq. Meliaceae Trichilia hirta L. Mimosaceae Cojoba arborea (L.) Britton & Rose =Pithecellobium arboreum (L.) Urb. Moraceae Ficus membranacea C. Wright Moraceae Moraceae Moraceae Ficus subscabrida Warb. = Ficus maxima Pseudolmedia spuria (Sw.) Griseb. Trophis racemosa (L.) Urb. Muntingiaceae Muntingia calabura L. Myrsinaceae Ardisia dentata (A. DC.) Mez EN CUB
Botanical family Scientific name IUCN Red List Category Myrsinaceae Wallenia laurifolia (Jacq.) Sw. Myrtaceae Myrtaceae Myrtaceae Eugenia farameoides A. Rich. Eugenia maleolens Pers. Psidium sp. Nyctaginaceae Pisonia aculeata L. Orchidaceae Orchidaceae Orchidaceae Epidendrum nocturnum Jacq. Polystachya concreta (Jacq.) Garay & H.R. Sweet Vanilla sp. Passifloraceae Passiflora holosericea L. Passifloraceae Piperaceae Piperaceae Piperaceae Poaceae Poaceae Polypodiaceae Polypodiaceae Psilotaceae Pteridaceae Pteridaceae Pteridaceae Pteridaceae Pteridaceae Pteridaceae Pteridaceae Rosaceae Rosaceae Rubiaceae Rubiaceae Rubiaceae Rubiaceae Passiflora sexflora Juss. Piper hispidum Sw. Piper ossanum (C. DC.) Trel. = Piper aduncum L. Pothomorphe umbellata (L.) Miq. = Piper umbellatum L. Lithachne pauciflora (Sw.) P. Beauv. Piresiella strephioides(griseb.) Judz., Zuloaga & Morrone Campiloneurum costatum Polypodium polypolioides Psilotum nudum Adiantum latifolium Adiantum petiolatum Adiantum piramidalis Adiantum pulverulenta Adiantum tenerum Pteris grandifolium Heteropteris laurifolia Prunus myrtifolia (L.) Urb. Prunus occidentalis Sw. Borreria laevis (Lam.) Griseb. Chiococca alba (L.) Hitchc. Chione venosa (Sw.) Urb. var. cubensis (A. Rich.) David W. Taylor Exostema longiflorum (Lamb.) Roem. & Schult. EN Type of endemic CUB Rubiaceae Gonzalagunia sagrana Urb. LC local Rubiaceae Guettarda calyptrata A. Rich.
Botanical family Scientific name IUCN Red List Category Rubiaceae Psychotria grandis Sw. Rubiaceae Psychotria horizontalis Sw. Type of endemic Rubiaceae Psychotria sulzneri Small = Psychotria tenuifolia Sw. Rubiaceae Rondeletia odorata Jacq. CUB Rutaceae Zanthoxylum ekmanii (Urb.) Alain CR local Rutaceae Rutaceae Salicaceae Salicaceae Salicaceae Sapindaceae Zanthoxylum fagara (L.) Sarg. Zanthoxylum martinicense (Lam.) DC. Casearia guianensis (Aubl.) Urb. Casearia hirsuta Sw. Casearia sylvestris Sw. Allophylus cominia (L.) Sw. Sapindaceae Cupania americana L. Sapindaceae Cupania glabra Sw. Sapindaceae Cupania juglandifolia A. Rich. =Cupania macrophylla Sapindaceae Matayba apetala Radlk. = Matayba oppositifolia (A. Rich.) Britton Sapotaceae Chrysophyllum cainito L. Sapotaceae Chrysophyllum oliviforme L. Sapotaceae Sideroxylon foetidissimum Jacq. Sapotaceae Sideroxylon jubilla (Ekman ex Urb.) T.D. Penn. CUB Schizaeaceae Schizaeaceae Selaginellaceae Selaginellaceae Anemia adiantifolia Anemia cuneata Selaginella heterodonta Selaginella plumosa Selaginellaceae Selaginella urquiolae CR CUB Simarubaceae Smilacaceae Smilacaceae Solanaceae Solanaceae Thelypteridaceae Thelypteridaceae Thelypteridaceae Urticaceae Picramnia pentandra Sw. Smilax domingensis Willd. Smilax havanensis Jacq. Cestrum laurifolium L Hér Solanum sp. Thelypteris kuntii Thelypteris pinnata Thelypteris santa Fleurya cuneata (A. Rich.) Wedd. = Laportea cuneata (A. Rich.) Chew
Botanical family Scientific name IUCN Red List Category Urticaceae Pilea microphylla (L.) Liebm. Urticaceae Pilea sp1 Urticaceae Pilea sp. 2 Vitaceae Zingiberaceae Vitis tiliifolia Humb. & Bonpl. ex Roem.& Schult. Renealmia aromatica (Aubl.) Griseb. Type of endemic
