MUESTREO Y DETERMINACIÓN DE LARVAS DE MEJILLÓN CEBRA

Documentos relacionados
ACTUACIONES PARA LA DETECCIÓN PRECOZ DEL MEJILLÓN CEBRA (Dreissena polymorpha) EN LA CUENCA HIDROGRÁFICA DEL RÍO TAJO CAMPAÑA 2015 COMISARÍA DE AGUAS

DETECCIÓN PRECOZ DE MEJILLÓN CEBRA, DREISSENA POLYMORPHA, EN LOS EMBALSES DEL ÁMBITO DE LA CONFEDERACIÓN HIDROGRÁFICA DEL JÚCAR

DETECCIÓN PRECOZ DE MEJILLÓN CEBRA, DREISSENA POLYMORPHA, EN LOS EMBALSES DEL ÁMBITO DE LA CONFEDERACIÓN HIDROGRÁFICA DEL JÚCAR

DETECCIÓN PRECOZ DE MEJILLÓN CEBRA, DREISSENA POLYMORPHA, EN LOS EMBALSES DEL ÁMBITO DE LA CONFEDERACIÓN HIDROGRÁFICA DEL JÚCAR

DETECCIÓN PRECOZ DE MEJILLÓN CEBRA, DREISSENA POLYMORPHA, EN LOS EMBALSES DEL ÁMBITO DE LA CONFEDERACIÓN HIDROGRÁFICA DEL JÚCAR

Presencia de algas en agua de consumo

Presentación 01. El mejillón cebra. Un molusco exótico e invasor muy perjudicial

Laboratorio De Química TRABAJO PRÁCTICO Nº 3 SISTEMAS MATERIALES

diferentes sustratos Método de Baermann en embudo y modificación en vaso de precipitado. Rina G. de Kaminsky

1. OBTENCIÓN DE ADN DE BACTERIAS PATÓGENAS

EXTRACCIÓN DE ADN DE HONGOS FILAMENTOSOS

UNIVERSIDAD NACIONAL DEL SANTA FACULTAD DE CIENCIAS DEPARTAMENTO ACADEMICO DE BIOLOGÍA, MICROBIOLOGÍA Y BIOTECNOLOGÍA

ADHESIVIDAD DE LOS LIGANTES BITUMINOSOS A LOS AGREGADOS FINOS (Método Riedel-Weber) I.N.V. E

PRÁCTICA # 01 PREPARACIÓN DE DISOLUCIONES

EVALUACION DE LA ECOTOXICIDAD DEL AGUA EN LA ZONA INTERNA DEL ESTUARIO DE BAHÍA BLANCA 2016 Dra. Elisa R. Parodi

PRÁCTICAS TÉCNICAS DE SEPARACIÓN Y PREPARACIÓN DE DISOLUCIONES FÍSICA Y QUÍMICA 2º

MÉTODO PARA DETERMINAR EL CONTENIDO DE LIGANTE DE MEZCLAS ASFÁLTICAS POR CENTRIFUGACIÓN - ENSAYO DE EXTRACCIÓN

PRACTICA Núm. 22 INVESTIGACION DE COLIFORMES TOTALES Y FECALES EN DESECHOS SOLIDOS Y COMPOSTA

TÍTULO: Determinación de hidrocarburos en muestras de suelo mediante espectrofotometría

UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO F.E.S. IZTACALA METODOLOGÍA CIENTÍFICA IV Práctica 2: Determinación físico-química de suelo y agua.

Instrucciones de Uso INSTRUMENTAL DE PERFORACIÓN ÓSEA

MANUAL DE NORMAS Y PROCEDIMIENTOS PROCEDIMIENTO: OPERATIVOS DE ORINAS

COMO ABORDAR Y RESOLVER ASPECTOS PRÁCTICOS DE MICROBIOLOGÍA

1. OBJETIVO Detectar enterotoxina A de C. perfringens por método de aglutinación pasiva en látex en cepas aisladas de alimentos

PROCEDIMIENTO DE TOMA Y PRESERVACION DE MUESTRAS DE AGUA POTABLE

RESOLUCIÓN OIV-OENO

Fecundación, desarrollo embrionario y larvario del erizo de mar Paracentrotus lividus

Protocolo de desinfección de embarcaciones y equipos en masas de agua infectadas por mejillón cebra, Dreissena polymorpha

COMISIÓN NACIONAL GOBIERNO DE DE RIEGO

EXTRACCIÓN DE ADN (Doyle & Doyle, 1987)

