Targeted Research Project Connectivity component

Transcripción

1 Targeted Research Project Connectivity component Selección de métodos para el monitoreo de peces de arrecife, corales juveniles y post-larvas de langosta espinosa. United Nations University International Network on Water, Environment and Health

2 Este documento incluye los métodos a ser usados en el monitoreo de reclutamiento del componente de conectividad del proyecto Targeted Research and Capacity Building. La sección de reclutamiento de peces ha sido adaptada del manual de métodos del SAM (Almada-Villela et al. 2003, Manual de métodos para el programa de monitoreo sinóptico del SAM, disponible en línea En el presente documento solo incluimos instrucciones especificas para el monitoreo de peces de arrecife, reclutas de corales y post-larvas de langosta espinosa, sin embargo en el futuro estaremos incluyendo mas métodos tales como censos de adultos y censos en manglares. Esperamos que estos métodos ayuden a iniciar y llevar a cabo labores de monitoreo de reclutamiento de peces, corales y langosta de una manera satisfactoria.

3 Definiciones y selección de sitios Términos para definir sitios Para mantener consistencia entre países sugerimos el uso de los siguientes términos. El monitoreo se llevara a cabo en varias LOCALIDADES, cada LOCALIDAD estará compuesta por varios SITIOS. En cada uno de los SITIOS actividades de monitoreo serán llevadas a cabo en replicas de TRANSECTOS, CUADRANTES o COLECTORES DE LARVAS DE LANGOSTA. Las localidades estarán debidas en escalas de decenas de Km, mientras que los sitios serán a escalas de cientos de metros. Por ejemplo, Cayo Calabash en el atolón de Turneffe, Belice, es una Localidad en la que Soldier Caye (17º N, 87º W) y Coral Garden (17º N, 87º W) son Sitios de monitoreo Selección de Sitios de Monitoreo La localización geográfica de cada sitio son las coordenadas GPS del lugar donde se ancla la embarcación, es importante el retornar a la localidad precisa en cada ocasión de monitoreo. Los SITIOS son lugares de monitoreo permanentes de un tamaño tal que permiten ser muestreados desde una embarcación anclada en el punto GPS (un pedazo circular de habitat de ~100m de radio al rededor del punto de GPS). En lugares donde las LOCALIDADES incluyan ecosistemas arrecifales, la selección de sitios es mas complicada debido a la disposición en parches de estos ecosistemas. Reconocemos que los arrecifes coralinos varían en tamaño, complejidad, profundidad, perfil y cobertura a través del SAM. A continuación damos recomendaciones para procedimientos de selección de sitios. Sin embargo, reconocemos la modificación de estas guías podría ser necesaria para acomodar cada localidad. Es de vital importancia para el suceso de nuestro proyecto que estos procedimientos sean seguidos de la manera mas puntual posible, y que en caso de haber modificaciones estas sean cuidadosamente anotadas. Selección de Sitios en Sistemas Arrecifales En cada una de las Localidades por lo menos dos sitios deben ser establecidos. Los sitios deben ser localizados en el arrecife anterior entre 8-10 m de profundidad para mantener consistencia a través de la región. Si por alguna razón esto no es posible en su localidad, entonces seleccione Sitios representativos de su Localidad (Ej. a mayor profundidad). Es importante recordar que cualquier desviación de estas descripciones de sitios debe ser anotada e informada a nosotros. Seleccione sitios en los que el monitoreo sea posible. Un sitio con buena cobertura de coral vivo que solo puede ser muestreado una vez al año no contribuye tanta información sobre reclutamiento de peces como un sitio con menor cobertura de coral vivo pero que puede ser muestreado mas frecuentemente. Debido a que las langostas se asientan en diferentes habitats, su reclutamiento será monitoreado usando métodos diferentes. Sugerencias para la selección de

