IAI215 - Botánica GUÍA PARA PRÁCTICAS DE LABORATORIO Ingeniería Agroindustrial y de Alimentos 1
Presentación La presente Guía para Prácticas de ha sido desarrollada para que los estudiantes de la asignatura de Botánica dispongan de la información necesaria para la realización de las prácticas correspondientes de acuerdo a los temas, objetivos y resultados de aprendizaje definidos. En este documento se incluye el proceso en el laboratorio de experimentación e investigación, con los respectivos recursos y resultados esperados, para que el estudiante pueda desarrollar su práctica-taller y la elaboración de sus respectivos informes o cualquier otra evidencia de aprendizaje, que serán evaluadas con las rúbricas que constan en los anexos. La Guía presenta una secuencia donde se especifica cada sesión de prácticas en laboratorio con su respectivo proceso didáctico y formativo. 2
ASIGNATURA: Botánica Fecha: May 2014 PRÁCTICA No: 1 SIGLA: IAI215 PARALELO: PERIODO: SESIONES: 1 TEMA: Célula Vegetal 1 2014-2 1.- OBJETIVO Objetivo General: Distinguir varios tipos de células vegetales y estimar el tamaño de las mismas. Objetivos Específicos: 1. Disponer correctamente el microscopio para las observaciones. 2. Identificar fácilmente las partes de un microscopio compuesto. 3. Observar estructuras celulares estudiadas en clase. 4. Manejar adecuadamente la técnica de preparar y observar muestras en gota fresca y utilizando tinciones simples. 5. Determinar el tamaño de la muestra en el microscopio. 2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS El estudiante será capaz de: 1. Preparar muestras para observación en microscopio en gosta fresca y utilizando tinciones a partir de muestras vegetales. 2. Manejar correctamente el microscopio compuesto y observar muestras de forma correcta en el equipo. 3.Estimar tamaños de células en el microscopio. 4. Diferenciar algunos tipos de células vegetales y hacer comparaciones entre las mismas. Resultados esperados: 3
1. Disponer correctamente del microscopio compuesto. 2. Observación de células vegetales con y sin tinción. 3. Hacer comparaciones entre los diferentes tipos de células vegetales observadas y determinar el por qué son diferentes morfológicamente. 2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS Microscopio compuesto Papel milimetrado Cubre y portaobjetos Bisturís Azas Solución salina al 0.1 % (Suero fisiológico) Gotero o Frasco Lavador Papel Toalla Portaobjetos Cubreobjetos Lugol Azul de Metileno 3.- ACTIVIDAD FORMATIVA Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberás dominar lo siguiente:) Métodos de tinción de células vegetales. Microscopía óptica y utilización del microscopio óptico compuesto. Estructura y partes de la célula vegetal. Tipos de células que forman los tejidos de las plantas. Descripción de la actividad: 1. OBSERVACIÓN EN MICROSCOPIO Y DETERMINACIÓN DE TAMAÑOS DE MUESTRAS 4
1. Medida microscópica: La unidad de longitud más frecuentemente usada en microscopio es la micra, cuyo símbolo es la letra griega mu (µ) y equivale a una milésima de milímetro. Coloque un pedazo de papel milimetrado sobre el portaobjeto de tal manera que al enfocar al microscopio pueda observar: Ponga el papel milimetrado sobre el portaobjetos en el centro. Ponga una gota de agua sobre el papel. Después de esperar unos segundos (hasta que el agua haya empapado el papel), coloque la laminilla sobre la preparación, si quedan algunas burbujas de aire se presiona ligeramente la laminilla con un lápiz hasta que desaparezcan. Enfocar para poder ver las líneas del papel milimetrado. 2. Mida entonces el diámetro del campo correspondiente al objetivo de menor aumento contando el número de cuadrículas observadas. Cuánto mide el diámetro del campo del objetivo de menor aumento? 3. Con el dato anterior es posible determinar el diámetro del campo correspondiente al objetivo de mayor aumento; basta dividir el diámetro encontrado por la razón entre las magnificaciones del objetivo de mayor aumento y de menor aumento. Por ejemplo, si el aumento del objetivo de mayor significación es de 45x y el otro es de 15x la razón mencionada será 45/15 = 3; ahora si el campo correspondiente al objetivo de menor aumento es de 1.500. el diámetro de campo para mayor aumento es 1.500/3 = 500 micras. Determinar el tamaño del campo de mayor aumento. CUIDADO!!!!! No acerque sin observar el objetivo del microscopio. Si lo hace y no tiene el espacio suficiente PUEDE ROMPER EL OBJETIVO del microscopio. 