AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN DE HONGOS FILAMENTOSOS DE MUESTRAS DE SUELO DE LOS PARAMOS DE GUASCA Y CRUZ VERDE
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- Alejandro Gómez Naranjo
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1 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN DE HONGOS FILAMENTOSOS DE MUESTRAS DE SUELO DE LOS PARAMOS DE GUASCA Y CRUZ VERDE EDNA LORENA ARIAS CIFUENTES PAOLA ANDREA PIÑEROS ESPINOSA TRABAJO DE GRADO Presentado como requisito parcial Para optar el título de Microbiólogas Industriales MICROBIÓLOGAS INDUSTRIALES PONTIFICIA UNIVERSIDAD JAVERIANA FACULTAD DE CIENCIAS CARRERA DE MICROBIOLOGÍA INDUSTRIAL BOGOTA, D.C. JUNIO DE 2008
2 NOTA DE ADVERTENCIA La Universidad no se hace responsable por los conceptos emitidos por sus alumnos en sus trabajos de tesis. Solo velará por que no se publique nada contrario al dogma y a la moral católica y por que las tesis no contengan ataques personales contra persona alguna, antes bien se vea en ellas el anhelo de buscar la verdad y la justicia. Artículo 23 de la resolución No. 13 de Junio de 1946.
3 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN DE HONGOS FILAMENTOSOS DE MUESTRAS DE SUELO DE LOS PARAMOS DE GUASCA Y CRUZ VERDE EDNA LORENA ARIAS CIFUENTES PAOLA ANDREA PIÑEROS ESPINOSA APROBADO Rubén Torrenegra Químico Director Gerardo Moreno M.Sc. Ingeniero Agrónomo Jurado David Gómez M.Sc. Microbiólogo Jurado
4 AISLAMIENTO E IDENTIFICACIÓN DE HONGOS FILAMENTOSOS DE MUESTRAS DE SUELO DE LOS PARAMOS DE GUASCA Y CRUZ VERDE EDNA LORENA ARIAS CIFUENTES PAOLA ANDREA PIÑEROS ESPINOSA APROBADO Ingrid Schuler PhD Bióloga Decana Académica Janeth Arias M.Sc., M.Ed Bacterióloga Directora de carrera
5 DEDICATORIA A nuestros padres por su apoyo, amor y comprensión, A nuestros hermanos y amigos por su constante compañía.
6 AGRADECIMIENTOS A Conciencias y al Grupo GIBUJ. Al Doctor Rubén D. Torrenegra, por sus excelentes aportes académicos. A la Pontificia Universidad Javeriana. A Angela Pinzón, Joven Investigadora de Química Microbiológica, por su valioso apoyo en el desarrollo de este proyecto. Al Laboratorio de Química Microbiológica.
7 TABLA DE CONTENIDO TÍTULO PÁGINA 1. INTRODUCCIÓN 5 2. MARCO TEÓRICO El Páramo Condiciones Ambientales Importancia del Páramo Tipos de Vegetación Los Frailejones El Suelo Textura y Estructura del suelo El suelo como sistema de tres fases El suelo de los páramos Generalidades del páramo de Guasca Propiedades físico-químicas del páramo de Guasca Generalidades del páramo de Cruz Verde Hongos filamentosos Curva de crecimiento de hongos filamentosos Requerimientos nutricionales de hongos filamentosos Condiciones de crecimiento Clasificación de los hongos Hongos del suelo Aspergillus sp Penicillium sp Acremonium sp. 24
8 Fusarium sp Cladosporium sp Trichoderma sp Importancia a nivel industrial y médica de los hongos filamentosos Mecanismo de resistencia e importancia que tienen los hongos aislados de páramos FORMULACIÓN DEL PROBLEMA JUSTIFICACIÓN OBJETIVOS Objetivo general Objetivos específicos METODOLOGÍA Muestreo de suelo Toma de muestras Equipo para muestreo Procesamiento y almacenamiento de muestras Determinación de ph y humedad del suelo Métodos de Aislamiento Cultivo líquido Lavado de suelo Dilución en placa Placas de suelo de Warcup Filtración de partículas Fraccionamiento de la comunidad de hongos del suelo Identificación de género y posible especie Cultivos monospóricos Observación microscópica 41