Annex 2. Available information about promissory native trees for recovery of riparian forest areas currently invaded by Inga punctata, emphasizing new gaps and open areas created by tree cutting. 1. Matayba apetala (también tratada como M. oppositifolia) Nombre común: macurije Tipo de diáspora/propágulo: semillas, provenientes de un fruto en cápsula (Sánchez J.A. et al. 2009 ) Momento óptimo para recoger fruto: Mayo (Artiaga et al. 2012) Recomendaciones para su propagación: no existe información disponible. En pruebas de laboratorios Sanchez et al. (2012) encontraron que las semillas iniciaron la germinación a los 31 días como promedio. La reproducción natural es excelente en todo el bosque de galería de la RBSR, por tanto podrían ser utilizadas plántulas moteadas en lugares con alta densidad y no invadidos por Inga punctata. 2. Trophis racemosa Nombre común: Ramón de caballo Tipo de diáspora/propágulo: información no disponible Momento óptimo para recoger fruto: información no disponible Recomendaciones para su propagación: no existe información disponible. Se necesitan estudios que aporten esta información. Quizás podría ensayarse el uso de plántulas moteadas de sitios con elevada densidad en la regeneración, donde debido a la competencia intraespecífica muchos de ellos morirán. 3. Trichospermummexicanum Nombre común: Majagüilla macho, guásima majagua Tipo de diáspora/propágulo: semillas (Sánchez et al. 2009)
Momento óptimo para recoger fruto: Mayo-Junio(Sánchez et al. 2009) Recomendaciones para su propagación: Sembrar las semillas directamente en bolsas (5 por cada una) a 2 cm de profundidad. Se recomienda temperatura de 25 ºC durante la noche y 35 ºC durante el día. A los 25 días se realiza el entresaque de las plántulas para dejar la más vigorosa; posteriormente, bolsas con las plantas deben ser protegidas de la radiación solar durante 60 días, al cabo de los cuales, las plantas están preparadas para ser llevadas al campo (Muñoz et al. 2012a). Información útil: Las semillas están maduras, cuando la coloración de los frutos se torna carmelita. Deben recolectarse los frutos antes de su apertura. El traslado de los frutos debe realizarse en sacos de yute y nunca ser expuestos al sol, ni a bajas o altas temperaturas. Para la obtención de las semillas se deben macerar los frutos dentro del saco, y aventar los residuos; y retirarlos. No lavar las semillas. Poner a secar al aire y sombra durante 72 horas y sembrar, o guardarse en frascos de cristal con cierre hermético, en un cuarto con temperatura de 25 ºC y humedad ambiental inferior al 60 %. Nunca almacenar en refrigerador (Muñoz et al. 2012a). 3. Calophyllum antillanum (también Calophyllum pinetorum) Nombre común: ocuje Tipo de diáspora/propágulo: fruto (Sánchez J.A. et al. 2009 ) y plántulas (Betancourt 1999) Momento óptimo para recoger fruto: Enero (Sánchez J.A. et al. 2009 ), agosto- enero (Betancourt 1999) Recomendaciones para su propagación: La reproducción natural es excelente debajo de los árboles parentales y en sus proximidades. Debajo de un árbol productor se pueden contar por metro cuadrado 25 o más pequeños brinzales (cohortes) de diferentes edades. Las semillas recién colectadas se obtiene hasta el 80-85% de germinación. Se ponen las semillas a germinar en camadas sobre una capa de 2-3 cm de aserrín, arena, o tierra arenosa bien mullida, y se cubren con leve capa de este material. Por sobre esta capa se efectúa el riego a las semillas. Una vez que las semillas germinan, se toman y se siembran a razón de 1 en cada envase. La permanencia de las plantas en el vivero debe ser de 4 a 5 meses. (Betancourt A. 1999) Información útil: No se recomienda el almacenamiento de las semillas en cámaras de refrigeración porque pierde su viabilidad. (Betancourt A. 1999)
