UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE CIUDAD JUÁREZ INSTITUTO DE CIENCIAS BIOMÉDICAS DEPARTAMENTO DE CIENCIAS QUÍMICO-BIOLÓGICAS PROGRAMA DE BIOLOGÍA

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1 UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE CIUDAD JUÁREZ INSTITUTO DE CIENCIAS BIOMÉDICAS DEPARTAMENTO DE CIENCIAS QUÍMICO-BIOLÓGICAS PROGRAMA DE BIOLOGÍA MANUAL DE PRÁCTICAS ESPERMATOFITAS

2 MANUAL DE PRÁCTICAS DE ESPERMATOFITAS COMPILADORES: Principal: BIOL. LAURA DE LEON PESQUEIRA Revisado por: DRA. HELVIA ROSA PELAYO BENAVIDES Ciudad Juárez, Chihuahua Universidad Autónoma de Ciudad Juárez 2010 p. 94 Complemento práctico del Curso de Espermatofitas del programa de Biología 1

3 M. en C. S.P. Abraham Aquino Carreño Coordinador de la Academia de Biología D. Ph. Antonio de la Mora Covarrubias Coordinador del Programa de Biología Dr. Alejandro Martínez Martínez Jefe del Departamento de Ciencias Químico-Biológicas M.C. Hugo Staines Orozco Director del Instituto de Ciencias Biomédicas Comité editorial M. en C. S. P. Abraham Aquino Carreño M. en C. Ana Gatica Colima M. en C. Guillermo Bojórquez Rangel Dra. Helvia Rosa Pelayo Benavides

4 INDICE PRÁCTICA 1. EL HERBARIO... 1 PRÁCTICA 2. CYCADOPHYTA... 6 PRÁCTICA 3. GINKGOPHYTA PRÁCTICA 4. CONIFEROPHYTA PRÁCTICA 5. GNETOPHYTA PRÁCTICA 6. MAGNOLIOPHYTA PRÁCTICA 7. USO DE CLAVES DICOTOMICAS PARA LA IDENTIFICACION DE PLANTAS PRACTICA 8. MAGNOLIIDAE PRÁCTICA 8. HAMAMELIDAE PRACTICA 9. CARYOPHYLLIDAE PRACTICA 10.DILLENIIDAE PRACTICA 11. ROSIDAE PRACTICA 12. ASTERIDAE PRACTICA 13. ALISMATIDAE, ARECIDAE Y COMMELINIDAE PRACTICA 14. ZINGIBERIDAE Y LILIIDAE i

5 PRÁCTICA 1. EL HERBARIO Introducción Se denomina Herbario al sitio o la colección de muestras botánicas deshidratadas, procesadas para su conservación, e identificadas, y son acompañadas de información relevante de la planta y del sitio de colecta. Estas plantas se conservan indefinidamente, y constituyen un banco de información que representa la flora o vegetación de una región determinada en un espacio físico reducido. México considerado como uno de los países más ricos en especies vegetales, cuenta con cerca de 25,000 especies de Espermatofitas, de las cuales entre 55-66% son exclusivas del país. Debido a la gran riqueza de recursos naturales y otros factores (históricos, sociales, etc.), no se ha logrado un conocimiento completo de nuestra flora y la gran velocidad de destrucción actual de las comunidades vegetales ha provocado que muchas de las plantas hayan desaparecido sin siquiera ser conocidas o registradas. Los Herbarios permiten un acercamiento con el medio, ya que representan la posibilidad de conocer las plantas de diversos ecosistemas sin tener que viajar y, en ocasiones, son la única evidencia de la existencia de alguna especie. En ellos se pueden alojar diversas colecciones de plantas, hongos, líquenes, frutos y semillas, maderas y polen. Sirven para catalogar y clasificar las especies y realizar investigaciones sobre diversos temas como: biología evolutiva, etnobotánica, prospección, manejo y conservación de la diversidad vegetal de un territorio. La importancia de los Herbarios como fuente de información es de gran relevancia, ya que además de cumplir como colecciones científicas, permiten su aprovechamiento en el aspecto educativo. Prevén información indispensable para la realización de estudios convencionales como floras y monografías, en el también se investigan aspectos de filogenia y evolución de grupos vegetales utilizando métodos más modernos de análisis (incluyendo herramientas de la 1

6 biología molecular, la microscopía electrónica y los sistemas de información geográfica, entre otros). Las colecciones son fuente de material para estudios de secuencias de ADN, palinología, anatomía y morfología comparativa, fitopatología, análisis de distribución geográfica y estudios ecológicos, entre muchos otros, que han quedado documentados en la literatura científica mundial. Bibliografía Flores Olvera, H. El Herbario Nacional de México. En: Gaviño, G. et al. Técnicas Biológicas Selectas de Laboratorio y de Campo. Ed. Limusa. México. Katinas, L El Herbario Significado, Valor y Uso. PROBIOTA. Serie Técnica y Didáctica No. 1. La Plata, Argentina. 0Valor%20y%20Uso.pdf Moreno, E. J El Herbario como recurso para el aprendizaje de la Botánica. Acta Bot. Venez. 30(1): Objetivos Que el alumno conozca lo qué es un Herbario, su constitución, arreglo y usos, en particular el Herbario de la UACJ; así como técnicas de colecta, prensado, secado y etiquetado, relacionadas con la herborización del material botánico. 2

7 Materiales Ejemplares herborizados para consulta 3 Plantas para colecta (de jardín, malezas o silvestres) Papel periódico Cartón corrugado Cintillas o lazo 3 Cartulinas 23.5cm x 39cm Cinta adhesiva de papel o pegamento Etiquetas de identificación Procedimiento 1.- Visita al Herbario de la UACJ, plática sobre cómo está constituido, su arreglo y procedimientos de uso. 2.- Siguiendo el protocolo de consulta, revisar por equipo 3 ejemplares, analizar el tipo de montaje y la información contenida en cada una de las etiquetas de identificación. Tomar nota de sus observaciones. 3.- Por equipo colectar tres plantas para obtener ejemplares de herbario debidamente preparados, siguiendo los procedimientos de prensado, secado, montaje e identificación (inicialmente basta con el nombre común de la planta, la información del sitio de colecta y características de la planta deberán ser lo más completa posible). Los ejemplares deberán ser entregados a la semana siguiente, así que es importante tomar en cuenta que el proceso de secado no es inmediato y depende de su revisión diaria y atención. 3

8 REPORTE PRÁCTICA No.1. EL HERBARIO. CALIFICACIÓN I.- Resultados 1.- Anote la información contenida en las etiquetas de identificación de los ejemplares de herbario consultados, acompañado del dibujo de la planta. Información del ejemplar: Dibujo 4

