-Poder germinativo -Vigor -Peso de 1000 semillas -Pureza varietal -Pureza física -Calidad sanitaria

Transcripción

1 CALIDAD DE SEMILLAS Tener presente: -Poder germinativo -Vigor -Peso de 1000 semillas -Pureza varietal -Pureza física -Calidad sanitaria

2 PATOLOGÍA DE SEMILLAS Los cultivos deben iniciarse con semilla de buena calidad Los patógenos pueden ser transportados por la semilla. Semilla infectadas o semilla infestada. Los patógenos pueden sobrevivir en ella por largos períodos. Las semillas constituyen la forma más eficiente de dispersión. y para ser introducidos en nuevos campos o países. El medio más seguro de supervivencia de los patógenos. Aseguran el paso de una generación a otra del hospedante, y la continuidad del ciclo biológico de los patógenos.

3 INTRODUCCIÓN DE PATÓGENOS EN ÁREAS NUEVAS AUMENTO DE INÓCULO DISEMINACIÓN A LARGAS DISTANCIAS HONGOS EN LA SEMILLA INVERNACION DE ENFERMEDADES REDUCCIÓN DEL PG Y vigor AUMENTO DE COSTOS PARA EL CONTROL DE ENFERMEDADES REDUCCIÓN DE LA PRODUCTIVIDAD

4 TIPOS DE ASOCIACIONES ENTRE PATÓGENOS Y SEMILLAS Conocer la ubicación de los patógenos y su vinculación a la semilla es muy importante para la selección del fungicida curasemilla más adecuado. -Patógenos acompañando a la semilla Esclerocios de S. sclerotiorum Fusarium sp. en rastrojo (en glumas, trozos de raquis o tallo) -Patógenos adheridos externamente (semilla infestada) Teliosporas de Tilletia caries,sphaerotheca reiliana en sorgo o maíz, Bipolaris sorokiniana, en trigo Thecaphora frezii en maní, Plasmopara halstedii en girasol, P. manshurica en soja Métodos de análisis -Lavado de la semilla, que remueven los patógenos asociados a las semillas y la observación microscópica de alícuotas del líquido de lavado permiten su detección. -Importante conocer la tasa de transmisión que es variable; dependiendo de la posibilidad que las esporas tengan para infectar a las plántulas.

5 -Patógenos localizados internamente en la semilla (semilla infectada) considerar dos tipos de infección: 1.- el patógeno es transportado internamente en los tejidos de la semilla como estructuras vegetativas. Como micelio en el pericarpio y/o el endosperma Ej: Alternaria, Bipolaris, Drechslera, Septoria, en trigo Fusarium verticillioides en maíz, Fusarium solani en maní, Cercospora sojina en soja, Phomopsis sojae en soja. 2.- el patógeno se encuentra como micelio durmiente o latente en el embrión Ej: Ustilago tritici en trigo Fusarium verticillioides en maíz, Fusarium solani en maní, Phomopsis sojae y Cercospora kikuchii en soja

6 Tener en cuenta -LA SIMPLE PRESENCIA DE UN PATÓGENO EN LA SEMILLA NO ASEGURA EL PASAJE A LA PLANTA -LA EFICIENCIA DE LA TRANSMISIÓN DE SEMILLA A LAS PLANTAS DEBE SER PROBADA Y CUANTIFICADA (TASA DE TRANSMISIÓN). -LA TASA DE TRANSMISIÓN DEBE SER DETERMINADA PARA CADA PATÓGENO LLEVADO POR LA SEMILLA EN CONDICIONES SEMEJANTES A LAS QUE OCURREN NATURALMENTE -LA TASA DE TRANSMISIÓN ES MAYOR PARA LOS PATÓGENOS QUE SE ENCUENTRAN INFECTANDO A LA SEMILLA. -LA SEMILLA PORTADORA DEL PATÓGENO SE CONVIERTE EN LA FUENTE DE INÓCULO PRIMARIO.

7 OBJETIVOS DE LA PATOLOGÍA DE SEMILAS -Efectuar relevamientos de lotes para semilla e identificar la presencia de enfermedades en cultivo. -Aplicar metodologías que permitan la detección y el aislamiento de patógenos asociados a la semilla. -Estudios de la tasa de transmisión de diferentes patógenos llevados o asociados a las semillas -Análisis de la eficiencia de los métodos de control para el saneamiento de los patógenos transportados por las semillas. -Estudiar el efecto de la semilla infectada en el ciclo de la enfermedad y la interacción con los factores del medio ambiente.

