UNIDAD DE NEUROPSICOFARMACOLOGÍA TRANSLACIONAL (Versión mayo 2011)

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1 UNIDAD DE NEUROPSICOFARMACOLOGÍA TRANSLACIONAL (Versión mayo 2011) La Unidad de Neuropsicofarmacología Translacional nace con voluntad de servir de vínculo entre las investigaciones básica y clínica en el campo de los estudios sobre el sistema nervioso y sus patologías. En este sentido, pretende establecer colaboraciones con investigadores tanto básicos como clínicos, así como servir de guía, dirección y apoyo investigador a personal en formación clínico / asistencial y básico del CHUA, permaneciendo abierta también a otras instituciones sanitarias o centros de investigación. LÍNEAS DE INVESTIGACIÓN Drogodependencia. Estudios en pacientes y modelos animales y celulares. Neurodegeneración: Enfermedad de Parkinson. Neurofarmacología en procesos de muerte celular. Rutas moleculares y celulares. Dinámica mitocondrial. Esquizofrenia. Modelos animales. Epilepsia. Modelos animales. Pacientes pediátricos. RECURSOS HUMANOS - Dr. Jorge Manzanares Robles, Director de la Unidad. Licenciado y Doctor en Farmacia por la Universidad Complutense de Madrid. Catedrático de Universidad (Area de Farmacología), adscrito al Instituto de Neurociencias de Alicante, Universidad Miguel Hernández de Elche (UMH). Campo de investigación principal: papel del sistema cannabinoide en enfermedades neurológicas y psiquiátricas, incluyendo las adicciones. Sus proyectos y colaboraciones abarcan tanto trabajos de tipo experimental, con modelos animales, como estudios clínicos con pacientes. jmanzanares@umh.es 1

2 - Dr. Carlos de Cabo de la Vega, Investigador del CHUA, Coordinador de la Unidad. Licenciado y Doctor en Ciencias Biológicas (Fisiología) por la Universidad Complutense de Madrid. Sus líneas de investigación giran en torno a las bases neuroquímicas y celulares de las patologías del sistema nervioso. Su línea principal se centra en la epilepsia audiogénica genética utilizando un modelo animal de ocurrencia natural. Complementariamente, colabora con investigadores clínicos en estudios sobre epilepsia refractaria (pediátrica), ictus, ataxias cerebelosas y otras enfermedades neurológicas. carlosd@sescam.jccm.es - Dra. María Galindo Anaya, Investigadora Principal (Programa de Grupos Emergentes del FIS-ISCIII). Licenciada y Doctora en Farmacia por la Universidad de Navarra. En la actualidad desarrolla diferentes líneas de investigación centradas en: el estudio de la dinámica mitocondrial, el estudio de enfermedades neurodegenetivas en concreto la enfermedad de Parkinson, y la neurofarmacología en procesos de muerte celular (rutas moleculares y celulares). mgalindoa@sescam.jccm.es - Dr. José Manuel Pérez Ortiz. Contratado postdoctoral. Licenciado en Bioquímica por La Universidad Miguel Hernández y Licenciado en Biología por La Universidad de Alicante. Doctor en Biomedicina Experimental por la Universidad de Castilla-La Mancha. Principal dedicacion: investigación en enfermedades neurológicas (modelos animales de Parkinson) y psiquiátricas (abuso de sustancias, trastornos del control de los impulsos). Papel del sistema endocannabinoide en estos trastornos. Especialidad: Biología y Genética Moleculares. jose.perezo@umh.es - Dr. Alexander Ternianov. Contratado postdoctoral. Licenciado en Medicina por Universidad de Medicina, Sofía (Bulgaria) y Doctor por Academia Búlgara de las Ciencias (Instituto de Fisiología). Principal dedicacion: estudio del papel del sistema cannabinoide en modelos animales de trastornos neurológicos (enfermedad de Parkinson, psiquiátricos y adictivos. Areas de interes particular: Enfermedad de Alzheimer - Depresión y modelos animales de depresión - Lateralización de las funciones cerebrales.al.ternianov@gmail.com 2