9 II.- Entregar por equipo 3 ejemplares herborizados en la siguiente sesión de laboratorio. III.- Cuestionario 1. Mencione tres objetivos de un herbario. 2. Diga los aspectos que se consideran de importancia en la colecta de material botánico. 3. Cuál es la importancia de la toma de datos en la colecta de material y qué tipo de información se debe incluir? 4. Cuáles son los pasos que debe de seguir un ejemplar antes de ser incorporado a los gabinetes de un herbario? 5. En qué consiste y cuál es el objetivo de los préstamos de ejemplares de herbario? IV.- Conclusiones V.- Bibliografía consultada 5

10 PRÁCTICA 2. CYCADOPHYTA Introducción División de plantas con semillas desnudas que incluye especies extintas y vivientes. Los representantes actuales se caracterizan por presentar hojas pinnado-compuestas de consistencia coriácea que nacen en el ápice del tallo semejando palmas o palmeras. Se conocen en general por el nombre común de Cícadas, incluyendo de 9-11 géneros y cerca de 146 especies de distribución tropical. Son consideradas como fósiles vivientes y se encuentran en peligro de extinción debido a la destrucción de su hábitat y por la extracción de ejemplares para la comercialización como plantas de ornato. Se caracterizan por presentar tallos poco (o no) ramificados, madera tipo manoxílica y abundantes canales de mucilago en el córtex y médula. Las trazas foliares en el córtex presentan un patrón poco usual, ya que en su recorrido desde la estela hacen un giro de hasta más de 150 o hasta la base foliar. Las hojas son los órganos dominantes y la parte más conspicua de la planta. Los foliolos de las hojas pueden presentar diferentes tipos de venación, estos patrones son utilizados como carácter diagnóstico en el reconocimiento de familias. La familia Zamiaceae, que incluye la mayoría de los géneros presenta un patrón de venación dicotómica y abierta. Presentan raíces carnosas aun con producción de xilema secundario. En algunos géneros, ciertas ramificaciones de sus raíces son apogeotrópicas, crecen paralelas y sobresaliendo del sustrato, sirviendo como medio para el intercambio gaseoso. Es común que desarrollen nódulos conteniendo algas azul-verdes fijadoras de nitrógeno, especialmente del género Anabaena. Son plantas dioicas, presentando dos tipos de conos o estróbilos: megastróbilo y microstróbilos, los cuales crecen en el ápice del tallo. Dependiendo del género, las microsporófilas pueden presentar numerosos microsporangios en posición abaxial, mientras que las megaesporófilas presentan de 2-9 óvulos en diferentes posiciones. 6

11 Los granos de polen son uniaperturados, los gametos masculinos son multiciliados y activamente móviles. Los gametofitos femeninos desarrollan arquegonios y cámara arquegonial y son retenidos dentro del megasporangio. Sus semillas son relativamente grandes, desde cm de largo, con un solo tegumento que se diferencia en tres capas: sarcotesta, esclerotesta y endotesta. Bibliografía Bold, H. C. Alexopoulos C. J & Delevoryas T Morphology of Plants and Fungi. 4 a ed. Harper & Row Publishers. N.Y. U.S.A. Foster A. S. & Gifford E Morphology and Evolution of Vascular Plants. W. H. Freeman & Co. San Francisco. U.S.A. Velázquez Montes, E. & Fonseca R. M Manual de Prácticas de Laboratorio (Briofitas, Pteridofitas y Gimnospermas). Las Prensas de Ciencias. UNAM. México. Objetivos Observar las estructuras vegetativas y reproductoras de las Cycadophyta. Que el alumno pueda familiarizarse con su apariencia y pueda reconocer algunos de los géneros representativos. Materiales Biológico: Hojas, estróbilos, esporofilas y semillas de Zamia, Dioon, Ceratozamia y Cycas. En ejemplares herborizados y fijados en solución de FAA. Microscopios óptico y estereoscópico Cajas de Petri Agujas de disección Pinzas Navajas de afeitar nuevas Porta y cubreobjetos Libro de Botánica. 7

12 Procedimiento 1.- Elabore esquemas de todas las estructuras observadas, señalando su nombre y el género al que corresponda. Anotar el tipo de microscopio utilizado y aumento del objetivo (m. óptico). 2.- Observar una hoja completa y distinguir: peciolo, raquis y lámina. 3.- Observar las forma de las pinnas y patrón de venación de los distintos géneros. Presente sus observaciones de manera comparativa. 4.- Escoja un microstróbilo completo y distinga las microsporófilas y su arreglo sobre el eje central. 5.- Separar una microsporófila y observarla al microscopio estereoscópico para determinar su forma, posición y número de microsporangios. 6.- Con una aguja de disección tomar un poco de polen de un microesporangio y colocarlo sobre un portaobjetos con una gota de agua, colocar el cubreobjetos y observar al microscopio óptico. 7.- Observar un megastróbilo completo distinguiendo la forma y arreglo de las megaesporófilas sobre el eje central. 8.- Separar una megaesporófila y observar el número y posición de los óvulos. 9.- Tomar un óvulo de una megasporófila en solución de FAA y realizar un corte delgado, medial longitudinal para distinguir: tegumento, nucela y micrópilo, utilizando el microscopio estereoscópico Tomar una semilla de la solución de FAA y realizar un delgado corte longitudinal medial, observar al microscopio estereoscópico y distinguir las diferentes capas o zonas que presenta En la misma preparación distinga el embrión y cada una de sus partes, observe el número de cotiledones que presenta. 8

13 REPORTE PRÁCTICA No.2. CYCADOPHYTA. CALIFICACIÓN Resultados 1. Hoja completa y sus partes. Género: 2.- Comparación de la forma de las pinnas y venación. Zamia Dioon 9

14 Ceratozamia Cycas 3.- a) Microstróbilo de b) Microsporófilas de c) Microsporangios de d) Granos de polen de 10

15 4.- a) Megasporangio de b) Megaesporófilas de d) Óvulo de e) Semilla de 11

16 Cuestionario 1.- Investigue todos los nombres de los géneros de Cycadophyta vivientes y su distribución geográfica. Conclusiones Bibliografía consultada 12