5.Talipariti elatum (también tratado como Hibiscus elatus) Nombre común: Majagua Tipo de diáspora/propágulo: semillas (Sánchez J.A. et al. 2009 ) Momento óptimo para recoger fruto: Marzo (Sánchez J.A. et al. 2009 ) Recomendaciones para su propagación: Se reporta para Cuba, en semillas frescas sin tratamiento pregerminativo, un porcentaje de emergencia en vivero entre 40-45 %, con inicio de la emergencia entre 8-12 días; mientras que con la aplicación de tratamiento pregerminativo el porcentaje asciende al 69 %. Este tratamiento consiste en la inmersión en agua a temperatura ambiente, durante 24 horas. La aplicación de tratamiento pregerminativo previo a la siembra de las semillas y la alternancia de temperatura debe ser cercana a 25 ºC, durante la noche y 35 ºC durante, el día. La reproducción en vivero se realiza, mediante siembra directa de 3 a 4 semillas en bolsas, las mismas se cubren con aproximadamente 1 cm de tierra. Las bolsas son colocadas directamente al sol. La emergencia de las plántulas se inicia entre los 10 a 15 días, después de la siembra (Muñoz et al. 2012b). Información útil:. Un mes posterior al inicio de la emergencia debe realizarse un entresaque, dejando solo una planta (la más vigorosa) por bolsa; el tiempo de permanencia en vivero es de 4 a 6 meses (Muñoz et al. 2012b). Fuentes de la información Betancourt A. 1999. Silvicultura especial de árboles maderables tropicales. Editorial Científico-Técnica. 427 p. Muñoz, B. C., J.A. Sánchez, L. Montejo, P. Herrera y A. Gamboa. 2012a. Guía técnica para la reproducción de especies arbóreas pioneras. Ministerio de Ciencia, Tecnología y Medio Ambiente, Instituto de Ecología y Sistemática, La Habana,38 p. Muñoz, B. C., J.A. Sánchez, L. Montejo, P. Herrera y A. Gamboa. 2012b.Reproducción de plantas nativas y naturalizadas del ecosistema Sabana-Camagüey. Ministerio de Ciencia, Tecnología y Medio Ambiente, Instituto de Ecología y Sistemática, La Habana, 64 p. Sánchez J.A., Bárbara Muñoz y Laura Montejo. 2009. Rasgos de semillas de árboles en un bosque siempreverde tropical de la Sierra del Rosario, Cuba Pastos y Forrajes 32(2): 141
Annex 3. List of other alien plants considered invasive in Cuba which were found on riparian forest non-invaded and invaded by Inga punctata. Scientific name Aristolochia ringens Vahl Frequently found Transformer in riparian forest Botanical family Aristolochiaceae Bambusa vulgaris Schrad. ex H.L. Wendl. x Poaceae Bromelia pinguin L. Bromeliaceae Citrus aurantium L. x Rutaceae Cyperus alternifolius L. subsp. flabelliformis (Rottb.) Kük. Delonix regia (Bojer ex Hook.) Raf. Dichrostachys cinerea (L.) Wight & Arn. var. africana Brenan & Brummitt Dioscorea bulbifera L. Erythrina poeppigiana (Walp.) O.F. Cook Macrothelipteris torresiana (Gaudich.) Ching Mammea americana L. x x Cyperaceae Caesalpinaceae Mimosaceae Dioscoreaceae Fabaceae Thelypteridaceae Calophyllaceae Mangifera indica L. x Anacardiaceae Mimosa pigra L. Murraya paniculata (L.) Jack Mimosaceae Rutaceae Oeceoclades maculata (Lindl.) Lindl. x Orchidaceae Phaius tancarvilleae (L Hér.) Blume Pteris vittata L. Spathodea campanulata P. Beauv. Orchidaceae Pteridaceae Bignoniaceae Syzygium jambos (L.) Alston x x Myrtaceae Tithonia diversifolia (Hemsl.) A. Gray Asteraceae Trimezia steyermarkii R.C. Foster x x Iridaceae Urena lobata L. Vitex trifolia L. Malvaceae Lamiaceae
