ANESTESIA: AGENTES ANESTÉSICOS. MONITORIZACIÓN. EMERGENCIAS ANESTÉSICAS.

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1 ANESTESIA: AGENTES ANESTÉSICOS. MONITORIZACIÓN. (11,12, 15) EMERGENCIAS ANESTÉSICAS. Criterios para la elección del método anestésico: Indicación de la anestesia: contención del ave para realizar examen físico, toma de muestras y técnicas de diagnóstico complementarias (radiología, endoscopia, ecografía), aplicación de vendages y procedimientos quirúrgicos. Estado físico del ave Examen físico preanestésico del animal Disponibilidad de personal capacitado Equipo de anestesia Familiaridad con la técnica anestésica. Recuerdo anatómico y fisiológico: Traquea con anillos cartilaginosos completos Pulmones no expansibles Carecen de alveolos. El intercambio gaseoso se produce en los capilares aéreos.la superficie de intercambio gases es mayor que en mamíferos del mismo peso y la barrera de intercambio gaseoso es más fina. Poseen sacos aéreos: no participan en el intercambio gaseoso pero suponen un incremento del espacio aéreo. Carecen de diafragma Metabolismo basal elevado: rápida metabolización de los agentes anestésicos; elevadas necesidades energéticas Elevada temperatura corporal (40-42 ºC) El agente anestésico ideal en aves es aquel que: Crea mínimo estrés para administrarlo. Posee alto indice terapeútico. Permite inducción y recuperación rápidas. Induce mínimos cambios fisiológicos. Permite el grado de anestesia necesario para el procedimiento deseado. Puede aplicarse en aves con enfermedad grave. Evaluación del ave: Anamnesis: especie, edad, sexo. Examen físico: Peso corporal, enfermedad actual, distrés respiratorio. Pruebas complementarias: Hemograma, Glucosa, AU, AB, AST, análisis coprológico, Radiologia, ECG. Clasificación del riesgo anestésico según el estado físico de los pacientes (6) : Clase I (Riesgo mínimo): Aves jóvenes, aves aparentemente sanas que se han de someter a procedimientos diagnosticos o cirugía programada Clase II (Riesgo ligero): Aves muy jóvenes (pollos) o viejas, que se han de someter a procedimientos diagnosticos o cirugía programada, o aves aparentemente sanas que se han de someter a cirugía no programada.

2 Clase III (Riesgo moderado): Aves con moderadas alteraciones sístémicas (adelgazamiento moderado) Clase IV (Riesgo alto): Aves con alteraciones graves o enfermedad sistémica (distrés respiratorio, anemia, deshidratación, enfermedad renal o hepática descompensada, emaciacón, obesidad) Clase V (Riesgo grave): Aves moribundas o con enfermedad muy grave (estado de shock, trauma craneal, obstrucción respiratoria...) Clasificación del riesgo según el procedimiento quirúrgico (6) : Clase I: Procedimiento de corta duración (manejo, toma de muestras, vendage). No se preveen hemorragias. Clase II: Cirugía menor: sutura y desbridamiento de heridas, vendajes de fracturas cerradas, sexaje endoscópico. Corta duración y mínima hemorragia. Clase III:Cirugía más agresiva: exéresis de masas cutáneas, desbridamiento de quemaduras del buche, ojos o cavidad oral. Mayor riesgo de hemorrágia y mayor duración. Clase IV: Cirugía intracelómica, traumatología, biopsias de órganos. Anestesia prolongada y altas pérdidas poteciales de sangre. Cuidados preanestésicos: Normalmente no se emplea premedicación con atropina ya que provoca un espesamiento de las secreciones bronquiales, provoca taquicardia y disminuye la motilidad intestinal Analgesia: Buprenorfina: 0,01-0,05 mg/kg (IM); Butorfanol 4-5 mg/kg (IM) Fluidoterapia: Solución de Lactato de Rínger templado, a dosis de 50 ml/kg (EV;IO; SQ) Aporte de calor mediante estera calefactora Ayuno: Como las rapaces no comen contínuamnete, se prefiere anestesiar animales con el buche vacío (lo que equivale a un ayuno de 4-6 horas). AGENTES ANESTÉSICOS: Anestésicos inyectables: Agente anestésico Dosis Comentarios Ketamina (10) mg/kg 30 mg/kg (hasta 150 g) 20mg/kg ( g) 10 mg/kg (hasta 1 Kg) 5 m/kg (más de 2 kg) Eliminación renal (contraindicado en caso de enfermedad renal) Baja relajación muscular Despertar prolongado dosis dependiente (30 minutos a varias horas) Ketamina/diazepam mg/kg /1-1,5mg/kg Buena relajación muscular Ketamina/xilacina (1,7,9) 18,5 mg/kg Ketamina y 1,5 mg/kg de Xilacina (IM) 4,4 mg/kg Ketamina y 2,2 mg/kg (EV) Ketamina/medetomidina (4,14) 4-10 mg/kg / ug/kg (IM) (S) Diurnas 5-15 mg/kg / ug/kg (IM) Nocturnas 3-5 mg/kg / ug/kg (IM) Buena relajación muscular. Si no se revierte la xilacina el despertar es prolongado El efecto de la xilacina puede revertirse con Yohimbina a dosis de 0,1 mg/kg (EV) Buena sedación y relajación muscular Provoca bradicardia, hipotensión e hipotermia El atipamezol (misma dosis que la medetomidina) revierte los efectos de la medetomidina

