TEMA 22. Infecciones del tracto genital

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María Dolores Barbero Flores
hace 8 años
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1 TEMA 22 Infecciones del tracto genital

2 Tema 22. Infecciones del tracto genital 1. Anatomía del tracto genital 2. Microbiota normal 3. Enfermedades y agentes etiológicos del tracto genital 4. Toma de muestras y transporte al laboratorio 5. Examen microscópico directo de la muestra 6. Métodos que no requieren cultivo 7. Cultivo de la muestra

Enfermedades y agentes etiológicos del tracto genital 4.

3 1. Anatomía del tracto genital Aparato genital masculino: próstata, vesícula seminal, uretra, pene, epidídimo, testículos Aparato genital femenino: vulva, vagina, cuello uterino (tracto inferior), útero, trompas de Falopio y ovarios (tracto superior)

testículos Aparato genital femenino: vulva, vagina, cuello

4 2. Microbiota normal Hombre Microbiota uretral Mujer Estafilococos Estreptococos Lactobacilos Corinebacterias Neiserias no patógenas Enterobacterias y otros bacilos Gram negativos Cocos anaerobios Cocos y bacilos Gram negativos anaerobios Micobacterias y ocasionalmente levaduras Microbiota uretral Procede de la piel y de la vagina

bacilos Gram negativos Cocos anaerobios Cocos y bacilos Gram negativos anaerobios

5 2. Microbiota normal Microbiota vaginal Varía con el ph y con la concentración de estrógenos de la mucosa (dependiente de la edad) aunque en la edad fértil predominan los lactobacilos Período prepuberal: estafilococos y corinebacterias Período fertil: lactobacilos, enterobacterias, estreptococos, estafilococos, bacilos anaerobios no esporulados, clostridios Período de gestación: reducción microbiota anaerobia, aumento microbiota lactobacilar Menopausia: microbiota similar a período prepuberal, reducción población lactobacilar Algunas mujeres portadoras de Streptococcus agalactiae pueden transmitirlo a sus hijos en el momento del parto

bacilos anaerobios no esporulados, clostridios Período de gestación: reducción microbiota anaerobia, aumento microbiota lactobacilar Menopausia: microbiota

6 3. Enfermedades y agentes etiológicos del tracto genital Endógenas (microbiota): candidiasis (vulvovaginitis), vaginosis (Gardnerella vaginalis) Exógenas (enfermedades de transmisión sexual, ETS) Manifestación con exudación o supuración Neisseria gonorrhoeae (gonorrea, endometritis, cervicitis, salpingitis, orquitis, epididimitis, proctitis) Chlamydia trachomatis (uretritis, endometritis, cervicitis, salpingitis, orquitis, epididimitis) Candida albicans (balanitis, vaginitis) Trichomonas vaginalis (vulvovaginitis, cervicitis) Ureaplasma urealyticum (uretritis)

endometritis, cervicitis, salpingitis, orquitis, epididimitis, proctitis) Chlamydia trachomatis (uretritis, endometritis, cervicitis,

7 3. Enfermedades y agentes etiológicos del tracto genital Manifestación con formación de vesículas o úlceras Treponema pallidum (sífilis, chancro sifilítico ) Herpes simple (herpes, vesículas, úlceras) Haemophilus ducreyi (chancro blando) Chlamydia trachomatis serotipos L 1, L 2 y L 3 (linfogranuloma venéreo) Calymmatobacterium granulomatis (granuloma inguinal) Manifestación con formación de eflorescencias cutáneas verrucoides Papilomavirus (condilomas acuminados)

(chancro blando) Chlamydia trachomatis serotipos L 1, L 2 y L 3 (linfogranuloma venéreo) Calymmatobacterium

8 4. Toma de muestras y transporte al laboratorio El exudado vaginal puede tomarse con asa o con hisopo Debe emplearse hisopo urogenital (especial): algodón o rayón tratados con carbón para absorber sustancias tóxicas para gonococos, enrollados en alambre fino y flexible Espéculo Para muestras virales se recomienda hisopos de Dacrón (menos tóxicos) En muestras uretrales se introduce hisopo 2 cm en uretra y se rota suavemente (importante extraer células epiteliales de mucosa por ser clamidias patógenos intracelulares) Las muestras endocervicales deben tomarse con la ayuda de un espéculo Se requieren muestras separadas para cultivo de gonococos, clamidias y ureaplasmas