2. PREPARACIÓN DE MUESTRAS A) Las cebollas son bulbos formados por células vivas de las cuales pueden crecer raíces y hojas cuando las cebollas se plantan o se almacenan en un sitio húmedo. 1. Corte un bulbo de cebolla en cuatro partes. Se observa que cada parte se separa por sí sola en capas llamadas catáfilos. Tome uno de estos catafilos con la superficie cóncava hacia usted y rómpala, entonces se desprende con facilidad una capa muy delgada y transparente que es la epidermis. 5
2. Tome un fragmento de epidermis y colóquelo en un portaobjetos con una gota de agua de modo que la superficie que estaba en contacto con el catafilo quede hacia arriba. Coloque sobre él un cubreobjetos. Dibuje bajo el campo de observación de menor hasta el de mayor aumento. 3. Luego saque la preparación del microscopio y coloque una gota de lugol en el borde del cubre objeto para que la solución penetre por difusión. Extraiga el líquido sobrenadante con papel toalla. 4. Cubrir la muestra con un cubreobjetos. 5. Observar las estructuras con cada opción de aumento que permita el microscopio. Empiece primero con el de menor aumento. Usted mismo enfoque con los lentes del microscopio. CUIDADO!!!!! No acerque sin observar el objetivo del microscopio. Si lo hace y no tiene el espacio suficiente PUEDE ROMPER EL OBJETIVO del microscopio. 6. Hacer dibujos para cada observación y calcular el tamaño real de la muestra que está observando. 7. Vuelva a hacer el procedimiento antes descrito desde el paso 2, pero esta vez en vez de adicionar lugol, adicione una gota de azul de metileno. B) El puerro 1. Tomar una sección de epidermis de puerro (se puede extraer con el bisturí) 2. Extender la epidermis sobre un portaobjetos que tenga una gota de solución salina sobre su superficie. Procurar que la epidermis esté completamente extendida para que pueda ver las células. Coloque sobre él un cubreobjetos. Dibuje bajo el campo de observación de menor hasta el de mayor aumento. 3. Luego saque la preparación del microscopio y coloque una gota de azul de metileno en el borde del cubre objeto para que la solución penetre por difusión. Extraiga el líquido sobrenadante con papel toalla. 4. Cubrir la muestra con un cubreobjetos. 5. Observar las estructuras con cada opción de aumento que permita el microscopio. Empiece primero con el de menor aumento. Usted mismo enfoque con los lentes del microscopio. CUIDADO!!!!! No acerque sin observar el objetivo del microscopio. Si lo hace y no tiene el espacio suficiente PUEDE ROMPER EL OBJETIVO del microscopio. 6
6. Hacer dibujos para cada observación y calcular el tamaño real de la muestra que está observando. C) La Sábila 1. Tomar una sección de epidermis de sábila (se puede extraer con el bisturí) 2. Extender la epidermis sobre un portaobjetos que tenga una gota de solución salina sobre su superficie. Procurar que la epidermis esté completamente extendida para que pueda ver las células. Coloque sobre él un cubreobjetos. Dibuje bajo el campo de observación de menor hasta el de mayor aumento. 3. Luego saque la preparación del microscopio y coloque una gota de azul de metileno en el borde del cubre objeto para que la solución penetre por difusión. Extraiga el líquido sobrenadante con papel toalla. 4. Cubrir la muestra con un cubreobjetos. 5. Observar las estructuras con cada opción de aumento que permita el microscopio. Empiece primero con el de menor aumento. Usted mismo enfoque con los lentes del microscopio. CUIDADO!!!!! No acerque sin observar el objetivo del microscopio. Si lo hace y no tiene el espacio suficiente PUEDE ROMPER EL OBJETIVO del microscopio. 6. Hacer dibujos para cada observación y calcular el tamaño real de la muestra que está observando. D) Pulpa de tomate 1. Extraer un poco de pulpa de tomate con la ayuda de una pinza. sobre un portaobjetos que tenga una gota de solución salina sobre su superficie. 2. Coloque sobre él un cubreobjetos. Dibuje bajo el campo de observación de menor hasta el de mayor aumento. 3. Luego saque la preparación del microscopio y coloque una gota de azul de metileno en el borde del cubre objeto para que la solución penetre por difusión. Extraiga el líquido sobrenadante con papel toalla. 4. Cubrir la muestra con un cubreobjetos. 7