17 PRÁCTICA 3. GINKGOPHYTA Introducción Esta división de espermatofitas se encuentra representada por una única especie viviente: Ginkgo biloba, considerado como fósil viviente y es originario de China. El registro fósil indica que este grupo de plantas estuvo ampliamente distribuido en el pasado, especialmente en el Hemisferio norte, los registros más antiguos provienen del Pérmico. Actualmente es un árbol ampliamente cultivado en parques y calles de zonas templadas. Son árboles que pueden llagar a medir más de 30 m de altura y son de hábito caducifolio. Presentan dos tipos de ramas: Macroblastos son ramas largas, con nudos espaciados y hojas dispuestas en espiral y Braquiblastos que son ramas cortas laterales, con nudos muy cortos y hojas agrupadas terminalmente sobre la rama. En comparación con las Cícadas, los tallos de Ginkgo presentan un córtex y médula reducidos, debido a una vigorosa y continua actividad del cambium que produce madera de tipo picnoxílica y anillos de crecimiento anuales bien definidos. Sus hojas enteras son uno de los caracteres morfológicos más distintivos, consisten de un peciolo y una lamina fuertemente bilobada (en macroblastos) o no tan bilobadas (en braquiblastos), semejando un abanico. El peciolo es recorrido por dos trazas foliares que van bifurcándose hasta formar un patrón dicotómico en su venación. Las estructuras reproductoras femeninas y masculinas se encuentran en individuos separados (dioicos) y se localizan sobre los braquiblastos. Los estróbilos masculinos asemejan racimos muy laxos con los microsporangios péndulos (2-4 por microsporófila). Las estructuras reproductoras femeninas no forman conos o estróbilos, son ramas cortas (pedúnculos) que portan un par de óvulos terminales, los cuales presentan un engrosamiento peculiar en su base, denominado: collar. 13

18 La polinización es llevada a cabo por medio del viento, los granos de polen se adhieren a los óvulos por una gota mucilaginosa localizada al exterior del micrópilo, al deshidratarse los introduce hasta la cámara polínica. En la fecundación participan gametos masculinos multiciliados y una vez formada la semilla esta presenta una capa carnosa externa (sarcotesta) y en el interior una capa delgada y dura (esclerotesta). Bibliografía Bold, H. C. Alexopoulos C. J & Delevoryas T Morphology of Plants and Fungi. 4 a ed. Harper & Row Publishers. N.Y. U.S.A. Foster A. S. & Gifford E Morphology and Evolution of Vascular Plants. W. H. Freeman & Co. San Francisco. U.S.A. Velázquez Montes, E. & Fonseca R. M Manual de Prácticas de Laboratorio (Briofitas, Pteridofitas y Gimnospermas). Las Prensas de Ciencias. UNAM. México. Objetivos Que el alumno conozca las estructuras vegetativas y reproductoras que caracterizan a Ginkgo biloba y pueda ser capaz de reconocerlo a través de los caracteres morfológicos más obvios. Materiales Biologico: Ejemplares frescos y herborizados de Ginkgo biloba. Estróbilos masculinos, óvulos y semillas en solución de FAA. 14

19 Microscopios óptico y estereoscópico Cajas de Petri Agujas de disección Pinzas Navajas de afeitar nuevas Porta y cubreobjetos Libro de Botánica. Procedimiento 1.- Elabore esquemas de todas las estructuras observadas, señalando su nombre. Anotar el tipo de microscopio utilizado y aumento del objetivo (m. óptico). 2.- En un ejemplar herborizado o fresco observar a simple vista para reconocer los macroblastos y braquiblastos. Observar la forma de las hojas que presentan cada uno de ellos. 3.- Realizar un esquema de una hoja completa, observe con ayuda del microscopio estereoscópico su venación y distinga si es abierta o presenta anastomosis entre las venas. 4.- Tomar un microestróbilo, colocarlo en una caja Petri con agua para observar al microscopio estereoscópico. Elabore un esquema distinguiendo el eje, microsporófilas y microsporangios. 5.- Separar con las pinzas un microesporangio y colocarlo en un portaobjetos con una gota de agua, colocar el cubreobjetos y realizar con cuidado un squash. Observar al microscopio óptico los granos de polen monosulcados. 6.- En una caja de Petri con agua coloque una estructura femenina y distinga: pedúnculo, collar y óvulos con ayuda del microscopio estereoscópico. 7.- Realizar un corte longitudinal medial a un óvulo y observarlo al estereoscópico para reconocer el micrópilo, tegumento y la nucela. 15

20 REPORTE PRÁCTICA No.3. GINKGOPHYTA. CALIFICACIÓN Resultados. 1.- Ejemplar completo. Tipo de ramas. 2.- Hoja y venación 16

21 3.- Microstróbilos 4.- Granos de polen 5.- Estructuras femeninas 6.- Corte longitudinal de óvulo 17

22 Cuestionario 1.- Describa el desarrollo de los gametofitos masculino y femenino y la fertilización en Ginkgo. Elaborar esquemas con señalamientos para representar estos procesos. 2.- Diga que semejanzas tienen las Cicadofitas con Ginkgo biloba? Conclusiones Bibliografía consultada 18

23 PRÁCTICA 4. CONIFEROPHYTA Introducción Esta división consta de tres clases: Cordaitopsida, Coniferopsida y Taxopsida (Bold, 1987). La primera de ellas está representada sólo por organismos fósiles. La clase Coniferopsida consta de cerca 50 géneros y 550 especies, es el grupo de Gimnospermas con mayor número de especies, capaz de formar extensos bosques localizados en el oeste de Norteamérica, Europa y Asia, además de tener la mayor importancia económica para el hombre. En contraste, Taxopsida presenta menor número de especies y no son elementos abundantes en los bosques, Taxus y Torreya son géneros que se localizan en Norteamérica. El orden Coniferales comprende las familias Pinaceae, Cupressaceae, Sciadopityaceae, Taxodiaceae, Cephalotaxaceae, Araucariaceae y Podocarpaceae, en México podemos encontrarlas creciendo de manera natural excepto a Sciadopityaceae (endémica de Japón), Cephalotaxaceae (Asia) y Araucariaceae (Nueva Caledonia, Nueva Zelanda, Australia, Chile, Argentina entre otros). Las familias Araucariaceae y Podocarpaceae están confinadas al hemisferio sur y el resto se distribuyen principalmente en el hemisferio norte. Son plantas leñosas, árboles o arbustos, generalmente perennifolios aunque algunas especies como Larix, Taxodium y Metasequoia son caducifolias. Las hojas se pueden encontrar solitarias o reunidas en fascículos con una vaina en la base (Pinus). Pueden ser de forma acicular, linear, escamosa o, menos frecuente, con lamina ancha (Agathis, Araucaria y Podocarpus). Algunos géneros presentan macroblastos y braquiblastos como Pinus, Larix, Cedrus. Los tallos se caracterizan por presentar un prominente sistema vascular, compuesto por floema y xilema secundario desarrollados a partir del cambium vascular. Además de la presencia de canales resiníferos, el xilema secundario consta de traqueidas con punteaduras areoladas y células de parénquima formando rayos uniseriados. La mayoría de las Coníferas son predominantemente monoicas; Taxaceae, la mayoría de Araucariaceae, Podocarpus y varios géneros de Cupressus son representantes dioicos. Los estróbilos masculinos son más pequeños que las estructuras reproductoras femeninas y su tamaño puede variar 4mm 12 cm. La forma de las microsporófilas varía desde aplanadas a peltadas, pero siempre desarrollan en su cara abaxial los microsporangios, el número varía de 2-20 según la familia. En Pinaceae y Podocarpaceae los granos de polen presentan alas. El estróbilo femenino en la mayoría de las familias se considera compuesto, ya que cada escama ovulífera está asociada a una pequeña 19