9 Técnica de cinta pegante Montaje por disección Método de microcultivo Métodos de conservación Agua destilada estéril Suelo estéril Papel filtro Tubo con agar inclinado Criopreservación (Glicerol al 10%) Liofilización EXPERIMENTACIÓN Ubicación Páramo de Guasca Páramo de Cruz Verde Inspección de campo Toma de muestras y Selección de área Equipo de muestreo Transporte de muestras Determinación de ph y Temperatura del suelo Medios de cultivo Métodos de aislamiento Técnica de dilución en placa Técnica de lavado de suelo Técnica de siembra directa de suelo Identificación de género y posible especie Observación microscópica Técnica de cinta pegante Montaje por disección Empleo de claves taxonómicas Métodos de conservación Suelo estéril 51
10 7.7.2 Tubo con agar inclinado Glicerol al 10% Re siembra periódica en medios frescos RESULTADOS Y DISCUSIÓN Determinación de ph y temperatura Determinación de ph Determinación de temperatura Métodos de Aislamiento Aislamientos obtenidos según género Géneros aislados en cada método Porcentaje de incidencia de los géneros aislados Análisis de los aislamientos obtenidos según especies Especies aisladas Porcentaje de incidencia de especies aisladas Comparación de los métodos de asilamiento con relación al número de géneros y especies aisladas Identificación Taxonómica Hongos Aislados de los Páramos de Guasca y Cruz Verde GÉNERO: Alternaria sp Alternaria alternata GÉNERO: Aspergillus sp Aspergillus aureolatus Aspergillus candidus Aspergillus conicus Aspergillus clavatus Aspergillus flavipes Aspergillus flavus Aspergillus fumigatus Aspergillus humicola Aspergillus ochraceus 82
11 Aspergillus oryzae Aspergillus janus Aspergillus sydowii Aspergillus terreus Aspergillus terricola Aspergillus ustus Aspergillus versicolor Aspergillus wentii GÉNERO: Byssochlamys sp Byssochlamys fulva GÉNERO: Cladosporium sp Cladosporium sphaerospermum GÉNERO: Curvularia sp Curvularia sativus GÉNERO: Eupenicillium sp Eupenicillium ornatum GÉNERO: Emericella sp Emericella nidulans GÉNERO: Fusarium sp Fusarium oxysporum GÉNERO: Microsporum sp Microsporum nanum GÉNERO: Mucor sp Mucor circinelloides GÉNERO: Paecilomyces sp Paecilomyces ehrlichii Paelocymeces lilacinus Paecilomyces variotii GÉNERO: Penicillium sp Penicillium sp Penicillium sp Penicillium sp3. 104
12 Penicillium aculeatum Penicillium aethiopicum Penicillium atramentosum Penicillium baarnense Penicillium biforme Penicillium brefeldianum Penicillium brevicompactum Penicillium carneum Penicillium chrysogenum Penicillium citreovirens Penicillium citrinum Penicillium claviforme Penicillium corylophilum Penicillium crustosum Penicillium duclauxii Penicillium echinulatum Penicillium egyptiacum Penicillium ehrlichii Penicillium expansum Penicillium frecuentans Penicillium funiculosum Penicillium herquei Penicillium hirsutum Penicillium implicatum Penicillium islandicum Penicillium italicum Penicillium javanicum Penicillium levitum Penicillium melinii Penicillium miczynskii Penicillium nalgiovense Penicillium olsonii 136
13 Penicillium palitans Penicillium oxalicum Penicillium piscarium Penicillium rugulosum Penicillium simplicissimum Penicillium spinulosum Penicillium stoloniferum Penicillium striatum Penicillium terlikowskii Penicillium verruculosum Penicillium vinaceum Penicillium viridicatum GÉNERO: Rhizopus sp Rhizopus oryzae GÉNERO: Sterigmatocystis sp Sterigmatocystis versicolor GÉNERO: Trichoderma sp Trichoderma harzianum CONCLUSIONES RECOMENDACIONES 155 BIBLIOGRAFÍA ANEXOS
14 LISTA DE FIGURAS FIGURA TÍTULO PÁGINA 1 Vegetación característica del páramo dominada por frailejones y pastizales 9 2 Perfil del suelo 11 3 Triangulo de texturas a partir del cual se obtienen los nombres de las clases de las texturas 12 4 Synchytrium endobioticum, perteneciente al Phylum Chytridiomycota 19 5 Mucor sp, perteneciente al Phylum Zygomycota 20 6 Chaetomium sp, perteneciente al Phylum Ascomycota 20 7 Setchelliogaster sp, perteneciente al Phylum Basidiomycota 21 8 Características de Aspergillus fumigatus 23 8a. Características macroscópicas de Aspergillus fumigatus 23 8b. Características microscópicas de Aspergillus fumigatus 23 9 Características de Penicillium sp 24 9a. Características macroscópicas de Penicillium sp 24 9b. Características microscópicas de Penicillium sp Característicasde Acremonium sp 24 10a. Características macroscópicas de Acremonium falciforme 24 10b. Características microscópicas de Acremonium sp Características de Fusarium sp 25 11a. Características macroscópicas de Fusarium sp 25 11b. Características microscópicas de Fusarium solani Características de Cladosporium cladosporioides 26