Dacrón (menos tóxicos) En muestras uretrales se introduce hisopo 2 cm en uretra y se rota suavemente (importante extraer células epiteliales de mucosa por ser clamidias

9 4. Toma de muestras y transporte al laboratorio Las muestras vaginales, uretrales y endocervicales deben procesarse de inmediato a la cabecera del enfermo para preservar la viabilidad de los microorganismos Cundo no es posible un procesamiento inmediato, debe utilizarse medio de transporte Amies o Stuart y mantener a temperatura ambiente Se puede lograr una recuperación excelente de gonococos cuando se inoculan las muestras de forma directa en placas Jembec (sistema de transporte y de cultivo a la vez) El sistema consta de una placa de plástico delgada y transparente con medio de cultivo (Thayer- Martin, Thayer-Martin modificado, NYC) y una bolsa de plástico con cierre hermético. El sistema genera su propia atmósfera de CO 2 por medio de un comprimido de bicarbonato sódico

gonococos cuando se inoculan las muestras de forma directa en placas Jembec (sistema de transporte y de cultivo a la vez) El sistema consta de una placa de plástico delgada y transparente con

10 4. Toma de muestras y transporte al laboratorio Para la inoculación de la placa Jembec, se siembra el agar con el hisopo con rotaciones continuas hacia un lado y otro con un patrón en W (M) (en el laboratorio pueden hacerse estrías con un asa estéril) En las lesiones vesiculosas la muestra se toma con jeringa de insulina En vesículas ulceradas, la muestra se toma con hisopo frotando enérgicamente de la base de la úlcera, colocando después el hisopo en medio de transporte para virus (Hanks) Si la muestra para cultivo virológico se ha transportado en medio bacteriológico tipo Amies, al llegar al laboratorio debe inocularse de inmediato en cultivos celulares o pasarse a un medio de transporte virológico

muestra se toma con hisopo frotando enérgicamente de la base de la úlcera, colocando después el hisopo en medio de transporte para virus (Hanks) Si la muestra para cultivo

11 5. Examen microscópico directo de la muestra En fresco: detectar Trichomonas vaginalis (por su gran movilidad) y hongos (KOH, 10%) Campo oscuro: visualización de treponemas a partir de una muestra de la base de la úlcera sifilítica Tinción de Gram Útil para diagnóstico presuntivo de gonorrea en hombres (diplococos Gram negativos), si la tinción es positiva no se realizan cultivos En mujeres posible confusión con microbiota normal Válida para confirmar candidiasis Sirve también para el diagnóstico de la vaginosis por la presencia de células clave (células epiteliales desprendidas y cubiertas por bacilos delgados y cocobacilos Gram variables)

negativos), si la tinción es positiva no se realizan cultivos En mujeres posible confusión con microbiota normal Válida para confirmar candidiasis Sirve también

12 6. Métodos que no requieren cultivo Inmunofluorescencia directa: Chlamydia trachomatis, Herpes simple Enzimoinmunoanálisis: Chlamydia trachomatis, Herpes simple Diagnóstico serológico: sífilis PCR: Neisseria gonorrhoeae, Chlamydia trachomatis, Herpes simple, papilomavirus Algunos kits permiten realizar la prueba a partir de una muestra de orina En la actualidad, la PCR es el método de elección para el diagnóstico de Chlamydia trachomatis

gonorrhoeae, Chlamydia trachomatis, Herpes simple, papilomavirus Algunos kits permiten realizar la prueba a

13 7. Cultivo de la muestra Neisseria gonorrhoeae: agar Thayer-Martin, agar Thayer-Martin modificado o agar New York City Agar de Thayer-Martin Agar NYC Agar sangre Gardnerella: agar sangre Trichomonas: medio de Roiron, medio Diamond Herpes simple: cultivo en líneas celulares (Vero, A-549), crecimiento en horas

Agar sangre Gardnerella: agar sangre Trichomonas: medio de Roiron, medio

14 7. Cultivo de la muestra Aislamiento de levaduras: agar de Sabouraud con o sin antibióticos, agar cromogénico Agar de Sabouraud Agar cromogénico El diagnóstico microbiológico del chancro blando, linfogranuloma venéreo y granuloma inguinal se efectúa sólo en laboratorios especializados

cromogénico El diagnóstico microbiológico del chancro blando,

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