COMO ABORDAR Y RESOLVER ASPECTOS PRÁCTICOS DE MICROBIOLOGÍA

COMO ABORDAR Y RESOLVER ASPECTOS PRÁCTICOS DE MICROBIOLOGÍA 2. ENUMERACIÓN DE MICROORGANISMOS Inés Arana, Maite Orruño e Isabel Barcina Departamento Inmunología, Microbiología y Parasitología Universidad del País Vasco/Euskal Herriko Unibertsitatea

2. ENUMERACIÓN DE MICROORGANISMOS Existen diversos métodos para enumerar microorganismos en muestras de muy diferente origen. Cada método tiene sus peculiaridades a la hora de transformar los datos obtenidos en una densidad microbiana de la muestra estudiada, bien sea Unidades Formadoras de Colonias, Microorganismos Totales, etc. Un método sencillo para la enumeración de bacterias y hongos se basa en la cuantificación de Unidades Formadoras de Colonias (UFC) por ml o g de muestra. En el capítulo anterior ya se han resuelto problemas basados en el empleo de este método. Sin embargo, debe tenerse en cuenta que el número de placas sembradas por dilución suele ser 3 ó 5. Cuando realizamos diferentes diluciones decimales y sembramos más de una placa por dilución, a la hora de interpretar los resultados tenemos diferentes posibilidades. En nuestro caso utilizaremos el método más sencillo: seleccionaremos una única dilución, aquella que produce entre 30 y 300 colonias por placa y calcularemos la media de colonias obtenidas para la dilución seleccionada. UFC/ml = A colonias enumeradas (media) B ml sembrados X Factor de dilución UFC/ml = A colonias enumeradas (media) 1 X B ml sembrados Factor de concentración Con las nociones adquiridas en el capítulo anterior, se deben proponer soluciones para los problemas siguientes: 2.1. Calcular la densidad bacteriana expresada como UFC/ml de las tres diferentes muestras cuyos resultados y diluciones realizadas se presentan en la tabla. El volumen sembrado es 100 µl/placa. Muestra Dilución sembrada Placa 1 Placa 2 Placa 3 1 2 3 10-3 1816 1698 1885 10-4 180 159 186 10-5 16 19 10 10-2 475 477 480 10-3 45 48 51 10-4 5 10 4 10 0 335 328 324 10-1 32 28 29 10-2 5 3 2

2.2. Sabiendo que se siembran 100 µl por placa y 3 placas por muestra, cuál sería, en este caso, el límite de detección de la técnica de enumeración de bacterias cultivables (UFC)?. Y, si se siembran 5 placas por muestra? 2.3. Un cultivo bacteriano dado tiene una densidad de 5 10 8 UFC/ml. Sabiendo que se sembraron 0,1 ml en la placa y tras la incubación se enumeraron 50 colonias, cuál es la dilución que se sembró? 2.4. Se ha determinado la densidad bacteriana de una suspensión bacteriana mediante el método de siembra en microgota (volumen sembrado entre 10 y 20 µl y sin extensión de la gota). Los resultados y diluciones realizadas se presentan en la tabla. El volumen sembrado es 10 µl. Dilución sembrada Recuento 1 Recuento 2 Recuento 3 10-3 180 159 186 10-4 16 19 10 Cuál es la densidad bacteriana de la muestra? 2.5. En el caso del método de la microgota, sembrando 10 µl y 3 réplicas por muestra, cuál es el límite de detección de esta técnica de enumeración? Otra técnica de enumeración habitual es el método del Número Más Probable (NMP). Se trata de un método de enumeración basado en la estadística. Debe determinarse un número característico que permite obtener el NMP. Resuelva los siguientes problemas utilizando la Tabla de MacGrady que se adjunta. Tabla de MacGrady (1 ml/tubo, 3 tubos/dilución, 3 diluciones consecutivas). Resultado expresado como bacterias/ml Número característico NMP Número característico NMP Número característico NMP 000-201 1,4 302 6,5 001 0,3 202 2,0 310 4,5 010 0,3 210 1,5 311 7,5 011 0,6 211 2,0 312 11,5 020 0,6 212 3,0 313 16,0 100 0,4 220 2,0 320 9,5 101 0,7 221 3,0 321 15,0 102 1,1 222 3,5 322 20,0 110 0,7 223 4,0 323 30,0 111 1,1 230 3,0 330 25,0 120 1,1 231 3,5 331 45,0 121 1,5 232 4,0 332 110,0 130 1,6 300 2,5 333 140,0 200 0,9 301 4,0

