Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas

Transcripción

1 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa EL COLEGIO DE LA FRONTERA SUR

2 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa EL COLEGIO DE LA FRONTERA SUR

3 ÍNDICE Resumen...5 Introducción...5 Definiciones...7 Procedimientos...9 Literatura citada...27 Agradecimientos...29 Apéndice Apéndice Figuras...17

4 4 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa

5 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 5 RESUMEN Esta guía pretende servir de referencia para iniciar algún programa de producción de plántulas en viveros forestales comunitarios y orientados a la recuperación de áreas deforestadas en regiones montañosas densamente pobladas. Aunque las recomendaciones podrían extrapolarse a otras condiciones similares del país, se pone especial énfasis en la región de los Altos y montañas del Norte de Chiapas. En esta primera etapa, se describen los aspectos generales de las distintas etapas que deben considerarse en el proceso de propagación de especies. Asimismo, se incluye una relación de las principales especies arbóreas (110 especies) que potencialmente pueden ser utilizadas en función de la relativa facilidad para producirlas con bajos insumos y que en este momento están siendo utilizadas en diversos ensayos de reintroducción en varias localidades de la región. INTRODUCCIÓN El bosque mesófilo de montaña (BMM) es uno de los tipos de vegetación más diversos en relación con la superficie que ocupa en México. En tan sólo 1% del territorio nacional, se han registrado al menos 2,500 especies de plantas vasculares que crecen exclusiva o preferentemente en este tipo de vegetación (Rzedowski, 1996). Gran parte de su superficie original se halla fragmentada por el efecto de distintos factores de disturbio, principalmente asociado a las actividades humanas (sistemas agrícolas de milpa y cafetales, extracción de leña y madera y ganadería extensiva, entre las más importantes). Si consideramos que para muchos grupos de plantas es bien conocida su mayor o menor vulnerabilidad a la extinción local como resultado de la transformación de su hábitat original, es de esperarse que el tamaño de las poblaciones de varias especies arbóreas esté reduciéndose a niveles críticos para su persistencia.

6 6 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa A excepción del bosque mesófilo de montaña en la Sierra Madre de Chiapas, el cual se encuentra dentro de una área natural protegida (Reserva de la Biosfera El Triunfo; Long & Heath, 1993), en las Montañas del Norte y Altos de Chiapas existen solo algunos remanentes de BMM con distinto grado de intervención humana (Ramírez-Marcial, 2001). En estas regiones se ha registrado una alta diversidad de especies arbóreas, tanto del dosel como del sotobosque (Zuill y Lathrop, 1975; Breedlove, 1981; Ramírez-Marcial et al., 2001). Por lo general, los remanentes de bosque son de extensión variable (10-1,000 ha y aún mucho menores), entremezclados con bosques de pinoencino y bosques de pino. La mayor parte de la región ha estado poblada por grupos indígenas durante siglos y durante este tiempo han enfrentado diversos conflictos políticos, sociales y ambientales que han configurado el estado actual del paisaje, cuya característica principal es la acelerada tasa de transformación de las áreas forestales hacia terrenos agrícolas, plantaciones de café o destinados a la ganadería, en su afán por conquistar o reconquistar nuevos territorios (Collier, 1994; González y Quintanar, 1999). El impacto humano sobre el BMM se refleja, en primera instancia, en un cambio fisonómico observado poco después de ocurrido algún tipo de aprovechamiento forestal (principalmente extracción de madera y leña). Estas actividades provocan una disminución inmediata en la densidad de individuos y la eliminación de los árboles más grandes; se crean claros en el dosel que alteran seriamente las condiciones microambientales (p. ej., mayor radiación solar a todos los niveles verticales de la vegetación, incremento en la temperatura del suelo y aumento en la tasa de evaporación de la humedad, entre las más evidentes). Como consecuencia de lo anterior, la dinámica de regeneración del bosque puede seguir distintas rutas en función de la magnitud, intensidad y frecuencia del aprovechamiento. Por otro lado, algunas especies no siempre son afectadas desfavorablemente con la perturbación del bosque, sino por el contrario, pueden aumentar su tamaño de población justamente dentro de las áreas perturbadas. Estas especies son en general de rápido crecimiento y alcanzan su madurez en pocos años, produciendo un alto número de semillas que por lo normal son dispersadas por el viento. A estas especies se les conoce comúnmente como especies secundarias, tempranas, pioneras o colonizadoras. Tales características pueden ser valiosas para llevar a cabo planes de reforestación o recuperación de áreas degradadas, por lo que el interés en su propagación comienza

7 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 7 a ser cada vez mayor (p. ej. Vázquez-Yanes et al., 1997). Algunas de estas especies de fácil adaptación a condiciones de deterioro son los pinos y cipreses (Pinus y Cupressus), pero también existen otras plantas de hojas anchas como el aile o nok (Alnus acuminata ssp. arguta), el capulín o cerezo (Prunus serotina ssp. capuli) o el tzelepat o tepozán (Buddleia cordata), las cuales germinan y crecen muy rápido en áreas deforestadas. Por el contrario, especies como Clethra macrophyla, Drimys granadensis var. mexicana, Magnolia sharpii, Olmediella betschleriana, Persea americana, Persea schiedeana, Podocarpus matudai, Prunus lundeliana, Styrax, Symplocos, Ternstroemia, entre muchas otras, se consideran más sensibles al disturbio en virtud de que requieren una cubierta forestal previa para el éxito en su establecimiento y desarrollo (González-Espinosa et al., 1991; 1995; Camacho-Cruz et al., 2000). En este documento se presentan conceptos y definiciones de algunas características o atributos morfológicos y ecológicos básicos para abordar el tema de la propagación de especies leñosas. El interés principal puesto en las especies arbóreas es que Chiapas constituye uno de los estados con la mayor cantidad de especies de árboles (aproximadamente 1,800 especies; González-Espinosa et al., no publicado) y varias de estas especies se encuentran incluidas dentro de distintas categorías de amenaza, principalmente por pérdida de su hábitat (SEDESOL, 1994; Aldrich et al., 1997; Walter y Gillett, 1998). DEFINICIONES Árbol: son plantas que normalmente presentan un tronco grueso y recto en la base y ramificación en la parte más alta y pueden alcanzar alturas entre 5 y 45 m. Pueden haber árboles de hoja ancha, como las magnolias, o de hoja angosta, como los cipreses y pinos. Arbusto: son plantas normalmente de no más de 4 m de altura y que presentan varios tallos que nacen desde la base de la planta y que pueden estar muy ramificados. El mesté (Baccharis vaccinioides) es un ejemplo de arbusto. Plantas nativas: son aquellas que crecen de forma natural en una región, sin la intervención ni ayuda del hombre. Se desarrollan de forma silvestre y pueden ser plantas comunes o raras (menos abundantes) y sólo se encuentran en determinados sitios.