15 12a. Características macroscópicas de Cladosporium cladosporioides 26 12b. Características microscópicas de Cladosporium cladosporioides Característicasde Trichoderma sp 26 13a. Características macroscópicas de Trichoderma sp 26 13b. Características microscópicas de Trichoderma harzianum Tipos de posibles de muestreo de un lote Equipo de muestreo 36 15a. Barreno 36 15b. Extractor de núcleos 36 15c. Tubo de muestra de suelo 37 15d. Manija de taladro Zona de muestreo 44 16a. Páramo de Guasca 44 16b. Páramo de Cruz Verde Esquema utilizado para la toma de muestras en los Páramos de Guasca y Cruz Verde Herramientas utilizadas en el muestreo (Barreno) Transporte de muestras Aparato Lavador y suelo procesado Siembra de partículas de suelo en Medio PDA con adición de Cloramfenicol (400ppm) 0,05mg/mL Porcentaje de Incidencia de los Géneros aislados del Páramo de Cruz Verde Porcentaje de Incidencia de los Géneros aislados del Páramo de Guasca Porcentaje de incidencia de las especies aisladas en el Páramo Guasca Porcentaje de incidencia de las especies aisladas en el Páramo de Cruz Verde 69
16 26 Relación del número de géneros y especies con respecto al método de aislamiento en el Páramo de Guasca Relación del número de géneros y especies con respecto al método de aislamiento en el Páramo de Cruz Verde Alternaria alternata Aspergillus aureolatus Aspergillus candidus Aspergillus conicus Aspergillus clavatus Aspergillus flavipes Aspergillus flavus Aspergillus fumigatus Aspergillus humicola Aspergillus ochraceus Aspergillus oryzae Aspergillus janus Aspergillus sydowii Aspergillus terreus Aspergillus terrícola Aspergillus ustus Aspergillus versicolor Aspergillus wentii Byssochlamys fulva Cladosporium sphaerospermum Curvularia sativus Eupenicillium ornatum Emericella nidulans Fusarium oxysporum Microsporum nanum Mucor circinelloides 98
17 54 Paecilomyces ehrlichii Paelocymeces lilacinus Paecilomyces variotii Penicillium sp Penicillium sp Penicillium sp Penicililum aculeatum Penicillium aethiopicum Penicillium atramentosum Penicillium baarnense Penicillium biforme Penicillium brefeldianum Penicillium brevicompactum Penicillium carneum Penicillium chrysogenum Penicillium citreovirens Penicillium citrinum Penicillium claviforme Penicillium corylophilum Penicillium crustosum Penicillium duclauxii Penicillium echinulatum Penicillium egyptiacum Penicillium ehrlichii Penicillium expansum Penicillium frecuentans Penicillium funiculosum Penicillium herquei Penicillium hirsutum Penicillium implicatum Penicillium islandicum Penicillium italicum 130
18 85 Penicillium javanicum Penicillium levitum Penicillium melinii Penicillium miczynskii Penicillium nalgiovense Penicillium olsonii Penicillium palitans Penicillium oxalicum Penicillium piscarium Penicillium rugulosum Penicillium simplicissimum Penicillium spinulosum Penicillium stoloniferum Penicillium striatum Penicillium terlikowskii Penicillium verruculosum Penicillium vinaceum Penicillium viridicatum Rhizopus oryzae Sterigmatocystis versicolor Trichoderma harzianum 151
