OTROS ASPECTOS RECOGIDOS EN LA OBSERVACIÓN MICROSCÓPICA DE UN FANGO ACTIVO

Transcripción

1 OTROS SPECTOS RECOGIDOS EN L OSERVCIÓN MICROSCÓPIC DE UN FNGO CTIVO utores de texto Laura Isac, Eva Rodríguez, Mª Dolores Salas y Natividad Fernández Grupo ioindicación Sevilla (GS) utores de fotografías ndrés Zornoza y GS

2 OTROS SPECTOS RECOGIDOS EN L OSERVCIÓN MICROSCÓPIC DE UN FNGO CTIVO ESTDOS GENERLES DE FLOCULCIÓN Y DECNTCIÓN 01. ESTDOS GENERLES DE FLOCULCIÓN 02. CRECIMIENTO DISPERSO 03. FLÓCULO EN LFILER 04. EVOLUCIÓN DEL ULKING FILMENTOSO 05. EL FENÓMENO DE FOMING 06. EL FENÓMENO DE ULKING VISCOSO 07. FNGO CTIVO DE OXIDCIÓN TOTL 08. PROCESOS DE DESNITRIFICCIÓN OTRS CTERIS PRESENTES EN EL LICOR MEZCL 09. CTERIS DE CRECIMIENTO INTRFLOCULR 10. CRECIMIENTO EPIFÍTICO SORE CTERIS FILMENTOSS 11. CTERIS NITRIFICNTES 12. PROLIFERCIÓN CILR 13. CTERIS DEL ZUFRE 14. ZOOGLOE SP. 15. CTERIS HELICOIDLES OTRS OSERVCIONES 16. IOFILM EN DECNTDORES SECUNDRIOS 17. IOFILM EN DECNTDORES SECUNDRIOS: LGS ZULES 18. IOFILM EN DECNTDORES SECUNDRIOS: SPIRULIN 19. IOFILM EN DECNTDORES SECUNDRIOS: LGS DORDS 20. IOFILM EN DECNTDORES SECUNDRIOS: DITOMES 21. IOFILM EN DECNTDORES SECUNDRIOS: OOCYSTIS (LG VERDE) 22. IOFILM EN DECNTDORES SECUNDRIOS: PEDISTRUM (LG VERDE) 23. IOFILM EN DECNTDORES SECUNDRIOS: SCENEDESMUS (LG VERDE) 24. RESTOS VEGETLES Y FIRS 25. HUEVOS DE HELMINTOS 26. GRNOS DE POLEN

3 1 ESTDOS GENERLES DE FLOCULCIÓN C D La formación de un buen flóculo precisa de un núcleo de materia orgánica con una concentración apropiada de bacterias filamentosas, sobre el que se depositan más bacterias y materia orgánica de forma que ésta última puede ser degradada. l comienzo de una explotación es común que se produzca el fenómeno de pin-floc o pin point-floc ( no formación de la estructura flocular ), pero conforme aumenta la edad del fango se genera un flóculo de dimensiones apropiadas. Purgas excesivas, puntas de caudal altas o vertidos incontrolados pueden provocar este fenómeno en una cuba ya estabilizada. ESTDOS GENERLES DE FLOCULCIÓN DISTINTOS ESTDOS DE FORMCIÓN FLOCULR: contraste de fases. tinción Gram. claro, tinción Gram. lteraciones tanto en la proporción de bacterias floculantes (microestructura), como en la de bacterias filamentosas (macroestructura), generan problemas en la decantabilidad del fango activado, que deberán ser tratados de forma diferente.

4 2 CRECIMIENTO DISPERSO contraste de fases. Los procesos de agregación bacteriana y la biofloculación generan la asociación de bacterias dispersas junto con la materia separar claramente al flóculo del espacio interflocular. definición estricta de crecimiento disperso. Sin embargo, ampliando está definición, puede hablarse de crecimiento disperso cuando exista una alta concentración de bacterias cocales y bacilares en el espacio extraflocular. macroestructura, por vertidos que arrasan la estructura flocular, etc., que permitan el desarrollo de bacterias libres en los espacios interfloculares o en pequeñas agrupaciones. del fango. 3 FLÓCULO EN LFILER O FLÓCULO EN PUNT DE LFILER Pin point-floc, pin-floc o flóculo en punta de alfiler. Los flóculos generados en esta alteración son de pequeño tamaño y más o menos compactos. tienen un soporte para ir creciendo (bacterias filamentosas). Las causas que lo originan pueden ser diversas, pero es muy común en plantas ya estabilizadas debido a la entrada de vertidos industriales.