24 bráctea, adnada (o no) a la región basal abaxial de la escama. Sobre la escama se desarrollan los óvulos que pueden variar en número de 1-9 dependiendo de la familia. En Taxaceae no hay estróbilos femeninos, los óvulos se presentan solitarios en ramas terminales. La ausencia de gametos masculinos flagelados y el desarrollo del tubo polínico que transporta a los gametos masculinos hacia el arquegonio, son características importantes que distinguen a este grupo de Cycadophyta y Ginkgophyta. Objetivos Conocer las estructuras vegetativas y reproductoras de este grupo de plantas utilizando como representante el género Pinus. Reconocer algunos géneros de Coníferas haciendo uso de una clave dicotómica. Material Biológico: Ejemplares frescos y herborizados de diferentes Coníferas y Taxales. Estróbilos masculinos, femeninos y semillas (hidratadas) frescos o en FAA. Corte transversal de tallo de Pinus. Trocito de madera de Pinus en cloro (durante 2 días). Microscopios óptico y estereoscópico Cajas de Petri Agujas de disección Pinzas Navajas de afeitar nuevas Porta y cubreobjetos Regla Libro de Botánica. Procedimiento 1.- Elabore esquemas de todas las estructuras observadas, señalando su nombre. Anotar el tipo de microscopio utilizado y aumento del objetivo (m. óptico). 2.- Tomar un ejemplar de Pinus fresco o herborizado y distinguir los macroblastos y braquiblastos y los dos tipos de hojas asociados a cada tipo de rama: escamosas y aciculares. 20

25 3.- Del mismo ejemplar revisar la estructura del fascículo: vaina (persistente o caediza) y hojas (número y tamaño). 4.- Tomar una astilla de madera de Pinus, colocar sobre un portaobjetos con una gota de agua y con la pinza y aguja de disección tratar de separar lo más posible y colocar el cubre para observar al microscopio óptico fibras y traqueidas con punteaduras areoladas. 5.- Observar la troza de madera de Pinus para distinguir: corteza, líber, cambium, albura y duramen, anillos de crecimiento (madera temprana y tardía), los rayos y médula. 6.- Tomar un estróbilo masculino de Pinus ponerlo en una caja de Petri con agua y observar al microscopio estereoscópico: a) el arreglo de las microsporófilas sobre el eje b) los microsporangios en la superficie abaxial de las microsporófilas c) determinar el número de microsporangios por microsporófila d) separar un microesporangio con ayuda de unas pinzas y colocarlo en un portaobjetos con una gota de agua y realizar un squash con el cubre para observar al microscopio óptico granos de polen. 7.- Escoger un megastróbilo joven de Pinus, colocarlo en una caja de Petri con agua y realizar un corte longitudinal medial, observar al microscopio estereoscópico y distinguir: a) escamas ovulíferas y los óvulos en la superficie adaxial, localizar las brácteas b) contar el número de óvulos por escama y la posición del micrópilo c) realizar un corte longitudinal de un óvulo, colocarlo en un portaobjeto y distinguir tegumentos, nucela y cámara polínica 8.- Tomar una semilla de Pinus y retirar la testa, realizar un corte longitudinal del interior y observar al microscopio estereoscópico para localizar: el embrión, gametofito femenino y restos de la nucela. 9.- Con los ejemplares distintos a Pinus seguir la siguiente clave de identificación para determinar el género al que pertenecen, anotando los pasos que lo llevaron a su determinación. 21

26 CLAVE PARA GÉNEROS DE CONIFEROPHYTA 1. Hojas aciculares reunidas en fascículos....pinus 1. Hojas no aciculares, no agrupadas en fascículos Hojas lineares Hojas cuadrangulares, anchas o escamosas Semillas solitarias sobre las ramas, cubiertas por una capa carnosa roja...taxus 3. Semillas sin capa carnosa, sobre escamas ovulíferas formando un estróbilo leñoso Cono esférico de 3 cm de largo o menor, con escamas persistentes, hojas deciduas...taxodium 5. Cono cilíndrico de 4 cm de largo o mayor, hojas perennes Conos erectos, escamas caedizas...abies 6. Conos colgantes, escamas persistentes...pseudotsuga 4a. Hojas cuadrangulares punzantes...picea 4b. Hojas anchas con láminas de más de 5 cm de largo y más de 5 mm de ancho...podocarpus 4c. Hojas escamosas pequeñas, menores de 5 mm Arbustos dioicos, conos globosos indehiscentes, semillas sin alas...juniperus 6. Arbustos monoicos, conos dehiscentes, semillas con alas Ramas redondeadas, estróbilos con más de 5 semillas/escama...cupressus 7. Ramas comprimidas dispuestas en un plano Estróbilo con escamas peltadas...chamaecyparis 8. Estróbilo con escamas fusionadas por la base...thuja 22

27 Bibliografía Bold, H. C. Alexopoulos C. J & Delevoryas T Morphology of Plants and Fungi. 4 a ed. Harper & Row Publishers. N.Y. U.S.A. Bosque de Coníferas. ndemexico/capitulo17.pdf. Consulta 23 Junio Foster A. S. & Gifford E Morphology and Evolution of Vascular Plants. W. H. Freeman & Co. San Francisco. U.S.A. Las Gimnospermas. Lecciones Hipertextuales de Botánica. Consulta 23 de Junio Sánchez, O La Flora del Valle de México. Editorial Herrero. México. Velázquez Montes, E. & Fonseca R. M Manual de Prácticas de Laboratorio (Briofitas, Pteridofitas y Gimnospermas). Las Prensas de Ciencias. UNAM. México. 23

28 REPORTE PRÁCTICA No.4. CONIFEROPHYTA. CALIFICACIÓN Resultados. 1.- Pinus: ramas y hojas 2.- Detalles del fascículo Aumento 3.-Observación de astilla de madera de Pinus Corte transversal de tallo de Pinus

29 5.- Microstróbilo de Pinus 6.-Pinus Microsporófila y microsporangios Aumento 7.- Observación Granos de polen Pinus 8.- Corte longitudinal de Megastróbilo de Pinus 25

30 Aumento 9.- Detalle Escama ovulífera y óvulo 10.- Corte longitudinal de óvulo Aumento 11.- Corte longitudinal de semilla de Pinus 26