4 sitios para el monitoreo de langostas pueden ser encontradas en la sección de langostas de este documento. Descripción de Sitio Esta descripción debe ser preparada para cada uno de los Sitios monitoreados durante la primera visita. Estas descripciones deben ser realizadas una vez al establecer el Sitio, a menos que el Sitio halla pasado por un evento extremo reciente tal como una tormenta o huracanan. Es crucial que esta descripción incluya las razones por las cuales el Sitio fue establecido y si es necesario explicaciones de las razones por las cuales el Sitio no fue establecido de acuerdo a las guías en este documento. La descripción de Sitio debe incluir información tal como: Coordinadas de GPS Relieve aproximado, pendiente, tamaño y forma de las estructuras de relieve (Ej. parches dispersos, cordilleras y canales, etc.) Orientación (barlovento, sotavento, dirección de viento según la época) Rango de profundidad corregido por variación de mareas Para aquel personal que monitoreen sitios para los cuales existen mapas, es recomendado que se anoten los cambios de cobertura de habitats particulares, al igual que las descripciones de Sitios. Una actividad adicional que puede ser de uso es la de conducir labores de prueba de los mapas de habitat, para de esta manera poder tener una idea precisa de cada uno de los Sitios. Si se esta considerando el adquirir mapas, estos deberán ser a escalas de entre 1:50,000 y 1:100,000 para vista general y escala de 1:5,000 para detalles. Fotografías aéreas a escala de 1:50,000 también pueden proveer información de línea base. Colecta de Datos, Proceso de Datos y Entrada de Datos Los datos deben ser digitados usando las formas de datos provistas al final de cada sección. Formas similares pueden ser encontradas en línea en el sitio del proyecto SAM ( Una vez llenas las hojas de datos deben ser entregadas al Coordinador de Monitoreo (CM) de cada Localidad. El CM se encargara de validar los datos antes de ser digitados. Ejemplos de validación de datos incluyen el asegurarse que todos los datos son legibles y que no hay espacios vacíos, revisar errores potenciales antes de irse del Sitio de muestreo y si es necesario repetir el transecto. Errores comunes incluyen la identificación errónea de organismos, anotar datos en la columna equivocada, y el no realizar mediciones o estimaciones requeridas. El primer nivel de chequeo de datos es hecho en el sitio inmediatamente después de la colecta de datos, o antes de irse del Sitio. El segundo nivel de evaluación de datos ocurre cuando los datos originales son comparados con los datos digitados en la base de datos, esto debe ser realizado por el CM y otra persona. Y el tercer nivel de chequeo de datos ocurre cuando los datos llegan a la oficina del Conectividad. Es crítico que estos chequeos ocurran cada vez que los datos son colectados. Los datos deben ser digitados en hojas de calculo

5 electrónicas en formato Excel y enviadas a la oficina del programa de monitoreo (actualmente, Dr, Peter Sale) dos veces al año como acordado durante los talleres de monitoreo.

6 Reclutamiento de Peces de Arrecifes Por Paolo Usseglio, M. Sc. Universidad de Windsor Departamento de Ciencias Biológicas El reclutamiento de peces de arrecifes deberá ser estimado en cada Sitio 3 veces al año durante los 7 primeros días después de la luna llena de los meses de junio, julio y agosto. En la medida de lo posible trate de llevar a cabo sus actividades de monitoreo entre las 10 de la mañana y las 3 de la tarde. Entendemos que en cada situación de campo existirán problemas logísticos o meteorológicos que impedirán llevar a cabo actividades de monitoreo, es necesario que cuando estas situaciones se presenten registros de tales acontecimientos y los problemas sean descritos (Ej. Mal tiempo en sitio 1, o se descompuso el motor el 3 de julio). Si por alguna razón las actividades de monitoreo no pueden ser realizadas durante los primeros 7dias después de la fase de luna llena, es imperativo que la fecha real de monitoreo sea anotada en las hojas de datos y en la base de datos. Los equipos y métodos a ser usados son descritos en la sección siguiente. Equipo Hojas de datos en papel sumergible Notas de identificación de especies impresas en papel sumergible 2 cintas métricas de fibra de vidrio de 30m de largo O 30m de línea de nylon amarrada a un carrete 2 pesas de 3lb barra T graduada Hojas de Datos. Estas hojas contienen formatos diseñados para el monitoreo de reclutamiento de peces de arrecife. Los formatos están incluidos al final de esta sección. Cada hoja de datos esta diseñada para contener 4 transectos, es necesario tener 2 para completar los 8 transectos en cada Sitio. Asegúrese de que todos los espacios del encabezado han sido llenados antes de comenzar a muestrear. Tabla de inscripción. Ya que cada buzo necesitara una pagina por cada 4 transectos, sugerimos el siguiente diseño para la tabla de inscripción. Empezando con material acrílico de 5mm de espesor corte una sección de 21.6 x 28cm. Utilizando material acrílico de 3mm de espesor corte dos marcos de las mismas dimensiones externas que la tabla pero 12mm de margen interna. El producto final debe ser una tabla con dos marcos que aseguraran las hojas de datos en cada lado de la tabla. En el mas sencillo de los casos los marcos serán asegurados a la tabla por medio de ganchos mariposa, si se dispone de tiempo y materiales una mejor opción es la de usar tornillos con tuercas mariposas que permitan la fácil remoción de los marcos y las hojas de datos.