2.6. A partir de una muestra de agua se elaboran las diluciones 1/10 y 1/100. Paralelamente, se preparan 3 series de 3 tubos que contienen cada uno de ellos 10 ml de Caldo Nutritivo. La primera serie de tubos se inocula directamente con la muestra de agua. La segunda serie se inocula con la dilución 1/10 y la tercera, con la dilución 1/100. El volumen inoculado es en todos los casos de 1 ml de muestra o dilución correspondiente por tubo de medio de cultivo. Las series inoculadas se incuban durante 48 h a 20ºC y al finalizar el periodo de incubación se comprueba la presencia de turbidez, indicativa de crecimiento, en cada uno de los tubos. A partir de los resultados expresados en la tabla, Cuál es la densidad bacteriana de esa muestra de agua?: Procesamiento Resultado Tubos* Muestra C C C Dilución 1/10 C C C Dilución 1/100 NC C NC *C = crecimiento = medio turbio; NC = no crecimiento = medio transparente. 2.7. Utilizando el ejemplo anterior, si no se hubiera detectado crecimiento en ninguno de los tubos inoculados, qué densidad bacteriana daría como resultado del estudio? 2.8. Para facilitar la enumeración de microorganismos presentes en una tarta, se realiza el siguiente procedimiento: a 62,5 g de tarta se añaden 187,5 ml de agua de peptona tamponada. A partir de esta suspensión se preparan tres diluciones decimales seriadas. Paralelamente, se preparan, 4 series de 3 tubos con caldo MacConkey a razón de 10 ml de medio por tubo. Tras incubar a 44,5ºC, los resultados obtenidos son los siguientes: Procesamiento Resultado Tubos* 62,5 g de tarta + 187,5 ml de agua de peptona A A A Dilución decimal 10-1 A A M Dilución decimal 10-2 A M M Dilución decimal 10-3 M M M *Cada tubo se ha inoculado con 1 ml de suspensión o dilución correspondiente. A = amarillo, M = morado. Cuál es la densidad de microorganismos presente en la tarta expresada en bacterias/g? Sabiendo que la composición del caldo MacConkey es: peptona, 20 g; bilis de buey desecada, 5 g; lactosa, 10 g; púrpura de bromocresol, 0,03 g en 1 litro de agua destilada, podría aportar más información acerca del tipo de bacterias y dar una característica metabólica de las mismas? También podemos utilizar métodos de enumeración basados en la microscopia (fotónica, epifluorescencia, ) para determinar el número total de microorganismos.

Los microorganismos relativamente grandes tales como levaduras o protistas pueden enumerarse utilizando cámaras de recuento. Las ecuaciones que deben utilizarse, dependiendo de si la muestra se ha diluido o concentrado son las siguientes: Microorganismo/ml = Nº medio de microorganismos/cuadrícula Nº ml/cuadrícula* X Factor de dilución Microorgansimos/ml = Nº médio de microorganismos/cuadrícula 1 X Nº ml/cuadrícula* Factor de concentración Debe prestarse atención a las unidades de cada uno de los factores de la ecuación. El resultado final se expresa como Nº de microorganismos por volumen de muestra. *Este factor, propio de cada cámara de recuento, puede venir expresado como cuadrícula/ml o ml -1, en este caso el factor aparecerá en el numerador de la ecuación. 2.9. Se enumeran los microorganismos presentes en una suspensión densa de levaduras. Esta suspensión se diluye 1.000 veces antes de preparar la cámara de recuento. El factor de la cámara dado por el fabricante es 0,25 10-6 ml/cuadrícula. Si los resultados obtenidos son los presentados en la tabla, cuál es el número de levaduras por ml de dicha suspensión? Cuadrícula 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 N 12 14 12 11 12 14 15 12 9 11 12 14 15 10 11 9 10 11 12 14 2.10. Cuál sería el límite de detección del método de recuento de levaduras totales empleando cámara de recuento (hemocitómetro), si contamos un máximo de 20 campos en la cámara y el factor de la misma es 1,5 10 5 /ml?