31 Cuestionario 1.- Describa el ciclo de vida de Pinus de forma resumida por medio de diagramas con leyendas. 2.- Mencione las diferencias (vegetativas y reproductoras) entre el grupo de las Cícadas y Pinus. Conclusiones Bibliografía consultada 27

32 PRÁCTICA 5. GNETOPHYTA Introducción Los representantes de esta división son los géneros Ephedra, Gnetum y Welwitschia. Ephedra con alrededor de 35 especies, está confinada a regiones frías, generalmente áridas de Eurasia y América. La mayoría de las especies son arbustos muy ramificados. Gnetum en contraste, habita en la selva alta perennifolia de Asia, N de Sudamérica, África y ciertas islas del pacífico entre Australia y Asia. Más de 30 especies han sido descritas y son en su mayoría lianas. Welwitschia es una planta rara y de distribución restringida, endémica de la región costera de Angola y SO de África. Consiste de una sola especie W. mirabilis, su hábito y organografía general es muy peculiar y no parecido a ninguna otra planta del planeta. Para el estudio de este grupo se escogerá el género de Ephedra debido a que se encuentra distribuido en México y localmente en el Desierto de Chihuahua. Las plantas de este género son arbustos o árboles pequeños, muy ramificados, sus ramas jóvenes son verdosas y estriadas, con cera en la superficie, frecuentemente verticiladas. Los tallos viejos son leñosos y duros debido al crecimiento secundario, la característica más sobresaliente de su xilema secundario es la perforación de las paredes terminales de ciertas traqueidas para formar vasos. Sus hojas son simples, 2 o 3, rudimentarias, pequeñas, opuestas o verticiladas unidas basalmente formando una vaina alrededor de la zona del nudo; presentan de 2 a 3 venas dependiendo de la especie. Ephedra tiene especies tanto dioicas como monoicas, ambos estróbilos son compuestos, cada uno tiene 2-8 brácteas decusadas unidas al eje; las brácteas inferiores siempre son estériles y las superiores tienen estróbilos sencillos en cada axila. Cada estróbilo masculino sencillo consta de dos brácteas opuestas, rodeando de 1-3 microesporangióforos, cada uno con 2-8 sinangios con 2-3 microsporangios con dehiscencia apical. Los granos de polen son alargados con líneas longitudinales. La polinización se realiza por medio del viento, o por medio de insectos. Cada estróbilo femenino sencillo consta de 2-4 brácteas connadas. Un óvulo con el tegumento interno alargado que forma un tubo micropilar y está 28

33 rodeado por dos bractéolas fusionadas. Las semillas pueden encontrarse solitarias o en pares y están rodeadas por un par de bractéolas, formando una estructura coloreada que puede ser carnosa o alada. Bibliografía Bold, H. C. Alexopoulos C. J & Delevoryas T Morphology of Plants and Fungi. 4 a ed. Harper & Row Publishers. N.Y. U.S.A. Foster A. S. & Gifford E Morphology and Evolution of Vascular Plants. W. H. Freeman & Co. San Francisco. U.S.A. Velázquez Montes, E. & Fonseca R. M Manual de Prácticas de Laboratorio (Briofitas, Pteridofitas y Gimnospermas). Las Prensas de Ciencias. UNAM. México. Objetivos Observar y reconocer las principales estructuras vegetativas y reproductoras del género Ephedra, como representante de la División Gnetophyta. Material Biológico: Ejemplares frescos y herborizados de Ephedra. Estróbilos masculinos, femeninos y semillas frescos o en FAA. Trocito de madera en hipoclorito de sodio (durante 6 días). Microscopios óptico y estereoscópico Cajas de Petri Agujas de disección Pinzas Azul de metileno Safranina Regla Navajas de afeitar nuevas Porta y cubreobjetos Libro de Botánica. 29

34 Procedimiento 1.- Elabore esquemas de todas las estructuras observadas, señalando su nombre. Anotar el tipo de microscopio utilizado y aumento del objetivo (m. óptico). 2.- Tomar un ejemplar para observar sus ramas: a) Utilizando el microscopio estereoscópico localizar en la rama los nudos y entrenudos. Notar las estrías de los tallo y rasparlo con una navaja para distinguir la presencia de cera. b) Observar al microscopio estereoscópico un nudo y distinguir las hojas presentes, su filotaxia y con una regla medirlas y registrar su longitud. c) Desprender una hoja y colocarla en un portaobjetos con una gota de agua y observar al microscopio óptico se patrón de venación. 3.- Tomar un pedazo de tallo aclarado (5 mm), colocarlo sobre un mortero con unas gotas de agua y macerarlo ligeramente y con las pinzas colocar una pequeña porción en un portaobjetos, tratando de separar las fibras con ayuda de las pinzas y agujas de disección, agregar una gota de safranina (5 min), lavar el exceso de colorante con un gotero con agua, colocar el cubreobjetos y observar al microscopio óptico tratando de distinguir vasos, traqueidas y fibras. 4.- Buscar con el microscopio estereoscópico estróbilos compuestos en el ejemplar, observar sus brácteas decusadas y determinar si son femeninos o masculinos: a) En los estróbilos femeninos localizar los óvulos (o semillas) y observar el tubo micropilar. b) En los estróbilos masculinos localizar los esporangióforos con microsporangios, separar uno y colocarlo sobre un portaobjetos con una gota de agua y realizar un squash con el cubreobjetos, observar al microscopio óptico los granos de polen. 30

35 REPORTE PRÁCTICA No.5. GNETOPHYTA. CALIFICACIÓN Resultados. Ephedra 1. Rama con nudos y entrenudos 2.Rama con hojas de de longitud Filotaxia Aumento Aumento 3. Nervadura de las hojas 4. Macerado de madera 31

36 5. Rama con estróbilos 6. Estróbilo femenino Aumento 7. Estróbilo Masculino 8. Observación de granos de polen 32

37 Cuestionario 1.- Diga cuál es la importancia evolutiva de la División Gnetophyta. 2.- Realice esquemas de los óvulos de Ephedra, Gnetum y Welwitschia en corte longitudinal, resaltando sus diferencias. Conclusiones Bibliografía consultada 33