PROCEDIMIENTO PARA REALIZAR CONCENTRACION DE VIRUS ENTERICOS EN MUESTRAS DE AGUA. PRT Página 1 de 5

IDENTIFICACIÓN DE LAS PROPIEDADES GENERALES DE LA MATERIA

Determinación de la Solubilidad de una Sal

ADHESIVIDAD DE LOS LIGANTES BITUMINOSOS A LOS ARIDOS FINOS (PROCEDIMIENTO RIEDEL-WEBER) MTC E


Determinación del Peso Molecular por Crioscopía

DETERMINACIÓN RÁPIDA DE NITRATO EN SUELOS AGRÍCOLAS Y EN AGUAS

Instructivo. Manejo de los Residuos Infecciosos

INFORME SOBRE DETECCIÓN DE LARVAS DE MEJILLÓN CEBRA EN LOS SISTEMAS ACUÁTICOS DE LA VERTIENTE MEDITERRÁNEA DE LA C.A.P.V.

MMP. MÉTODOS DE MUESTREO Y PRUEBA DE MATERIALES

Método de flotación con sulfato de zinc de densidad. heces por flotación. Rina G. de Kaminsky

MMP. MÉTODOS DE MUESTREO Y PRUEBA DE MATERIALES

PROCEDIMIENTO TECNICA NMP STAPHYLOCOCCUS AUREUS EN ALIMENTOS. BAM ONLINE 2001

QUE ES? Es la búsqueda de anticuerpos preformados contra los linfocitos de un posible donante en el suero de un paciente.

A continuación se ha llevado a cabo un análisis granulométrico por tamizado cuyos resultados se indican en la tabla.

Práctica 3. Solubilidad

FUNDAMENTO MATERIAL Y EQUIPOS. Entre otros materiales es necesario disponer de:

TRABAJO PRACTICO N 7 1. FITOPLANCTON

MMP. MÉTODOS DE MUESTREO Y PRUEBA DE MATERIALES

DETERMINAR DE FORMA EXPERIMENTAL EL CALOR QUE SE ABSORBE O DESPRENDE EN UNA REACCIÓN DE NEUTRALIZACIÓN EN MEDIO ACUOSO (NAOH + HCl) QUE EVOLUCIONA A

PRODUCCIÓN DE MICROALGAS.

Antes de comenzar el procesamiento, lavarse las manos y colocarse gorro, y guantes.

GASES Y ESTEQUIOMETRIA

ANÁLISIS DE MÉTODOS PARA LA OBTENCIÓN DEL RESIDUO DE EMULSIONES ASFÁLTICAS. Ponente Ing. Israel Sandoval Navarro

Reactivo de Barfoed -naftol (1% en etanol absoluto) Reactivo de Seliwanoff Reactivo de Fehling

En la naturaleza los microorganismos se encuentran en poblaciones mixtas de varios tipos. Para todos los estudios llevados a cabo en el laboratorio

Urilyzer. Duo. La evolución en el diagnóstico de orina. Desempeño confiable Fácil de manejar Costos efectivos de operación Apoyo profesional

TÉCNICAS DE CONTROL PARASITOLÓGICO DE LOS ALIMENTOS

PRÓXIMA CONVOCATORIA

DETERMINACIÓN DE BHA- BHT-PG-NDGA EN ALIMENTOS Método DAD-UV-HPLC ME

Informe del trabajo práctico nº6

LIMPIEZA Y DESINFECCION

ANEXOS. Anexo 1. Solución Reguladora de Acetato 0.1 M, ph 4.0 y metanol al 2% (v/v).

BUENAS PRÁCTICAS DE MUESTREO PARA LA RECOLECCION DE AGUA PARA EL ANALISIS MICROBIOLOGICO

El objeto de la presente IT es dar recomendaciones de muestreo de plantas, suelos y envio de las mismas. LABORATORIO

PRÁCTICA # 01 CONCENTRACIÓN DE SOLUCIONES

TRABAJO PRACTICO Nº 1 COMPOSICION QUIMICA DE LA CELULA

Protocolo de iniciación PCR. a tiempo real

ELABORÓ: Biól. Mar. Francisco Antonio Flores Higuera. Supervisor Técnico CSABCS Moluscos. 1. Introducción:

CANTIDAD DE PARTICULAS LIVIANAS EN LOS AGREGADOS PETREOS I.N.V. E

ÓSMOSIS DOMÉSTICA 1:1

CAPÍTULO 3: PROCEDIMIENTO. disgrega se cuartea el material ya sea mediante el cuarteador de muestras o por medio del