8 8 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa Plantas endémicas: se refieren a aquellas especies que tienen un área de distribución bien identificada y restringida a un territorio y por tanto no se pueden encontrar en algún otro sitio. Plantas exóticas: son aquellas que no tienen su origen dentro de la región donde actualmente se encuentran y su presencia se debe a que fueron traídas directamente por el hombre o que han llegado por si mismas de otro sitio de manera accidental. Muchas de estas plantas se han cultivado por sus cualidades como ornamentales y se encuentras en parques y jardines (p. ej. casuarina, eucalipto, trueno, níspero, entre muchas otras). Las plantas nativas aunque pueden estar más adaptadas a las condiciones de clima de una región, las plantas exóticas pueden establecerse más fácilmente debido a que con frecuencia crecen más rápido que aquellas especies nativas. Dada la gran cantidad de árboles nativos que pueden encontrarse en las zonas montañosas del estado (más de 250), es fundamental conocer los requerimientos para su propagación masiva con las cuales intentar la recuperación de sus poblaciones de donde han desaparecido o disminuido. Un área de colecta de semillas es en donde los individuos seleccionados deben presentar características fenotípicas especiales (altura, diámetro, rectitud, tendencia a la bifurcación, torceduras, ramificación, etcétera). Para iniciar un programa de colecta de semillas, es importante entender el significado de los siguientes conceptos ya que de ello dependerá el éxito o fracaso de la actividad: Área semillera: zona geográfica suficientemente amplia (p. ej. Montañas del Norte), delimitada por condiciones naturales que tienen gran número de árboles de una misma especie distribuidos en toda su extensión, mezclados o no con otras especies y que por sus características presentan condiciones aptas para la recolección de semillas. Rodal semillero: conjunto de árboles uniformemente distribuidos o plantados con semejante composición, constitución y disposición, distinguible de poblaciones adyacentes y capaz de producir semillas. Su selección se realiza teniendo en cuenta que entre los rodales opcionales presentan las mejores condiciones de forma y desarrollo, así como lo relacionado con la mayor producción de semillas.

9 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 9 Árbol semillero: árbol seleccionado cuidadosamente entre varios miembros de la misma especie, de acuerdo a sus características fenotípicas superiores al promedio y que es capaz de producir semillas de calidad superior como su tamaño, forma, estado de salud, etcétera (figura 1). Huerto semillero: cualquier parcela que se haya establecido con plantas procedentes de árboles selectos, obtenidos por semilla o vegetativamente, destinados a la producción de semilla comercial de calidad superior, aislada y manejada de tal manera que exista orden en la polinización de fuentes externas. Una de las finalidades de los huertos semilleros es la de recolectar semillas de calidad genética superior. Origen: para un rodal de árboles nativos, el origen es el lugar donde los árboles están creciendo. Para un rodal no nativo, el origen es el lugar geográfico donde originalmente se introdujeron las semillas o plantas. Procedencia: ubicación de la fuente de semilla. Es el lugar donde está creciendo cualquier rodal de árboles, que puede ser nativo o no y se representa por sus coordenadas geográficas, altitud y nombre de la región específica. Región de procedencia: para una especie, subespecie o variedad distintiva, la región de procedencia es el área o grupo de áreas sujeto a condiciones ecológicas de suficiente uniformidad, como para encontrar rodales que demuestren características genéticas o fenotípicas similares. Es un área suficientemente amplia para la recolección de material de reproducción, definida por límites visibles, a través de los cuales su identificación en el terreno sea posible y deben ser cuidadosamente establecidos, teniendo en cuenta la mayor uniformidad fenotípica y ecológica. PROCEDIMIENTOS Manejo de semillas Colecta de semillas: Pueden colectarse localmente u obtenerse de algunos distribuidores comerciales, centros de semillas, servicios forestales o en algunas instituciones de investigación. Una plantación podrá ser más exi-

10 10 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa tosa si las plántulas provienen de semillas de óptima calidad. Por ello, un programa de recolección de semillas debe considerar: Selección de las especies apropiadas al clima. Las semillas provengan de un área lo más parecida a donde se va a realizar la plantación. Que sean de buena calidad. Que existan en cantidades suficientemente grandes para realizar ensayos de viabilidad y germinación. Que se puedan almacenar para que estén disponibles todo el tiempo. Si la colecta es local, es importante conocer dónde se localizan los mejores árboles. Las semillas debieran provenir de un área que es muy similar (altitud, precipitación, tipo de suelo, etc.) al área donde se localizará el vivero. Las semillas deben colectarse de árboles donantes con características deseables. Por ejemplo los árboles rectos y altos son los deseables para la producción de madera, pero para la producción de leña será preferible un árbol de rápido crecimiento, con muchas ramas. Para forraje, se buscan las especies con abundante producción de follaje y buena capacidad de respuesta mediante el rebrote después del corte (figura 2). Recuerde: Las semillas deben colectarse de árboles que estén saludables y vigorosos. Las semillas deben colectarse de varios árboles. Las semillas no deben colectarse de árboles aislados o muy jóvenes. También es importante conocer cuándo colectar las semillas: Las semillas se colectan sólo de árboles maduros. Si los frutos se colectan muy tempranamente, las semillas probablemente estén inmaduras y débiles. Si la colecta se retarda mucho tiempo, las semillas pueden ser atacadas por insectos y hongos o bien perderse por dispersión o consumidas por animales. Un fruto carnoso maduro (baya, drupa, pomo, etc.) puede reconocerse por los cambios de coloración, de verde a rojo o negro, momento en el que debe hacerse la colecta. Cuidar que los frutos secos (conos, cápsulas, vainas, etc.) se colecten antes de que se abran.