5 4 EL FENÓMENO DEL ULKING FILMENTOSO EVOLUCIÓN DEL ULKING FILMENTOSO El bulking originado por la proliferación de bacterias filamentosas puede generarse por muy diversos motivos: problemas operacionales, vertidos en el influente o desequilibrios nutricionales. La evolución desde un estado de normalidad hasta el de un episodio de bulking en planta, puede apreciarse mediante la observación microscópica diaria. Un recuento de filamentos (normalmente expresado como m/ml de fango activo ) realizado de forma periódica, permite tener un histórico sobre dicho valor y conocer las variaciones a lo largo del tiempo. En las fotografías siguientes se muestra una secuencia de fotos en la que se percibe claramente la evolución de un fango activo hacia una situación de bulking filamentoso. Estructura flocular normal; y C Estructura flocular con baja concentración de filamentos. (continúa) C EL FENÓMENO DEL ULKING FILMENTOSO Evolución del bulking filamentoso. 400x. Campo claro. Tinción Gram.

6 EL FENÓMENO DEL ULKING FILMENTOSO D E F G D Fango colonizado por una alta concentración de bacterias filamentosas. E, F y G Fango totalmente disgregado por una excesiva colonización de filamentos. (continuación de la lámina anterior) 5 EL FENÓMENO DE FOMING Espumas de Nocardia sp. y de Microthrix parvicella. () In vivo, 100x. Contraste de fases. () Natas Nocardia en la superficie de un decantador secundario. (C) In vivo, 100x. Natas Nocardia. Se supone que el mecanismo de espumado de Nocardia sp. en el fango activo está asociado a la naturaleza hidrófoba de las paredes celulares de ésta.cuando Nocardia sp. se desarrolla en el fango activo en cantidades suficientes y bajo ciertas circunstancias (aún no del todo claras), impone a los flóculos carácter hidrofóbico y los hace susceptibles de adherirse a burbujas de aire y con ellas flotar y formar natas. C

7 6 EL FENÓMENO DEL ULKING VISCOSO EL FENÓMENO DEL ULKING VISCOSO La generación de bulking viscoso es ocasionada por una proliferación excesiva de la bacteria Zoogloea sp., responsable de la excreción de material extracelular tipo polímero que confiere al fango un aspecto mucoso de difícil decantabilidad. Este problema surge bien por un mantenimiento de edades excesivas de fango en el reactor, bien por entradas puntuales de materia orgánica muy degradable (tipo ácidos orgánicos) que ocasionan una degradación inmediata y la consiguiente liberación del material intracelular (acúmulos de reserva), proporcionando al fango un aspecto gelatinoso. Dicho aspecto gelatinoso puede percibirse al microscopio óptico como un halo alrededor del flóculo, visible claramente en la tinción Neisser (diapositivas siguientes). La eliminación mediante flotado es fundamental para conseguir regenerar el fango. ULKING VISCOSO El Test de Tinta India indica el grado de material extracelular existente en el medio. Como puede observarse en, el avance de la tinta se ve impedido por esta sustancia. En, mediante este mismo test y siguiendo el sentido de la flecha, se observa la evolución en el tiempo del fenómeno de bulking viscoso hacia una situación de normalidad en una estación depuradora.

8 ULKING VISCOSO Visión al microscopio óptico de una muestra de fango activo afectada por bulking viscoso. () bundantes formas bacilares. In vivo, 100x; campo claro. () Material intracelular que en la tinción Neisser se percibe como un halo alrededor del flóculo. Tinción Neisser, 100x; campo claro. (C)Otra característica de este fenómeno es el desarrollo de bacterias filamentosas de los Tipos 0041 (en la fotografía) y Tipo mbas bacterias son Gram variables, Neisser negativas y gránulo Neisser positivas (a veces), presentando comúnmente crecimiento epifítico a edades muy avanzadas de fango. In vivo, 1000x; contraste de fases. C ULKING VISCOSO () y () Tinción PH, que muestra la existencia de muchos gránulos de poli-ß-hidroxibutirato, tanto en el medio como en el interior flocular. 100x. Campo claro. (C) Tinción Neisser en la que se pone de manifiesto igualmente la presencia de gránulos de reserva (polifosfatos, principalmente) en el interior de los flóculos. 100x. Campo claro. C

