Programa de la Asignatura de Técnicas Instrumentales Básicas.

Transcripción

1 Programa de la Asignatura de Técnicas Instrumentales Básicas. Licenciatura: Biotecnología Curso: Tercero 1er Cuatrimestre Tipo de asignatura: Troncal Créditos: 6 (teoría: 3, práctica: 3) Curso Académico: 2009/2010 Área: Biología Celular Bioquímica y Biología Molecular Profesores: Carlos Santos Ocaña Juan R. Tejedo Huamán DEPARTAMENTOS: ANATOMÍA, BIOLOGÍA Y FISIOLOGÍA BIOLOGÍA MOLECULAR E INGENIERIA

2 BIOQUÍMICA. La docencia de la asignatura se articula en los contenidos del programa teórico y de las prácticas. La aplicación de este programa se realiza considerando el nivel de conocimientos del alumnado. El programa teórico se imparte en clases de 50 minutos de duración. El profesor propone al comienzo de la clase una estructuración del tema que va a desarrollar en forma de guión. A continuación desarrolla el contenido del tema y al final realiza una síntesis resaltando los aspectos más importantes de lo expuesto en clase. La exposición del tema quedará ilustrada con diapositivas que estarán a disposición de los alumnos en la copistería y en la WebCT de la Universidad. Es tarea del profesor facilitar un ambiente que permita la participación del alumnado en la clase. Según el contenido de la clase, la participación se articula en forma de preguntas aclaratorias y preguntas conceptuales y el profesor promoverá cualquiera de estas acciones, ya que ambas son reflejo del contenido de la clase. Las prácticas de laboratorio se realizan en grupos de 20 alumnos y tienen como objeto familiarizar al estudiante con las técnicas instrumentales básicas en biotecnología. Algunas de ellas permiten observar fenómenos de regulación biológica. El alumno realizará individualmente las determinaciones y experimentos especificados en el cuadernillo de prácticas. Tutorías El objeto de la tutoría es el de formalizar la enseñanza individualizada sobre aspectos del programa desarrollados previamente. El horario de atención al alumno será comunicado por el profesor oportunamente durante el período lectivo del curso académico. Valoración de la Actividad Docente La opinión del alumno sobre la docencia de la disciplina es elemento imprescindible para un seguimiento de la aplicación de un método docente. La valoración ponderada de esta opinión permitirá adecuar el mensaje docente a las peculiaridades del alumnado.

3 OBJETIVOS El objetivo de la asignatura es dotar a los alumnos de conocimientos sobre técnicas experimentales ampliamente utilizadas en investigación básica y que además son utilizadas en la resolución o análisis de problemas en biotecnologia. El conocimiento que se pretende transmitir no sólo se ceñirá al aprendizaje de las técnicas en sí mismas, sino que se pretende desarrollar en el alumno la capacidad de analizar las ventajas y deficiencias de una técnica concreta para la resolución de un problema específico. Por tanto, la potenciación de un análisis crítico en el aprendizaje de estas técnicas es el objetivo principal de la asignatura, que se llevará a cabo mediante dos vías, a) conocimiento de los fundamentos de las diversas técnicas y b) el análisis de trabajos científicos en cuanto a los objetivos planteados, las técnicas utilizadas y los resultados obtenidos. En cuanto al apartado práctico, las prácticas planteadas intentan unir la temática descrita en la teoría con el aprendizaje práctica de las técnicas biológicas de aplicación generalizada. No es un objetivo formar técnicos especialistas en diversas técnicas de análisis biológico sino mostrar directamente las posibilidades que ofrecen estas técnicas para el futuro desarrollo profesional de los alumnos. INTRODUCCIÓN PROGRAMA TEÓRICO 1. Presentación y objeto de la asignatura 2. Técnicas de observación de muestras biológicas. 3. Centrifugación. 4. Técnicas de cromatografía de proteínas 5. Electroforesis de ácidos nucleicos y de proteínas 6. Espectrofotometría 7. Fluorimetria y quimioluminiscencia. 8. Utilización de radioisótopos en biotecnología

