EL CAMINO A LA ESTERILIZACION Y A LA DESINFECCION PLENA
ES EL PRODUCTO DE MAYOR TECNOLOGIA EN EL MERCADO ES UNA SASO, SOLUCION DE AGUA SUPER OXIDIZADA LA PRIMERA PRODUCIDA EN AMERICA DEL SUR DOS AÑOS DE INVESTIGACION Y DESARROLLO
LA FACULTAD DE CIENCIAS DEL URUGUAY HA DETERMINADO SU CAPACIDAD VIRUCIDA LA FACULTAD DE QUIMICA DEL URUGUAY HA DETERMINADO QUE ES UN PRODUCTO DE TOXICIDAD IV SEGUN TEST DE DRAIZE LOS ESTUDIOS BACTERIOLOGICOS HAN DETERMINADO QUE ES BACTERICIDA, FUNGICIDA, ESPORICIDA
SU POTENCIA HA SIDO ANALIZADA BAJO LAS MAS ESTRICTAS NORMAS INTERNACIONALES SE HA ESTUDIADO CONTRA CEPAS COCOS GRAM + STAPH. AUREUS METICILINO SENSIBLE ATCC 25921 STAPH. AUREUS METICILINO RESISTENTE COMUNITARIO STAPH. AUREUS MULTIRESISTENTE HOSPITALARIO ENTEROCOCOS FAECALIS ATCC 29212 ENTEROCOCOS FAECIUM VANCOMICINO RESISTENTE
ENTEROBACTERIAS ESTERICHIA COLI ATCC 25922 ESTERICHIA COLI CEPA HOSPITALARIA ESTERICHIA COLI O157 KLEBSIELLA PNEUMONIAE MULTI RESISTENTE HOSPITALARIA ENTERO BACTER MULTIRESISTENTE HOSPITALARIO SERRATIA MARCES CENS PREOTEUS MIRABILIS MULTI RESISTENTE HOSPITALARIO
SALMONELLA ENTERIDITIS BACILUS SUBTILIS CANDIDA ALBICANS ASPERGILLUS SP LEGIONELLA PNEUMOPHILA ATCC 33152
TODAS LAS PRUBAS SE DESARROLLARON CON CARGAS BACTERIANAS DE 10 8 AGREGANDOSELE LUEGO CARGA ORGANICA Y SUERO DE CABALLO AL 10 %
EL MINISTERIO DE SALUD PUBLICA LO HA REGISTRADO COMO DESINFECTANTE DE USO PROFESIONAL E INSTITUTCIONAL XTERIDES 100 REGISTRO Nº 58264 XTERIDES 60 REGISTRO Nº 58265 MAXSTERI 40 REGISTRO Nº 58263
PARA DESINFECTAR O ESTERILIZAR PISOS, PAREDES, MESADAS, BAÑOS, MUEBLES, EQUIPOS, ACCESORIOS, TODO TIPO SE SUPERFICIES INANIMADAS O ANIMADAS
Estudio realizado para diálisis. Protocolo de trabajo. Se utilizaron las mismas cepas de colección y gérmenes aislados de procesos infecciosos de estudios anteriores para una comparación mas rigurosa: 1 Pseudomonas aeruginosas multi-resistente 2 Enterococcus faecium vancomicino resistente 3Staphylococcus aureus meticilino resistente 4Escherichia coli 5 Salmonella enterica 6 Como bacteria hidrofílica: Burkordelia cepacia aislada de agua pre tratamiento para diálisis cronica. 7 Bacillus atrophaeus una variedad de bacillus subtilis (como bacteria productora de esporos). Se utilizaron: Cultivos frescos de 24hs en medios estándar. El Inoculo bacteriano se ajusto a escala de MCFarland 0.5 (de promedio 1-5x10 8 ufc/ml) Tiempo de exposición a 22 C: 30 segundos 1 minuto 5 minutos para formas vegetativas, bacterias no esporuladas. 1 minuto 5 minutos 10 minutos para: bacterias esporuladas. Se trabajo con 9 ml del producto inicialmente (250ppm de cloro libre al) 100% + 1 ml de la suspensión bacteriana a 22 C. Las cepas fueron ensayadas en duplicado y los bacillus por triplicado, utilizando la técnica de membrana filtrante con filtros ADVANTEC TOYO (Japón) filtro 0.45 µm. Luego de la exposición la suspensión fue lavada con 20 ml de agua bidestilada estéril para quitar toda posibilidad de actividad del producto post exposición y las membranas filtrantes fueron inoculadas en medios adecuados y cultivadas durante 48 72 hs a 35 C. RESULTADOS: 1- Formas vegetativas. Bacterias no esporuladas: Se observo una completa destrucción de las poblaciones bacterianas estudiadas luego de un minuto de exposición 2- Bacterias esporuladas, Bacillus atrophaeus COMENTARIOS: Este lote estudiado a los 78 días de preparado mostró tener una consistente y rápida actividad bactericida contra las bacterias vegetativas. Se comporto también como un esterilizante químico frente a bacterias formadoras de esporas ya que produjo una disminución de las ufc/ml de 5 logaritmos en un minuto y una completa destrucción a los 10 minutos de ensayo.