7 Dos cintas metricas de fibra de vidrio: Por lo menos 2 cintas métricas de fibra de vidrio con una pesa de 3lb amarada al extremo inicial. En caso de no contar con cintas métricas estas pueden ser remplazadas por cuerda de nylon de 30m de largo. Para facilitar el uso de las cintas métricas se puede usar un clip para asegurar los carretes a los chalecos de los buzos, de esta manera ambas manos quedan libres para toma de datos. Una barra T graduada. Construya una barra T usando tubo de PVC de ½ pulgada de diámetro y un conector en T. El mango debe ser de 60cm de largo y los dos brazos deben tener una longitud total de 1 metro. Utilice cinta eléctrica o pintura para marcar los brazos a intervalos de 5cm. Es importante que los transectos sean muestreados utilizando una barra T. De esta manera se asegurara la consistencia de métodos entre transectos, sitios, equipos de monitoreo y años. Método Transectos de banda para conteos de reclutas de peces de arrecifes usando una lista de especies predeterminada 1. Para cada transecto, registre la siguiente información: nombre del observador, fecha, tiempo de inicio de cada transecto, Nombre del Sitio y posición GPS, numero del transecto. 2. Extienda un transecto de 30m de largo (Figura 3.1) colocando el inicio de la línea en un punto del arrecife seleccionado al azar. Nade en una línea recta mientras extiende el resto del transecto y cuenta el número de reclutas de peces de arrecife encontrados en el transecto. Trate de evitar cambios de profundidad al nadar cada transecto. En habitats de cordilleras y canales trate de nadar sobre las cordilleras en vez de a través de las cordilleras y los canales. Al contar los peces a medida que se extiende el transecto se minimizan los efectos de la presencia del buzo. Periódicamente fije su vista en algún objeto en la distancia (coral masivo, o alguna parte del relieve del arrecife) esto ayudara a nadar en línea recta. Mientras nada puede sujetar la cinta métrica a su chaleco, de esta manera tendrá las manos libres. 3. A medida que extiende los 30 metros de línea, cuente y registre los reclutas encontrados en una banda de 1m de ancho (50cm a cada lado de la línea del transecto). Utilice una hoja de datos y una barra T de 1m de ancho para asegurar la correcta estimación del ancho del transecto. La barra T debe ser llevada a 45 grados entre el observador y el substrato. Cuente y registre solamente las especies presentes en la tabla 3.1. Realice el muestreo del transecto nadando a una velocidad constante y fijando su atención en cada segmento consecutivo de 2m. Puede realizar pausas mientras registra los datos y luego continuar nadando. Es importante el nadar de manera uniforme a una velocidad que cubra cada transecto en 6-8 minutos.

8 En algunos casos densidades altas de peces aumentarían el tiempo de muestreo. En situaciones en las que una escuela de peces atraviese el transecto es tentador el tratar de contar todos los individuos presentes, esto conllevaría a prestar menor atención a las partes subsiguientes del transecto. En situaciones de escuelas de peces recomendamos que se cuenten solo aquellos individuos presentes en el ancho de la banda de 1m, aquellos fuera de la banda de 1m no deberán ser contados. Aquellos individuos que realicen muestreos de peces deberán ser entrenados en técnicas de estimación de tamaños para de esta manera asegurar consistencia entre observadores. Métodos para estimación de tamaños pueden ser encontrados al final de esta sección. Recuerde que los reclutas de peces de arrecife son crípticos y por ende difíciles de avistar, trate de nadar cada transecto entre 1 y 1 ½ metros del substrato. Asegurase de no entrar en contacto con el substrato accidentalmente con las aletas o cuerpo. Ejercicios de control de flotabilidad ayudaran a mantener su posición mientras nada el transecto. 50 cm 50 cm Figura 3.1 Diagrama representando un buzo realizando un transecto de banda (Rodgers et al. 2001). Una variación de este método será usada al conducir transectos de banda, en esta el buzo usara una barra T. Note que el transecto es establecido a medida que el buzo avanza. 4. Continué realizando transectos al azar posicionados al menos 5m del ultimo transecto. Repita los pasos anteriores para cada transecto. 5. Conduzca un mínimo de ocho (8) transectos en cada sitio. Utilizando los datos obtenidos durante el primer año análisis de poder deben ser realizados para asegurarse que el nivel de replicación es suficiente para obtener niveles de presión adecuados. Modificaciones: En algunos lugares diferente personal podria estar interesado en monitorear otras especies de peces. Esto es alentado siempre y cuando los conteos sean realizados durante una pasada DIFERENTE del transecto, evite contar adultos y reclutas al mismo tiempo.