38 PRÁCTICA 6. MAGNOLIOPHYTA MAGNOLIOPSIDA Y LILIOPSIDA Introducción Las plantas con flores constituyen el grupo más moderno, exitoso y diverso del Reino Plantae, con más de 250,000 especies distribuidas en prácticamente todos los biomas del planeta, y son agrupadas dentro de la División Magnoliophyta. Esta división se distingue por ser plantas vasculares, comúnmente con raíces, tallos y hojas de tipo megáfilas; el xilema presenta vasos, por lo menos en las raíces, el floema con tubos cribosos y células acompañantes. Las estructuras reproductoras arregladas en forma de flores, asociadas con hojas especializadas, presentando de manera general: sépalos (cáliz), pétalos (corola), estambres (androceo) y carpelos (gineceo). Los óvulos se encuentran dentro del ovario y constan de un megasporangio llamado nucela, cubierto por dos tegumentos. Dentro de la nucela se desarrolla el gametofito femenino sin arquegonios y por lo general consta de ocho núcleos, se conoce con el nombre de saco embrionario. Los granos de polen se producen dentro de los microsporangios, localizados en las anteras de los estambres, cada grano de polen puede contener de 2-3 células, constituyendo al gametofito masculino inmaduro. La fecundación se realiza dentro del saco embrionario: uno de los gametos masculinos se une a un núcleo femenino (ovocélula) formando al cigoto, y el otro se une a otros dos núcleos del saco embrionario (núcleos polares), produciendo la primera célula del endospermo, a este proceso se le conoce como doble fecundación que es típica de Magnoliophyta. Del cigoto se desarrolla un embrión que queda rodeado por el endospermo triploide, cubierto a su vez por los tegumentos, que formarán la testa de la semilla al madurar. Las semillas se desarrollan dentro del ovario y al madurar este se transforma en el fruto. 34

39 La división Magnoliophyta se divide en dos clases: Magnoliopsida y Liliopsida, las principales diferencias entre estas clases son: Clase Magnoliopsida Clase Liliopsida (Dicotiledóneas) Embrión con dos cotiledones en posición lateral (excepciones con 1, 3, 4 o 0). Endospermo nuclear o celular, nunca helobial. Raíz principal persistente (alorrizia), adventicias o ambos. Haces conductores dispuestos, generalmente, en círculos en sección transversal del tallo (eustele) y abiertos, que permiten el desarrollo de un cambium para un crecimiento secundario en grosor. Vasos en el xilema de raíces, tallos y hojas. Plastidios de los tubos cribosos sin inclusiones proteínicas. Hojas generalmente pecioladas, y a menudo con estípulas, rara la presencia de vaina, lámina con nerviación reticulada y a menudo compuestas. Flores con verticilos principalmente pentámeros o tetrámeros. (Monocotiledóneas) Embrión con un solo cotiledón (raro 2 o no diferenciados), en posición aparentemente terminal y con vaina envolviendo el punto vegetativo. Endospermo helobial, o generalmente nuclear. Raíz principal de corta duración, sustituida por numerosas raíces adventicias (homorrizia secundaria). Haces conductores dispersos en sección transversal del tallo (atactostele), sin cambium y sin engrosamiento secundario normal. Vasos solamente en raíces o ausentes, rara vez en tallo. Plastidios con inclusiones proteínicas. Hojas generalmente simples, insertas al tallo por una amplia base o vaina, estípulas ausentes y pecíolo por lo general ausente, lámina foliar con nervaduras paralelas o pinnado paralelas.. Órganos florales cíclicos, verticilos trímeros. Nectarios de varios tipos, nunca septales. Formación del polen generalmente simultánea, y polen con frecuencia triaperturado o derivado. Formas de desarrollo iníciales arbóreas. Nectarios septales o derivados, a veces otros tipos. Formación del polen, generalmente, sucesiva, y granos de polen uniaperturados o derivados. Gran abundancia de plantas acuáticas y palustres herbáceas, y hemicriptófitos y geófitos. 35

40 Bibliografía Cronquist, A An Integrated System of Classification of Flowering Plants. Columbia University Press. N.Y. Fonseca, R. M. & Velázquez Montes E Conoce las Plantas con Flores. Morfología y Clasificación de Magnoliophyta. Universidad Autónoma de Nayarit. Foster A. S. & Gifford E Morphology and Evolution of Vascular Plants. W. H. Freeman & Co. San Francisco. U.S.A. Objetivos Que el alumno observe y reconozca las principales diferencias morfológicas entre las dos clases de Magnoliophyta en campo y laboratorio. Material Biológico: 2 Ejemplares frescos de dicotiledóneas y monocotiledóneas con flores Ejemplo: 2 Rosas y 2 Azucenas. Plántulas de maíz y frijol (las semillas deberán ponerse a germinar con 2-3 semanas de anticipación). Libreta de notas Microscopios óptico y estereoscópico Cajas de Petri Agujas de disección Pinzas Safranina Navajas de afeitar nuevas Porta y cubreobjetos Libro de Botánica. Procedimiento (2 sesiones) 1.- Elabore esquemas de todas las plantas y estructuras observadas, señalando su nombre. En su caso anotar el tipo de microscopio utilizado y aumento del objetivo (m. óptico). 36

41 2.- Primera sesión: la práctica se realizará en los jardines del campus u otro sitio que se definirá con anticipación. Será necesario llevar una libreta de notas para hacer anotaciones de las observaciones que se realicen. En esta sesión se deberán reconocer diferencias en habito, sistema radicular, crecimiento secundario, estructura foliar y floral entre dicotiledóneas y monocotiledóneas. 3.- Segunda sesión: a) Observar las plántulas de maíz y frijol al microscopio estereoscópico y buscar los cotiledones, determinar su número y posición. b) Con una navaja realizar un corte transversal del tallo de las plántulas de maíz y frijol, lo más delgado que sea posible y colocar sobre un portaobjetos con una gota de safranina, dejar actuar 5 min y lavar con un gotero con agua cuidando de no perder el corte, colocar el cubreobjetos y observar al microscopio óptico. c) Observar al microscopio estereoscópico un estambre de cada una de las flores, reconocer sus partes: filamento, antera, teca, conectivo y con ayuda de una aguja de disección tomar una muestra de polen, colocarla en un portaobjetos con una gota de agua y observar al microscopio óptico. d) Con el microscopio estereoscópico localizar el gineceo o pistilo en las flores, reconocer sus partes: estilo, estigma y ovario. Realizar un corte transversal del ovario y observar al microscopio estereoscópico el número y posición de los óvulos. Determinar el número de hojas carpelares que lo forman. e) Observar las flores, reconociendo cada uno de los verticilos florales y contar las piezas de los sépalos, pétalos, estambres y carpelos. Determinar si son flores pentámeras, tetrámeras o trímeras. 37

42 REPORTE PRÁCTICA No.6. MAGNOLIOPSIDA Y LILIOPSIDA. CALIFICACIÓN Resultados HÁBITO Magnoliopsida Liliopsida Nombre Nombre Nombre Nombre Nombre Nombre Nombre Nombre 38

43 ESTRUCTURA FOLIAR. Forma, peciolo, nervadura, estípulas, vaina, etc. Magnoliopsida Liliopsida Nombre Nombre Nombre Nombre Nombre Nombre 39