9 7 FNGO CTIVO DE OXIDCIÓN TOTL () 200x y () 400x. Campo claro. In vivo. Flóculos característicos de una depuración por oxidación total (fango muy mineralizado). El núcleo flocular es muy denso, mientras que los límites exteriores se encuentran en estados más laxos. 8 PROCESOS DE DESNITRIFICCIÓN DESNITRIFICCIÓN. t>30 min t>>30 min ndrés Zornoza ndrés Zornoza ndrés Zornoza ndrés Zornoza Evolución de un proceso de manto ascendente por el fenómeno de la desnitrificación. La desnitrificación se produce en fangos activos, en aquellas zonas de las instalaciones en las que existen zonas anóxicas que transforman los nitratos o nitritos, en nitrógeno atmosférico. Las pequeñas burbujas de nitrógeno gas quedan atrapadas en las intersecciones de los flóculos, arrastrando a éstos hacia arriba. Si la desnitrificación es importante, se genera el levantamiento completo del manto de fangos en decantación secundaria. El control del grosor del lecho de fangos en el secundario es una de las primeras medidas a tomar para evitar la anoxia en esta zona y evitar fenómenos de desnitrificación. t

10 9 CTERIS DE CRECIMIENTO INTRFLOCULR 200x. Campo claro. Tinción Gram. Las bacterias Gram positivas y Gram negativas están siempre presentes dentro de los flóculos de fango activo, con forma cocal o bacilar, resultando más abundantes las bacterias Gram negativas. La base del flóculo parecen ser los géneros de las bacterias heterótrofas Pseudomonas sp., chromobacter sp., Flavobacterium sp., lcaligenes sp., Zoogloea sp., rthrobacter sp. y Citromonas sp. La viabilidad de los organismos en el flóculo es baja, del orden de un 5-20 % (Weddle y Jenkins, 1971). 10 CRECIMIENTO EPIFÍTICO C () Tinción Gram, 1000x. Campo claro. () Tinción Gram, 400x. Campo claro. (C) In vivo.crecimiento epifítico sobre pedúnculo de Vorticella sp. 400x, campo claro. En determinadas condiciones, como puedan ser edades de fango avanzadas, se produce el crecimiento de bacterias libres sobre la superficie de una bacteria filamentosa. Esta particularidad permite ayudar a identificar los organismos filamentosos, ya que determinadas especies tienen esta propiedad (generalmente, aquellas que poseen vaina). Normalmente el crecimiento es perpendicular al filamento (), si bien en otras ocasiones se presenta de forma horizontal (), o incluso helicoidal.

11 11 CTERIS NITRIFICNTES Organismo: Flóculo con bacterias nitrificantes. 100x. Campo claro. Tinción Gram. Nitrosomas sp.: oxida amoniaco a nitrito. Nitrobacter sp.: oxida nitrito a nitrato. CRCTERÍSTICS TXONÓMICS Grupo: Nitrobacterias. CRCTERÍSTICS MORFOLÓGICS Y ESTRUCTURLES Forma:Forma bacilos cortos; cúmulos globulares. Tamaño: 1-2 µm largo. Localización: Generalmente asociada al flóculo, pero tambien libres. Respuesta tinciones: G -. Gránulos (zufre y PH):S - y PH -. Otras características de interés (movilidad, ramificaciones, crecimiento asociado/epifítico, vaina, septos celulares, asociación roseta/gonidio): Crecimiento lento. Presentan flagelos no observables en microscopía óptica. utótrofos estrictos. Gram negativos. CRCTERÍSTICS ECOLÓGICS Parámetros bioindicadores asociados: sociadas a edades avanzadas de fango y buenos niveles de oxigenación. CTERIS NITRIFICNTES Flóculo con bacterias nitrificantes. () In vivo. 200x, contraste de fases. () Tinción Gram. 1000x, campo claro.