5. Observar las estructuras con cada opción de aumento que permita el microscopio. Empiece primero con el de menor aumento. Usted mismo enfoque con los lentes del microscopio. CUIDADO!!!!! No acerque sin observar el objetivo del microscopio. Si lo hace y no tiene el espacio suficiente PUEDE ROMPER EL OBJETIVO del microscopio. 6. Hacer dibujos para cada observación y calcular el tamaño real de la muestra que está observando. 6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ACHÁ D., FONTÚRBEL F., MONDACA D., ZAMBRANA I. 1999. Introducción a la Botánica. Bolivia. 154 p. FULLER J., ZANE B., PAYNE W., BALBACH M. 1974. Botánica. Interamericana. México D.F. 512 p. Iqbal H. (2008). Agricultural Botany. Delhi, India. 269 p. Peña L. (2011). Manual de Histología Vegetal. México. Mundi Prensa. Ross M., Pawlina W. (2007). Histología. Texto y Atlas a color con Biología Celular y Molecular. Buenos Aires, Argentina. Editorial Médica Panamericana. Vargas G. (2011). Botánica General. Desde los musgos hasta los árboles. Costa Rica. Promade. 7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS Detalle de las guías para la ejecución de las tareas: Elaborar un informe que esté compuesto por las siguientes secciones: Introducción (no más de 3 carillas), Objetivos, Materiales, Métodos, Resultados, Discusión y Conclusiones Sistema de Evaluación: 8
Además se incluyen formatos, plantillas, modelos, fotografías u otros, necesarios para la realización de la tarea. 9
ASIGNATURA: Botánica SIGLA: IAI215 PARALELO: PERIODO: Fecha: May 2014 PRÁCTICA No: 2 SESIONES: 1 TEMA: Observación y diferenciación de tejidos Vasculares y de Protección 1 2014-2 1.- OBJETIVO Objetivo General: Diferenciar tejidos vasculares y de protección mediante tinción y microscopía. Objetivos Específicos: 1. Observar secciones de plantas correspondientes a tallos con diferentes tejidos de protección y tejidos vasculares. 2. Aprender a diferenciar los tejidos antes mencionados y compararlos con otros tejidos presentes en los tallos de las plantas estudiadas. 3. Observar e identificar las células que tienen sustancias como la suberina o la cutina usando dos tipos de tinción. 2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS El estudiante será capaz de: 1. Preparar muestras para observación en microscopio con tinción para observación de tejidos vasculares y de protección. 2. Diferenciar el tejido de protección y vascular del resto de tejidos presentes en un tallo. 3. Comparar la morfología de tejidos vasculares y de protección con respecto a otros tipos de tejidos. Resultados esperados: 1. Muestras de tejidos vasculares y de protección con tinción. 2. Diferenciación de Tejidos vasculares y de protección. 10
2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS Pinzas Bisturís Azul de metileno Goteros Portaobjetos Cubreobjetos Suero fisiológico Hipoclorito de sodio Microscopios compuestos Alcohol al 70% Sudán III 3.- ACTIVIDAD FORMATIVA Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberás dominar lo siguiente:) Métodos de tinción de células vegetales. Microscopía óptica y utilización del microscopio óptico compuesto. Estructura de tejidos de protección y vasculares. Estructura, localización y morfología de la epidermis. Estructura, localización y morfología del Xilema y el Floema. Descripción de la actividad: A) Detección de Suberina: 1. Hacer cortes transversales muy finos del tallo de geranio y rosa 2. Poner los cortes en una caja petri 3. Sumergir los cortes en alcohol al 70% durante 3 minutos. 4. Pasar los cortes a una caja petri con Sudán III y dejarlos durante 3 a 4 minutos en la solución. 5. Proceder a lavar los cortes en agua destilada varias veces. 6. Colocar los cortes en un portaobjetos. 11
7. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio. 8. Mirar las estructuras que se tiñen de naranja: son los tejidos que tienen suberina. Dibujar lo que observa con los diferentes objetivos del microscopio. 9. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejido que tienen color naranja. Compárelos con los demás tejidos del tallo. 10. Intentar identificar los tejidos vasculares floema y xilema B) Detección de Cutina: 1. Hacer cortes transversales muy finos del tallo de hiedra. 2. Poner los cortes en una caja petri 3. Sumergir los cortes en Sudán III durante 3 a 4 minutos. 4. Proceder a lavar los cortes en agua destilada varias veces. 5. Colocar los cortes en un portaobjetos. 6. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio. 7. Mirar las estructuras que se tiñen de naranja: son los tejidos que tienen suberina. Dibujar lo que observa con los diferentes objetivos del microscopio. 8. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejido que tienen color naranja. Compárelos con los demás tejidos del tallo. 9. Intentar identificar los tejidos vasculares floema y xilema 6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS Peña L. (2011). Manual de Histología Vegetal. México. Mundi Prensa. Ross M., Pawlina W. (2007). Histología. Texto y Atlas a color con Biología Celular y Molecular. Buenos Aires, Argentina. Editorial Médica Panamericana. Vargas G. (2011). Botánica General. Desde los musgos hasta los árboles. Costa Rica. Promade. Iqbal H. (2008). Agricultural Botany. Delhi, India. 269 p. 7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS Detalle de las guías para la ejecución de las tareas: Elaborar un informe que esté compuesto por las siguientes secciones: Introducción (no más de 3 carillas), Objetivos, Materiales, Métodos, Resultados, Discusión y Conclusiones 12
Sistema de Evaluación: Además se incluyen formatos, plantillas, modelos, fotografías u otros, necesarios para la realización de la tarea. 13
ASIGNATURA: Botánica SIGLA: IAI215 PARALELO: PERIODO: Fecha: May 2014 PRÁCTICA No: 3 SESIONES: 1 TEMA: Observación y Diferenciación de tejidos fundamentales y de sostén. 1 2014-2 1.- OBJETIVO Objetivo General: Identificar tejidos fundamentales y de sostén en distintos órganos vegetales para determinar la estructura de las células que los conforman. Objetivos Específicos: 1. Observar secciones de plantas correspondientes a hojas, pétalos y tubérculos de diferentes tipos de plantas vasculares. 2. Aprender a diferenciar los tejidos diferentes tipos de tejidos parenquimatosos y compararlos con otros tejidos presentes en los órganos de las plantas estudiadas. 3. Observar e identificar las células de sostén y de parénquima por color y forma; asociando la estructura con la función. 2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS El estudiante será capaz de: 1. Preparar muestras para observación en microscopio de tejidos fundamentales y de sostén. 2. Manejar correctamente el microscopio compuesto y observar muestras de forma correcta en el equipo. 3.Diferenciar el tejido de sostén y fundamental en las muestras observadas. 4. Analizar la relación entre la morfología de los tejidos fundamentales y de sostén con la función que cumplen en el vegetal. 14
Resultados esperados: 1. Muestras de tejidos fundamentales y de sostén. 2. Diferenciación de Tejidos de sostén y fundamentales. 2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS Pinzas Bisturís Azul de metileno Safranina Lugol Goteros Portaobjetos Cubreobjetos Suero fisiológico Hipoclorito de sodio Microscopios compuestos 3.- ACTIVIDAD FORMATIVA Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberás dominar lo siguiente:) Métodos de tinción de células vegetales. Microscopía óptica y utilización del microscopio óptico compuesto. Estructura de tejidos de de sostén y fundamentales. Estructura, localización y morfología de los diferentes tipos de parénquimas. Estructura, localización y morfología de tejidos de sostén. Descripción de la actividad: A) Observación de parénquima de almacenamiento en tubérculos de papa. 1. Hacer cortes transversales muy finos del tubérculo de papa 2. Poner los cortes en una caja petri 3. Sumergir los cortes en lugol durante 5 minutos. 4. Proceder a lavar los cortes en agua destilada varias veces. 15