3 Tiletamina/zolazepam (5) 5-10 mg/kg (IM) Anestesia de corta duración (10-15 minutos). Hipersalivación, regurgitación e hipotermia Propofol (8) 1,33 mg/kg (EV) Ación ultracorta en aves Anestesia por inhalación (3) Procedimientos: Circuitos anestésicos: Sistemas semiabiertos (T de Ayre con globo de 0,5 l) Caudal de oxígeno: Durante la inducción: 1-2 l/min ; mantenimento: 0,5-1 l/min Inducción con mascarilla y mantenimento con sonda endotraqueal. Para hacer visible la glotis se tracciona suavemente la lengua o se presiona hacia adelante con un dedo colocado en el espacio intermandibular. Se prefieren sondas sin globo y del tamaño mayor posible que se ajuste al diámetro traqueal. La longitud ha de ser inferior a la distancia desde la glotis hasta la entrada a cavidad celómica. En caso de cirugía de la cabeza o traqueal puede mantenerse la anestesia a traves del saco aéreo abdominal o clavicular. HALOTHANO ISOFLUORANO Inducción 3-4% 5% Mantenimiento 0,5-1% 1-2 % Recuperación 3-8 minutos, hasta minutos Precio Barato Muy caro Margen de seguridad 3 5,7 Coeficiente de partición 2,3 a 37º 1,4 a 37º gas-sangre CAM 1,4 0,87 Metabolismo % 0,3 % Analgesia Baja Buena Efectos respiratorios Marcada depresión respiratoria Escasa depresión respiratoria Efectos Sensibilización a catecolaminas Escasa depresión miocárdica cardiovasculares (mayor riesgo de arritmias) Depresión miocárdica Contraindicaciones Enfermedad hepática o No cardiovascular; Sobredosificación Estrecho intervalo entre apnea y parada cardiaca Relajación muscular Baja Buena Amplio intervalo entre apnea y parada cardiaca La anestesia inhalatoria con isofluorano está considerada de elección en aves MONITORIZACIÓN (13) MONITORIZACIÓN Respuesta al dolor (reflejos) Respiración COMENTARIO Reflejo podal, corneal, palpebral, pupilar, cloacal; pinzamiento de cera, propatagio Inspección (globo o movimientos respiratorios) Monitor de apnea Valorar frecuencia y profundidad En aves de 500 g no debería ser inferior a l.p.m