Desde hace varias décadas la microscopia de epifluorescencia permite la enumeración de microorganismos previamente teñidos con fluorocromos. Esta técnica es muy válida para la cuantificación de bacterias. La ecuación empleada para transformar los datos obtenidos en una densidad microbiana es: Microorganismo/ml = Nº microorganismos/campo Nº ml/filtro X Factor microscopio X Factor de dilución El factor del microscopio se expresa como Nº de campos por filtro. 2.11. Se desea estimar la densidad bacteriana de una muestra de agua. Para ello, 100 µl de la muestra se tiñen con naranja de acridina y se filtran a través de un filtro de membrana de 0,2 µm de diámetro de poro. El filtro se monta sobre un portaobjetos y se observa utilizando un microscopio de epifluorescencia. Se cuentan 20 campos obteniéndose los siguientes recuentos bacterianos por campo: Campo 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 N 15 12 11 9 21 16 13 13 15 20 22 13 14 12 18 17 9 22 18 18 Sabiendo que el factor de conversión del microscopio es de 30.954 campos/filtro, cuál es la densidad bacteriana de la muestra? Si se hubiera filtrado 1 ml de la dilución 10-2, utilizando los mismos recuentos, cuál es la densidad bacteriana de la muestra? 2.12. Calcule la densidad de las suspensiones bacterianas que se indican en la tabla teniendo en cuenta que las cuantificaciones se han realizado empleando microscopia de epifluorescencia. Los volumenes filtrados y las diluciones empleadas, así como, el número de bacterias por campo se

detallan en la tabla. El factor del microscopio de epifluorescencia utilizado es 64.761,9 (N de campos/filtro). Muestra Volumen filtrado Dilución N bacterias/campo 1 1 ml Muestra 25/32/31/30/35/21/14/21/21/20 2 100 µl 10 0 22/22/21/22/23/23/21/17/21/21 3 50 µl 10-1 23/23/22/21/23/24/15/31/24/24 4 100 µl 10-2 6/8/11/9/13/7/7/8/9/11 2.13. Cuál sería el límite de detección del método de recuento de bacterias totales mediante microscopia de epifluorescencia, si el volumen máximo que podemos filtrar es 5 ml, F es 34.520 campos/filtro y contamos un máximo de 30 campos por filtro? 2.14. En el río Butrón a su paso por Munguía, se recogieron muestras de agua. Ya en el laboratorio, se preparó un matraz de 1.000 ml con 500 ml de muestra no tratada. El matraz se inoculó con E. coli (densidad final, aproximadamente 10 6 UFC/ml) y se incubó durante 6 días a 20 C (120 r.p.m.). Periódicamente, se tomaron alícuotas encaminadas a la enumeración de E. coli y de protozoos flagelados. La enumeración de UFC de E. coli se realizó en Agar EMB (Medio selectivo y diferencial en el que E. coli produce colonias verdes metálicas características). La enumeración de protozoos flagelados se realizó mediante microscopia de epifluorescencia en alícuotas filtradas a través de filtros de 0,8 µm de diámetro de poro y teñidas con DAPI (factor del microscopio de epifluorescencia utilizado, 64761,9 campos/filtro). Se obtuvieron los resultados expresados en la tabla: Tiempo (d) Dil. Vol. Sembrado (µl) Colonias/placa Dil. Vol. Filtrado (ml) N flagelados/campo 0 10-3 100 96/96/108 M 40 4/6/6/5/4/1/1/3/4/5 6/4/4/3/1/2/1/4/4/3 1 10-3 100 106/111/98 2 10-1 100 240/216/248 10-1 5 8/7/6/7/8/8/5/5/7/8 8/7/7/5/5/7/8/3/7/5 3 M* 100 315/296/298 4 M 100 88/76/78 10-1 20 3/4/3/3/0/3/4/1/4/2 0/0/2/4/3/6/7/7/6/4 5 M 1000 265/267/281 6 M 1000 166/166/168 10-1 40 4/4/3/4/5/0/0/3/4/3 3/2/4/4/2/1/0/6/4/2 * M = muestra. Cuál es el efecto de la población de protozoos flagelados sobre la supervivencia de E. coli?. 2.15. Sospechamos que la densidad de un cultivo bacteriano cuando alcanza la fase estacionaria de crecimiento es de 4 10 8 células/ml. Para confirmar la densidad del cultivo utilizaremos el método de enumeración basado en el empleo de microscopia de epifluorescencia. Sabiendo que

