PARASITOLOGÍA CLÍNICA Y HEMATOLOGÍA

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1 HEMATOLOGÍA PARASITOLOGÍA CLÍNICA Y HEMATOLOGÍA PROFESORADO. Grupo 1 y 2: Dra. Mª Luisa Ojeda Murillo Dra. Fátima Nogales Bueno Dr. José Manuel Úbeda Ontiveros (G1) Dr. Diego Guevara Benítez (G2) HEMATOLOGÍA PARASITOLOGÍA FICHAS: NO SON NECESARIAS Facilitar foto en secretaria

2 NORMAS DE HEMATOLOGÍA. CURSO TUTORÍAS Presenciales: Mª Luisa Ojeda: Lunes, martes y miércoles de 12:00 a 14:00 Fátima Nogales: Lunes, miércoles y jueves de 13:00 a 15:00 Virtuales: Dra. Fátima Nogales Bueno: fnogales@us.es Dra. Mª Luisa Ojeda Murillo: ojedamuri11@us.es CLASES PRESENCIALES MARTES Y JUEVES Grupo 1: 11:00-12:00 h (Aula 1) Grupo 2: 12:00-13:00 h (Aula 0.1) CLASES NO PRESENCIALES MIERCOLES

3 NORMAS DE HEMATOLOGÍA. CURSO ACTIVIDAD DE INNOVACIÓN DOCENTE Consultar en: PRÁCTICAS Se realizarán tres sesiones prácticas. En horario de mañana o de tarde, según el turno elegido por el alumno al realizar la matrícula por internet ( Las prácticas se realizarán en el laboratorio F2 de la ESI Informática.

4 NORMAS DE HEMATOLOGÍA. CURSO CRITERIOS DE EVALUACIÓN Se realizará un examen escrito sobre los contenidos teóricos y prácticos de Hematología. La puntuación final de la asignatura será la media de la nota obtenida entre la materia de Parasitología Clínica y la de Hematología. El programa teórico, práctico, guiones, imágenes y demás contenido de la asignatura se encuentran disponibles en la dirección:

5 PROYECTO DOCENTE HEMATOLOGÍA. CURSO I.- CARACTERÍSTICAS GENERALES 1.- INTRODUCCIÓN Concepto de la asignatura de "Hematología" encuadrada en la materia de "Análisis Biológicos y Diagnóstico de Laboratorio". Objetivos de la enseñanza de la Hematología. 2.- LABORATORIO DE HEMATOLOGÍA. CARACTERÍSTICAS La organización en un laboratorio de Hematología. Circuito de autoridad. Circuito de material de trabajo. Circuito de información. Localización y estructura de un laboratorio hematológico. Características de la zona de extracciones. Personal del laboratorio. Formas de trabajo en los diferentes laboratorios. Volantes: partes y tipos. Informes: tipos y características. Aparatos: comunes y específicos. Control y garantía de calidad de un laboratorio hematológico: control de calidad interno y evaluación externa de la calidad.

6 PROYECTO DOCENTE HEMATOLOGÍA. CURSO RECOGIDA Y MANIPULACIÓN DE MUESTRAS EN UN LABORATORIO DE HEMATOLOGÍA. LOS COLORANTES EN HEMATOLOGÍA La sangre. Normas para su correcta extracción. Características de la punción venosa. Características de la punción capilar. Anticoagulantes. Extensiones de sangre. Colorantes. Tipos de tinciones. Términos de la coloración celular.