4 Frecuencia cardiaca Temperatura Fonendoscopio esofágico ECG: A medida que se profundiza la anestesia la onda T se reduce y la onda Q aumenta Sonda o termómetro a nivel cloacal La hipotermia puede producir arritmias, reduce el metaolismo de los agentes anestésicos (despertar prolongado) e incluso la muerte Mantener sobre una estera calefactora Parámetro Plano anestésico Comentario Ligero Medio Profundo Movimientos voluntarios En los planos ligero y medio puede aparecer si existe un Respiración Rápida, profunda y regular Lenta, profunda y regular Lenta, superficial, regular o irregular, apnea estímulo doloroso Es el método más fiable de valoración de la profundidad de la anestesia Tono muscular Cuello Dedos -/+ - - Buen método de control Reflejos Palpebral +/- - - Corneal + +/- - Poco fiables Podal +/- - - Poco fiable en rapaces + +/- - Respuesta al arrancado de plumas Tabla: Monitorización de la anestesia inhalatoria en aves rapaces (2). CUIDADOS POSTANESTÉSICOS: Mantener la vigilancia y el aporte de calor Envolver al ave con una toalla para prevenir traumatismos Mantener oxigenado hasta que empiece a mover la cabeza y a temblar Depositar en una jaula acolchada y en ambiente tranquilo y con calefacción Mantener la analgesia y fluidoterapia EMERGENCIAS DURANTE LA ANESTESIA Parada cardiorrespiratoria: Retirar el anestésico y vaciar los sacos aéreos Fluidoterapia Ventilación forzada a través de sonda endotraqueal o canulación de saco aéreo movimientos por minuto, pero sin aplicar un exceso de presión. Puede emplearse Doxapram ( 20mg/kg), directamente en la lengua. Masaje torácico (cardíaco): 60 compresiones por minuto. Administración de adrenalina (0,1 mg/kg, de una dilución 1:10 en suero). En caso de bradicardia se administra Atropina a 0,04-0,1 mg/kg. Asegurar el aporte de calor

5 BIBLIOGRAFÍA: 1. Degernes LA et al: Ketamine-xylazine anesthesia in red-tailed hawks with antagonism by yohimbine. Journal of Wildlife Diseases 1988; 24(2): Fitzgerald G, Blais D: Inhalation anesthesia in birds of prey. En: Redig PT et al. (ed): Raptor biomedicine. Minnesota: University of Minnesota Press 1993: Heard DJ: Avian anesthesia: present and future trends. En: Proceedings of the Annual Conference of the American Association of Avian Veterinarians 199: Jalanka HH: Medetomidine-Ketamine & Atipamezole. A reversible method for chemical restraint of birds. En: Proceedings of the Conference of the European Commitee of the American Association of Avian Veterinarians.1991: Kreeger TJ et al. : Immobilization of raptors with Tiletamine and Zolazepam. En: Redig PT et al. (ed): Raptor biomedicine. Minnesota: University of Minnesota Press 1993: Labonde J, Michel C: Anesthesia monitoring and intraoperative support of the avian patitent. En: Proceedings of the Annual Conference of the American Association of Avian Veterinarians.1995: Lumeij JT: Anaesthetic fatalities in goshawks. En:Proceedings V: Tagung über vogelkrankheiten der Deustche veterinämedizininische Gesellschaft. 1986: Mikaelian J: Intravenously administered Propofol for anaesthesia of the common Buzzard (Buteo buteo), the Tawny owl (Strix aluco) and the Barn owl (Tyto alba). En: Proceedings of the Conference of the European Commitee of the American Association of Avian Veterinarians.1991: Raffe MR et al: Cardiorespiratory effects of ketamine-xylazine on the Great Horned owl. En: Redig PT et al. (ed): Raptor biomedicine. Minnesota: University of Minnesota Press 1993: Seidel B: Fatal incidence during ketamine anesthesia in bids of prey. ). En: Proceedings of the Conference of the European Commitee of the American Association of Avian Veterinarians.1993: Sinn LC: Anesthesiology. En: Ritchie, BW, Harrison GJ, Harrison LR (ed): Avian Medicine: Principles and application. Florida: Wingers Publishing 1994: Lawton MPC: Anaesthesia. En: Benyon PH (ed): Manual of raptors, pigeons and waterfowl. Gloucestershire: British Small Animal Veterinary Association 1996: Phalen DN et al: Consideration for safely maintaining the avian patient under prolonged anesthesia. En: Proceedings of the Annual Conference of the American Association of Avian Veterinarians 1997: Scrollavezza P et al. : Medetomidine-Ketamine association and atipamezole in the anesthesia of the birds of prey. En: Proceedings of the Conference of the European Commitee of the American Association of Avian Veterinarians.1995: Warren RG: Anestesia de animales domésticos. Barcelona: Editorial Labor 1986.