se recomienda enumerar unas 20-30 bacterias por campo y que el factor del microscopio utilizado es 20.000 campos/filtro, para una correcta enumeración qué dilución de la muestra y que volumen de dilución recomendaría filtrar? 2.16. Debemos preparar 20 ml de la dilución 10-3 de un cultivo microbiano. Indique como la realizaría. A continuación: 5 ml de esta dilución se filtran para cuantificar las bacterias cultivables presentes. Este filtro se coloca sobre un medio de cultivo adecuado. Tras la incubación se cuentan 125 colonias. Qué número de UFC/ml tiene la muestra? Otros 10 ml se filtran por un filtro de 0,22 µm de diámetro de poro y se tiñen con naranja de acridina. Los recuentos obtenidos mediante microscopia de epifluorescencia son: 15/14/13/20/12/10/15/17/16/17. Cuál es la densidad bacteriana total si el factor del microscopio es 1.920 campos/filtro? 2.17. Cuál es el porcentaje de células cultivables Gram negativas en un cultivo mixto? Razone la respuesta. Sabemos que: Siendo el volumen filtrado es 2 ml de la dilución 10-2 y el factor del microscopio, 15.000 campos/filtro, los recuentos obtenidos mediante microscopia de epifluorescencia son: 22/21/20/23/22/22/23/24/25/25.. Tras sembrar 3 placas de Agar MacConkey con 0,1 ml de la dilución 10-3, los resultados obtenidos fueron: Lactosas positivas = 170/165/182 y Lactosa negativas = 80/70/76. Un método clásico, y muy sencillo, de cuantificación de microorganismos se basa en la medición de la Absorbancia (a una determinada longitud de onda) de una suspensión microbiana y la transformación de este valor en un número de células (o UFC) por ml. Obviamente, este método requiere de un estudio previo en el que se preparan diferentes diluciones de la suspensión microbiana y para cada dilución se determina el valor de Absorbancia y el Nº de microorganismos/ml. Con esta información se obtiene una ecuación que relaciona ambos parámetros y, en estudios posteriores, nos permitirá conociendo la Absorbancia determinar la densidad microbiana. 2.18. Un cultivo de Klebsiella pneumoniae en fase exponencial tiene una absorbancia = 0,2 medida a 600 nm. Al realizar un recuento en placa se contaron 40 colonias tras sembrar 0,2 ml de la dilución 10 4 del cultivo. a) Calcula la densidad del cultivo. b) Calcula las UFC totales si el volumen del cultivo es de 3 ml.

c) Qué diluciones deberías realizar a partir del mismo cultivo de K. pneumoniae cuando alcanza una absorbancia = 0,5 para contar en una placa 100 colonias después de sembrar 0,2 ml? 2.19. A partir de una suspensión densa de Escherichia coli se han preparado suspensiones diferentes en las que se han determinado Absorbancia y UFC/ml. Los resultados obtenidos se expresan en la siguiente tabla: Suspensión Absorbancia (550 nm) Bacterias/ml 1 0,020 3,55 10 6 2 0.052 2,04 10 7 3 0,102 5,65 10 7 4 0,164 1,95 10 8 5 0,213 4,75 10 8 6 0,264 6,90 10 8 Cuál sería la densidad de una suspensión con Absorbancia = 0,18? 2.20. Se ha obtenido la siguiente ecuación que relaciona Absorbancia (600 nm) y Klebsiella pneumoniae/ml: N bacterias/ml = 1,032 10 7 Abs 2,19 10 5. Se toma una alícuota de un cultivo de K. pneumoniae, se diluye 10 veces y se determina la Absorbancia (600 nm) de la dilución. El valor obtenido es 0,49. Cuál es la densidad del cultivo.