9 Tabla 3.1 Lista de especies propuesta para monitoreo de reclutamiento. Tallas máximas por cada especie son dadas en TL= Longitud Total, peces mayores a esta medida no deberán ser incluidos en los censos. Familia Especies Nombre común (ingles) Max. TL (cm) ACANTHURIDAE Acanthurus bahianus Acanthurus coeruleus Ocean surgeon Blue Tang CHAETODONTIDAE Cheatodon striatus Chaetodon capistratus Banded butterflyfish Four-eye butterflyfish GRAMMATIDAE Gramma loreto Fairy basslet 3.0 LABRIDAE Bodianus rufus Halichoeres bivittatus Halichoeres garnoti Halichoeres maculipina Halichoeres pictus Thalassoma bifasciatum Spanish hogfish Slippery dick Yellowhead wrasse Clown wrasse Rainbow wrasse Bluehead wrasse POMACENTRIDAE SCARIDAE Chromis cyanea Stegastes diencaeus Stegastes dorsopunicans Stegastes leucostictus Stegastes partitus Stegastes planifrons Stegastes variabilis Scarus iserti Scarus taeniopterus Sparisoma atomarium Sparisoma aurofrenatum Sparisoma viride Blue chromis Longfin damselfish Dusky damselfish Beaugregory Bicolor damselfish Threespot damselfish Cocoa damselfish Striped parrotfish Princess parrotfish Greenblotch parrotfish Redband parrotfish Stoplight parrotfish

10 Referencias Rogers, C.S.; Garrison, G.; Grober, R.; Hillis, Z.-M. and Franke, M.A. (2001). Coral Reef Monitoring Manual for the Caribbean and Western Atlantic. St John, U.S. Virgin Islands. 107 pp.

11 Ejercicios de estimación de tamaño Estimación de un transecto de banda de 1m de ancho El primer paso en la estimación del ancho del transecto de banda es el de visualizar los limites de un transecto de 1m de ancho por 30m de largo. Esta unidad de muestreo ha sido delineada específicamente porque es lo suficientemente pequeña para permitir al observador el estimar distancias fácilmente mientras que se mantiene un área de muestreo relativamente grande. Una barra T de 1m es usada para asistir a los observadores en estimar el ancho del transecto. Para estimar la longitud del transecto trate de imaginar que el transecto es un túnel de 1m cuadrado. Inicie la primera sección entre 1 y 2m adelante de la barra T. Al muestrear el transecto los observadores deben prestar el mismo nivel de atención a cada segmento sucesivo de 2m. Es requerido el nadar a una velocidad constante cada sección del transecto, mirando consistentemente 2m adelante, excepto cuando se pause para registrar los peces observados. Cada transecto debe ser nadado a una velocidad tal que el tiempo total sea entre 6-8 minutos. En transectos con altas densidades de peces este tiempo puede ser mayor, pero definitivamente bajo ninguna circunstancia se debe nadar un transecto en menos de 6 minutos. Recordando que se debe mantener el mismo nivel de atención en cada segmento del transecto, es posible contar solo aquellos individuos que se encuentran en el transecto en vez de contar todos los organismos presentes en una escuela. En otras palabras, mantenga su vista fija adelante y no se distraiga a los lados por escuelas de peces que pasen. Recuerde que los reclutas son crípticos y por esta razón deberá buscarlos activamente, recuerde de mirar dentro de agujeros, bajo cornisas, y entre tapetes de algas. Estimación de tamaño Los métodos propuestos en la sección anterior dan el tamaño máximo al que un pez es todavía considerado recluta. Dado que no necesitamos estimar el tamaño real de cada individuo todo lo que tenemos que hacer es estar seguros de que podemos distinguir los tamaños máximos fácilmente y contar cada pez que es de inferior a esta medida. Para esto sugerimos dos ejercicios. Ejercicio 1 En este ejercicio, los observadores practicaran contar y estimar el tamaño de modelos de peces a lo largo de un transecto. Cada observador deberá usar una barra T, una cinta métrica de 30m y un formato de datos. Un transecto de practica deberá ser establecido y a lo largo de este modelos de peces (hechos con pajillas cortadas a diferentes tamaños y atados a una plomada) serán colocados al azar. Al colocar cada modelo anote la distancia del transecto a la que el modelo fue colocado y el tamaño del modelo, estos datos serán usados para comparar las respuestas obtenidas por cada observador. Un observador (diferente al que estableció el transecto) nadara el transecto, con ayuda de la barra T determinara el ancho de