8 Para tener en cuenta: Algunas virosis son trasmitidas por semilla dando planta enferma, como Mosaico común de la soja, el mosaico de la alfalfa Cuando un patógeno es detectado sobre, dentro o con las semilla se dice que es un patógeno de semilla. Cuando ese patógeno de semilla es transferido, estableciendo infección en la plántula es un patógeno transmitido por semilla.

9 FACTORES QUE INFLUYEN EN LOS NIVELES DE UMBRAL DE INÓCULO EN SEMILLA -La relación del patógeno con la semilla de ese hospedante -La cantidad de inóculo -La susceptibilidad del hospedante Cuanto más susceptible es un hospedante más pequeño es el umbral de inóculo permitido -La virulencia del patógeno Es su capacidad de causar enfermedad. Los test de sanidad de semilla no determinan virulencia. Esto se determina por test de patogenicidad es decir inoculando las plántulas -Los factores ambientales -La biología del patógeno -El potencial de dispersión secundaria Ej: el carbón volador de trigo (Ustilado tritici) la cantidad de enfermedad en el campo se relaciona con la cantidad de semilla infectada -La existencia de otras fuentes de inóculo -Objetivo de la determinación de presencia de patógeno en semilla Los umbrales se determinan para la realización de controles ya que para una cuarentena se debe tener tolerancia Cero, es decir libre del patógeno

10 DETERMINACIÓN DE LA CANTIDAD DE SEMILLA INFECTADA O INFESTADA -Inspección visual a campo de la presencia de la enfermedad -Examen directo de la semilla(síntomas y signos) -Examen del agua de lavado de la semilla y observación al microscopio -Técnica sobre papel de filtro en cámara húmeda (Blotter test) y sus variantes. (restricción hídrica, agregado de herbicidas, de medios especiales sobre papel) -Utilización de medios de cultivos selectivos para poder detectar la presencia. -Realización de Test bioquímicos, serológicos o utilización de técnicas moleculares.

11 Tener en cuenta: Falsos positivos Identificación de estructura fúngica pero no viable. Aislamiento de cepa poco o no virulenta. Hongo no patógeno morfológicamente similar. Falsos negativos Cuando se falla en detectar la presencia de un organismo patógeno y virulento. - mala selección de la técnica para detectarlo, - tamaño de muestra inadecuado (pequeña) - sistema de muestreo y el número de repeticiones que se deben realizar

12 Patógenos en semilla de maní -Rhizopus stolonifer -Aspergillus flavus -Asperillus niger -Aspergillus sp. -Alternaria sp. -Fusarium sp. -Cladosporium sp. -Penicillium sp. -Thecaphora frezii (carbon) -Sclerotinia spp (semilla infestada)

13 Penicillium Rhizopus Aspergillus sp

14 Sclerotinia spp. Sclerotinia minor

15 Carbón del maní Thecaphora frezii Glomérulos de 2 teliosporas (16 x24µ) Glomérulos de 3 teliosporas(24 x 26µ)

16 En general para maní: 1. Aspergillus y Penicillium spp. Son los patógenos que se presentan con mayor incidencia y luego Rhizopus. 2. La infección de Fusarium spp se da en el campo, y no aumenta en almacenamiento como Penicillium spp. y Aspergillus spp. 3. Existe una correlación significativa entre el valor de PG y la CFT de la semilla 4. La semilla con daños severos y no viables se correlaciona con la CFT y la cantidad de Aspergillus spp. y Penicillium spp., esto indica que los daños producidos a la semilla generan un incremento de estos patógenos en el almacenamiento. 5. En el procesamiento de la semilla se produce un gran deterioro que incrementa el número de semillas no viables o con defectos severos. 6. Los patógenos de almacenamiento afectan el poder germinativo de la semilla y la emergencia a campo del cultivo.

17 Patógenos en semilla de soja

18 Hongos presentes en semillas de soja TIZÓN DEL TALLO Y DE LA VAINA Fusarium spp. MANCHA PÚRPURA MANCHA OJO DE RANA MILDIU PODREDUMBRE HUMEDA DEL TALLO PATÓGENOS DE SUELO (Phytophthora, Rhizoctonia, Sclerotium rolfsii, Macrophomina phaseolina, Sclerotinia minor, Pythium spp) ALMACENAMIENTO: Penicillium spp. - Aspergillus spp.rhizopus spp CANCRO DEL TALLO ANTRACNOSIS