Determinación de ph en Suelos y Sedimentos

MISCIBILIDAD CON AGUA DE LAS EMULSIONES ASFÁLTICAS I.N.V. E

PRODUCCIÓN DE SEMILLA

MICOFLORA EN FRUTOS FRESCOS DE ARANDANOS ACONDICIONADOS PARA EXPORTACIÓN

Propiedades fisicoquímicas y funcionales de los alimentos 2015

PRÁCTICAS DEL LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA GENERAL Trimestre 14-I

TEMA 2.3. TÉCNICAS UTILIZADAS PARA LA DETECCIÓN DE LOS INDICADORES DE CALIDAD MICROBIOLÓGICA

Practica No 6. Reactivo Limitante. Determinar la especie que actúa como reactivo limitante en la siguiente reacción química:

PRACTICA N 1: PROPIEDADES DE LOS FLUIDOS: DENSIDAD Y VISCOSIDAD.

Estimación de la viscosidad de un líquido

TEMA 2.1 Conceptos de calor y temperatura a partir de la energía cinética promedio que posee la materia

MEZCLA MECÁNICA DE PASTAS DE CEMENTO HIDRÁULICO Y MORTEROS DE CONSISTENCIA PLASTICA I.N.V. E

ACIDOS CARBOXILICOS Y ESTERES. ELABORADO POR: Lic. Raúl Hernández Mazariegos

RECOPILADO POR: EL PROGRAMA UNIVERSITARIO DE ALIMENTOS

NUTRICIÓN ENTERAL EN FORMA DE BOLUS CON JERINGA

Tenga en cuenta el espacio pequeño. Me pareció que el espacio aéreo más, un CDS más débiles se produjo. Tanto como el 50% menos!

CRISTALIZACIÓN: PURIFICACIÓN DEL ÁCIDO BENZOICO. Purificar un compuesto orgánico mediante cristalización y determinar su punto de fusión

SUTURA NYLON TRENZADO

RepublicofEcuador EDICTOFGOVERNMENT±

Normas de Uso LABORATORIO DE PROCESADO DE MUESTRAS CAMARAS CLIMATICAS Y UNIDAD DE EXPERIMENTACION ANIMAL. Estación Biológica de Doñana CSIC

1. Disoluciones una disolución es cualquier mezcla homogénea disolvente soluto Medidas de composición

Cristalización. ( Práctica da ESO no curso )

Una muestra de agua se toma y analiza para proporcionarnos información del estado de la misma en el momento del muestreo.

CaCl 2(ac) + K 2 CO 3(ac) CaCO KCl (ac)

PRÁCTICAS DE DE TERMODINÁMICA

Métodos para la determinación de grasas

RECOPILADO POR: EL PROGRAMA UNIVERSITARIO DE ALIMENTOS

Protocolo de larva del mosquito Guía de Campo de larva del mosquito

Transcripción:

MUESTREO Y DETERMINACIÓN DE LARVAS DE MEJILLÓN CEBRA Octubre 2006

ÍNDICE DE CONTENIDO 1. FUNDAMENTO DEL MÉTODO 2. MATERIAL NECESARIO 3. PREPARACIÓN DE LA MUESTRA 4. PROCEDIMIENTO OPERATIVO 5. IDENTIFICACIÓN Y CUANTIFICACIÓN 6. EXPRESIÓN DE LOS RESULTADOS 2

1. FUNDAMENTO DEL MÉTODO El mejillón cebra es un molusco bivalvo de aproximadamente 3 cm. de tamaño en su estado adulto y con un aspecto similar a los mejillones marinos. Las hembras se reproducen en el segundo ciclo de vida; la fecundación es externa, y cada puesta es de unos 40.000 huevos; unos días después de la fertilización nace una larva planctónica que el primer mes se convertirá en juvenil. Puede producir un millón de descendientes en un año. Es altamente tolerante a variaciones de salinidad y temperatura, incluso resiste varios días fuera del agua, lo cual permite su dispersión, pudiendo ocasionar un grave riesgo ambiental. El estudio visual es la técnica más utilizada para la identificación y cuantificación de larvas de bivalvos. La identificación se realiza con microscopía simple para observar sus características morfológicas y mediante microscopía de polarización para reconocer la peculiaridad óptica que le confiere el acumulo de calcita en sus valvas. En ambos casos, a pocos aumentos (x100). El uso de pruebas moleculares es útil para la identificación en algún caso, aunque inadecuado para recuento. La cuantificación se lleva a cabo tomando muestras de agua con una red de plancton de 50 µm de tamaño de malla (figura 1); estas larvas retenidas se separan de la red mediante la apertura de la válvula que se encuentra en el cilindro de muestreo (figura 2). El agua resultante es centrifugada y su sedimento llevado al microscopio y estudiado cuantitativamente, mediante cámara de contaje (figura 3). El resultado es el número de larvas contenidas en la muestra (usualmente 50 litros). 3