7 PROYECTO DOCENTE HEMATOLOGÍA. CURSO II.- MÉTODOS DE ESTUDIO DE LOS ERITROCITOS Y SU INTERPRETACIÓN 4.- ESTUDIO DE LOS ERITROCITOS Características físicas de la sangre: Velocidad de sedimentación globular. Viscosidad de la sangre. Viscosidad plasmática. Pruebas funcionales isotópicas: Determinación de la supervivencia eritrocitaria. Resistencia osmótica eritrocitaria. 5.- OTROS MÉTODOS PARA EL ESTUDIO DE LOS ERITROCITOS Hemograma. Métodos de recuento celular sanguíneo. Autoanalizadores. Histogramas de distribución de volumen. Índices eritrocitarios. Amplitud de distribución eritrocitaria y plaquetaria. Recuento de reticulocitos. Valores de referencia e interpretación de alteraciones cualitativas y cuantitativas. Pruebas para la orientación etiológica de la anemia.

8 PROYECTO DOCENTE HEMATOLOGÍA. CURSO ANEMIAS MICROCÍTICAS Anemia ferropénica: métodos de estudio. Determinación de la concentración sérica de hierro (sideremia). Determinación de la concentración sérica de ferritina. Capacidad total e índice de saturación de transferrina. Tinción de Perls. Pruebas diferenciales con otras anemias microcíticas. 7.- ANEMIAS MACROCÍTICAS Megaloblastosis y anemia megaloblástica: métodos de estudio. Papel del ácido fólico y de la vitamina B12 en la maduración celular. Determinación del ácido fólico. Determinación de la vitamina B12 y pruebas de la absorción intestinal: Prueba de Schilling. 8.- ANEMIAS NORMOCÍTICAS Anemias hemolíticas: métodos de estudio. Métodos de estudio de las membranopatías, enzimopatías, hemoglobinopatías y talasemias. Estudio de las anemias hemolíticas inmunitarias.

9 PROYECTO DOCENTE HEMATOLOGÍA. CURSO III.- MÉTODOS DE ESTUDIO DE LOS LEUCOCITOS Y SU INTERPRETACIÓN 9.- LEUCOCITOS. MÉTODOS GENERALES DE ESTUDIO Recuento diferencial de leucocitos. Método manual y automático. Valores de referencia de la fórmula leucocitaria e interpretación de sus alteraciones cuantitativas y cualitativas ESTUDIO DE LA MÉDULA ÓSEA Punción de la médula ósea. Características del aspirado medular. Mielograma normal e interpretación de resultados. Biopsia medular. Punción ganglionar. Cultivo de progenitores hematopoyéticos OTROS MÉTODOS PARA EL ESTUDIO DE LOS LEUCOCITOS Técnicas citoquímicas. Detección de carbohidratos: Reacción de Schiff. Enzimas oxidantes: Reacción de la mieloperoxidasa. Reacción del Negro Sudán B. Reacción de la catalasa. Enzimas hidrolíticas: Fosfatasa alcalina granulocitaria ó leucocitaria. Fosfatasa ácida. β-glucuronidasa. Esterasas. 5`nucleotidasa. Técnicas inmunocitoquímicas.

10 PROYECTO DOCENTE HEMATOLOGÍA. CURSO INSUFICIENCIAS MEDULARES. APLASIA MEDULAR. DISPLASIA MEDULAR Insuficiencias medulares cuantitativas y cualitativas. Aplasia medular. Agranulocitosis. Síndromes mielodisplásicos: Características. Clasificación LEUCOCITOSIS Linfocitosis. Mononucleosis infecciosa. Linfocitosis policlonal. Tricoleucemia. Reacciones leucemoides: linfocitósicas y granulocíticas SÍNDROMES MIELOPROLIFERATIVOS Clasificación. Leucemia mieloide crónica. Leucemia neutrofílica crónica. Leucemia eosinofílica crónica. Policitemia vera. Trombocitemia esencial. Características diferenciales LEUCEMIAS AGUDAS. SÍNDROMES LINFOPROLIFERATIVOS Leucemia mieloide aguda. Leucemia linfoide aguda. Características diferenciales. Linfomas no Hodgkin. Leucemia linfática crónica de células B. Linfoma Hodgkin. Características diferenciales.

