Pruebas de susceptibilidad antimicrobiana

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Transcripción:

Pruebas de susceptibilidad antimicrobiana CONSIDERACIONES GENERALES Todas las pruebas que se discutirán, dependen del cultivo bacteriano in vitro Requieren de un tiempo relativamente largo para la obtención de resultados (3-7 días) No infieren sobre la susceptibilidad bacteriana en biopelículas Sólo permiten la evaluación de especies cultivables Son aplicables únicamente para cultivos puros

Concentraciones mínimas inhibitorias (MIC) Definición Concentración más baja de un fármaco que inhibe el crecimiento visible de microorganismos después de su cultivo en presencia del agente Aplicación Estándar de oro en pruebas de susceptibilidad para diagnóstico e investigación Uso obligado en casos de endocarditis, meningitis, septicemia, osteomielitis, pacientes inmunosuprimidos, infecciones de prótesis y cuando no ha habido una buena respuesta a pesar de haber tenido resultado de S con antibiogramas En pacientes críticos para quienes se requiere una MIC exacta ( 10 diluciones) Ventajas Desventajas Proporciona concentraciones útiles clínicamente Permite establecer puntos de corte de sensibilidad y resistencia En comparación a los antibiogramas: Técnicamente más laborioso Requiere mayor tiempo para la obtención de resultados Es más costoso

Concentraciones mínimas inhibitorias (MIC) Suspender en caldo Transferir a pozos Caldo con diferentes conc. de 12 antibióticos Ajustar D.O. de 10 4 a 10 6 Incubar Conc. sugeridas 512 µg/ml 16 µg/ml 8 µg/ml 4 µg/ml 2 µg/ml 1 µg/ml 0.5 µg/ml 0.25 µg/ml 0.12 µg/ml 0.06 µg/ml 0.001 µg/ml 32 µg/ml 16 µg/ml 8 µg/ml 4 µg/ml 2 µg/ml 1 µg/ml 0.5 µg/ml MÉTODO DE DILUCIÓN EN CALDO Control* *Sin antibiótico Aplicación: Bajo número de cepas contra número elevado de antibióticos Estándares: CLSI (antes NCCLS) Metronidazol Eritromicina Vancomicina Clindamicina Amoxicilina Ampicilina Ciprofloxacina Cloranfenicol Amikacina Kanamicina Norfloxacina Gentamicina Determinar MIC a cada antibiótico

Concentraciones mínimas inhibitorias (MIC) Incubar Suspender en caldo Transferir a pozos (S/A) Control* 0.5 µg/ml 1 µg/ml 2 µg/ml 4 µg/ml 8 µg/ml 16 µg/ml 32 µg/ml Ajustar D.O. de 10 4 a 10 6 Replicar en placas de agar MÉTODO DE DILUCIÓN EN AGAR Aplicación: Elevado número de cepas contra bajo número de antibióticos Estándares: CLSI (antes NCCLS) Agar con diferentes conc. de 1 antibiótico *Sin antibiótico Determinar MIC de cada cepa

Concentraciones mínimas inhibitorias (MIC) Suspender en caldo Transferir en césped Incubar Ajustar D.O. de 10 4 a 10 6 Colocar tira con antibiótico Determinar MICs MÉTODO DE TIRAS DE GRADIENTE Aplicación: Elevado número de cepas contra elevado número de antibióticos

Interpretación de MICs- La relatividad de la susceptibilidad Interpretación clínica de la susceptibilidad = Resultado de la prueba MIC (µg/ml) + Valores de los puntos de corte No tienen utilidad per se Estándares del CLSI Se interpreta considerando las concentraciones que el fármaco puede alcanzar en el sitio de la infección después de administrar una dosis terapéutica Basados en las concentraciones que el fármaco puede alcanzar en el sitio de la infección después de administrar una dosis terapéutica FARMACOCINÉTICA Dosis, distribución y vida media del fármaco: factores que determinan la concentración alcanzable en el sitio de infección Difiere de fármaco a fármaco, de sitio a sitio y de paciente a paciente Por lo tanto, los puntos de cortes son diferentes para cada agente: Una MIC baja puede representar R a un fármaco y una MIC elevada S a otro por diferencias en sus puntos de corte