3 - Dr. Antonio Ortega Álvaro. Contratado postdoctoral. Licenciado y Doctor en Medicina y Cirugía por la Universidad de Cadiz. Principal dedicacion: Estudio del papel del sistema cannabinoide en modelos animales de trastornos neurológicos, psiquiátricos y adictivos. Especialidad: Esquizofrenia y modelos animales de esquizofrenia. aortegaa@sescam.jccm.es - Mª Encarnación Solesio Torregrosa. Contratada predoctoral (Programa de Grupos Emergentes del FIS). Licenciada en Farmacia por la Universidad Miguel Hernández, (Elche, Alicante). Posee además el título de técnico especialista en microscopia confocal, otorgado por Leica España. Principal dedicacion: realización de Tesis Doctoral sobre las rutas celulares y moleculares activadas en los procesos que median la fisión y cambios en la permeabilidad mitocondrial en un modelo de enfermedad de Parkinson, dirigida por la Dra. M. Galindo. Especialidad: microscopia confocal y tratamiento de imagenes por deconvolución, técnicas de medida de stress oxidativo celular, tratamientos farmacológicos en líneas celulares y en cultivos primarios, y técnicas de transfección (plásmidos y siarn). mariensolesio@hotmail.com - Juan Manuel Bonet Fernández. Becario predoctoral (Beca financiada por Balagué Center S.A. Laboratorio de Técnicas Especiales) Licenciado en Biología por la Universidad de Códoba, Máster en Biomedicina Experimental por la Universidad de Castilla-La Mancha. Principal dedicacion: realización de Tesis Doctoral sobre el desarrollo postnatal de las moléculas relacionadas con la neurotransmisión inhibitoria en la cepa de hámsteres epilépticos GASH:Sal. Especialidad: técnicas de biología molecular: Western blot, PCR, secuenciación. juanmanuelbonetfernandez@hotmail.com - María del Mar Ruiz Serna. Técnico de laboratorio, licenciado en Biología. cunmare@hotmail.com - Raquel Poveda Carbajo. Técnico Superior en Salud Ambiental. rpovedac@sescam.jccm.es 3

4 - Carlos Garrido Tomás. Técnico Superior en Laboratorio de Diagnostico Clínico (Programa de Grupos Emergentes del FIS). Tareas que desarrollan: -Mantenimiento de líneas genéticas de ratones. -Manejo de ratas y ratones (administración de sustancias...) -Extracción de cerebros, hipófisis y médulas de ratón. -Técnicas de análisis de conducta animal (mediante el programa SMART etc) -Genotipación de ratones, Knock Out y transgénicos (técnicas de PCR, electroforesis en geles de agarosa) -Cortes histológicos de tejido nervioso para diversas técnicas (con vibratomo, microtomo de congelación y criostato) -Técnica de Palkovits (microdisección de nucleos cerebrales) -Extracción de ácidos nucleicos a partir de diferentes tejidos con diversos fines (ADN de sangre para análisis de polimorfismos, ARN de micropunches de núcleos cerebrales para PCR a Tiempo Real etc) -Western blot -Cultivos primarios de celulas cerebrales de ratones -Técnicas de detección de viabilidad celular -Perfusión de ratones para estudios Inmunohistoquímicos -Técnicas de Inmuno histoquímica en tejido nervioso -Apoyo técnico en biología molecular (Hibridaciones In Situ, Autorradiografía de receptores por la técnica de unión a GTP Gamma) TÉCNICAS DISPONIBLES EN LA UNIDAD Comportamiento: cajas de autoadministración de fármacos, estudios de inhibición pre-pulso (humano y ratón), refuerzo demorado y de respuesta de sobresalto, test caja clara-oscura, test campo abierto, test de interacción social, test de laberinto elevado en cruz, test de inhibición del descenso de la plataforma. Estudio de comportamiento rotacional inducido por apormorfina en ratones previamente lesionados. 4

5 Micropuncheado de rodajas cerebrales. Estudios de lesiones cerebrales mediante técnica de esterotaxia. Procesamiento de muestras biológicas como sangre, cerebros, células. Biología molecular: genotipación, PCR, PCR cuantitativa a tiempo real, crecimiento y aislamiento de plásmidos, transfección de células. Electroforesis de proteínas y ADN. Inmunocitoquímica e inmunohistoquímica. Estudios de imagen en microscopio confocal. RECURSOS MATERIALES Pruebas de comportamiento:16 cajas de autoadministración, unidad para estudio de respuesta startle para roedores, Sistema Smart (Cibertech), 4 cajas para test caja claro-oscuro, 8 cajas para test campo abierto, 4 cajas para test de interacción social, 2 laberintos elevados en cruz, 2 cajas para test inhibición del descenso de la plataforma PCR tiempo real 7500 Fast (Biosystem) Termociclador con gradiente VWR + bloque de 96 pocillos y 2 Termomixer comfort (Eppendorf) Nanodrop espectofotómetro Equipos de electroforesis (BioRad) para proteínas y ADN Visualizador de geles de electroforesis y agarosa (Fujifilm) Lector de microplacas Versamax- Molecular Devices (absorbancia) Cabina flujo laminar vertical (Telstar) Incubador automático de CO2 (Thermo) Equipo de HPLC Equipamiento para microscopía: fotomicroscopio de fluorescencia (Leica), lupas de cirugía, microscopio y lupas de rutina, Vibratomo (Leica), Criostato (Leica) Vitrina para gases c/ filtro (Cruma) Ultracentrífuga velocidad máxima de g (Beckmam Coulter) 5

6 Sistemas de congelación y refrigeración: Autoclave Sterilav (Raypa) Sistema de purificación de agua: purificada y Milli Q advantage A10 (Millipore) Máquina de Hielo Troceado (Biotech) Microcentrífugas, balanzas, baños, estufas, agitadores y material general de laboratorio. 6