Universidad de Murcia Curso Académico 2007/08 Facultad/Escuela de Biología Titulación de Licenciado en Biología

Transcripción

1 Guía Docente de Metodología Bioquímica de 4º Curso de Biología Universidad de Murcia Curso Académico 2007/08 Facultad/Escuela de Biología Titulación de Licenciado en Biología 1-Identificación 1.1. De la asignatura Nombre de la signatura Metodología Bioquímica Código 05C4 Curso 4º Tipo Troncal Créditos LRU Teóricos: 1,5 Prácticos: 3 Estimación del volumen de trabajo del alumno (ECTS)* 103 horas (4.1 créditos ECTS) 4.5x5x60/326.5=4.1 Duración Cuatrimestral (2º) Idiomas en que se imparte Castellano 1.2 Del profesorado: Nombre y Apellidos Encarnación Muñoz Delgado J. Neptuno Rodríguez López Área / Departamento Bioquímica y Biología Bioquímica y Biología Despacho y Facultad dónde se ubica. Teléfono Correo electrónico y página web Horario de atención al alumnado Ala E encarna@um.es Jueves y Viernes de 10 a 13 h Ala E neptuno@um.es Jueves y Viernes de 10 a 13 h José Manuel López Nicolas josemln@um.es Silvia Montoro García José Navarro

2 Fernández Luis Sánchez Del Campo Inmaculada Navarro Fernández Enma Navarro Perán Ala E sancampo@um.e s Ala E Presentación Dada la importancia de las técnicas experimentales para el progreso del saber bioquímico, por una parte, y para el ejercicio profesional del biólogo, por otra, es lógico que el plan de estudios recoja la enseñanza de estos procedimientos. La Metodología Bioquímica es una asignatura troncal que cursan todos los alumnos de la Licenciatura, y que presenta 1,5 créditos teóricos y 3 prácticos. Debido al escaso número de créditos teóricos en el programa, se incluyen sólo técnicas experimentales bioquímicas que se consideran especialmente significativas para los futuros biólogos, ya que una parte importante de ellos pueden tener que emplearlas en sus estudios de Tercer Ciclo o en su ejercicio profesional. 3-Conocimientos previos - Nociones básicas de física, química y matemáticas. - Amplio conocimiento en Bioquímica General. 4-Competencias - Conocer el fundamento y la utilidad de las técnicas experimentales bioquímicas y aprender a realizarlas. - Adquirir destreza en el uso del instrumental que se utiliza en bioquímica. - Desarrollo de la capacidad de razonamiento evitando los aprendizajes puramente memorísticos. - Capacidad para plantear y resolver problemas básicos de la metodología bioquímica. 5-Contenidos TEORÍA 2

3 Tema 1. Aislamiento de Material Biológico. Fraccionamiento subcelular: fragmentación de tejidos y células, estabilización y caracterización de orgánulos. Extracción de biomoléculas. Tema 2. Centrifugación. Teoría de la centrifugación: velocidad de sedimentación., equilibrio de sedimentación. Tipos de centrifugación: centrifugación analítica y preparativa, rotores y accesorios. Centrifugación diferencial, centrifugación en gradiente de densidad zonal e isopícnica. Tema 3. Métodos Ópticos de Análisis. Métodos ópticos: Radiación electromagnética, interacciones con la materia y clasificación. Espectroscopía de absorción ultravioletavisible. Espectroscopía de fluorescencia. Tema 4. Cromatografía. Métodos cromatográficos: Fases, soportes, interacciones y clasificación. Cromatografía en columna. Cromatografías de adsorción, cromatoenfoque, intercambio iónico, interacción hidrofóbica, filtración en gel, afinidad y reparto. Cromatografía de gases: Instrumentación y detectores. Tema 5. Electroforesis Tipos de electroforesis. Factores que afectan a la electroforesis. Electroforesis de proteínas: PAGE-SDS, Isolectroenfoque, etc. Detección de proteínas en el gel. Western blot. Electroforesis de ácidos nucleicos. Detección de ácidos nucleicos en el gel. Tema 6.Técnicas Radioisotópicas. Tipos de desintegraciones radioactivas. Cinética de la desintegración radioactiva. Unidades de medida. Métodos de detección de la radiactividad. Aplicaciones. PRÁCTICAS 1.- Medida de la actividad enzimática. 2.- Aislamiento de una enzima. 3.- Determinación cuantitativa de proteínas. 4.- Cinética enzimática en estado estacionario. 5.- Electroforesis de proteínas en geles de poliacrilamida. 6.- Cromatografía de exclusión molecular. 7.- Determinación y cuantificación de ácidos nucleicos. 8.- Electroforesis de ácidos nucleicos en geles de agarosa. 3