12 la banda de muestreo, al encontrar cada modelo anotara el tamaño estimado y la distancia en el transecto a la que el modelo se encuentra. Una vez terminados todos los transectos compare los tamaños estimados por cada observador con los tamaños reales de cada modelo. Repita el ejercicio hasta que los observadores obtengan resultados consistentes. Sugerimos que las pajillas sean cortadas en incrementos de 0.5cm empezando en 1cm y terminando en 5 o 6 cm., de esta manera será posible el estimar tamaños mayores a la talla máxima de cada especie. El análisis de los datos será por medio de regresiones lineares, en las cuales el tamaño estimado de cada modelo será la variable dependiente y el tamaño real será la variable independiente. El valor r 2 será un estimado de precisión mientras que la pendiente será un estimado de exactitud. Ejercicio 2: Cada observador usara una regla plástica y un formato de datos. El objetivo de este ejercicio es el de estimar el tamaño de un objeto inanimado y luego comparar este estimado contra el tamaño real del objeto. Mientras nada en el área de muestreo busque pequeños pedazos de coral muerto u otras estructuras fusiformes y trate de estimar su tamaño. Trate de no acercarse a más de 1m de cada objeto y trate de no tocarlos. Una vez estimado el tamaño recoja el objeto y mida su talla. Este ejercicio difiere del anterior en que mientras las pajillas cambian de tamaño cada 0.5cm peces raramente lo hacen, con este ejercicio usted estará en mejores condiciones de estimar tamaños reales. El análisis de los datos será de la misma manera que el ejercicio numero 1.

13 Monitoreo de Reclutamiento de Corales Juveniles Metodos por Dr. Bob Steneck y Susie Arnold Universidad de Maine Nota: Los siguientes métodos son una revisión a los métodos de monitoreo en el manual de monitoreo del manual SAM. El método en el manual usa placas de asentamiento para monitorear el reclutamiento de corales. Aunque estas placas son practicas, particularmente como marcadores de transectos, los métodos de marcaje y manejo de placas y análisis de microscopia hacen que este método requiera entrenamiento avanzado haciendo el método impractico. Los métodos siguientes son dirigidos a cuantificar corales juveniles en el campo ya que este es un mejor estimado de reclutamiento de corales. Razón de ser: Los patrones de distribución y abundancia de corales juveniles pueden ser usados como medida de reclutamiento de corales. Los corales maduran sexualmente a tallas mayores a 40 mm por esto la abundancia de corales de menos de 40 mm de talla se convierte en un estimado de corales que se reclutaran a poblaciones adultas si la mortalidad después del asentamiento es baja. Este protocolo esta diseñado para cubrir dos objetivos. OBJETIVO UNO: La estructura de las comunidades de algas y la densidad de corales juveniles serán medidas a lo largo de los transectos. Los corales encontrados dentro de los cuadrantes serán identificados a nivel de especie o género y medidos. OBJETIVO DOS: En cada transecto, mapas de ubicación de corales juveniles seleccionados serán realizados y fotografías de estos corales serán tomadas para monitorear crecimiento y supervivencia. De estos datos determinaremos curvas de supervivencia para corales juveniles, estas curvas nos ayudaran a determinar tasas de reclutamiento a poblaciones adultas. Métodos: Selección de sitio: Seleccionar un arrecife a 10 m de profundidad y obtener coordenadas GPS precisas para el sitio. Establecer cinco transectos de 10m de largo sobre la cima de las cordilleras de arrecifes. Trate de colocar los transectos de manera que el punto medio (5m) este a 10 m de profundidad mientras que el inicio y el final del transecto estén a menos y mas de 10m respectivamente. Si es posible marque el inicio y el final del transecto de manera que sea posible encontrar los mismos transectos para ser monitoreados repetitivamente a través