44 SISTEMA RADICULAR Magnoliopsida Liliopsida Nombre Nombre COTILEDONES Frijol Maíz 40

45 CORTE TRANSVERSAL DE TALLO Frijol Maíz Aumento: Aumento: ANDROCEO Estambre de Estambre de Granos de polen Granos de polen Aumento: Aumento: 41

46 GINECEO Nombre: Nombre: Nombre: Nombre: CORTE TRANSVERSAL DEL OVARIO 42

47 FORMULA FLORAL: Nombre: Nombre: Cuestionario 1.- Del siguiente listado de plantas comestibles investigue cuáles son dicotiledóneas y cuáles monocotiledóneas, el nombre científico de cada una de ellas y la parte de la planta que se consume. Apio Zanahoria Jamaica Ajo Cebolla Avena Caña de azúcar Nopal Tomate Arroz Piña Ajonjolí Conclusiones Bibliografía consultada 43

48 Introducción PRÁCTICA 7. USO DE CLAVES DICOTOMICAS PARA LA IDENTIFICACION DE PLANTAS La identificación o determinación es el proceso por el cual podemos llegar a conocer el nombre científico de una planta que desconocemos y que ha sido previamente definido por un especialista botánico. Por lo tanto, para poder realizar la identificación es necesario que con anterioridad haya sido clasificada, además de haberle dado un nombre científico (nomenclatura). Los nombres científicos o botánicos permiten acceder al conocimiento de las especies, sus características, distribución, usos, etc.; además facilitan el intercambio de información a nivel técnico/profesional, a nivel regional o mundial. La clasificación es la asignación de una planta dentro de una estructura jerárquica ya establecida, es decir colocar la planta en el lugar adecuado (desde el punto de vista sistemático) junto a otras plantas en función de sus semejanzas. Las plantas se agrupan en función de sus semejanzas y los grupos se vuelven a agrupar siguiendo el mismo criterio, organizándolo todo de forma jerárquica (jerarquía taxonómica), el fin es que las clasificaciones reflejen las relaciones filogenéticas de las plantas, la idea es que las plantas de un mismo grupo comparten un antepasado común. Los niveles básicos o categorías fundamentales en las clasificaciones (jerarquía taxonómica) son desde el nivel superior al inferior: división, clase, orden, familia, género y especie. Una vez que está terminada la clasificación de un taxón, se extraen los caracteres diagnósticos de cada uno de sus miembros, y sobre esa base se confeccionan claves dicotómicas de identificación, las cuales son utilizadas en la tarea de la determinación o identificación de organismos, ubicando a un organismo desconocido en un taxón conocido del sistema de clasificación. Para identificar una planta el método más rápido y fiable es recurrir a un experto, pero no siempre lo tenemos a disposición. Un segundo método consiste en comparar la planta con otros ejemplares ya identificados, por ejemplo consultando un herbario, un jardín botánico, un libro con descripciones completas e ilustraciones, pero este método necesita una gran cantidad de tiempo y contar con colecciones completas y confiables. El tercer método es utilizar claves de identificación. Una clave de identificación es una herramienta que mediante la elección sobre conjuntos de caracteres contrastados o contradictorios llegamos hasta el nombre de la planta que queremos identificar. Las claves de identificación más comunes son las dicotómicas, en las que se 44

49 presentan dos conjuntos de caracteres incompatibles o contrastados. Por ejemplo pétalos rojos o pétalos blancos. La elección de una de las dos alternativas nos lleva a otra pareja de caracteres o bien al nombre de la planta o cualquier otro taxón. Las claves dicotómicas deben estar preparadas para identificar cualquier planta y si están bien confeccionadas, lo ideal es que el número de pasos sea el mínimo. Al seguir una clave dicotómica se necesita que estén disponibles todos los caracteres que se piden, de no ser así no se podría avanzar a no ser que se establezcan presunciones que hay que contrastar. Se podría solucionar en parte si en la misma dicotomía se incluye descripciones de más de un carácter. Para el adecuado uso de las claves es necesario conocer los términos que se utilizan, esto podría dificultar la utilización de las claves si no van acompañadas de un glosario. Normalmente las claves de identificación son creadas para una región en particular, ya que no sería útil tener en ellas información de grupos que no están presentes en la región de estudio. Hay que considerar que las claves se elaboran tomando en cuenta las características de ejemplares adultos típicos, por lo que es aconsejable que durante la determinación, cuando un carácter descriptivo particular da algún problema, se examine más de un ejemplar de la especie. Bibliografía Consulta en línea Dic Heywood, V. H Las Plantas con Flores. Ed. Reverté. Barcelona. Objetivos Familiarizar al estudiante en el manejo de claves dicotómicas para la identificación de plantas. Que el alumno sea capaz de identificar los ejemplares proporcionados de angiospermas. Que el alumno empleé los conocimientos adquiridos para la identificación de material vegetal. 45

50 Material Material vegetal prensado o fresco: 2 ejemplares por equipo Microscopio estereoscópico Agujas de disección Pinzas Navajas con filo Regla Clave de identificación (proporcionada por el maestro) Libro de Botánica y/o un glosario botánico. Procedimiento 1. Observar cuidadosamente cada ejemplar asignado, comenzando con los caracteres vegetativos (hábito, tipo de hojas, filotaxia, etc.) y en seguida el análisis de su morfología floral (fórmula floral). 2. Utilizando la clave dicotómica siga la serie de opciones (pueden ser dos o más), de las cuales escogerá la que cumpla o que mejor se apegue al ejemplar que desea determinar. Al final de cada bloque de selección, encontrará un número, letra o nombre que indica el siguiente bloque de alternativas o parte de la clave en la que debe continuar. Es importante que cada término utilizado este bien definido, ya que es la manera en que solo se puede escoger o rechazar las opciones contrastadas que se presentan. 3. Seleccionando el camino de este modo se llegara a distintos grupos, que nos indicarán en primer lugar, la familia en la que se incluye el ejemplar, a continuación al género y finalmente a la especie. 4. Al llegar a un resultado (familia, género o especie) compare su ejemplar con la descripción botánica completa para verificar que este se apega en lo más esencial. 46

51 REPORTE PRÁCTICA No.7. USO DE CLAVES DE IDENTIFICACION. CALIFICACIÓN Resultados Ejemplar 1 Fórmula floral: Familia: Género: Especie: Caracteres diagnósticos: Ejemplar 2 Formula floral: Familia: Género: Especie: Caracteres diagnósticos: 47

52 Cuestionario 1.- Mencione a qué clase y subclase pertenecen sus ejemplares de acuerdo con la clasificación de Cronquist (1981). 2.- Qué caracteres observo en sus ejemplares que pueden ser relacionados con sus respectivas subclases? Conclusiones Bibliografía consultada 48