12 12 PROLIFERCIÓN CILR EN EL LICOR MEZCL acilos en disolución y filamento Tipo x. Contraste de fases. In vivo. La entrada frecuente a planta de mucha materia orgánica disuelta puede provocar crecimiento disperso de bacterias no asociadas al flóculo como fenómeno adaptativo. Dichas bacterias, al encontrarse en forma libre y disponer más fácilmente de la materia orgánica disuelta en el medio, pueden ser más competitivas. Esta situación puede estar propiciada, a veces, por altos tiempos de retención en los decantadores primarios. En casos extremos se observa el material limoso alrededor del flóculo, con los bacilos insertos en él. El fango adquiere aspecto gelatinoso y es ésta una de las causas del bulking viscoso. C PROLIFERCIÓN CILR EN EL LICOR MEZCL bundantes formas bacilares. () y () 400x, Gram. Campo claro. (C) 100x. Contraste de fases. In vivo.

13 13 CTERIS DEL ZUFRE CTERIS DEL ZUFRE. C () 1000x, contraste de fases. In vivo. () 1000x, campo claro. In vivo. (C) Thiothrix sp. y acúmulos de bacterias del azufre tras efectuar el Test de S. 1000x, campo claro. Las bacterias del azufre captan este elemento del agua tratada y lo incorporan a su sistema de reserva para utilizarlo en anaerobiosis. La película que se forma sobre la pared del decantador sirve de soporte para las bacterias del S fijas (Thiopedia sp., Thiocystis sp., etc.), mientras que las filamentosas se deslizan sobre la superficie (eggiatoa sp.). Son organismos habituales de ambientes polisaprobios. CTERIS DEL ZUFRE CRCTERÍSTICS TXONÓMICS Grupo: Eubacteria fotosintética; bacterias rojas del zufre. CRCTERÍSTICS FUNCIONLES Forma corporal:cocos cúbicos o esféricos. Movimientos locomotores Estructuras especializadas: Individuales o en paquetes. Clave identificativa:presencia de S intracelular. acteria del zufre Thiocapsa sp. 100x. Campo claro. In vivo. CRCTERÍSTICS ECOLÓGICS Parámetros bioindicadores asociados: Crecimiento quimioautotrófico en condiciones de baja concentración de oxígeno con S como aceptor de electrones.

14 14 COLONIS DE ZOOGLOE SP. ZOOGLOE Organismo: Colonia de Zoogloea sp. digitiforme. 400x. Campo claro. Tinción Gram. CRCTERÍSTICS MORFOLÓGICS Y FUNCIONLES Forma corporal: Mucílago gelatinoso de muchas bacterias. Movimientos locomotores: No. Estructuras especializadas:forma bacilar; Gram negativa. Clave identificativa:forma digitiforme. Tamaño:Colonias de hasta 1,5 mm. CRCTERÍSTICS ECOLÓGICS Eubacteria erobia Gram -. Parámetros bioindicadores asociados:fangos de poca edad, en formación. portes de aguas de origen industrial. Observaciones: grupaciones de bacterias Gram - facilitadas por la capacidad de secreción de mucílago, hecho que les permite permanecer unidas. Pueden crecer en forma digitiforme o ramificada. Su proliferación puede provocar bulking zoogleal si bien una concentración moderada de estas bacterias ayuda a la formación del flóculo durante las primeras fases de la puesta en marcha de un reactor biológico. ZOOGLOE Organismo: Zoogloea sp. () In vivo, 100x. Campo claro. () In vivo, 400x. Contraste de fases.

15 15 CTERIS HELICOIDLES Organismo: Espiroquetas. Tinción Gram (1000x); campo claro. Detalle de espiroqueta in vivo (1000x); contraste de fases. CRCTERÍSTICS TXONÓMICS Grupo: Espiroquetas. CRCTERÍSTICS MORFOLÓGICS Y ESTRUCTURLES Forma:Forma espiral en sacacorchos. Tamaño: Hasta 500 µm largo. Localización: Libre. Respuesta tinciones: G -. Otras características de interés (movilidad, ramificaciones, crecimiento asociado/epifítico, vaina, septos celulares, asociación roseta/gonidio): Movimiento por endoflagelos. Clave identificativa:forma y movimiento en espiral. Extraordinariamente flexibles. CRCTERÍSTICS ECOLÓGICS Parámetros bioindicadores asociados: Eubacteria, característica de condiciones de baja oxigenación. umentos poblacionales en periodos de alta temperatura ambiental. CTERIS HELICOIDLES CRCTERÍSTICS TXONÓMICS Grupo: Spirillum. CRCTERÍSTICS MORFOLÓGICS Y ESTRUCTURLES Organismo: Espirilos. 1000x. Campo claro. In vivo. Forma:Forma bacilar, flexible. Tamaño: 14 µm largo. Localización: Libre. Respuesta tinciones: G -. Otras características de interés (movilidad, ramificaciones, crecimiento asociado/epifítico, vaina, septos celulares, asociación roseta/gonidio): Presencia de vaina, movimiento en espiral. Estructuras especializadas:flagelos (de difícil observación). Clave identificativa:forma y movimiento. CRCTERÍSTICS ECOLÓGICS Parámetros bioindicadores asociados: Crecimiento quimioautotrófico en condiciones de baja concentración de oxígeno con S como aceptor de electrones.

16 CTERIS HELICOIDLES. CTERIS HELICOIDLES acterias helicoidales. () In vivo, 400x.Contraste de fases. () acterias helicoidales en disolución. In vivo, 100x. Contraste de fases. Trabajo realizado por el Grupo ioindicación Sevilla Laura Isac: Doctora en iología Eva Rodríguez: Licenciada en iología Natividad Fernández: Licenciada en Ciencias Químicas Mª Dolores Salas: Licenciada en iología Con la colaboración de: ndrés Zornoza: EDR Quart enager

17 16 IOFILM EN DEC. 2/3 arios IOFILM EN DECNTDORES SECUNDRIOS O TRTMIENTOS TERCIRIOS. El estudio periódico de la capa de organismos que se fija a la superficie del vertedero de los decantadores secundarios o al canal de cloración, nos puede proporcionar información sobre la comunidad que normalmente se asienta sobre esta zona y detectar así la influencia de vertidos industriales. umento. 200x. Campo claro. In vivo. 17 IOFILM EN DEC. 2/3 arios LGS ZULES (CINOFÍCES). CRCTERÍSTICS TXONÓMICS Phylum:Cyanophyta. Clase:Cyanophyceae. Orden: Nostocales. Género: Oscillatoria. CRCTERÍSTICS FUNCIONLES Organismo: Oscillatoria putrida. 1000x. Campo claro. In vivo. Forma corporal:filamento de color verde amarillento. Movimientos locomotores: Si. Estructuras especializadas: No. Clave identificativa: Gránulos refringentes en las separaciones de las células. Tamaño: Células de 8-20 µm de largo y 2-3 µm de ancho. CRCTERÍSTICS ECOLÓGICS limentación: utótrofa. Parámetros bioindicadores asociados: Organismo polisaprobio que se desarrolla sobre restos vegetales en descomposición.

18 18 SPIRULIN (CINOCTERI). IOFILM EN DEC. 2/3 arios Organismo: Spirulina. 200x. Campo claro. In vivo. CRCTERÍSTICS TXONÓMICS Phylum:Cyanophyta. Clase:Cyanophyceae. Orden: Nostocales. Género: Spirulina. CRCTERÍSTICS MORFOLÓGICS Y FUNCIONLES Forma corporal: Extremos redondeados y forma en espiral (helicoidal). Movimientos locomotores: Sí, deslizantes. Estructuras especializadas: Cloroplastos que le confieren color verde. Clave identificativa:forma en espiral móvil. Tamaño:Variable según la especie; de 4-20 µm de largo. CRCTERÍSTICS ECOLÓGICS limentación: Eubacteria fotosintética del grupo de Oscillatoria. Parámetros bioindicadores asociados: guas contaminadas con bajos índices de turbidez; bajas concentraciones en SSLM; característica de aguas salinas. 19 LGS DORDS. CRCTERÍSTICS TXONÓMICS Phylum: Heterokontophyta. Clase: Chrysophyceae o Chrysomonadida. Orden: Ochromonadales. Género: Dinobryon. CRCTERÍSTICS FUNCIONLES IOFILM EN DEC. 2/3 arios Organismo: Dinobryon sp. 400x. Contraste de fases. In vivo. Forma corporal: Los individuos presentan forma de V por la presencia de la lóriga. Movimientos locomotores:no, sésil. Estructuras especializadas: Lóriga fusiforme que le confiere aspecto de árbol, normalmente hialina, pero a veces amarillenta. nclaje al sustrato. Presentan 1-2 cloroplastos y con frecuencia estigma. Clave identificativa: Lórigas en V. Organismo solitario o colonial. Tamaño: µm (lóriga). CRCTERÍSTICS ECOLÓGICS limentación: utótrofa. Parámetros bioindicadores asociados: Puede aparecer en el biofilm creado en la cuba de cloración.