Interpretación de MICs- Puntos de corte e índices PD PUNTOS DE CORTE (PC) MIC < PC(1) = S MIC > PC(3) = R PC(2): Puede ser efectivo si la infección se localiza en sitios que concentran al fármaco ó cuando se pueden administrar dosis altas con seguridad ÍNDICES FARMACODINÁMICOS (PDI) Consideran la cinética y dinamia del fármaco junto con la MIC para determinar su efectividad Se compara el coeficiente del punto de corte (MBQ) con el valor de la MIC MBQ = Punto de corte(1) MIC <MIC y >MBQ: >eficacia del fármaco Antibiótico Susceptible (1) PUNTOS DE CORTE Intermedio (2) Resistente (3) EJEMPLOS MIC MBQ Interpretación A. Imipenem 8 16 32 48 0.17 R B. Ampicilina 2 4 8 4 0.5 I C. Cefotaxima 2 4 8 1 2 S D. Clindamicina 16 32 64 2 8 S E. Metronidazol 12 24 48 4 3 S (Concentraciones en µg/ml)

Interpretación de MICs R I S R I R I R I S R I S S S Fármaco A Fármaco B Fármaco C Fármaco D Fármaco E Antibiótico Susceptible (1) PUNTOS DE CORTE Intermedio (2) Resistente (3) EJEMPLOS MIC MBQ Interpretación A. Imipenem 8 16 32 48 0.17 R B. Ampicilina 2 4 8 4 0.5 I C. Cefotaxima 2 4 8 1 2 S D. Clindamicina 16 32 64 2 8 S E. Metronidazol 12 24 48 4 3 S (Concentraciones en µg/ml)

Concentraciones mínimas bactericidas (MBC) Definición Aplicación Ventajas Desventajas Concentración más baja de un fármaco capaz de matar microorganismos, se determina después de subcultivar en agar sin el agente, muestras de caldo sin crecimiento visible en una serie de diluciones para la determinación de MIC Se utiliza con menor frecuencia que las MICs Uso obligado en casos de endocarditis, meningitis y en pacientes críticos Proporciona concentraciones útiles clínicamente Permite identificar el efecto bactericida y bacteriostático del fármaco En comparación a MICs y antibiogramas: Técnicamente más laborioso Requiere mayor tiempo para la obtención de resultados Es más costoso

Concentraciones mínimas bactericidas (MBC) Subcultivo en agar sin antibiótico Incubar MIC: método de dilución en caldo Determinar MBC

Interpretación de MBCs Antibiótico Ejemplos Efecto Penicilinas Cefalosporinas Carbapenems Aminoglucósidos Quinolonas Amoxicilina Ampicilina Cefotaxima Cefalexina Imipenem Meropenem Amikacina Gentamicina Ciprofloxacina Levofloxacina Bactericida Bactericida Bactericida Bactericida Bactericida Lincosaminas Clindamicina Bacteriostático Macrólidos Azitromicina Claritromicina Bacteriostático Tetraciclinas Doxiciclina Minociclina Bacteriostático Nitroimidazoles Metronidazol Bacteriostático Fenólicos Chloramfenicol Bacteriostático Bactericida vs. Bacteriostático Bactericida: MBC 4 veces MIC Bacteriostático: MBC > 4 veces MIC

Antibiogramas- Prueba de Kirby-Bauer Definición Aplicación Ventajas Desventajas Método para determinar la susceptibilidad antimicrobiana de bacterias, basado en el tamaño de zonas de inhibición de crecimiento alrededor de discos impregnados con diferentes fármacos en un sembrado en césped Determinación rápida (presuntiva) de la susceptibilidad de microorganismos a diferentes antimicrobianos En casos donde se requiere un resultado rápido para la selección y administración inicial del antimicrobiano En comparación a MIC y MBC: Menos laborioso y costoso Requiere menos tiempo para la obtención de resultados No proporciona concentraciones útiles clínicamente Los resultados son un indicador pobre de la efectividad clínica del agente

Antibiogramas- Prueba de Kirby-Bauer Suspender en caldo Sembrado en césped Ajustar D.O. de 10 4 a 10 6 Colocar discos Incubar Medir zonas de inhibición

Interpretación de antibiogramas INTERPRETACIÓN ESTÁNDAR Diámetro 18 mm o radio 6 mm = S Diámetro < 18 mm o radio < 6 mm = R Lo anterior considera discos de 6 mm Los puntos de corte varían específicamente para algunos MO y/o antibióticos La interpretación debe basarse en los estándares vigentes del CLSI El punto de corte intermedio se interpreta igual que en MICs Ejemplo para E. coli y otros bacilos entéricos G(-) PUNTOS DE CORTE Antibiótico Conc. en disco (µg) Resistente Intermedio Susceptible Amikacina 30 14 15-16 17 Ampicilina 10 13 14-16 17 Cefazolina 30 14 15-17 18 Gentamicina 10 12 13-14 15 Tetracyclina 30 14 15-18 19 Ticarcilina 75 14 15-19 20 Trimetoprim 5 10 11-15 16 Tobramicina 10 12 13-14 15 (Diámetro en mm)