14 del tiempo. Las placas de asentamiento proveen marcas para identificar los transectos. Objetivo 1: Transectos de demografía de corales juveniles: A lo largo de cada uno de los cinco transectos establecidos con el método anterior, la abundancia y el tamaño de los corales juveniles serán estimados utilizando cuadrantes. Para esto será necesario establecer una cinta métrica empezando en el extremo mas somero del transecto. A las distancias 0, 2.5, 5, 7.5 y 10 colocar un cuadrante de 25x25 cm, para un total de 5 cuadrantes por transecto. En cada uno de estos puntos colocar el transecto aleatoriamente en lugares donde algas y corales se reclutarían. Substratos con invertebrados sesiles tales como esponjas, gorgonaceos y corales adultos deberán ser evitados (no utilice transectos con mas de 25% de cobertura de invertebrados). En cada cuadrante, medir el tamaño de cada colonia de talla menor a 40mm (eje mas largo). Identificar, si es posible, cada especie de coral en caso contrario identificar por lo menos a nivel de genero. En cada cuadrante estimar visualmente el porcentaje de cobertura de algas de tapete, macroalgas, algas articuladas (principalmente Halimeda opuntia), algas costrosas coralinas, costras no-coralinas (principalmente Peyssonnelia). Medir el promedio de altura del dosel de macroalgas, algas articuladas, y algas de tapete. Utilizando el formato Excel provisto digitalizar los datos. Nota: estimados de porcentaje de cobertura visuales son mejores que conteos de punto-intercepto o intersectos en cuadrantes (ver Dethier el al 1993). Objetivo 2: Monitoreo de corales juveniles: Placas de asentamiento de barro serán usadas tanto para marcar transectos y localidades específicas como para poder monitorear asentamiento y supervivencia post-asentamiento. Los métodos para colocar placas de asentamiento son descritos en el manual de métodos del proyecto SAM. Placas de asentamiento deberán ser de 10x10 cm y de 1 cm de ancho. Un agujero de ¼ de pulgada deberá ser taladrado en el centro de cada placa (utilice una broca de cemento y un taladro de mesa). Una vez secas las placas deberán ser numeradas consecutivamente utilizando un marcador de tinta indeleble. Escriba el numero encima y abajo del agujero y cubra el numero con una fina capa de resina epoxica (resina West System 105 dura entre 3-5 años. También escriba el numero en la parte superior de la placa, este numero desaparecerá una vez la placa sea colonizada, pero puede ser usado en las etapas tempranas para identificación de la orientación del transecto.

15 El método para sujetar las placas al fondo es el de clavar las placas al arrecife por medio de un clavo de ¼ de pulgada, este método tiene la desventaja de presentar una alta perdida de placas. Un método mejor, aunque mas intensivo, es el de perforar orificios en el arrecife y después insertar un tacho de plástico al cual se atornilla un tornillo de acero inoxidable. Este método es efectivo por al menos 3-4 años. Coloque la primera placa al inicio del transecto (extremo somero) y coloque la ultima al extremo final (profundo). Las otras placas (por lo menos 3) deberán ser colocadas en el substrato donde sea posible. Es buena idea la de colocar las placas a 25 cm de corales juveniles para facilitar labores de monitoreo. Realice mapas de ubicación de las placas (incluyendo números) ANTES de irse de la estación. Monitoreo de supervivencia y crecimiento de corales juveniles: En cada placa de asentamiento de corales, buscar corales juveniles localizados a 25 cm o menos de la placa (utilice un cuadrante para medir la distancia). Para cada coral juvenil encontrado anote el numero de placa y la orientación del coral con respecto a la placa (arriba, abajo, izquierda o derecha, recuerde que el inicio del transecto es el punto mas cercano a la costa). Dibuje la localización del coral en respecto a la placa. Si es posible tome una fotografía digital de la placa y del cuadrante (incluyendo el numero de la placa) manteniendo la misma orientación del transecto y luego tome un acercamiento del coral recluta colocando una regla cerca del coral. Repeticiones de estas fotografías a través del tiempo proveerán tasas de crecimiento e índices de mortalidad para cada especie. En caso de que no sea posible obtener fotografías de los corales, anote la ubicación de cada uno de los corales juveniles como descrito en el parágrafo anterior, identifique el coral a nivel de especie ( o mas bajo nivel taxonómico posible) y mida el tamaño del coral a lo largo del eje mas largo. Frecuencia de monitoreo: El objetivo principal de este monitoreo es el de determinar la distribución, abundancia y tamaño de corales juveniles en cada sitio. En cada uno de los sitos de arrecifes coralinos monitoreo anual deberá ser realizado siguiendo los pasos descritos anteriormente. El monitoreo anual deberá ser realizado entre Mayo y Agosto para estandarizar patrones anuales a lo largo de al región.