19 20 IOFILM EN DEC. 2/3 arios DITOMES. 1000x.Campo claro. In vivo. CRCTERÍSTICS TXONÓMICS Phylum: Heterokontophyta. Clase: acillariophyceae (diatomeas). Orden:Pennales (Naviculaceae). Género:Navicula. CRCTERÍSTICS FUNCIONLES Forma corporal: En huso. Movimientos locomotores: Si. Estructuras especializadas: Rafe central. Clave identificativa: Cuerpo central algo dilatado transversalmente, estrías transversales finas y radiales. Tamaño: µm. CRCTERÍSTICS ECOLÓGICS limentación:utótrofa. Parámetros bioindicadores asociados: Se desarrolla en aguas muy ricas en materia orgánica (alfa-mesosaprobio). DITOMES. IOFILM EN DEC. 2/3 arios C () 1000x, campo claro. () 200x, campo claro. (C) 400x, contraste de fases. In vivo.

20 21 OOCYSTIS (LG VERDE). IOFILM EN DEC. 2/3 arios 1000x.Campo claro. In vivo. CRCTERÍSTICS TXONÓMICS Phylum: Chlorophyta. Clase: Chlorophyceae. Orden: Chlorococcales. Género: Oocystis. CRCTERÍSTICS FUNCIONLES Forma corporal: Cuerpo celular elipsoidal con ambos extremos apuntados; en colonias de 2-8 individuos unicelulares. Movimientos locomotores: No. Estructuras especializadas: Cloroplastos interiores (1-3); pirenoide; envoltura de la colonia patente, engrosada en ambos extremos. Clave identificativa:por su carácter colonial y su forma exterior. Tamaño: Células de µm. CRCTERÍSTICS ECOLÓGICS limentación:utótrofa. Parámetros bioindicadores asociados: Se desarrolla en aguas ricas en materia orgánica (alfa-mesosaprobio). 22 PEDISTRUM (LG VERDE). CRCTERÍSTICS TXONÓMICS Phylum: Chlorophyta. Clase: Chlorophyceae. Orden: Chlorococcales. Género:Pediastrum. CRCTERÍSTICS FUNCIONLES IOFILM EN DEC. 2/3 arios Organismo: Pediastrum boryanum. 400x.Contraste de fases. In vivo. Forma corporal:colonias de hasta 128 células. Movimientos locomotores: Sí. Estructuras especializadas:las células marginales presentan prolongaciones a modo de espinas o apéndices abultados. Membrana verrucosa, lisa o punteada. Clave identificativa: No existen huecos en su interior (estructura compacta). Tamaño: Hasta 40 µm. CRCTERÍSTICS ECOLÓGICS limentación: utótrofa. Parámetros bioindicadores asociados: No es usual en fangos activos.

21 23 SCENEDESMUS (LG VERDE). IOFILM EN DEC. 2/3 arios Organismo: Scenedesmus sp. 400x.Contraste de fases. In vivo. CRCTERÍSTICS TXONÓMICS CRCTERÍSTICS FUNCIONLES CRCTERÍSTICS ECOLÓGICS Phylum: Chlorophyta. Clase: Chlorophyceae. Orden: Chlorococcales. Género: Scenedesmus. Forma corporal:colonia de cuatro células alargadas. Movimientos locomotores: No. Estructuras especializadas: Las espinas de las células terminales pueden ser más o menos alargadas, e incluso desaparecer en algunas especies. Clave identificativa: Cuatro células unidas lateramente con dos pares de espinas en las células terminales. Tamaño: 5-20 µm. limentación:utótrofa. Parámetros bioindicadores asociados:ß- mesosaprobio. 24 RESTOS VEGETLES RESTOS VEGETLES Y FIRS C () Traqueida vegetal. 200x. Campo claro. () y (C) Fibras.100x. Campo claro. In vivo. Proceden del influente. Presentan apariencia fibrosa y gran tamaño.