19 LISTA DE TABLAS TABLA TITULO PÁGINA 1 Fases del suelo 13 2 Promedio ph de los Páramos de Guasca y Cruz Verde 53 3 Temperatura promedio de los Páramos de Guasca y Cruz Verde 54 4 Relación de géneros aislados del páramo de Cruz Verde 55 5 Relación de géneros aislados del páramo de Guasca 56 6 Análisis de métodos según los géneros obtenidos en el páramo de Cruz Verde 58 7 Análisis de métodos según los géneros obtenidos en el páramo de Guasca 58 8 Análisis de especies obtenidas según el método de aislamiento en el Páramo de Guasca 62 9 Análisis de especies obtenidas según el método de aislamiento en el Páramo de Cruz Verde Relación de especies aisladas por Método en el Páramo de Guasca Relación de especies aisladas por Método en el Páramo de Cruz Verde 65
20 LISTA DE ANEXOS ANEXO TÍTULO 1 Medios de Cultivo 2 Tinción con azul de lactofenol 3 Determinación de ph en los Páramos de Guasca 4 Determinación de ph en los Páramos de Cruz Verde 5 Cepas sin estructuras 6 Relación de cepas sin estructuras aisladas según el método empleado en el Páramo de Guasca 7 Relación de cepas sin estructuras aisladas según el método empleado en el Páramo de Cruz Verde
21 RESUMEN En el presente trabajo se aislaron e identificaron hongos filamentosos originarios de los Páramos de Guasca y Cruz Verde específicamente en la zona de frailejones; con el fin de contribuir al conocimiento e investigación científica de la microflora colombiana. Para el aislamiento se utilizaron tres técnicas: Dilución en Placa, Siembra Directa de Suelo y Lavado de Suelo; de los cuales se obtuvieron 129 aislamientos a partir de los cultivos axénicos. Para la identificación del género y posible especie fue necesario la utilización de claves taxonómicas, teniendo en cuenta las características macroscópicas y microscópicas. Para estas últimas, se utilizó el Programa Motic 2.0. La población fúngica encontrada pertenece a los siguientes géneros: Alternaria, Aspergillus, Byssochlamys, Cladosporium, Curvularia, Emericella, Eupenicillium, Fusarium, Microsporum, Mucor, Paecilomyces, Penicillium, Rhizopus, Sterigmatocystis y Trichoderma; siendo los géneros de mayor incidencia Aspergillus y Penicillium. No obstante, en este estudio se obtuvieron tres cepas de Penicillium que no pudieron ser identificadas haciendo uso de las claves taxonómicas y adicionalmente, 10 de las cepas aisladas de los dos páramos no presentaban estructuras morfológicas definidas que permitieran su clasificación.
22 1. INTRODUCCIÓN Los páramos son ecosistemas de pasturas nativas, que tienen una importancia indiscutible ya que son considerados esponjas de adsorción de los recursos hídricos, garantizan el balance ecológico en las zonas productivas más bajas y son refugio de especies silvestres que pueden tener un gran potencial biotecnológico. Los estudios realizados sobre microbiología del suelo han aumentado gradualmente en los últimos años debido al rápido avance de la ciencia. En la actualidad los ecosistemas paramunos tienen una gran demanda de explotación gracias a la abundancia de muestras de plantas, animales y microorganismos que poseen, pues estas representan infinidad de posibilidades y nuevas alternativas de utilización en industrias de alimentos, producción de químicos, materiales poliméricos, perfumes y productos farmacéuticos entre ellos las plantas medicinales. Con el propósito de aprovechar de una manera más racional y sostenible los recursos naturales sin causarles ningún tipo de perturbación, se escogieron zonas delimitadas de dos páramos de la cordillera oriental para contribuir al conocimiento e investigación científica de la microflora colombiana, específicamente para la identificación y aislamiento de hongos filamentosos, ya que son importantes en diversas investigaciones biotecnológicas. Estos microorganismos son ampliamente utilizados debido a que se adaptan fisiológicamente a condiciones más severas que otros microorganismos, soportando concentraciones elevadas de azúcares hasta el 10%, escalas de ph entre 2.0 y 9,0 siendo la óptima 5-6, y temperaturas de 0 a 62 C, siendo la temperatura óptima 28 C.
23 Así mismo, los páramos se caracterizan por sus condiciones ambientales extremas como la gran influencia biológica y física, suelos ácidos y con alta presión osmótica, aire con menor densidad y humedad relativa, menor presión atmosférica y baja temperatura media con fuertes oscilaciones diurnas. Además se presentan altas temperaturas del suelo y del aire durante la insolación directa, pero con cambios bruscos y fuertes por causa de la nubosidad lo mismo que durante la noche; factores que pueden ocasionar escarchas y nevadas así como recios vientos en determinada época del año. Por consiguiente, el Grupo de Investigación en Biotransformación de la Universidad Javeriana (GIBUJ), está interesado en el aislamiento e identificación de flora nativa de diferentes páramos Colombianos, para posteriormente llevar a cabo investigaciones que pretenden identificar sustancias producidas por hongos filamentosos nativos de estos ecosistemas, realizando una caracterización bioquímica. Entre los estudios llevados a cabo por GIBUJ está la Biotransformación de Diterpenos obtenidos de Astereaceas por hongos filamentosos nativos, la Evaluación de Ácidos Grasos en especies de Aspergillus sp. como criterio taxonómico, la capacidad Biotransformadora de la cepa nativa de Fusarium oxysporum sobre el B-D-Glucopiranosil, Actividad antimicrobiana gracias a los metabolitos producidos por Aspergillus sp, entre otros trabajos. El objetivo de este estudio, consiste en aislar e identificar hongos filamentosos edáficos como componentes microbiológicos de los ecosistemas de los páramos de Guasca y Cruz Verde (Cundinamarca) en la zona de frailejones, utilizando diferentes técnicas que permitan la recuperación de un cierto número de cepas a utilizar en posteriores investigaciones en el campo de la biotecnología, específicamente en el Grupo de Biotransformación de la PUJ.
24 2. MARCO TEÓRICO 2.1 El Páramo Según la conferencia Latinoamericana de Páramos y bosques Alto Andinos, 1998, la palabra Páramo significa áreas desprovistas o escasas de árboles, desfavorables para el asentamiento humano en las regiones altas de los Andes. Desde el punto de vista funcional, biogeográfico y de vegetación, los páramos se clasifican en subpáramo, páramo propiamente dicho y superpáramo (Cuatrecasas, 1998). De las tres franjas del páramo, el páramo propiamente dicho es la más extensa y la mejor consolidada ecológicamente. En ella imperan condiciones extremas de temperatura y clima, el paisaje es aparentemente uniforme y tranquilo. En la vertiente occidental de la cordillera Occidental la franja paramuna abarca desde los hasta los msnm; en el flanco oriental sólo es nítida entre los y los msnm. En la cordillera Central, vertiente occidental, se encuentra entre y msnm; en la oriental va de a msnm. En la cordillera Oriental la mayor extensión se presenta en su flanco occidental, donde el límite inferior se ubica a los msnm y el superior a los 3.800; en el costado, el límite inferior se observa a los msnm (Rivera et al., 2001) Condiciones ambientales El páramo se caracteriza por mostrar condiciones ambientales extremas: presenta una baja presión atmosférica, una escasa densidad del aire, una baja temperatura media, una radiación solar intensa alternada con días nublados y cielo cubierto, una alta temperatura del aire y del suelo con directa insolación (con fuertes contrastes térmicos diurnos), una fuerza del viento moderada y periódica (valores superiores a 3 m/s) y, finalmente, ocurrencia de frecuentes heladas nocturnas (Sturm y Rangel, 1985).
25 En la franja paramuna se registra una precipitación promedio mensual de 137 mm y un régimen pluviométrico unimodal o biestacional. El período lluvioso se presenta entre abril y octubre; el mes más húmedo es mayo con 186 mm. El período seco comprende los meses de noviembre a marzo y enero es el mes más seco, con 600 mm (Rivera et al., 2001) Importancia del páramo Estos ecosistemas son altamente estudiados debido a su gran potencial biotecnológico por las condiciones climáticas extremas a las que se encuentran adaptadas las diferentes especies que lo habitan. Además, algunos son los yacimientos de los grandes ríos del país y estos representan una importancia económica. Asimismo cumplen una función hidrológica, ya que constituyen la fuente de agua potable para la mayoría de las poblaciones de los Andes Americanos; debido al frío y a la alta nubosidad que reina en estas alturas, la evaporación es muy baja por lo que existe un alto rendimiento de agua (Sturm y Rangel, 1985). También se destacan porque cumplen una función ecológica y agropecuaria, ésta última de gran importancia ya que en ellos se cultiva papa, cebada, entre otros alimentos importantes en la dieta del ser humano y de gran uso a nivel nacional; sin embargo esta actividad altera el ecosistema porque genera impactos adversos en el suelo causando una pérdida de biodiversidad, erosión, deforestación y movimiento de masa. De igual forma el uso de fertilizantes y agroquímicos causa diferentes grados de toxicidad y altos consumos de agua (Ospina, 2003) Tipos de vegetación La principal característica del páramo, desde el punto de vista de la vegetación, con 14 comunidades vegetales, es el dominio del pajonal-fraijonal y de los pastizales (Figura 1). Los pajonales se componen de gramíneas en forma de macolla, de hojas agudas y duras como la paja ratona y generalmente se encuentran asociados con frailejones. En la cordillera Oriental, la matriz principal del paisaje paramuno se compone de extensas áreas cubiertas de pajonales del género Calamagrostis effusa y de otros pastos y plantas graminoides del género Festuca, en general asociados con más de 20 especies de frailejones; su máximo límite de distribución altitudinal
26 se sitúa aproximadamente a los msnm. Los pastizales están compuestos por gramíneas de porte bajo, de hojas anchas y suaves que se encuentran en ambientes abiertos donde se entremezclan con otras especies de hierbas de reducido tamaño (Rivera et al., 2001). Figura 1: Vegetación característica del páramo dominada por frailejones y pastizales Fuente: Autores Los frailejones Una de las formas de vida mejor adaptadas a las condiciones de la alta montaña tropical, es quizás el frailejón; algunas especies tienen un amplio rango de distribución y otras, en ocasiones, conforman densas poblaciones que se acomodan mejor en el páramo bajo, hábitat que comparten con ericáceas y chusques. Los frailejones presentan diferentes formas evolutivas o formas de crecimiento, que van desde árboles ramificados, de tallos leñosos que alcanzan los 20 m de altura, hasta pequeñas rosetas sésiles, sin un tallo evidente y cuya altura no sobrepasa los 20 cm. Su evolución es un ejemplo claro de adaptación a la alta montaña tropical; mientras en los frailejones más primitivos y de tipo arborescente, la base de las hojas o peciolo tiene forma tubular, en los más evolucionados se da la tendencia a desarrollar un peciolo más aplanado y reducido, que favorece la existencia de una cobertura muy entretejida, para proteger el cuerpo del tallo (Rivera et al., 2001).
27 Teniendo en cuenta las características físicas del frailejón, este se puede considerar como un ecosistema en miniatura. Debido a la alta proporción de material muerto unido a la planta, se crea un hábitat en el cual se integran el subsistema productivo, compuesto por los órganos vivos y sus visitantes esporádicos y el degradativo, integrado por las partes descompuestas de la planta y sus descomponedores acompañantes (Rivera et al., 2001). 2.2 El suelo El término suelo se refiere al material exterior, poco compacto de la superficie terrestre, un estrato característicamente diferente del lecho rocoso subyacente. Químicamente, el suelo contiene una gran cantidad de sustancias orgánicas que no se encuentran en los estratos más profundos. Para el microbiólogo, el medio ambiente edáfico es único en diferentes aspectos: contiene gran variedad de bacterias, actinomicetos, hongos, algas y protozoarios; es uno de los sitios más dinámicos en interacciones biológicas en la naturaleza, en el cual se realizan la mayor parte de las reacciones bioquímicas involucradas en la descomposición de materia orgánica, la intemperización de las rocas y la nutrición de cultivos agrícolas (Alexander, 1980). El suelo se dispone en capas, horizontes edáficos o perfiles (Figura 2) que tienen composición específica y propiedades especiales: a) Horizonte O: Es la capa más superficial del suelo es rico en materia orgánica como tallos y hojas muertas que se desintegran gradualmente. Este horizonte a menudo falta por completo en suelos desérticos, pero es la capa dominante en ciertos suelos de pastizal y de bosque de caducifolias, ricos en materia orgánica. b) Horizonte A: es la capa de suelo oscuro y rico en humus en la que la desintegración está muy avanzada. Tiene la textura granular y, en zonas con precipitación sustancial, es un tanto deficiente en nutrimentos como resultado de la pérdida gradual de muchos de ellos por escorrentías hacia capas más profundas. c) Horizonte B: es la capa de subsuelo de color claro bajo el horizonte A, a menudo es una zona en la cual se acumulan minerales que escurrieron desde la rizosfera
28 y la capa superficial, es rico en compuestos que contienen hierro, aluminio y arcilla. d) Finalmente el horizonte C, que es la capa que limita la roca madre sólida y contiene fragmentos de roca intemperizada. Además el horizonte C, está más abajo del alcance de la mayor parte de las raíces y la mayoría de las veces está saturado de agua subterránea (Solomon et al., 1996). Figura 2: Perfil del suelo Fuente: Delgado, Textura y Estructura del Suelo Según Alexander, 1980, el suelo está formado por cinco componentes principales: materia mineral, agua, aire, materia orgánica y organismos vivos. La cantidad de estos constituyentes no es la misma en todos los suelos sino que varía según la localidad. La cantidad de materia orgánica y mineral, que forma parte de la porción inanimada, es relativamente fija en un determinado lugar; sin embargo, la proporción de aire y agua varía. En cuanto a los principales constituyentes minerales del suelo se encuentran partículas inorgánicas de diferentes tamaños: arena (0.02 a 2 mm), limo (0.002 a
29 0.02 mm) y arcilla (menos de mm de diámetro) y determinan la textura del suelo (Figura 3) que es un factor importante en la capacidad de retención del agua y nutrientes; en función del tipo y tamaño de partículas presentes en un suelo, la capacidad de adsorción de moléculas iónicas y polares varía considerablemente. Las partículas finas del suelo suelen estar unidas formando agregados en la mayoría de los casos gracias a la acción de la materia orgánica, es decir el complejo arcilloso-húmico (Valencia y Cabriales, 2001). Porcentaje de arcilla Porcentaje de limo Porcentaje de arena Figura 3: Triangulo de texturas a partir del cual se obtienen los nombres de las clases de las texturas. Fuente: Alexander, El suelo como sistema de tres fases El suelo es un sistema abierto, dinámico, constituido por tres fases. La fase sólida está formada por los componentes inorgánicos y los orgánicos, que dejan espacio de huecos (poros, cámaras, grietas y otros) en el que se hallan las fases líquida y gaseosa. El volumen de huecos está ocupado parcialmente por agua, como componente principal de la fase líquida, que puede llevar iones y sustancias en solución o en suspensión; por aire, que constituye la fase gaseosa o atmósfera del suelo y por las raíces y organismos que viven en el suelo (Porta et al., 1999). Para cada una de las fases, los aspectos a considerar y los ámbitos de estudio son:
30 Tabla No 1: Fases del suelo FASES ASPECTOS ÁMBITO DE ESTUDIO Distribución de Textura partículas minerales según tamaño Componentes inorgánicos Sólida Mineralogía Superficie específica Meteorización Procesos de transporte Composición Procesos Componentes de orgánicos transformación y transporte Organización Estructura: forma de agregarse las partículas y espacio de huecos Densidad del suelo Interfase sólido-líquido Interacción suelo-agua Reacciones de superficie Agua del suelo Estados energéticos del agua Líquida Movimientos del agua Régimen de humedad Exceso de agua Procesos de hidromorfismo Composición Gaseosa Aireación del suelo Humedad del aire Flujo de aire (Porta et al., 1999) El suelo de los páramos Los suelos de los páramos presentan una acumulación de materia orgánica de color negro, bastante descompuesta y de muy poca fertilidad. Es suave al tacto, están depositados en la mayoría de los casos directamente sobre la roca base, en un espesor variable desde pocos centímetros hasta más de un metro (Guhl, 1982). Así mismo, los suelos de la sabana son similares, aunque suele faltar la acumulación de hierro en forma de costras. En los páramos estos suelos son más negros y espesos, pasando en ocasiones a suelos turbosos que pueden alcanzar espesor (Vargas y Zuluaga, 1980).
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