4 6-Metodología docente y Estimación del volumen de trabajo del estudiante (ECTS) 6.1-Metodología docente Las clases teóricas se orientarán hacia la explicación de los temas y a la discusión y participación de los alumnos para facilitar su asimilación y aprendizaje. Se pondrá a disposición de los alumnos, a través de la Aplicación SUMA y/o como fotocopias, el material gráfico utilizado en el aula. Para las clases prácticas se pondrán a disposición de los alumnos las fotocopias del protocolo a seguir en cada práctica. Las clases prácticas se realizarán en el laboratorio, en grupos reducidos, organizados en equipos de trabajo de dos alumnos. En primer lugar, se familiarizará al alumno con las normas de seguridad a seguir en un laboratorio experimental, se explicarán los fundamentos teóricos de la práctica y el protocolo para su realización. Los alumnos dispondrán del material de laboratorio y de los aparatos de medida necesarios para la realización de cada práctica. El profesor supervisará la realización de la práctica por parte de los alumnos y al final de cada sesión habrá entrega de resultados y corrección de los mismos. 6.2-Estimación del volumen de trabajo del estudiante (ECTS) NOMBRE DE LA ASIGNATURA Metodología Bioquímica Actividad CLASES TEÓRICAS Créditos: 4.5 LRU=(4.1 ECTS) Volumen de trabajo del alumno Hora presencial A Factor B Trabajo Personal C (A x B) Volumen de trabajo D (A +C) Lección magistral CLASES PRÁCTICAS Laboratorio TUTORÍAS Presencial individual 1 1 Realización de exámenes 2 2 Relación trabajo/ects: Total / 4.1 créditos = 23.4 h 4

5 7-Temporalización o cronograma REPARTO HORAS CLASES DE TEORIA. METODOLOGÍA BIOQUÍMICA. 4º BIOLOGÍA Profesor/a Temas * Horas Neptuno Rodríguez Presentación 1 hr Neptuno Rodríguez T. 1 a T. 4 9 hr Encarnación Muñoz T.5 a T. 6 5 hr TOTAL 15 hr CLASES PRÁCTICAS Se realizarán las 8 prácticas descritas en contenidos en 5 semanas. Todas las prácticas se realizarán en el segundo cuatrimestre en horario de tarde en semanas comprendidas del 25 de febrero al 18 de abril del Evaluación Evaluación de la parte teórica Dado que la asignatura es eminentemente práctica, la asistencia al laboratorio es obligatoria. Los alumnos con dos faltas de asistencia no aprobarán la asignatura. La evaluación de los conocimientos adquiridos mediante las clases prácticas y teóricas se realizarán mediante un examen combinado con una parte de tipo test y otra de preguntas cortas. En el examen tipo test las preguntas en blanco no penalizan pero sí las contestadas mal (4 respuestas malas restan 1 bien, cada respuesta mal resta 0.25 bien). La calificación final resultará de la media ponderada del examen tipo test (70%) y el de preguntas cortas (30%). En las convocatorias extraordinarias los alumnos tendrán que examinarse de toda la materia. Fechas de exámenes 29 de enero de 2008: Examen Final (Convocatoria de Febrero). 9 de julio de 2008: Examen Final (Convocatoria de Junio). 10 de septiembre de 2008: Examen Final (Convocatoria de Septiembre). 9-Bibliografía recomendada 5

6 - García Segura J.M. y col. (1999) Técnicas Instrumentales de Análisis en Bioquímica. Editorial Síntesis. - Freifelder, D. (1982) Técnicas de Molecular. Reverté. - Hames, B.D y Rickwood, D. (1990) Gel Electrophoresis of Proteins. IRL Press. - Harris, E.L.V. y Angal, S. (1989) Protein Purification Methods. IRL Press. - Harris, E.L.V. y Angal, S. (1989) Protein Purification Applications. IRL Press. - Plummer, D.T. (1987) An Introduction to Practical Biochemistry McGraw-Hill. 6