Figura 2: Válvula del cilindro de muestreo Figura 1: Red de Plancton de 50 µm de tamaño de malla Figura 3: Cámara de contaje 2. MATERIAL NECESARIO - Cubo de plástico de capacidad 5L ó 10 L. Se utiliza un cubo diferente en cada estación de muestreo. Al llegar al laboratorio se impregna cada uno de los cubos en una solución de lejía al 50% y se le deja actuar 12 horas antes de aclararlos. - Red de plancton de 250 mm de diámetro, 400 cm de tamaño y tamaño de malla de 50 µm con cilindro de muestra. - Cámara de contaje 0.0025 mm 2. - Cubres de 22 x 22 mm. - Botes de plástico estériles de 100 ml de capacidad conteniendo 0.3 ml de etanol para recolectar el agua filtrada. 4

- Termómetro digital portátil. - Conductivímetro portátil. - Microscopio de luz polarizada. - Microscopio simple. - Tubos de ensayo. - Centrifugadora. - Agua destilada. 3. PREPARACIÓN DE LA MUESTRA La muestra tiene que ser analizada antes de las 24 horas de haber sido recogida. Mientras tanto, se almacenará la muestra a temperatura no superior a 20 º C y en oscuridad. 4. PROCEDIMIENTO OPERATORIO Consta de tres pasos: recolección de la muestra, concentración en tubos de ensayo y estudio del sedimento. 4.1. Recolección de la muestra. 4.1.1. Tomar 50 litros de agua con cubo, preferiblemente del centro del río y pasarlos por la red de plancton. Un último cubo con agua limpia, se vierte por fuera de la red, de modo que arrastre las larvas que se hayan quedado adheridas en las paredes interiores. 4.1.2. Recoger el concentrado en un bote de 100 ml y guardarlo en nevera. 5

4.2. Concentración en tubos de ensayo 4.2.1. Verter aproximadamente 10 ml de muestra en un tubo de ensayo. 4.2.2. Centrifugar 5 minutos a 3500 r.p.m 4.2.3. Retirar el sobrenadante. 4.2.4. Volver a verter muestra hasta aproximadamente 10 ml de volumen. 4.2.5. Centrifugar a 3500 r.p.m. 4.2.6. Repetir los pasos 4.2.3, 4.2.4 y 4.2.5 hasta agotar la muestra. 4.2.7. Desechar el sobrenadante. 4.3. Estudio del sedimento 4.3.1. Retirar el sedimento y colocarlo sobre la cámara de contaje; protegerlo con el cubre y llevarlo al microscopio. Realizar el recuento contabilizando todos los individuos de mejillón cebra que se hallen en la superficie destinada al recuento de la cámara de contaje. Anotar en el cuaderno de laboratorio el número de individuos reconocido así como la fase larvaria en la que se encuentran. 6

Al terminar el procedimiento operativo, se retira todo el material desechable al contenedor de residuos. El material reutilizable se desinfecta con lejía, o en su caso, se pasa por el autoclave. 4.3.2. En el cuaderno de laboratorio se anotará, además del número de individuos y fase larvaria, el volumen de muestra filtrado si éste ha sido distinto a 50 litros y cualquier incidente susceptible de influir en los resultados. 5. IDENTIFICACIÓN Y CUANTIFICACIÓN 5.1.1. Identificación: se considera larva del mejillón cebra a las estructuras que a la luz polarizada del microscopio muestran la cruz de Malta en su superficie, ya que en el Ebro no se han detectado otras especies. Comprobar su morfología con microscopía simple, para poder hacer la clasificación de la fase larvaria así como hacer una identificación de su morfología. 5.1.2. Cuantificación: es la suma de todos los individuos para una misma estación de muestreo. 6. EXPRESIÓN DE LOS RESULTADOS Se expresará el número de individuos identificados por litro (Nº/ L). 7