PROPUESTAS DE RESOLUCIÓN 2.1. UFC/ml? Volumen sembrado = 100 µl/placa. Muestra Dilución sembrada Placa 1 Placa 2 Placa 3 UFC/ml 1 2 3 10-3 1816 1698 1885 10-4 180 159 186 1,75 10 7 10-5 16 19 10 10-2 475 477 480 10-3 45 48 51 4,8 10 5 10-4 5 10 4 10 0 335 328 324 10-1 32 28 29 2,97 10 3 10-2 5 3 2 2.2. Límite detección del método de enumeración de UFC. Supuesto: 100 µl sembrados/placa, 3 placas/muestra. 0,1 ml 0,1 ml 0,1 ml Caso real (colonias enumeradas): 0 0 0 Caso límite para enumeración: 0 0 1 0,33 colonias 0,1 ml inoculados = 3,3 UFC/ml Caso límite para enumeración: 1 colonia/3 placas = 3,3 UFC/ml Caso real: 0 colonias/3 placas = Límite de detección: <3,3 UFC/ml Límite detección del método de enumeración de UFC. Supuesto: 100 µl sembrados/placa, 5 placas/muestra. Límite de detección: <2 UFC/ml 2.3. Densidad = 5 10 8 UFC/ml. 0,1 ml/placa. 50 colonias, Dilución sembrada? 50 colonias x D 0,1 ml inoculados = 5 10 8 UFC/ml D = 10 6 2.4. Microgota (10 µl/gota). UFC/ml? Dilución sembrada Recuento 1 Recuento 2 Recuento 3 UFC/ml 10-3 180 159 186 10-4 16 19 10 1,5 10 3

2.5. Límite de detección del método de microgota: 10 µl/gota, 3 réplicas/muestra (dilución). 0,33 colonias = 33,3 UFC/ml 0,01 ml inoculados Caso límite para enumeración: 1 colonia/3 gotas = 33,3 UFC/ml Caso real: 0 colonias/3 gotas = Límite de detección: <33,3 UFC/ml 2.6. NMP. Densidad bacteriana? muestra dilución 1/10 dilución 1/100 Volumen inoculado = 1 ml muestra o dilución Se incuban 48 h a 20ºC Se comprueba crecimiento (turbidez) 3 3 1 45 bacterias/ml 2.7. NMP. Límite de detección? muestra dilución 1/10 dilución 1/100 Caso real (tubos ( positivos): 0 0 0 Caso límite para enumeración: e 1 0 0 0,3 bacterias/ml Límite de detección <0,3 bacterias/ml 2.8. NMP. Microorganismos presentes? Procesamiento Resultado Tubos* 62,5 g de tarta + 187,5 ml de agua de peptona A A A Dilución decimal 10-1 A A M Dilución decimal 10-2 A M M Dilución decimal 10-3 M M M *M = Morado = Ausencia de crecimiento. A = Amarillo = Fermentación de lactosa Nº característico = 321 = 15 microorganismos Dilución = 62,5 / 250 = 1 / 4 NMP = 15 x 4 = 60 bacterias Gram Lac+/g

2.9. Suspensión de levaduras. Diluir 1.000 veces. Factor de la cámara = 0,25 10-6 ml/cuadrícula. Nº Levaduras/ml dde suspensión? Cuadrícula 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 N 12 14 12 11 12 14 15 12 9 11 12 14 15 10 11 9 10 11 12 14 12 células/cuadrícula 0,25 10-6 ml/cuadrícula X 1.000 = 4,8 10 10 levaduras/ml 2.10. Cámara de recuento. Cuadrículas contadas = 20. Factor = 1,5 10 6 cuadrícula/ml. Límite de detección? Caso real (células/cuadrícula ( células/cuadrícula): 0 Caso límite para enumeración: 1 célula en 1 cuadrícula de las 20 enumeradas 1 célula/20 cuadrículas X 1,5 10 6 cuadrículas/ml = 7,5 10 4 levaduras/ml Límite de detección <7,5 10 4 levaduras/ml 2.11. Microscopia de epifluorescencia. Volumen filtrado = 100 µl. Factor = 30.954 campos/filtro. Densidad bacteriana? Campo 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 N 15 12 11 9 21 16 13 13 15 20 22 13 14 12 18 17 9 22 18 18 15,4 bacterias/campo X 30.954 campos/filtro 0,1 ml/filtro = 4,77 10 6 bacterias/ml Volumen filtrado = 1 ml. Dilución 10-2. Factor = 30.954 campos/filtro. Densidad bacteriana? 15,4 bacterias/campo X 30.954 campos/filtro X 100 = 4,77 10 7 bacterias/ml 1 ml/filtro 2.12. Microscopia de epifluorescencia. Factor = 64.761,9 campos/filtro. Muestra Volumen filtrado Dilución N bacterias/campo N bacterias/ml 1 1 ml Muestra 25/32/31/30/35/21/14/21/21/20 1,62 10 6 2 100 µl 10 0 22/22/21/22/23/23/21/17/21/21 1,38 10 7 3 50 µl 10-1 23/23/22/21/23/24/15/31/24/24 2,98 10 8 4 100 µl 10-2 6/8/11/9/13/7/7/8/9/11 5,76 10 8