11 PROYECTO DOCENTE HEMATOLOGÍA. CURSO IV.- MÉTODOS DE ESTUDIO DE LA HEMOSTASIA Y SU INTERPRETACIÓN 16.- EXPLORACIÓN DE LA HEMOSTASIA PRIMARIA Extracción y manejo de muestras para los estudios de hemostasia. Tiempo de hemorragia (TH). Recuento de plaquetas. Valoración de la adhesión y agregación plaquetarias. Valoración del factor de von Willebrand. Interpretación de los resultados EXPLORACIÓN DE LA HEMOSTASIA SECUNDARIA Valoración global de la vía extrínseca: tiempo de protrombina (TP). Valoración global de la vía intrínseca: tiempo de tromboplastina parcial activada (TTPA). Determinación de fibrinógeno. Tiempo de trombina (TT). Determinación de los factores de coagulación. Valoración cualitativa del factor XIII. Interpretación de los resultados.

12 PROYECTO DOCENTE HEMATOLOGÍA. CURSO MECANISMOS FISIOLÓGICOS DEL CONTROL DE LA COAGULACIÓN. FIBRINÓLISIS Inhibidores fisiológicos de la coagulación: anticoagulantes circulantes. Anticoagulante lúpico. Antitrombina III (ATIII). Valoración de la proteína C activada. Resistencia a la proteína C activada. Pruebas en el control del tratamiento anticoagulante. Terapia fibrinolítica: α2-antiplasmina. Interpretación de los resultados INMUNOHEMATOLOGÍA Antígenos y anticuerpos eritrocitarios. Sistema ABO. Sistema Rh. Antígeno Du. Determinación del grupo sanguíneo y Rh. Determinación de anticuerpos antieritrocitarios: prueba de Coombs directa e indirecta. Interpretación de los resultados.

13 PROGRAMA DE HEMATOLOGÍA. CURSO BIBLIOGRAFÍA - Vives, J.L. y Aguilar, J.L., Manual de Técnicas de Laboratorio en Hematología, 3ª Edición. Masson-Salvat, Barcelona, Ruiz-Argüelles, G.J. Fundamentos de Hematología. 4ª edición. Ed. Médica-Panamericana, Madrid, Carr, J.H. y Rodak, B.F. Atlas de Hematología Clínica. 3ª edición. Ed. Médica-Panamericana, Madrid, Williams, W.J. y Reifenstein E.C., Manual de Hematología, Interamericana-McGraw-Hill, Madrid, Woessner, S. Y Florensa, L., La Citología Óptica en el Diagnóstico Hematológico, Acción Médica, Madrid, Sitios web

14 ACTIVIDAD DE INNOVACIÓN DOCENTE Consultar en: ELABORACIÓN DE LOS GUIONES DE LOS TEMAS Utilizando: Presentaciones PowerPoint Contenidos del Proyecto Docente GRUPOS DE 9 ALUMNOS (PORTAVOZ): 18 de febrero de 2010 Cada alumno elaborará un solo tema Se intercambiará entre los componentes del grupo Entregaran al profesor mediante la opción TAREAS que ofrece la plataforma virtual

15 ACTIVIDAD DE INNOVACIÓN DOCENTE EVALUACIÓN: AUTOEVALUACIÓN de los temas dentro de cada grupo EVALUACIÓN DEL PROFESORADO 1 PUNTO EXTRA EXAMEN TEÓRICO: -30% de las preguntas pertenecerán a los temas preparados por los alumnos

16 INTRODUCCIÓN CONCEPTO Y OBJETIVOS HEMATOLOGÍA Análisis Biológico y Diagnóstico de Laboratorio (RD 614/1997, BOE núm. 117 de 16 mayo) (Plan estudios U. Sevilla, BOE núm. 266 de 6 noviembre) Parasitología Clínica y Hematología (4T + 2,4 P) Bioquímica Clínica y Patología Molecular Humana (4,5T + 2,5 P) Microbiología Clínica (3,5T + 1 P)