5. Colocar los cortes en un portaobjetos. 6. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio. 7. Mirar las estructuras que se tiñen de morado. Dibujar lo que observa con los diferentes objetivos del microscopio. 8. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejidos que se observan en la placa. B) Observación de tejidos de sostén en tallos de rosa 1. Hacer cortes transversales muy finos del tallo. 2. Poner los cortes en una caja petri 3. Sumergir los cortes en safranina durante 5 minutos. 4. Proceder a lavar los cortes en agua destilada varias veces. 5. Colocar los cortes en un portaobjetos. 6. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio. 7. Mirar las estructuras que se tiñen de rojo-rosado. Dibujar lo que observa con los diferentes objetivos del microscopio. 8. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejidos que se observan en la placa. C) Observación de células pétreas en pera 1. Tomar con la punta de un bisturí una pequeña cantidad de pulpa de pera. 2. Poner las porciones de células en un portaobjetos. 3. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio. 4. Identifique y dibuje las células pétreas (esclereidas) de la pulpa de la pera. D) Observación de tejidos de sostén y parénquimas en hojas y tallos de geranios: 1. Hacer cortes transversales muy finos del tallo. 2. Poner los cortes en un portaobjetos y depositar una gota de solución salina 3. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio. 4. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejidos de sostén. Compárelos con los demás tejidos del tallo. E) Observación de tejidos de parénquima en hojas de muestra 1. Hacer cortes transversales muy finos de las hojas 2. Identifique también los tejidos del parénquima en las hojas de las muestras entregadas. 3. Poner los cortes en un portaobjetos y depositar una gota de solución salina 4. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio. 5. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejidos de parénquima. Compárelos con los demás tejidos de la hoja. 16
F) Observación de tejidos de parénquima en pétalos de muestra 1. Hacer cortes transversales muy finos de los pétalos 2. Identifique también los tejidos del parénquima en los pétalos de las muestras entregadas. 3. Poner los cortes en un portaobjetos y depositar una gota de solución salina 4. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio. 5. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejidos de parénquima. Compárelos con los demás tejidos de la hoja. 6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS Iqbal H. (2008). Agricultural Botany. Delhi, India. 269 p. Peña L. (2011). Manual de Histología Vegetal. México. Mundi Prensa. Ross M., Pawlina W. (2007). Histología. Texto y Atlas a color con Biología Celular y Molecular. Buenos Aires, Argentina. Editorial Médica Panamericana. Otegui M., Totaro M. Atlas de Histología Vegetal. Facultad de Ciencias Exactas Químicas y Naturales. Universidad Nacional de Misiones. Posadas, Argentina. 13 p. Vargas G. (2011). Botánica General. Desde los musgos hasta los árboles. Costa Rica. Promade. 7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS Detalle de las guías para la ejecución de las tareas: Elaborar un informe que esté compuesto por las siguientes secciones: Introducción (no más de 3 carillas), Objetivos, Materiales, Métodos, Resultados, Discusión y Conclusiones Sistema de Evaluación: 17
Además se incluyen formatos, plantillas, modelos, fotografías u otros, necesarios para la realización de la tarea. 18
ASIGNATURA: Botánica SIGLA: IAI215 PARALELO: PERIODO: Fecha: May 2014 PRÁCTICA No: 4 SESIONES: 1 TEMA: Observación y clasificación de tipos de hojas. 1 2014-2 1.- OBJETIVO Objetivo General: Clasificar tipos de hojas de diversas plantas para determinar la estructura externa e interna de las hojas.. Objetivos Específicos: 1. Observar secciones de hojas para determinar los diferentes tipos de tejidos presentes en las hojas de varios tipos de plantas. 2. Clasificar por orden, familia género y especie las plantas que sirvieron de muestra para elaboración del laboratorio. 3. Aprender a observar con detalle las estructuras externas de diferentes tipos de hojas. 4. Aprender la clasificación y descripción botánica de hojas de varias plantas de regiones templadas y tropicales del Ecuador. 2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS El estudiante será capaz de: 1. Clasificar morfológicamente hojas de diferentes procedencias (materiales vegetales distintos). 2. Diferenciar hojas de distintos tipos de plantas de zonas tropicales y templadas. 3. Diferenciar las estructuras internas y externas de las hojas. Resultados esperados: 19