16 Literatura citada: Dethier, M.N., Graham, et al. (1993). Visual versus random-point percent cover estimations: objective is not always better Mar, Ecol. Prog. Ser. 96:

17 Date: Site Transect # Depth (m) Diadema (#/20m) Quad # _ 0 m 2.5 m 5 m 7.5 m 10 m _ 0 m 2.5 m 5 m 7.5 m 10 m Stony Coral (adult) Gorgos/sponges Corallines Turf T-CH (mm) Macro. M-CH (mm) NCC Art A-CH (mm) Sid. siderea Por. astreoides Agarica spp. Mont. ann. Stephanocena Mont. caver. Site Transect # Depth (m) Diadema (#/20m) Quad # _ 0 m 2.5 m 5 m 7.5 m 10 m _ 0 m 2.5 m 5 m 7.5 m 10 m Stony Coral (adult) Gorgos/sponges Corallines Turf T-CH (mm) Macro. M-CH (mm) NCC Art A-CH (mm) Sid. siderea Por. astreoides Agarica spp. Mont. ann. Stephanocena Mont. caver.

18 Monitoreando el Reclutamiento de Post-larvas de la Langosta Espinosa (Panulirus argus) Utilizando Colectores Artificiales Por Mark Butler Department of Biological Sciences Old Dominion University Norfolk, Va USA Razón de ser: El reclutamiento de especies marinas ha sido definido de varias maneras dependiendo de la especie y las circunstancias. En este documento, yo me refiero específicamente al reclutamiento de post-larvas como al suministro o llegada a áreas costeras de larvas de langosta espinosa provenientes del plankton oceánico donde residieron por varios meses como larvas. También me refiero específicamente a la langosta espinosa -Panulirus argus- debido a que los métodos usados y el éxito de cada método varia de acuerdo a la especie de langosta. El monitoreo de reclutamiento de langostas en el estadio post-larva ha tenido varios usos, incluyendo la estimación de stock futuro, la investigación experimental de limites de reclutamiento, y la adquisición de post-larvas para acuacultura o para aumentar reservas naturales. Gran variedad de colectores artificiales han sido desarrollados para estimar la abundancia relativa de nuevos reclutas de langosta, y su construcción y uso general han sido revisados por Phillips & Booth (1994). Aunque varios tipos de colectores han sido desarrollados para colectar P. argus en el Caribe, tres han sido de éxito particular y su uso continua (Fig.1.). El colector Phillips (desarrollado en Australia occidental) es usado en Cuba, el colector GuSi es usado en México y el colector Witham es usado en la Florida, Bermuda, Bahamas y en Belice. Todos son efectivos para capturar post-larvas de langosta espinosa, sin embargo tanto los costos de manufactura y mantenimiento como las tasas de captura varían entre ellos. El colector Witham es el único para el que se ha demostrado una correlación entre captura y la abundancia de larvas en el plankton y el asentamiento de larvas en la región corriente-abajo del colector (Herrnkind & Butler 1994). Los colectores Witham serán usados como parte del componente de reclutamiento del proyecto Coral Reef Targeted Research debido a su efectividad y uso en la región, su uso es descrito en la sección siguiente.

19 Figura 1: Tres tipos de colectores artificiales usados en el Caribe para capturar post larvas de langosta espinosa (P. argus). A la izquierda esta el colector tipo Phillips, al centro el colector GuSi, y a la derecha el colector Witham. Los dibujos no están a escala y el diseño de cada colector puede variar. Métodos: Selección del sitio: El sitio optimo para los colectores de tipo Witham es en el borde que apunta hacia tierra de un canal que se abre a una laguna costera, estas áreas tienden a concentrar post-larvas ya que ellas tienden a ser acumuladas en esta área antes de ser encausadas en el canal para ser luego dispersadas en la laguna (Fig. 2A). Una segunda opción es la de colocar los colectores en el borde de una isla que esta mas cerca a la laguna, en este lugar las larval podrían ser mantenidas por remolinos (Fig.2B). No coloque los colectores directamente en áreas de corrientes tales como canales, en vez utilice las áreas cercanas a estos canales. Los colectores de tipo Witham deben ser colocados en áreas someras (<3m de profundidad) sobre substratos arenosos o de fondos de parches rocosos. Colectores colocados en substratos que reflejen buen hábitat para asentamiento tales como fondos cubiertos por algas, pastos marinos densos y pedrazones de coral no reflejaran estimados de asentamiento dignos de fe. Los colectores no deben ser colocados a menos de 20 m de otro colector. Canal Isla x x x x Figura 2: Las áreas sombreadas indican aguas someras, las flechas indican la dirección del flujo de agua durante la marea ascendiente, y las X indican alternativas de posiciones para colocar los colectores (Nota: en cada posición son necesarios múltiples colectores) Izquierda situación de canal, derecha situación de isla. En cada sitio de monitoreo 5 colectores deben ser mantenidos a fin de proveer un tamaño de muestra suficiente para permitir la estimación de post-larvas. Sin embargo, este numero puede ser aumentado o reducido después de un año de monitoreo al realizar estimados de tamaño de muestras y análisis de poder. Es necesario realizar un año de muestreo preliminar debido a la extrema variación mensual en el suministro de post-larvas.