11 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 11 No utilizar los frutos enfermos o aquellos que se encuentren en el suelo, ya que pueden contaminar las semillas sanas. Si es posible: Baje sólo los frutos o pequeñas estructuras vegetativas adicionales adheridas a los frutos para evitar el daño excesivo sobre la planta. Permita que los frutos caigan al suelo sobre grandes piezas como lonas o preferentemente mantas de algodón si es difícil subirse a un árbol. Cuando transporte los frutos: No utilice cajas o bolsas de plástico, ya que muchas veces los frutos vienen calientes y húmedos y pueden podrirse rápidamente. Almacénelos en bolsas de tela, yute, costales o bolsas de papel grueso perforadas que permita que el aire circule. Almacene las cajas, bolsas, costales, etc. en lugares con sombra, fríos y secos y no los ponga sobre el suelo para evitar pudrición o daño por roedores. Métodos para colecta de frutos Método de las espuelas: semejante al utilizado por los empleados de la Comisión Federal de Electricidad. Ideal para especies de coníferas (pinos). Consiste en utilizar espolones de hierro forjado sujetos con correas de cuero a los pies. El espolón termina en una punta firme (5-10 cm de longitud). Adicionalmente se lleva una cuerda y cinturón de seguridad sujeto a la cintura que rodea al árbol par evitar caídas. Su inconveniencia es que el método daña la corteza de los árboles. Una vez que se alcanzan las primeras ramas, se puede subir sin los espolones pero asegurado con el cinturón y con una tijera o lanza se desprenden los frutos que pueden ser recolectados en el piso por otras personas. Método de la escalera: ideal para árboles bajos o cercanos a vías de comunicación para evitar cargar la escalera mucho tiempo. Recolección en el suelo: sistema práctico y por demás barato, recomendado para aquellas especies cuyos frutos normalmente son de apreciable tamaño y peso (por ejemplo, Persea americana, Oben ). Se necesita conocer con precisión la época de maduración y caída de los frutos, ya que una vez desprendidos duran poco tiempo antes de ser atacados por animales, hongos o

12 12 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa bacterias. Este método va asociado con la sacudida del árbol o ramas altas que ayudan a su desprendimiento. Recolección de aprovechamiento: cuando un árbol se va a aprovechar para madera o por otra necesidad como para establecer un campo de cultivo, construcción de una casa, camino, carretera, etc. se aprovecha la totalidad de los frutos siempre y cuando el derribo del árbol ocurra en el momento preciso de la maduración de sus frutos y que el árbol tenga las características deseables. Método de línea de seguridad: este método consiste en pasar mediante un objeto pesado una cuerda delgada a través de las primeras ramas del árbol y del otro extremo se pasa una cuerda más gruesa sobre la cual una persona se engancha con una serie de correas y poleas para ascender por impulso con los pies. Este método es más sofisticado y costoso que los anteriores pero con la práctica puede ser muy efectivo y seguro. Extracción de semillas y almacenaje: para muchas especies, las semillas pueden extraerse secándolas al sol. Utilice el siguiente procedimiento (figura 3): Distribuya los frutos en el suelo evitando que estos se amontonen si son carnosos, o bien depositarlos en cajas de madera o de cartón en el caso de frutos secos. Agitar continuamente hasta que los conos, vainas o cápsulas se abran y liberen sus semillas. Remover la pulpa de los frutos carnosos antes de poner a secar las semillas y separarlas por aireación o sumergiéndolas en agua. Secar las semillas bajo el sol. Las características de semillas buenas y malas dependen mucho de las especies. Generalmente, las semillas descartadas están rotas, han sido atacadas por insectos (lo cual a menudo se puede identificar por unos pequeños orificios sobre la cáscara del fruto), o su color y tamaño difiere marcadamente de muchas de las otras semillas. Las semillas se almacenan en lugares fríos, secos y oscuros. Las semillas de especies de leguminosas (p. ej. Acacia Erythrina) pueden generalmente almacenarse durante muchos años aún a temperatura normal. Mantener la temperatura de almacenaje tan constante como sea posible si es que no es posible almacenarse en frío.

13 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 13 Asegúrese de que el área de almacenaje esté bien ventilada. Almacene las semillas sensibles a la humedad dentro de botellas herméticas o latas selladas. Mantenga a las otras semillas en cajas de madera o en sacos de tela. No utilice contenedores de plástico, a menos que el cierre sea hermético y de preferencia dentro de un refrigerador o área fría. Para tener una estimación de la variación del tamaño y peso de los frutos y semillas, es conveniente tomar una muestra de al menos 30 frutos y/o semillas para registrar sus medidas. Para ello, pueden utilizarse desde las balanzas granatarias hasta balanzas analíticas en el caso de frutos y semillas muy pequeños (figura 4). Tratamiento de las semillas A menos que sean pretratadas, algunas semillas no germinan o solo lo hacen después de un largo tiempo. Usualmente hay especies con testa de la semilla (cáscara) dura que la hace impenetrable al agua y aire o previene la emergencia de la radícula, la cual el la primera parte que sale de la semilla (p. ej. Acacia pennatula, Acacia angustissima, Olmediella betchleriana) Dependiendo de las especies, se recomiendan los siguientes pretratamientos (figura 5): Hidratación: las semillas se sumergen en agua durante horas antes de sembrarse. Solo las semillas que absorben el agua deben plantarse. Las semillas que absorben agua se ven hinchadas y tienden a ser más gordas y blandas que las que no absorben el agua. Agua hirviendo: las semillas se ponen dentro de una bolsa de tela o costal y se sumerge en un recipiente con agua en ebullición (5-10 partes de agua por una parte de semilla) y utilizando un agitador, se agita durante 3-15 segundos solamente. Se necesitaría un poco de más tiempo si la testa de las semillas es sumamente dura (como en el caso de algunas leguminosas). Agua caliente: después de hervir el agua, se deja enfriar durante minutos dentro de un contenedor o recipiente con las semillas (10 partes de agua por una parte de semillas). Se deja reposar por 3-10 minutos hasta que el agua se enfría a temperatura ambiente. Las semillas se quedan sumergidas toda la noche.

14 14 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa Escarificación mecánica: se puede cortar una parte de la testa de las semillas con ayuda de un cuchillo o navaja, o golpear suavemente con un martillo hasta que la testa se rompa. También se pueden utilizar lijas para desgastar parte de la testa cuidando no dañar el tejido interno de la semilla. Estas técnicas son prácticas para cuando las semillas no son muy pequeñas como para que permitan su manipulación. Otra forma de escarificar mecánicamente es introduciendo las semillas dentro de un recipiente que contenga arena de río gruesa. El recipiente se agita varios minutos y posteriormente la arena se cierne con una malla lo suficientemente fina para permitir retener las semillas durante el filtrado. Escarificación química: comúnmente las semillas de varias especies de leguminosas y de otras especies con semillas de testa impermeable (p. ej. Acacia angustissima, Turpinia tricornuta, Nyssa sylvatica, Cornus excelsa, Juniperus gamboana) requieren de la escarificación mediante el empleo de alguna solución diluida con ácido clorhídrico, o bien con agua oxigenada. Dependiendo de la especie, las semillas requieren permanecer durante unos pocos minutos a un par de horas hasta romper los mecanismos de latencia. Producción de plantas Cálculo de la cantidad de semillas necesarias: una formula de cómo se determina el número de plantas necesarias para producir dentro del vivero es de la siguiente manera: Cantidad = donde N = número de plántulas requeridas para la plantación. p = tasa de germinación o porcentaje de la planta. W = número de semillas por kilogramo. 125 = factor que agrega un 25 % de reserva por pérdidas. E = cantidad extra, en caso de que algunas semillas no estén buenas. Como cierto número de plántulas muere después de que son trasplantadas, se puede incrementar el número estimado de ellas por un 10-20% (esto es, E = 10-20). Siembra de las semillas: las semillas pueden sembrarse directamente dentro de macetas o contenedores, dependiendo de la especie. Las semillas de

15 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 15 las especies que germinan bien y más o menos al mismo tiempo pueden sembrarse directamente. La siembra directa evita el daño y la distorsión radical (figura 6). Las camas semillas/bancales de germinación deben utilizarse cuando: Se espera que la viabilidad de semillas sea baja (menos del 40%). La germinación tome largo tiempo. Varias plantas germinan de un hueso. Las semillas son muy pequeñas. Las semillas son muy escasas o caras. Para sembrar en macetas, dos o más semillas (dependiendo de las tasas de germinación) pueden ponerse dentro de cada maceta. Para sembrar en camas de germinación, se recomienda que las semillas se pongan en hileras que corran a lo largo de la cama, haciendo el control de deshierbe más fácil. En ambos casos, las semillas tienen que ponerse a una profundidad igual a uno o dos veces su diámetro. Las camas semilleras o macetas deben regarse utilizando regaderas con hoyos pequeños. El tiempo de siembra se determina calculando el tiempo que las semillas toman para germinar y el tiempo requerido para que las semillas alcancen el tamaño y calidad apropiados para la plantación a principio de la temporada de lluvias. Por ejemplo, para una especie que requiere de dos semanas para germinar y 12 semanas para alcanzar el tamaño para la plantación, las semillas deben sembrarse 14 semanas antes de iniciar la temporada de lluvias. Macetas: existen diferentes tipos de contenedores, pero los más ampliamente disponibles hoy día son las bolsas de plástico negras. Estas bolsas son disponibles en varios tamaños, con o sin perforaciones para el drenado del agua. En general, las bolsas mas apropiadas para casi todas las especies son las que miden 10 x 15 cm cuando están planas. Si las bolsas no están perforadas, hay que hacerlo en la parte inferior de la bolsa. Para ello una perforadora de papel o cualquier objeto punzante puede ser útil para tal fin. Mezcla de tierra para llenado de bolsas: la mezcla depende de la calidad del suelo que se disponga. Es generalmente adecuada una mezcla de 50% de tierra franca, 40% de arena de río y 10% composta/abono/tierra de hoja

16 16 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa por cada unidad de volumen. Si se dispone de zafra de caña o de coco, puede mezclarse con la tierra para formar una mezcla compuesta que ayuda a la aireación del suelo (figura 7a). Transplante de plántulas: una vez que se cuenta con suficientes bolsas llenas del sustrato elegido, se procede con el transplante manual de las plantas emergidas en las camas semilleras, teniendo la precaución de extraer la raíz sin dañarla (figura 7b). Establecimiento de un vivero Selección del sitio: antes de iniciar la construcción de un vivero, es importante considerar los siguientes aspectos: Disponibilidad de agua: debe ser accesible durante todo el año. Suelo: es esencial tener un suelo de tipo franco, limo-arenoso, o arcillo-limoso, preferentemente suelo de bosque en las inmediaciones del vivero para elaborar mezclas. Topografía: sitios relativamente planos (1-2% de pendiente). La pequeña pendiente es para evitar el encharcamiento y erosión del suelo. El banco de tierra debe construirse sobre una pequeña terraza. Microclima: el sitio no debe estar expuesto a la influencia de vientos fuertes, para ello no debe ubicarse en la cima de las laderas, ni en valles donde ocurran heladas. El sitio debe recibir luz directa durante la mayor parte del día. Materiales: debe existir facilidades de acceso para fertilizar con abono o compostas. También para materiales que puedan necesitarse para construir cercos, techos de sombra, camas, etc. Los materiales indispensables son carretillas, palas, picos, madera, plásticos, regaderas, mangueras, cubetas, machetes, etcétera. Localización: para minimizar el tiempo y costo de transporte y para guardar más fácilmente las herramientas, el vivero debe establecerse lo más cercano posible donde se realizará la plantación. Acceso: el sitio debe estar cercano a un buen camino para tener acceso durante cualquier época del año. Propiedad: debe haber acuerdo respecto al uso del agua y ubicación del vivero y sobre todo del área donde se va a realizar la plantación. Tamaño: se determina por el número de plantas que se pretenda producir, el tiempo que se tarda en tenerlas y de la densidad dentro de los

17 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 17 Oreopanax xalapensis Prunus hundelliana Arbutus xalapensis Magnolia sharpii Figura 1. Árboles semilleros.

18 18 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa

19 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 19 Magnolia sharpii Chiranthodendron pentadactylon Drimys granadensis Persea americana Platanus mexicana Alnus acuminata Figura 3. Manejo y secado de frutos.

20 20 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa Figura 4. Tamaño y peso de semillas.

21 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 21 Figura 5. Tratamiento de semillas.

22 22 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa Figura 6. Siembra y germinación.

23 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 23 a) b) Figura 7. Mezcla de tierra, llenado de bolsas (a) y transplantes (b).

24 24 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa Figura 8. Mantenimiento, traslado y siembra de plantas en parcelas experimentales.

25 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 25 bancales de crecimiento. Otro factor que determina el tamaño es la disponibilidad del sitio y sobre todo de la disponibilidad de presupuesto. Labores: es indispensable la disponibilidad de la gente local para la construcción del vivero y de las labores de riego, deshierbe, trasplante, etc. También es necesaria su participación para el transporte y siembra de las plantas a los sitios de plantación. Tamaño del vivero: el tamaño del vivero dependerá de la demanda de plántulas por producir y de los recursos económicos disponibles. Es importante considerar los traslapos en los ciclos de producción, por ejemplo las plántulas que van a remplazar a las que mueren después de la primera plantación (10-20%). Para calcular el tamaño de un vivero en función de las siguientes cantidades de plántulas, presentamos los siguientes tres ejemplos: Ejemplo 1: Para 12,000 plantas en bolsas de 7.5 x 17.8 cm. Se debe calcular un espacio para 15,000 plantas, considerando las que van a perderse (25%). Las bolsas llenas cubrirán un área de 200 m 2. 15,000/200 = 75 m 2. La mitad de estas plantas requieren del doble del espacio, porque estarán en el vivero por más de 12 meses: 37.5 m m 2 x 2 = m 2. Ejemplo 2: Para 12,000 plantas en bolsas de 10.2 x 17.8 cm. Se requiere espacio para 15,000 plantas. Las bolsas cubren un área de 115 m 2 cuando las bolsas se extienden. 15,000/115 m 2 = 130 m 2. La mitad de estas plantas requieren del doble del espacio, porque estarán en el vivero por más de 12 meses: 65 m m 2 x 2 = 195 m 2. Ejemplo 3: Para 2,000 estacas. Se requiere espacio para 2,500 estacas, considerando aquellas que van a ser remplazadas (25%). Las estacas cubren un área de 100m 2. 2,500/100 = 25 m 2. Se requiere el doble del espacio, porque las estacas estarán en el vivero por más de 12 meses: 25 m 2 x 2 = 50 m 2. Total del área requerida para las camas de crecimiento = m 2.

26 26 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa Para permitir los caminos entre los bancales y los canales de desagüe, estas áreas deben multiplicarse por un factor de 1.5 para un vivero que no es terraceado (pendiente por arriba de 2%) y por un factor de 3 para un vivero terraceado (pendiente de 3-20%). Un vivero que no ha sido terraceado puede de esta manera necesitar 1308 m2 para el área de crecimiento principal. En cambio, un vivero terraceado podría necesitar 2617 m 2. Infraestructura mínima del vivero: Libre acceso a caminos y carreteras. Cercado: cuando menos debe levantarse una protección de 1.5 m de altura para evitar el daño por animales domésticos o silvestres. Suministros para herramientas, materiales y trabajadores: tener disponibilidad de diversos materiales para algunas labores del vivero (p. ej. postes, ramas, tierra, hojarasca, abono, etc.). Volteo del suelo: haber espacio suficiente para almacenar el suelo, arena, composta para la producción de plántulas, así como espacio para el llenado de las bolsas. Camas semilleras: tienen aproximadamente 1 m de ancho y 2-5 m de longitud. Deben prepararse en áreas bien drenadas y debe haber unos 60 cm entre cama y cama. Idealmente las camas semilleras consisten de tres capas: 1. la capa inferior consiste de 5 cm de grava o piedras pequeñas para mejorar el drenaje 2. la capa media consiste de 2-3 cm de suelo rico en humus para retener agua 3. la capa superior consiste de 2 cm de una mezcla 1:1 de arena tamizada y suelo rico en humus. Nota: donde sean frecuentes las inundaciones, se recomienda que las camas de germinación se encuentren levantadas un poco más del nivel del suelo. Mantenimiento de las plantas: una vez que las plántulas comienzan a germinar deben proporcionarse un riego frecuente, pero sin inundarlas. Asimismo es posible que comience a observarse la germinación de numerosas plantas herbáceas que compiten con las de los árboles. Estas hierbas pueden eliminarse manualmente, removiendo con cuidado la tierra y tratando de eliminarlas con la raíz completa, ya que muchas de ellas pueden rebrotar. En algunos casos es también recomendable el empleo de algún

27 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 27 herbicida sistémico (p. ej. para los pastos que son difíciles de arrancar manualmente). En todo caso es importante utilizar equipo especial, evitando en todo momento tener contacto directo con la solución que se emplee. Reintroducción de plantas: debido a que la producción de plantas en vivero tiene la finalidad de asegurar la producción de material biológico de buena calidad, es fundamental considerar las características de los sitios posibles de plantación. No todas las plantas pueden desarrollarse en cualquier lugar. En terrenos completamente abiertos solo será posible utilizar un grupo limitado de especies (p. ej. Alnus acuminata, Buddleia spp., Prunus serotina, Quercus spp.), mientras que si se desea reintroducir especies como Olmediella betschleriana, Magnolia sharpii, Drimys granadensis, Podocarpus matudai, Persea americana, Clethra macrophylla será necesario elegir sitios que cuenten con una cobertura arbustiva o arbórea previa debido a la alta susceptibilidad de mortalidad por heladas e insolación. Es conveniente que durante los primeros años de la plantación las parcelas sean protegidas de posibles daños por vacas y borregos (figura 8). LITERATURA CITADA Aldrich, M., Billington, C., Edwards, M. y Laidlaw, R Tropical montane cloud forests: an urgent priority for conservation. WCMC Biodiversity Bulletin No. 2, Cambridge, Reino Unido, 17 p. Breedlove, D.E Introduction to the Flora of Chiapas. California Academy of Sciences, San Francisco, California, 35 pp. Camacho-Cruz, A., González-Espinosa, M., Wolf, J.H.D. y de Jong, B.H.J Germination and survival of tree species in disturbed forests of the highlands of Chiapas, Mexico. Can. J. Bot. 78: Cavelier, J Reforestation with the native tree Alnus acuminata: effects of phytodiversity and species richness in an upper montane rain forest area of Colombia. In: L. S. Hamilton, J. O. Juvik, and F. N. Scatena, editors. Tropical montane cloud forest. Springer-Verlag, New York, USA. pp Chong, C. y Bibble, B.B Germination and emergence. En: Pessarakli, M. (Ed.). Handbook of plant and crop physiology. Mercel Dekker, Nueva York, EUA, pp Collier, G.A Basta! land and the zapatista rebellion in Chiapas. Institute for Food and Development Policy, Oakland, California, USA. 183p.

28 28 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa Challenger, A Utilización y conservación de los ecosistemas terrestres de México. Pasado, presente y futuro. CONABIO-Instituto de Biología-UNAM y Agrupación Sierra Madre. México, Distrito Federal, México. Duran-García, Méndez-González y Orellana-Lanza Manual de propagación de plantas nativas de la península de Yucatán. Centro de Investigación Científica de Yucatán, A.C. González-Espinosa, M., Ochoa-Gaona, S., Ramírez-Marcial, N. y Quintana-Ascencio, P. F Current land-use trends and conservation of old-growth forest habitats in the highlands of Chiapas, Mexico. In Wilson, M. (ed.). Conservation of neotropical migrant birds in Mexico. The Maine Agriculture and Forestry Experiment Station. NSF and USFWS. Orono, Maine, pp González-Espinosa, M., Quintana-Ascencio, P.F., Ramírez-Marcial, N. y Gaytán- Guzmán, P Secondary succession in disturbed Pinus-Quercus forests of the highlands of Chiapas, México. J. Veg. Sci. 2: González-Hernández, M. y Quintanar, E La construcción de la región autónoma norte y el ejercicio del gobierno municipal. In: Burguete, Cal y Mayor, A. (Ed.), México: Experiencias de Autonomía Indígena. International Working Group of Indigenous Affairs, Copenhague, Dinamarca, pp INIFAP Semillas forestales. Publicación especial Num. 2. SARH Long, A. y Heath, M Flora of the El Triunfo Biosphere Reserve, Chiapas, Mexico: a preliminary floristic inventory and the plant communities of Polygon I. Anales Inst. Biol., Univ. Nac. Autón. México, Ser. Bot. 52: Longman, K. A Propagación vegetativa de árboles tropicales. Volumen 1. Commonwealth Science Council. Ramírez-Marcial, N Diversidad florística del bosque mesófilo en el Norte de Chiapas y su relación con México y Centroamérica. Bol. Soc. Bot. México 69: Ramírez-Marcial, N., González-Espinosa, M. y Williams-Linera, G Anthropogenic disturbance and tree diversity in montane rain forest in Chiapas, Mexico. For. Ecol. Manage. 154: Rzedowski, J Análisis preliminar de la flora vascular de los bosques mesófilos de montaña de México. Acta Bot. Mex. 35: Trujillo Navarrete E Manejo de semillas, viveros y plantación inicial. CEDETRA- BAJO, Colombia. Vázquez-Yanes, C., Batis Muñoz, A.I., Alcocer Silva, M.I., Gual Díaz, M y Sánchez Dirzo, C Árboles y arbustos potencialmente valiosos para la restauración ecológica y la reforestación. Reporte técnico del proyecto J084. CONABIO-Instituto de Ecología, UNAM.

29 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 29 Zuill, H.A. y Lathrop, E.W The structure and climate of a tropical montane rain forest and an associated temperate pine-oak-liquidambar forest in the northern highlands of Chiapas, Mexico. Anales Inst. Biol., Univ. Nac. Autón. México, Ser. Bot. 46: AGRADECIMIENTOS Este proyecto se benefició en su primera fase de recursos provenientes de la Unión Europea dentro del programa INCO-DC (Framework 4, del proyecto SUCRE, contrato No. ERBIC-18CT ). En una segunda fase, tuvo el apoyo de la MacArthur Foundation-Fondo Mexicano para la Conservación de la Naturaleza (Proyecto A ) y nuevamente de la Unión Europea a través del proyecto BIOCORES (EC-INCO IV Programme, contrato ICA4-CT ) y la impresión final ha sido posible gracias a recursos fiscales otorgados por ECOSUR. Agradecemos al Departamento de Difusión y a Sofía Carballo por su apoyo en la edición final del documento. Expresamos nuestro profundo agradecimiento a las siguientes personas que de una u otra manera nos han ayudado en diversas etapas del proyecto: Miguel Martínez Icó, Alfonso Luna Gómez, Liliana E. Mascarúa-López, Fabiola López-Barrera, Luis Galindo Jaimes, Laura Rubio Delgado, Luz del Carmen Silva Pérez, Manuel de Jesús Díaz Gómez, Pedro Girón Hernández, Juan Carlos Bautista Bolóm, Javier Bautista Bolóm, Mario Guillén Bautista, Magala Alcázar y a las diversas autoridades ejidales y municipales de Pueblo Nuevo Solistahuacán, Tapalapa, Jitotol, San Cristóbal de Las Casas, Huistán, Teopisca, Larráinzar, Chamula, Tenejapa, Chenalhó y Oxchuc por permitirnos el acceso a distintas localidades para colectar semillas (permiso de la SEMARNAT No. FLOR-0054 expedido a NRM). Asimismo, agradecemos a PRONATURA-Chiapas, al Colegio Lindavista (Universidad de Montemorelos), al Instituto de Historia Natural en San Cristóbal y a las diversas autoridades comunales y ejidatarios por todo el apoyo para realizar diversos ensayos de reintroducción de plantas dentro de sus propiedades.

30 30 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa APÉNDICE 1. Algunas características biológicas y ecológicas de 110 especies arbóreas y arbustivas nativas de los bosques templados de Chiapas. Se presenta también su potencial para la restauración. Potencial para restauración Tolerancia a la sombra Tasa de crecimiento Método de propagación Tipo de fruto Época de recolecta Fructificación Floración Forma de vida Nombre común Nombre científico Abies guatemalensis Romerillo árbol cono semilla lenta si bajo Acacia angustissima Timbre arbusto nov-ene vainas semilla media no alto Acacia pennatula Chish té árbol abr-may sep oct-feb vainas semilla media no medio Acer negundo ssp. mexicana Arce mexicano árbol sámaridio semilla media si medio Alnus acuminata ssp. arguta Nok árbol jun-jul nov-dic nov-dic conillos semilla rápida no alto Arbutus xalapensis Madrón árbol ene-mar ago-oct ago-oct baya semilla lenta no bajo Baccharis vaccinioides Mesté arbusto aquenio semilla media no alto Bocconia arborea árbol semilla rápida no alto Buddleia cordata Tzelepat, tepozán árbol cápsula semilla rápida no alto Calyptranthes pallens Chi it árbol oct-nov mar-abr abr-jul drupa semilla lenta si bajo Calliandra aff. houstoniana Chich ní arbusto vainas semilla rápida no alto Calliandra grandifolia arbusto vainas semilla rápida no alto Calliandra houstoniana Pish nitch té arbusto ene-mar jul-sep jul-dic vainas semilla rápida no alto Carpinus caroliniana árbol semilla lenta si medio Citharexylum mocinnii árbol oct-nov abr-may mayo drupa semilla rápida si medio Clethra macrophylla Svish-oben árbol feb-mar jul-sep jul-oct cápsula semilla media si bajo Clethra oleoides árbol feb-mar jul-sep jul-sep cápsula semilla media si bajo Clethra suaveolens árbol mar-abr jul-sep jul-sep cápsula semilla media si medio Cleyera theaeoides Coshosh-té árbol jul-ago ene-feb ene-abr drupa semilla rápida si alto

31 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 31 Cornus disciflora Sacbayanté, sají árbol sep dic-feb dic-mar drupa semilla o plántula rápida si alto Cornus excelsa Isbón árbol drupa semilla rápida si alto Crataegus pubescens manzanita árbol drupa semilla media no medio Chiranthodendron pentadactylon Macpalxochitl árbol cápsula semilla rápida si medio Daphnopsis tuerckheimii arbusto jul-sep marzo mar-jul drupa semilla media si bajo Dendropanax arboreus Sakilté árbol jul-sep ago-dic drupa semilla rápida si alto Drimys granadensis var. mexicana árbol drupa semilla lenta si bajo Ehretia thinifolia árbol drupa semilla rápida no medio Erythrina sp. Wakash árbol jun-jul oct-dic oct-mar vainas semilla, estaca rápida no alto Eupatorium nubigenum árbol aquenio semilla rapido si medio Fraxinus uhdei Fresno árbol sep feb-abr feb-abr sámaridio semilla media si alto Fuchsia paniculata arbusto baya semilla media no Garrya laurifolia árbol cápsula semilla media si medio Glossostipula concinna árbol ago feb-abr abr-jun drupa semilla media si medio Hedyosmum mexicanum árbol may jun-oct plurifolículo semilla rápida no bajo Ilex vomitoria arbusto mar mayo drupa semilla lenta si bajo Inga oerstediana Chalum árbol vainas semilla rápida no alto Juniperus gamboana Ciprés rojo árbol nov-ene dic cono semilla lenta no bajo Liquidambar styraciflua Liquidámbar, Sotsté árbol jul-ago dic-ene dic-mar cápsula semilla rápida no alto Litsea glaucescens Laurel, Tsitz uch árbol jul-ago dic dic drupa semilla media si medio Magnolia sharpii Tojchuj árbol ene-mar jul-ago jul-ago plurifolículo semilla media si bajo Meliosma dentata árbol jun-jul nov-dic dic-feb drupa semilla media si bajo Meliosma dives árbol drupa semilla bajo si bajo

32 32 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa Miconia mexicana Ajate es arbusto jun-jul sep-oct sep-dic baya semilla, estaca rápida si alto Myrica cerifera Satín árbol mar-abr nov-dic nov-dic drupa semilla media no alto Nyssa sylvatica Palo de Luk árbol oct-dic oct-dic drupa semilla, estaca media si medio Olmediella betschleriana K oromash árbol oct-dic dic-feb anfisarca semilla lenta si bajo Oreopanax peltatus arbusto jul jul-sep drupa semilla rápida si alto Oreopanax xalapensis Yichakmut arbusto feb-abr jul-sep jul-sep drupa semilla, estaca rápida si alto Ostrya virginiana var. guatemalensis árbol semilla lenta si medio Parathesis belizensis Amoch arbusto may-jun sep-dic sep-dic drupa semilla rápida no alto Persea americana Oben, Aguacate árbol jun-jul oct-dic oct-dic drupa semilla rápida si alto Persea schiedeana Oben árbol jun-jul oct-dic oct-dic drupa semilla media si medio Photinia microcarpa árbol semilla media si medio Picramia andicola arbusto drupa semilla lenta no bajo Pinus ayacahuite Pinabete árbol cono semilla media no alto Pinus devoniana árbol cono semilla lenta no medio Pinus maximinoi Tzajal toj árbol mar-abr cono semilla media no medio Pinus oocarpa Sakil toj árbol nov-dic no cae cono semilla media no alto Pinus pseudostrobus árbol cono semilla rápida no alto Pinus strobus var. chiapensis Pinabeto, Potz toj árbol sep oct cono semilla media no bajo Pinus tecunumanii Toj árbol mar-may tarda cono semilla media no alto Platanus mexicana árbol sicómoro semilla rápida no medio Podocarpus matudai Kisis toj árbol nov-dic nov-dic drupa semilla lenta si bajo Prunus brachybotria Boyté árbol sep-oct feb-mar feb-mar drupa semilla rápida si medio Prunus lundeliana Boyté árbol sep-oct feb-mar feb-mar drupa semilla rápida si medio