cómo eliminar el charagüito? La tala de los árboles puede ser utilizada, pero sólo es exitosa si se remueven los rebrotes al menos 2 veces luego de la tala, y sobre todo se acompaña con la siembra en el lugar talado de algunas posturas grandes de Macurije (Matayba apetala) fundamentalmente, acompañadas por algunas de Ramón de caballos (Trophis racemosa), Majagüilla macho (Trichospermum mexicanum), Ocuje y Majagua. De lo contrario el charagüito se apodera en un año del claro hecho y el número de árboles productores se duplica. Pero la mejor forma para eliminarlo y propiciar la recuperación del bosque nativo, parece ser el doble anillamiento (ver foto abajo) de los troncos. Mejor si se le realiza a la mitad de los adultos presentes en el área a trabajar. También deben ser removidos los rebrotes, pero su número es menor. Se ha visto incrementarse considerablemente la cantidad de plantas nativas, y también amenazadas, luego de esta práctica. Incluso sin acompañamiento de siembra de posturas de especies nativas. Cómo llegó a Cuba? Proveniente de México, fue introducida durante la década de 1940 en una finca privada de la Sierra del Rosario, en la actual comunidad El Roble, probablemente por sus semillas comestibles. Se cree que de allí fue llevada y plantada en otra finca privada ubicada en la actual comunidad de Mango Bonito. Estos dos puntos de introducción parecen ser los puntos de origen de la invasión de charagüito en Sierra del Rosario. Qué acciones son necesarias? La conservación de los bosque nativos de Sierra del Rosario y también de los servicios que ellos le prestan al hombre (desde la obtención de madera para construcciones y muebles, las plantas medicinales usadas por nuestros mayores desde siempre, hasta la futura disponibilidad del agua que es capturada y encauzada por estos bosque nativos), depende en buena medida de que la invasión de charagüito sea frenada, controlada. Para ello es necesario ganar todos en conciencia. Eliminarla progresivamente, siempre propiciando la recuperación del bosque nativo, evitando formar claros que son rápidamente recolonizados por el charagüito. Evitar la introducción intencional en nuevos puntos, comunidades y ríos de la Sierra del Rosario donde aún está ausente. Prevenir que no invada con fuerza y transforme las áreas núcleo de la Reserva de Biosfera, pero también los ríos que no están tan afectados y los fragmentos de bosque nativo persisten en sierra. PLANTAS INVASORAS DE MAYOR PREOCUPACIÓN EN CUBA: IDENTIFICACIÓN Y MANEJO CHARAGÜITO (Inga punctata) Qué usos tiene? Su madera puede ser utilizada como fuente de leña. Sus semillas están rodeadas de una pulpa algodonosa y dulce, que son utilizadas como alimento por numerosas personas en Sierra del Rosario. Recientemente algunas personas están utilizando las semillas como sucedaneo del café. Si quiere colaborar con el control de charagüito o reportar su presencia en otros sitios no marcados en el mapa, contácte con la administración de la Reserva de Biosfera Sierra del Rosario en Las Terrazas Fotos: Ricardo Rosa Textos: Lisbet González-Oliva La Habana, enero de 2015
Inga punctata Willd. [Mimosaceae] Nombre comun: Charagüito Por qué es un problema? El charagüito está invadiendo y transformando los bosques de galería o de márgenes de ríos, las orillas de carreteras, caminos y veredas. Desplaza rápidamente a todas las especies nativas de los bosques de la Sierra del Rosario: las endémicas, las amenazadas, pero también las maderables y las medicinales. Incluso está desplazando a la pomarrosa que es considerada la invasora más agresiva de los bosques de orillas de ríos. Quedando sólo bosques casi puros de charagüito. El charagüito aprovecha rápidamente los claros del bosque. Produce muchas vainas con numerosas semillas que germinan antes de caer al suelo. Una vez en el suelo casi todas las semillas de estas vainas se establecen creando algo parecido a un semillero que rápidamente se convierte un parche de bosque de charagüito que produce más vainas. Actualmente es un problema en gran parte de la Sierra del Rosario. Es muy abundante en los ríos San Cristóbal, Santiago y Manantiales; y en sus afluentes. También en el río Bayate y afluentes, dentro de la Reserva de Biosfera. Otros sitios donde crece charagüito son el entorno de Las Terrazas, cercano al río San Juan, y en un pequeño sector del río San Miguel por la comunidad Los Cayos. Además en El Salón, una de las áreas núcleo de la Reserva de Biosfera, donde se localizan unos pocos adultos. El otro sitio de Cuba donde puede encontrarse es el Jardín Botánico Nacional en La Habana.
IMPACTO Y MANEJO Impacto en Cuba: En los bosques de galería de Sierra del Rosario desplaza rápidamente las especies nativas (y hasta la pomarrosa, la invasora más agresiva de este tipo de bosques en Cuba) convirtiéndose rápidamente en dominante y luego en bosques monoespecíficos de charagüito. Lo mismo ocurre en los claros del bosque generados de manera natural o antrópica. Sugerencias para el manejo: La tala por sí sola no es efectiva puesto que se duplica el número de individuos adultos en poco tiempo. Debe acompañarse de la reforestación de los claros dejados y de la remoción de los numerosos rebrotes a los 3, 6 y 9 meses. Con el doble anillamiento de los troncos seguido de la remoción de rebrotes se obtienen mejores resultados. Se reduce el número de adultos de charagüito en el área tratada y se potencia el reclutamiento de especies nativas en la regeneración, aún sin aplicar reforestación. Doble anillamiento practicado al tronco de individuos de charagüito. Usos: Sus semillas están rodeadas de una pulpa algodonosa y dulce que es comestible y muy apreciada por las personas en Sierra del Rosario. También se ha utilizado su madera como leña. Serie Plantas invasoras Esta serie se creó para facilitar la identificación y gestión de las especies invasoras más agresivas en Cuba o de marcado interés en algunas áreas protegidas. Volúmenes de la Serie Volumen 1: Introductorio Volumen 2: Ética en el tratamiento a las especies exóticas Volumen 3: Dichrostachys cinerea Volumen 4: Syzygium jambos Volumen 5: Acacia farnesiana Volumen 6: Leucaena leucocephala Volumen 7: Casuarina equisetifolia Volumen 8: Melaleuca quinquenervia Volumen 9: Eichhornia crassipes Volumen 10: Mimosa pigra Volumen 11: Albizia procera Volumen 12: Bothriochloa pertusa Volumen 13: Spathodea campanulata Volumen 14: Inga punctata Volumen 15: Myriophyllum pinnatum Volumen 16: Nephrolepis hirsutula Volumen 17: Tithonia diversifolia Volumen 18: Macrothelypteris torresiana Volumen 19: Schinus terebinthifolius Volumen 20: Egeria densa Volumen 21: Hydrilla verticillata Volumen 