Estudio realizado con membranas para hemodiálisis Informe preliminar sobre las experiencias in vitro realizadas para comprobar la efectividad del producto Xterides100 puro como agente desinfectante de alto nivel en carretes para hemodiálisis del tipo POLIFLUX. 1er experiencia 02/04/07:Material y Métodos: Lavado final de las fibras de POLIFLUX (inoculo 0) A 2 ufc/100 ml B 0 ufc/100 ml C 2 ufc/100 ml Inoculo - 150 ml de suero fisiológicoconteniendo una suspensión bacteriana constituida por Ps. aeruginosa y Stenotrophomonas maltophilia (10 8 ufc/ml) + 1.5 ml de Plasma humano. - 20 hs en contacto con la fibra (no hay control de inoculo al día siguiente) Lavado por arrastre con H 2 O destilada durante 3 min. Filtrado de 100 ml para determinar inoculo residual. Se utilizaron filtros ADVANTEC de 0.45 micrones (makitoc). Y como medio de cultivo Triptic soy broth, placas de medio sólido R2A y TSA. Posteriormente se llenaron las fibras con el producto puro y se expusieron estas durante 30 min. a temperatura ambiente. Se utilizo el mismo procedimiento de conteo de supervivientes que en el paso previo: Filtrado 100 ml. Siembra en placa de medio sólido R2A y TSA. Como paso final se procedió al lavado de la fibra con agua estéril durante 3 minutos y se cuantifico las bacterias residuales con los mismos procedimientos antedichos. Todas las experiencias se realizados por duplicado en días sucesivos. En este primer experimento se procedió a determinar los niveles de cloro libre en las etapas fundamentales del proceso en estudio. 400 350 300 250 200 150 10 0 50 0 350 Concentracion Inicial Producto Puro. Expresado en mg/l de cloro libre 10 Post exposicion 30min en las fibras 0,3 Post lavado FINAL Expresado en mg/l de cloro libre Grafico: Determinación de los niveles de cloro total por el Procedimiento Hach (kit de determinacion de cloro libre)
2da experiencia 3-6 de enero del 2008 Material y Métodos: Producto puro recién preparado con 320 mg de cloro y un ph 6.5. A) Lavado de las fibras con agua destilada Filtrado (5ml) y sembrado de lavado final con los mismos medios de cultivo que el anterior. B) Comprobada la esterilidad, se contaminaron las fibras con 3 especies bacterianas hidrofilicas distintas. Fibra 1- Pseudomona aeuruginosa Fibra 2- Stenotrophomonas maltophilia Fibra 3- Bacilo gram- no fermentador aislado de filtro de carbon (Burkordelia sp).se procedió en cada uno a contaminarlo con 50 ml de una suspensión de Mc farland 0.5 (1.5 x 10 8 ufc/ml aprox.) + 1% de plasma humano como aporte de materia orgánica. C) Estas suspensiones se incubaron a temperatura ambiente durante 20hs. D )Se filtraron 5 ml del contenido de las fibras para determinar el inoculo infectante E) Se llenaron las fibras con el desinfectante puro y se expusieron al mismo durante 30 minutos. F) Posteriormente se lavaron las fibras con agua destilada estéril. G) Se filtraron 5 ml del final del lavado para determinar el conteo bacteriano residual Resultados: Grafico Nº 2 Reducción de los logaritmos de concentración de inoculación artificial de bacterias hidrofilicas luego de exposición de 30 minutos frente al desinfectante puro Como puede observarse pseudomonas aeruginosa fue más resistente a la destrucción total durante la exposición en 30 minutos frente al producto. Se volvió a repetir el experimento (siempre en duplicado) con exposición de la fibra contaminada con la pseudomona frente al Xterides 100 puro durante 1 hora. En este lapso se obtuvo la esterilización del agua residual.
Pre Tratamiento del Agua DESINFECTA EL AGUA CADA 700 LITROS SE AGREGA 1 LITRO DE XTERIDES 100 Y ATACA EL BIOFILM DE LAS CAÑERIAS (destruyéndolos lentamente) CON ACCION BACTERICIDA GARANTIZA POTABILIDAD Y CALIDAD DEL AGUA DE USO HOSPITALARIO
NO ES NECESARIO QUE LOS OPERADORES DEBAN UTILIZAR NINGUNA PROTECCION ESPECIAL SE UTILIZA DIRECTAMENTE DEL ENVASE, NO SE REQUIEREN DILUCIONES NO ES DETERGENTE ES UN DESINFECTANTE DE ALTO NIVEL Y ESTERILIZANTE
ES 100 % BIODEGRADABLE NO ES TOXICO NI IRRITANTE PARA PIEL Y MUCOSAS NO TIENE CAPACIDAD ALERGIZANTE DIRECTA NI POR AEROSOLES AMIGABLE CON EL MEDIO AMBIENTE POR LA MULTIPLICIDAD DE SITIOS DE ACTIVIDAD SOBRE LOS MICROORGANISMOS LO CONVIERTE EN UN PORTENTE BIOCIDA
PRESENTACIONES EN ENVASES DE 5 LITROS O DE ACUERDO A SUS NECESIDADES RESPALDO TECNICO EN FORMA PERMANENTE POR UN PRESTIGIOSO GRUPO DE PROFESIONALES
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