4 Practica 1. Inmunofluorescencia () PROGRAMA PRÁCTICO Practica 2.- Separación de poblaciones celulares por centrifugación en gradiente. () Práctica 3: Cromatografía de exclusión molecular. () Practica 4. RAPD () Practica 5: Determinación de NADH. () Práctica 6.- Determinación de peso molecular de proteínas por Electroforesis () Practica 7: Purificación de proteínas por cromatografía de afinidad () Practica 8. Detección de proteínas carboniladas (). Las prácticas se desarrollarán en los laboratorios de prácticas de Bioquímica (edificio 23, primera planta y en el laboratorio de prácticas de Biología Celular (edificio 23, laboratorio 1 planta baja). Tendrán una duración de 4 horas. Antes de la realización de cada práctica el alumno ha de leer y estudiar el guión de prácticas, que estará disponible en copistería, ó en la dirección web que indique el profesor. Material necesario para las prácticas: Bata, calculadora, cuaderno tamaño DIN A4 rotulador, bolígrafo, gafas de seguridad y guantes de látex. Las gafas y los guantes son de utilización obligatoria cuando lo indique el profesor y optativa en los demás casos. Cuaderno de Prácticas Es norma de buena práctica en la investigación que las incidencias de la actividad experimental queden fielmente reflejadas en el denominado Libro ó Cuaderno de Laboratorio. Con objeto de fomentar el hábito de registrar documentalmente las incidencias de la actividad investigadora, se exigirá la confección de un Cuaderno de Prácticas. La valoración de su redacción y contenido formará parte de la evaluación de la asignatura. TEXTOS RECOMENDADOS Ahmed, H. Principles and Reactions of Protein Extraction, Purification and Characterization, 2004 CRC Press Boyer, R. Modern Experimental Biochemistry, 2000 Addison Wesley Longman Millar, T. Biochemistry Explained, 2004 CRC Press Danson, M.J. Enzyme Assays, Oxford University Press Prasad R. Manual on Membrana Lipids, Springer

5 Johnston, J.R. Molecular Genetics of Yeast, IRL Press Weissensteiner, T. PCR Technology, 2003 CRC Press Becker, J.M. Biotecnología: Curso de Prácticas de Laboratorio, 1996 Acribia S.A. Holme, D.J. Analytical Biochemistry, 1998 Prentice Hall Walker, J. The Protein Protocols, 2002 Humana Press Wilson, K. Principles and Techniques of Practical Biochemistry, 2000Cambridge Fersht, A. Estructura y mecanismo de las enzimas, 1980 Reverté Cornisa-Bowden, A. Fundamentals of Enzyme Kinetics, 1999 Portland Lesk, A. Introduction to Protein Science, 2004 Oxford University Press Periasamy, A. Methods in Cellular Imaging, 2001Oxford University Press NORMAS DE LA ASIGNATURA Evaluación del conocimiento del alumno. Criterios. La calificación del alumno se hará en función de su labor realizada a lo largo del curso. Esta calificación se fundamentará en: 1. Teoría Participación activa en las clases Al finalizar el curso tendrá lugar una prueba final que explorará aspectos del programa La prueba de evaluación tendrá una composición proporcionada de preguntas sobre el contenido del temario explicado en clase. Cada pregunta será desarrollada por el alumno en un espacio limitado. El formato ordinario del examen de la asignatura será de 5 preguntas. 2. Práctica Realización de las siguientes pruebas escritas: Un examen de prácticas que se realizará a las dos semanas de haber culminado el programa práctico. A este examen cada alumno deberá ir provisto de su Cuaderno de Prácticas, que se entregará al finalizar el examen para su evaluación. Después de calificados se devolverán los cuadernos. Dos días antes del examen se entregará el protocolo de la práctica que desarrollarán en el examen. Para aprobar las prácticas, deberá aprobarse el examen. La aprobación de las prácticas exime de su realización en cursos posteriores.

6 3. Calificación global de la asignatura Asignación de peso a los componentes teóricos y prácticos Teoría: 50 % Práctica:50% ( 20 % el examen y 30 % cuaderno)