22 25 HUEVOS DE HELMINTOS. HUEVOS DE HELMINTOS El riego con agua residual es un factor de riesgo que aumenta la posibilidad de transmisión de enfermedades relacionadas con las excretas. Estas aguas presentan quistes de numerosos organismos: huevos y larvas de helmintos, huevos, larvas y adultos de nematodos de vida libre, etc., que representan graves riesgos para la salud y la particularidad añadida de ser organismos muy resistentes a los desinfectantes comunes (uitrón y Galván, 1998). la hora de cuantificar riesgos para la salud, el estudio de los distintos grupos de Helmintos y Nematodos presentes en un agua residual tratada supone una cuestión de gran importancia y fuente de gran información dada la patogenicidad de éstos tanto para las personas como para las plantas en el caso de fitoparásitos. Por otra parte, estudios llevados a cabo sobre la viabilidad de los huevos en efluentes de depuradora indican que ésta oscila en torno al 24% (Gantzer et al., 2001), lo que supone una importante reducción del riesgo de infección por parte de estos parásitos, pero la permanencia de un riesgo mínimo que no habría que descartar. Huevo de helminto. 200x, contraste de fases. HUEVOS DE HELMINTOS C Huevo de scaris sp. () 400x y () y (C) 200x. Campo claro.

23 26 GRNOS DE POLEN Grano de polen. () 100x y () 400x. Campo claro. Trabajo realizado por el Grupo ioindicación Sevilla Laura Isac: Doctora en iología Eva Rodríguez: Licenciada en iología Natividad Fernández: Licenciada en Ciencias Químicas Mª Dolores Salas: Licenciada en iología Con la colaboración de: ndrés Zornoza: EDR Quart enager

24 ILIOGRFÍ: UITRÓN, G. y GLVÁN, M. (1998). Effect of compression-decompression on helminth eggs present in sludge of a settling tank. Wat. Res. 32, 5, EMSES (1997). Microorganismos filamentosos en el fango activo. Publicación de la Empresa Municipal de bastecimiento y Saneamiento de guas de Sevilla, S.. ( EMSES). FOISSNER, W. y ERGER, H. (1996). user-friendly guide to the ciliates (Protozoa, Ciliophora) commonly used by hidrobiologists as bioindicators in rivers, lakes, and waste waters, with notes on their ecology. Freshw. iol. 35, GNTZER, C., GSPRD, P., GÁLVEZ, L., HUYRD,., DUMOUTHIER, N. y SCHWRTZROD, J. (2001). Monitoring of bacterial and parasitological contamination during various treatment of sludge. Wat. Res. 35, 16, JENKINS, D., RICHRD, M. G. y DIGGER, G. T. (1993). Manual on the Causes and Control of ctivated Sludge ulking and Foaming. WRC, Pretoria y USEP, Cincinnati. JIMÉNEZ CISNEROS,., CHÁVEZ MEJÍ,., RRIOS PÉREZ, J.., MY RENDÓN, C. y SLGDO VELÁZQUEZ, G. (1999). Determinación y cuantificación de huevos de helminto. Publicación del Grupo de Tratamiento y Reúso del Instituto de Ingeniería, UNM. MDIGN, M.T., MRTINKO, J.M. y PRKER., J. (1997). rock. iología de los microorganismos. 8ª Edición. Prentice Hall. Madrid. SEVIOUR, R.J. y LCKLL, L.L. (1999). The Microbiology of activated sludge. Kluwer cademic Publishers. SEVIOUR, R. J., LIU, J.-R, SEVIOUR, E. M, McKENZIE, C.., LCKLL, L. L. y SINT, C.P. (2002). The "Nostocoida limicola" story: resolving the phylogeny of this morphotype responsible for bulking in activated sludge. Wat. Sci. Tech. 46 (1-2), En Internet: Protist Information Server ( ) "Construction of iological Image Databases". The Graduate University for dvanced Studies and the "ioresource" project "Fundamental research and development for databasing and networking culture collection information" (JST, Japan Science and Technology Corporation). Micro*scope V2 TM (2004). NS strobiology Institute.

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