53 PRACTICA 8. MAGNOLIIDAE Introducción Plantas leñosas o herbáceas con hojas enteras, alternas (opuestas), pecioladas y con estípulas anchas, por lo general. Flores actinomorfas (cigomorfas), hipóginas (períginas o epíginas); tépalos por lo general no fusionados ni claramente diferenciados en pétalos y sépalos, o solo los sépalos presentes, o rara vez las flores muy reducidas y sin perianto. Los estambres por lo general numerosos, madurando en secuencia centrípeta, a veces pocos y cíclicos, frecuentemente con forma acintada o laminar y sin una clara diferenciación entre el filamento y la antera, o con el conectivo evidentemente prolongado, algunas veces con filamento y antera. Los granos de polen son binucleados (trinucleados), uniaperturados o derivados (algunas familias triaperturados o derivados). Gineceo apocárpico (monocárpico), menos frecuente sincárpico; la placentación en los ovarios apocárpicos y monocárpicos de tipo marginal o laminar, apical o basal y en los sincárpicos de tipo axilar o parietal; óvulos bitégmicos (unitégmicos), crasinucelares (tenuinucelares). Semillas con endospermo presente, en ocasiones ausente, a veces acompañado o reemplazado por perispermo; embrión con 2 cotiledones, en ocasiones 3 o 4, rara vez 1 por supresión de uno de ellos. Magnoliidae consta de 8 órdenes, 39 familias y cerca de 12,000 especies. Los órdenes Magnoliales, Laurales y Ranunculales contienen la mayoría de las especies. En esta subclase se agrupan plantas que han conservado uno o más caracteres considerados primitivos. Bibliografía Cronquist, A An Integrated System of Classification of Flowering Plants.Columbia University Press. NY. Fonseca, R. M. & Velázquez Montes E Conoce las Plantas con Flores. Morfología y Clasificación de Magnoliophyta. Universidad Autónoma de Nayarit. 49

54 Heywood, V. H Las Plantas con Flores. Ed. Reverté. Barcelona. Zomlefer W. B Guía de las Familias de Plantas con Flor. Ed. ACRIBIA, S.A. España. Objetivo Que el alumno se familiarice con las características diagnosticas de esta subclase mediante el estudio de las familias seleccionadas. Materiales Material biologico: Ejemplares herborizados o frescos de Magnoliaceae, Lauraceae, Piperaceae, Nymphaceae, Ranunculaceae y Papaveraceae. Microscopio estereoscópico Agujas de disección Pinzas Navajas nuevas Cajas de Petri Claves de identificación Procedimiento 1. Observar las estructuras florales de cada ejemplar y elaborar sus fórmulas florales. 2. Utilizando claves de identificación determinar la familia a la que pertenecen y si es posible llegar hasta género. 3. Relacionar cada familia con su respectivo orden. 4. Elaborar dibujos de los ejemplares incluyendo sus estructuras reproductoras. 50

55 REPORTE PRÁCTICA No.8. MAGNOLIIDAE. CALIFICACIÓN Resultados Ejemplar 1 Orden Familia Género Formula Floral Ejemplar 2 Orden Familia Género Formula Floral Ejemplar 3 Orden Familia Género Formula Floral 51

56 Ejemplar 4 Orden Familia Género Formula Floral Ejemplar 5 Orden Familia Género Formula Floral Ejemplar 6 Orden Familia Género Formula Floral 52

57 Cuestionario 1. Mencione 5 familias de Magnoliidae que estén representadas por un género y una especie. Cuál es su distribución? Cómo explicaría el hecho que dentro de esta subclase existan varias familias monotípicas o bien con unas pocas especies? 2. Algunos botánicos han considerado a las Nymphaeales como monocotiledóneas por qué? 3. Diga cuál es el nombre científico, familia y orden de las siguientes plantas: loto, pimienta, aguacate, opio, laurel, anona, canela, alcanfor y anís estrella. Conclusiones Bibliografía consultada. 53

58 PRÁCTICA 8. HAMAMELIDAE Introducción En esta subclase se agrupan muchas plantas conocidas como amentíferas por presentar sus inflorescencias (al menos las masculinas) en forma de amentos. Está constituida por 11 ordenes, 24 familias y cerca de 3,400 especies. Casi las dos terceras partes de las especies pertenecen al orden Urticales, un cuarto de ellas a Fagales, los restantes 9 órdenes tienen menos de 300 especies entre todos. Al igual que Magnoliidae, presenta una gran proporción de familias pequeñas, aisladas taxonómicamente y probablemente relictuales. Cronquist (1981) sugiere que este grupo de plantas originadas durante el Albiano (Cretácico inferior), se caracterizaron por una polinización anemófila y reducción floral, posiblemente como respuesta a un clima que alternaba estaciones húmedas y secas. Su hábito caducifolio debió de ser adaptativamente útil en tal clima y además compatible con la evolución de la anemofilia. Esta combinación de caracteres debió de pre-adaptarlas para invadir las regiones templadas del planeta, antes que estas regiones fueran completamente ocupadas por otro tipo de angiospermas, proliferando y diversificándose. El grupo fue declinando hacia el Cretácico superior probablemente como resultado de la competencia con otras plantas que lograron adaptarse cada vez mejor a la polinización por insectos en hábitats similares. Actualmente Hamamelidae constituye un grupo pequeño de plantas, con una serie de linajes finales aislados. La subclase Hamamelidae está representada por plantas leñosas o herbáceas, en su mayoría con hojas simples aunque menos frecuente pueden presentar hojas compuestas pinnadas o palmadas. Sus flores son típicamente anemófilas o bien entomófilas (probablemente de forma secundaria), generalmente pequeñas e inconspicuas (por reducción); comúnmente apétalas o a menudo con el perianto totalmente ausente. Los sépalos cuando están presentes son pequeños y escuamiformes; los pétalos si están presentes son libres, pequeños e inconspicuos. Estambres (1) 2-varios o en ocasiones más o menos numerosos, a veces con el conectivo prolongado pero nunca de tipo laminar; los granos de polen pueden ser binucleados o trinucleados y con 2-3 a muchas aberturas (colpos, a veces poros). El gineceo de 1 a muchos carpelos libres, pero más frecuentemente los carpelos están unidos formando un ovario compuesto. Su placentación puede ser marginal, laminarlateral o más comúnmente axilar, apical o basal. Óvulos anátropos u ortótropos, crasinucelares, bitégmicos o menos a menudo unitégmicos. Algunas de las familias más conocidas de esta subclase y que se encuentran bien representadas en México son: Fagaceae, Urticaceae, Ulmaceae, Juglandaceae y Moraceae. 54