20 Figura 3: Diagrama de un colector Witham en el agua. El sistema de anclaje representado es un bloque de concreto lleno de tornillos de acero inoxidable al cual se ha amarrado una boya. Un clip de bronce une la boya con el colector. Construcción: Instrucciones detalladas para construir los colectores Witham pueden ser encontradas en otro documento, dicho documento contiene también la lista de materiales a ser empleados. Este documento será llevado a cada área núcleo por el Dr. Mark Butler. En breve, el marco del colector esta hecho de tubos de PVC de ¾ de pulgada de diámetro y unido por medio de codos de PVC y uniones en T pegados con soldadura de PVC para formar una estructura a forma de escalera. Un pedazo de cuerda de 3/8 de pulgada atraviesa el colector y se asegura al final con un clip de bronce que asegura el fácil anclaje y remoción del colector. Laminas de material hogs hair (filtros de fibra de vidrio para aire acondicionado) son añadidas al marco en las uniones T y amarradas con abrazaderas plásticas. 4 boyas o flotadores son amarrados al marco para proveer flotabilidad a la estructura. EL sistema de anclaje es un simple sistema de ancla, usualmente bloques de concreto llenos de pernos de acero inoxidable. Una cantidad razonable de cuerda de nylon es atada a uno de los extremos del ancla y el otro a una boya marcadora en la superficie; un as de guia en la superficie sirve como punto para conectar el colector a la boya por medio del clip de bronce. Muestreo y mantenimiento: Para propósitos de monitoreo, los colectores Witham son muestreados diariamente una vez al mes 7 días después de la luna llena. Esto resulta en un total de 13 periodos de muestreo por año (13 periodos lunares). Para el muestreo es necesaria una embarcación capaz de transportar por lo menos dos personas, y una bolsa de malla con agarraderas. Al acercarse la embarcación a la boya en la superficie una persona se encarga de desconectar el clip de la boya en la superficie y luego mover el colector hacia la bolsa de malla. Una vez el colector este dentro de la bolsa el colector será izado a bordo por dos personas. Una vez el agua escurra del colector este será removido de la bolsa y cada una de las capas de hogs hair es sequencialmente revisada para encontrar post larvas de langosta. La bolsa de malla también es revisada. Los datos son después anotados para cada colector por separado. Típicamente, el número de larvas transparentes, pigmentadas y los juveniles son anotados (ver hoja de datos al final de esta sección). Algunas otras especies de organismos serán

21 encontrados en el colector, si se desea estas especies pueden ser colectadas y enumeradas. Una vez colectadas las muestras el colector Witham es retornado al agua. Sin contar el tiempo de viaje al sitio de muestreo, 5 colectores Witham pueden ser muestreados en 1 hora y media. Dependiendo del sitio, el material de filtro hogs hair debe ser reemplazado cada 3-6 meses ya que la colonización de organismos llena los espacios del material impidiendo su uso por parte de post larvas de langosta. El material debe ser aclimatado al agua por un mes antes de ser usado. Después de los primeros meses de uso, un sistema de rotación en el que un colector es remplazado cada mes por otro colector que se ha mantenido fuera del agua por un periodo lunar puede ser usado. Los marcos de PVC deben ser cambiados periódicamente (anualmente) según estado de desgaste. Literatura citada: Herrnkind, W.F. & M.J. Butler IV Settlement of spiny lobsters, Panulirus argus in Florida: pattern without predictability. Crustaceana 67:46-64 Phillips, B.F. & Booth, J.D Design, use and effectiveness of collectors for catching the puerulus stage of spiny lobsters. Reviews Fish Biology 2:

22 Appendice Ejemplo de una hoja de datos para un colector tipo Witham Postlarval Collector Data Site Name: Date: Lat: Lon: Observer: Collector Date Number of Individuals Remarks Number Deployed Trans* Pig* Juv* Total General Comments: