Escalamiento tecnológico en la producción masiva y sostenible de semilla de yuca y plátano

Transcripción

1 Escalamiento tecnológico en la producción masiva y sostenible de semilla de yuca y plátano Germán Ceballos, Pardo Juan Manuel, Elizabeth Álvarez g.ceballos@cgiar.org Asistente de Investigación Centro Internacional de Agricultura Tropical CIAT Varadero, Cuba 22 de Octubre de 2014

2 Temáticas Introducción. Material de siembra. Riesgos Fitosanitarios. Cámara térmica: Semilla sana.

3 Introducción Yuca y plátano son de importancia mundial por su valor económico y papel en la seguridad alimentaria. Fuente de empleo e ingresos para miles de personas en el mundo. En el 2013 se produjeron millones de toneladas de yuca, y 37.1 millones de toneladas de plátano en 2012 (FAOSTAT, 2014). Yuca y plátano se propagan por clonación vegetativa (estacas o esquejes - cormos o colinos) (Canchignia y Ramos, 2004).

4 Introducción Situación socioeconómica de pequeños y medianos productores obliga al intercambio de germoplasma. Reutilización de semilla asexual una práctica generalizada en cultivos de yuca y plátano. En la región de ALyC se carece de sistemas organizados de abastecimiento de semilla certificada. Propagación asexual es la principal forma de dispersión de enfermedades (Ceballos, 2002).

5 Material de siembra

6 Yuca Lenta producción del nuevo material de siembra (1 año). Falta de revisión de síntomas raíces, y alta densidad de siembra dificultan certificación de semilla. Alto riesgo de diseminación de enfermedades (Cuero de sapo).

7 Plátano Selección de colinos (< 1m de altura). Tamaño de semilla es variable, dificulta inspeción y certificación del material. Deshije de plantas Diseminación de fitopatógenos. Disponibilidad limitada de semilla. Baja efectividad de tratamientos de limpieza. Eliminación de Residuos Tratamientos de Inmersión

8 Riesgos Fitosanitarios

9 Plátano: Marchitez vascular - Moko Colinos asintomáticos. Pérdidas hasta del 100%. Material de siembra sano es la mejor estrategia de manejo preventivo. Yuca: Cuero de sapo Planta asintomática en la parte aérea. Pérdidas hasta del 100%. Seleccionar la semilla de plantas sanas.

10 Síntomas de Cuero de sapo Labios protuberantes Labios alargados Var. Susceptibles: Raíces sin almidón

11 Importancia Diseminación de CS por semilla asexual: No. estacas infectadas para nuevas plantaciones No. inicial de plantas enfermas X No. estacas disponibles seleccionadas por planta No. de ciclos del cultivo Y = [ X Pi X E ] Nc Ejemplo: Y=? X Pi = 1 X E = 10 N c = 5 años Y = [1x10] 5 Y = plantas infectadas al final del quinto año.

12 Ceballos, G.2013 CIAT, 2007 Mejía, J Mejía, J. 2010

13 Racimo Sano Racimo Enfermo Ceballos, G Gómez, E Amarillamiento prematuro. Desarrollo anormal. Necrosis de frutos. Pudrición de la pulpa. Pérdida de la planta y racimo

14 Cámara térmica Producción de semilla limpia

15 Yuca Cubierta policarbonato liso. Programador Lógico Controlable (PLC) y Software Alpha Programming Temperatura entre 60 y 65ºC. Sustrato: Arena Humedad Relativa: 98% Estimulación de brotes, Crecimiento de plantas y enraizamiento. Tratamiento térmico previene de fitopatógenos.

16 Crecimiento de Brotes 15 días Enraizamiento 15 días

17 Plátano Temperatura entre 50 y 60ºC. Sustrato: Cascarilla de arroz, aserrín de madera. Humedad Relativa: 90% Acelera brotación de yemas y crecimiento de plántulas.

18 Metodología 1. Cormos entre 1 a 2 kg, en huerto de plantas elite. 2. Limpieza de cormos, inmersión en insecticida + fungicida. 3. Técnica de reproducción acelerada de semilla TRAS (Aguilar et al., 2004). 4. Siembra en cascarilla de arroz o aserrín de madera (blanca).

19 Incremento en Producción Fuente: Proyecto CRS Salvador, Cámara térmica: hasta 90 brotes/m 2 por mes. Ambiente externo: 35 brotes/ m 2 por mes.

20 Técnica qpcr para detectar fitoplama del grupo 16SrIII-L Sensibilidad qpcr Vs PCR anidado Quantity (copies) Ct Ct SD 4.85E E E E E Corresponde a dilución veces más sensible que PCR anidado

21 PCR en Tiempo Real Detección de Ralstonia solanacearum Diseño de la sonda TaqMan Sequevar 4 (Fegan & Prior 2005) Región específica para cepas patogénicas en plátano (351 pb) Mus 20F Mus 20P (TaqMan ) Mus 20RP CGGGTGGCTGAGACGAATATCGTCGAATGCCTTGGAACGCGCATGATTATCGTGGTAAAT 60 CTCGGCAATCACGGAGTGCCCCAGTTCGGCGCGGATCAGTGCGTCAAGTTCGTTCATCCA 120 GCGGTGAAACACCGCATTGTTCTGATAAAGCTCCCGGCCCATCTGATAGAACTGACAGCC 180 TTGACCCGGAAACATAAAGACAACGGAGGATTTCTGTCCTTGAGAGAGATAGGGCATCTG 240 TTTCGTCCTGAATGTGGAATGCGCGGGGAGTCCGTATTCTAGTCACAACAAATAGAGGCT 300 GCGAATCGCCTCCCGGCTCCCGATTGAACCCATTCGGATTCTGGACAAGGC 351

22 Kit para diagnóstico en campo Amplificación isotérmica a 60 C (30 60 min) minutos. Uso de energía solar: Panel 1. Maceración de tejido. 2. Buffer de extracción. 3. Cebadores específicos. 4. Amplificación. 5. Cambio de coloración.

23 Sistemas simplificados de bajo costo Morales, Cauca, Colombia Guachené, Cauca, Colombia Granada, Meta, Colombia Quindio y Llanos Orientales, Colombia Salvador. Fotos: Cortesía R. Quintanilla, Proyeto CRS

24 Agradecimientos FONTAGRO FAO EMBRAPA Ministerio de Agricultura y Desarrollo Rural MADR Colombia Federación de productores de plátano FEDEPLÁTANO Productores de plátano

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