22: Pistia stratiotes Volumen 23: Bromelia pinguin Volumen 24: Sida ulmifolia Volumen 25: Heteropogon contortus Volumen 26: Albizia lebbeck Volumen 27: Casuarina glauca Volumen 28: Oeceoclades maculata Volumen 29: Sansevieria hyacinthoides Volumen 30: Terminalia catappa Volumen 31: Hyparrhenia rufa Volumen 32: Cenchrus purpureus Volumen 33: Bambusa vulgaris Volumen 34: Hedychium coronarium Volumen 35: Syngonium podophyllum Edición: Julio César Álvarez, Ledis Regalado y Lisbet González-Oliva Diseño: Josmaily Lóriga Inga punctata Fotografías: Ricardo Rosa Mapas: Arturo Hernández Ilustraciones: Gustavo Pineda Ante observaciones en nuevas localidades o eventos relevantes para su manejo, comuníquese con los autores Editado en La Habana, febrero de 2015 Serie de folletos informativos sobre Plantas invasoras Vol. 14: Inga punctata Ricardo Rosa, Lisbet González-Oliva, Ramona Oviedo, María T. González y Arturo Hernández Instituto de Ecología y Sistemática (AMA, CITMA) E-mails: ricardorosa@ecologia.cu y lgonzalez-oliva@ecologia.cu
INFORMACIÓN BÁSICA Familia: Mimosaceae Nombre científico: Inga punctata Willd. Nombre comune: Charagüito Descripción botánica: Árbol de hasta 20 m de altura y tronco de 60 cm de diámetro, con lenticelas en hileras. Hojas compuestas, con 2-3 pares de folíolos de tamaño desigual que se estrechan gradualmente hacia el ápice terminando en punta, con pelos diminutos en su cara inferior y nectarios foliares planos o en forma de plato ubicados entre pares de folíolos. Inflorescencias axilares, de 2-8 cm de largo, flores en espigas cortas, de 1-3 cm de largo, fragantes, color verde pálido con estambres blancos o cremas. Frutos en legumbre de 8-20 cm de largo y 2-3 cm de ancho, verde o verdeamarillentos, sin pelos. Fenología: Floración entre junio y agosto. Fructificación entre agosto y octubre. Dispersión: Por frutos (vainas) que caen al suelo con todas sus semillas ya germinadas, listas para establecerse formando grandes y densos semilleros. Además, por semillas que son dispersadas por los humanos que comen el arilo blanco y dulce que las recubre, y sembaradas debido a este uso como frutal. DISTRIBUCIÓN Distribución mundial: Nativa de América continental, se extiende desde el Sur de México hasta Bolivia, abarcando un amplio rango altitudinal, desde el nivel del mar hasta los 2000 m.s.n.m. Naturalizada en las Antillas. Distribución en Cuba: Proveniente de México, fue introducida durante la década de 1940 en una finca privada de la Sierra del Rosario, en la actual comunidad El Roble, probablemente como frutal. Actualmente es un problema en Sierra del Rosario, Artemisa. Invasde la vegetación de galería de los ríos San Cristóbal, Santiago y Manantiales. También en el río Bayate y afluentes, dentro de la Reserva de Biosfera, alrededores del poblado Las Terrazas y en el Salón. También en un pequeño sector del río San Miguel por la comunidad Los Cayos, donde fue introducida recientemente. Además, en la colección viva del Jardín Botánico Nacional en La Habana. Ecosistemas que invade en Cuba: Crece en bosques de galería, bosque siempreverdes, claros y bosques degradados, bordes de las principales carreteras de la Sierra del Rosario, así como caminos y veredas donde caen o son arrojadas las semillas luego de ser comido el arilo. nectario foliar 1 cm hoja compuesta con folíolos de diferentes tamaños folíolos con pelos diminutos Bosque de galería invadido por charagüito, Sierra del Rosario, Artemisa.