33 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 33 Prunus rhamnoides Boyté árbol mar-abr sep sep-dic drupa semilla medio si medio Prunus serotina ssp. capuli Capulín árbol mar-abr sep sep-dic drupa semilla rápida si alto Psychotria galeotiana arbusto drupa semilla media si bajo Quercus acatenangensis árbol bellota semilla lenta si medio Quercus acutifolia Chiquinib árbol mar-abr dic ene-feb bellota semilla rápida si alto Quercus benthamii Tulán árbol mar-abr dic ene-feb bellota semilla media si alto Quercus candicans Sac iok árbol mar-abr dic ene-feb bellota semilla media si alto Quercus crassifolia árbol bellota semilla media si alto Quercus crispipilis Chiquinib árbol mar-abr ene-feb ene-mar bellota semilla media si alto Quercus lancifolia Tulán árbol mar-abr oct-dic ene-feb bellota semilla media si alto Quercus laurina árbol bellota semilla media si alto Quercus peduncularis Tulán árbol mar-abr dic ene-feb bellota semilla media si alto Quercus rugosa árbol bellota semilla media si alto Quercus sapotaeifolia árbol mar-abr nov-dic nov-feb bellota semilla media si alto Quercus segoviensis Tulán árbol mar-abr ago-oct ago-dic bellota semilla media si alto Quercus skutchii árbol bellota semilla media si alto Quercus sp. Tulán árbol bellota semilla media si alto Quercus sp. Encino gordo árbol bellota semilla media si alto Randia aculeata arbusto baya semilla lenta no bajo Rapanea juergensenii Tilil árbol mar-abr sep sep-dic drupa semilla media si medio Rapanea myricoides Atzam te árbol mar-abr sep-oct sep-dic drupa semilla rápida si alto Rhamnus capraeifolia Palo amarillo árbol ene-mar jul-ago jul-oct drupa semilla rápida si alto Rhamnus sharpii árbol ene-mar ago-oct jul-oct drupa semilla media si medio

34 34 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa Saurauia latipetala árbol abr-may sep sep-oct baya semilla rápida si alto Saurauia scabra árbol abr-may sep sep-oct baya semilla rápida no alto Styrax argenteus árbol jun-jul oct-dic enero drupa semilla media si medio Styrax glabrescens árbol jun-jul sep-oct sep-oct drupa semilla media si bajo Symplocos limoncillo árbol drupa semilla lenta si bajo Synardisia venosa Pajal té árbol marzo ago-oct sep-oct drupa semilla lenta si bajo Taxodium mucronatum Sabino, ahuehuete árbol conillos semilla media no alto Ternstroemia lineata árbol mar-abr sep sep-dic cápsula semilla media si bajo Ternstroemia oocarpa Memelita árbol mar-abr sep sep-oct cápsula semilla media no alto Trophis mexicana árbol baya semilla lenta si bajo Turpinia paniculata Chijiteté árbol baya semilla rápida no medio Turpinia tricornuta Chijiteté árbol may-jun sep-nov nov-dic drupa semilla rápida no alto Ulmus mexicana árbol oct-dic nov-dic drupa semilla lenta si bajo Vaccinium sp. Ajate es arbusto baya semilla lenta si bajo Verbesina perymenioides arbusto aquenio semilla rápida no alto Vernonia arborescens T zim árbol jun-jul nov-dic nov-dic aquenio semilla rápida no alto Vernonia canescens T zim arbusto jun-jul nov-dic nov-ene aquenio semilla rápida no alto Viburnum hartwegii arbusto drupa semilla media no medio Viburnum jucundum Isbón, Tzop árbol feb-mar sep-oct sep-dic drupa semilla bajo si alto Weinmannia pinnata Tzitzim árbol oct-dic nov-dic semilla media si bajo Xylosma flexuosum arbusto drupa semilla lenta si bajo Zanthoxylum melanostictum árbol mar-abr oct-dic oct-dic drupa semilla media si medio Zinowiewia rubra Arbol mar-abr oct-dic oct-dic drupa semilla lenta si bajo

35 Guía para la propagación de especies leñosas nativas de los Altos y montañas del Norte de Chiapas 35 APÉNDICE 2. Métodos pregerminativos recomendables y días a la germinación de las semillas de 110 especies arbustivas y arbóreas nativas de los de los bosques templados de Chiapas. Tratamientos pregerminativos Días a la germinación Siembra directa Escarificación química (HCl y H 2 O 2 ) Escarificación mecánica (raspaduras) Remojo en agua caliente Remojo en agua fría Nombre común Nombre científico Abies guatemalensis Romerillo x Acacia angustissima Timbre x x x Acacia pennatula Chish té x x x Acer negundo ssp. mexicana Arce mexicano x Alnus acuminata ssp. arguta Nok x Arbutus xalapensis Madrón x x Baccharis vaccinioides Mesté x Bocconia arborea x x Buddleia cordata Tzelepat, tepozán x Calyptranthes pallens Chi it x? Calliandra aff. houstoniana Chich ní x x x Calliandra grandifolia x x x Calliandra houstoniana Pish nitch té x x Carpinus caroliniana x x x x Citharexylum mocinnii x x Clethra macrophylla Svish-oben x Clethra oleoides x?

36 36 Neptalí Ramírez-Marcial, Angélica Camacho-Cruz, Mario González-Espinosa Clethra suaveolens x? Cleyera theaeoides Coshosh-té x x Cornus disciflora Sacbayanté, sají x x Cornus excelsa Isbón x x Crataegus pubescens manzanita x x x? Chiranthodendron pentadactylon Macpalxochitl x x Daphnopsis tuerckheimii x? Dendropanax arboreus Sakilté x x? Drimys granadensis var. mexicana x Ehretia thinifolia x Erythrina sp. Wakash x x x 150 Eupatorium nubigenum x Fraxinus uhdei Fresno x Fuchsia paniculata x? Garrya laurifolia x Glossostipula concinna x Hedyosmum mexicanum x? Ilex vomitoria x Inga oerstediana Chalum x Juniperus Gamboana x x Liquidambar styraciflua Liquidámbar x Litsea glaucescens Laurel, Tsitz uch x Magnolia sharpii Tojchuj x x x Meliosma dentata x x x? Meliosma dives x x x?