19 Cercospora kikuchii

20 Cercospora kikuchii TIZÓN DEL TALLO Y DE LA VAINA

21 TIZON DE LA VAINA Y DEL TALLO Y PODREDUMBRE DE LA SEMILLA Complejo Diapothe - Phomopsis sojae Lehman

22

23 Sclerotinia sclerotiorum

24 Cercospora sojina Fuente: Ing. Agr. Doctora Fitopatóloga Mercedes Scandiani & Ing. Agr. M. Sc. Marcelo A. Carmona.

25 Conidióforos fasciculados sobre hilo y tegumento

26 Fusarium spp.

27 Antracnosis

28 Colletotrichum truncatum

29 HONGOS EN EL ALMACENAJE Aspergillus spp. Penicillium spp. Rhizopus spp.

30 Aspergillus spp

31

32 Penicillium spp.

33 Rhizopus stolonifer

34 MAÍZ Principales hongos en semillas Fusarium verticillioides, F. proliferatum, F. subglutinans F. graminearum, Fusarium spp. Aspergillus, Penicillium, Cladosporium, Rhizopus Stenocarpella maydis, S. macrospora Alternaria, Curvularia Bipolaris maydis, B. zeicola Colletotrichum graminicola Exserohilum turcicum Pestalotia Botryodiplodia Nigrospora oryzae Sporisorium reiliana (Sphaceloteca reiliana)

35 Conocer el estado sanitario de la semilla Definir si la semilla es apta como semilla Selección del curasemilla más adecuado para el control de los patógenos que lleva la semilla Decisión sobre otras prácticas de manejo - Elección de la fecha de siembra. - Elección del lote a sembrar con esa semilla.

36 MÉTODO DEL PAPEL SECANTE (BLOTTER TEST ) -Con esta metodología se pretende conocer y profundizar en la problemática sanitaria de la un lote de semilla. -Constituye un análisis complementario a una observación de la muestra directa en seco y a un análisis de germinación según la especie

37 Bandejas de plástico utilizadas para el test

38 Metodología análisis en soja Blotter test Observación: 200 semillas (Si el análisis es complementario de un test de germinación) Preparación de sustrato blotter Bandejas medianas (16x20 cm): 90 ml de a.d.e., 1 hoja de papel estándar y algodón. Capacidad: 50 semillas Desinfección superficial de la semilla: con hipoclorito de sodio al 1% (1 minuto), enjuagar con agua destilada estéril (existen variantes en los tiempos y concentraciones de hipoc.) Se debe trabajar en un lugar limpio y desinfectado con alcohol 70% e hipoclorito al 2%. Desinfectar las bandejas y las manos con alcohol 70% y flamear instrumentos en mechero.

39 Metodología análisis en maní -400 semillas aparentemente sanas de cada lote en cuatro repeticiones de Las semillas se colocan en bandejas (17x23x4 cm) sobre papel de filtro humedecido con agua destilada (previa colocacion de algodón en la base de la bandeja), previamente desinfectadas superficialmente con hipoclorito de sodio al 2%, durante 2 minutos. -Enjuagar 2 veces con agua destilada esteril -Incubación en cámara de cultivo a 27ºC ± 2, con luz ciclos de 12 horas de luz y 12 horas de oscuridad. -Las bandejas deben ser cubiertas por bolsas de plástico -Evaluación a los 7 días desde la siembra.(las variables analizadas serán el número total de colonias y la frecuencia de cada género.

40 Eficiencia de fungicidas en el control de la flora fúngica transportada por semillas demaní (Arachis hypogaea L.) en la Argentina Cavallo, A. R., R. J. Novo y M. A. Pérez

41

42 PARA RECORDAR: -El nivel de infección fúngica de una semilla determina la calidad fisiológica de los lotes de semillas de maní -Existe una relación inversa entre el nivel de infección con la viabilidad y el vigor. -El principal agente de diseminación de enfermedades lo forman los lotes de semillas.

43 ACTIVIDADES -DESCRIBIR SINTOMAS Y SIGNOS POR OBSERVACIÓN DIRECTA DE UNA MUESTRA EN SECO -CADA GRUPO REALIZARÁ UN BLOTTER TEST DE UN CULTIVO O CULTIVAR DISTINTO -A LOS FINES PRACTICOS SOLO SE UTILIZARAN 100 SEMILLAS DE CADA CULTIVO O CULTIVAR -ORGANIZAR CRONOLOGICAMENTE LOS GRUPOS DE ACUERDO A LA CAPACIDAD DE LA CÁMARA -EVALUAR LA PRESENCA DE PATÓGENOS A LOS 6-7 DÍAS.