2.13. Microscopia de epifluorescencia. Volumen máximo filtrado = 5 ml. Factor = 34.520 campos/filtro. 30 campos/filtro Caso real (células/campo ( células/campo): 0 Caso límite para enumeración: 1 célula en 1 campo de los 30 enumerados 1 bacteria/30 campos X 34.520 campos/filtro 5 ml/filtro = 230 bacterias/ml Límite de detección <230 bacterias/ml 2.14. Efecto de la población de protozoos flagelados sobre la población de E. coli. (Factor = 64761,9) Tiempo (d) Dil. Vol. Sembrado (µl) Colonias/placa UFC/ml Dil. Vol. Filtrado (ml) flagelados/campo 0 10-3 100 96/96/108 10 6 M 40 4/6/6/5/4/1/1/3/4/5 6/4/4/3/1/2/1/4/4/3 1 10-3 100 106/111/98 1,05 10 6 2 10-1 100 240/216/248 2,35 10 4 10-1 5 8/7/6/7/8/8/5/5/7/8 8/7/7/5/5/7/8/3/7/5 3 M* 100 315/296/298 3,03 10 3 4 M 100 88/76/78 8,07 10 2 10-1 20 3/4/3/3/0/3/4/1/4/2 0/0/2/4/3/6/7/7/6/4 5 M 1000 265/267/281 271 6 M 1000 166/166/168 166,67 10-1 40 4/4/3/4/5/0/0/3/4/3 3/2/4/4/2/1/0/6/4/2 Flagelados/ml 5,75 10 3 8,48 10 5 1,07 10 5 14,70 10 4 M = muestra. 7 6 5 log Nº m.o./ml 4 3 2 1 0 E. coli/ml Protozoos/ml 0 1 2 3 Tiempo (d) 4 5 6

2.15. Microscopia de epifluorescencia. Volumen filtrado? Dilución? 25 bacterias/ campo X 20.000 campos/filtro V ml/filtro = 4 10 8 bacterias/ml V = 1,25 10-3 ml V = 1,25 ml D = 10 3 2.16. 20 ml dilución 10-3. - Dilución 10-1 = 1 ml Muestra + 9 ml Diluyente - Dilución 10-2 = 1 ml Muestra + 9 ml Dilución 10-1 - Dilución 10-3 = 2 ml Muestra + 18 ml Dilución 10-2 UFC/ml? 125 colonias X 10 3 = 2,5 10 4 UFC/ml 5 ml Nº total de bacterias/ml? Nº medio bacterias/campo = 14,9. 14,9 bacterias/campo X 1.920 X 10 3 = 2,86 10 6 bacterias/ml 10 ml 2.17. Porcentaje de células Gram negativas cultivables? 22,7 bacterias/campo X 15.000 X 10 2 2 ml [172,33 (Lac+) + 75,33 (Lac-)] colonias X 10 3 0,1 ml 14,59 % = 1,7 10 7 bacterias/ml = 2,48 10 6 UFC Gram -/ml 2.18. Densidad del cultivo de K. pneumoniae? 40 colonias X 10 4 0,2 ml = 2 10 6 UFC/ml UFC totales en 3 ml? 2 10 6 UFC/ml X 3 ml = 6 10 6 UFC totales Dilución? 0,2 Abs 2 10 6 UFC/ml 0,5 Abs 5 10 6 UFC/ml 100 colonias X D 0,2 ml D = 10 10-4 = 5 10 6 UFC/ml

2.19. Densidad de una suspensión de E. coli con Absorbancia (550) = 0,18? Suspensión Absorbancia (550 nm) Bacterias/ml Log bact b acterias erias/ml 1 0,020 3,55 10 6 6,55 2 0.052 2,04 10 7 7,31 3 0,102 5,65 10 7 7,75 4 0,164 1,95 10 8 8,29 5 0,213 4,75 10 8 8,68 6 0,264 6,90 10 8 8,84 Log bacterias/ml = 8,982 Abs + 6,683 (r = 0,97) 1,994 10 8 bacterias/ml 2.20. Klebsiella pneumoniae. N bacterias/ml= 1,032 10 7 Abs 2,19 10 5. Densidad de um cultivo co Absorbância = 0,49. N bacterias/ml= 1,032 10 7 0,49 2,19 10 5 4,84 10 6 bacterias/ml