1. Clasificación de hojas 2. Diferenciación de tipos de hojas y asociar con adaptación a distintos climas. 3. Observar de manera óptima las estructuras internas y externas de las hojas. 2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS Pinzas Bisturís Azul de metileno Goteros Portaobjetos Cubreobjetos Suero fisiológico Hipoclorito de sodio Microscopios compuestos Estereoscopios Hojas prensadas de distintas variedades de plantas Hojas frescas de diferentes tipos de plantas 3.- ACTIVIDAD FORMATIVA Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberás dominar lo siguiente:) Estructura interna y externa de las hojas. Microscopía óptica y utilización del microscopio óptico compuesto. Conocer cuadros de clasificación de las hojas. Descripción de la actividad: 20
1. Observación de los tejidos internos de las hojas A) Observación de secciones de hojas: 1. Hacer cortes transversales muy finos del limbo de las muestras de hojas entregadas en clase 2. Colocar los cortes en un portaobjetos. 3. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio. 4. Dibujar lo que observa con los diferentes objetivos del microscopio. 5. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejidos que se observan en la placa. Tratar de identificar colénquima, parénquima, epidermis, tejidos vasculares (floema y xilema). B) Observación de tejidos de los pecíolos de las hojas 1. Hacer cortes transversales muy finos del pecíolo. 2. Colocar los cortes en un portaobjetos. 3. Tapar la muestra con un cubreobjetos y proceder a observar en el microscopio. 4. Dibujar lo que observa con los diferentes objetivos del microscopio. 5. Identifique y nombre cada uno de los tipos de tejidos que se observan en la placa. Mencionar las diferencias más significativas con respecto a los tallos 2. Observación externa, clasificación y descripción botánica de hojas de plantas Cuadro1. Clasificación botánica de hojas (Romero, 2008 y Achá et al., 1999) Variables de descripción de la hoja 1. Por la consistencia Clasificación herbáceos, escamosos, coriáceos, rígidos, carnosos, papiráceos 21
de las hojas 2. Por el crecimiento de la prefoliación 3. Por la nervadura 22
4. Por la forma a) Por la forma de su base 23
b) Por la forma de su ápice 24
5. Por los márgenes de las hojas 6. Cantidad de lobulación 7. División foliar Número de lóbulos que forma el limbo 25
8. Por la filotaxia de las hojas (disposición en el tallo). 9. Algunas modificaciones de las hojas Cotiledones Brácteas Glumas Catafilos Espinas Zarcillos Filodios Ascidias y utrículo 6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS Achá D., Fonturbel F., Mondaca D., Zambana I. 1999. Introducción a la Botánica. Herbario Nacional de Bolivia. La Paz, Bolivia. Iqbal H. (2008). Agricultural Botany. Delhi, India. 269 p. 26
Peña L. (2011). Manual de Histología Vegetal. México. Mundi Prensa. Romero C. 2008. Curso de Botánica General. Escuela Superior de Agricultura. Universidad Autónoma de Sinaloa. Sinaloa, México.Ross M., Pawlina W. (2007). Histología. Texto y Atlas a color con Biología Celular y Molecular. Buenos Aires, Argentina. Editorial Médica Panamericana. Vargas G. (2011). Botánica General. Desde los musgos hasta los árboles. Costa Rica. Promade. 7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS Detalle de las guías para la ejecución de las tareas: Elaborar un informe que esté compuesto por las siguientes secciones: Introducción (no más de 3 carillas), Objetivos, Materiales, Métodos, Resultados, Discusión y Conclusiones Sistema de Evaluación: 27
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ASIGNA TURA: BOTÁNI CA SIGLA: IAI215 PARALELO: 1-3 PERIODO: 2014-2 Fecha: 3 de junio 2014 PRÁCTICA No: 6 SESIONES: 2 TEMA: Organografía de la flor 1.- OBJETIVO Objetivo General Reconocer prácticamente la organografía de flores. Objetivos Específicos Aprender sobre los distintos órganos de las flores y observarlos detalladamente. Reconocer distintos tipos de flores usadas como nuestras durante la práctica y clasificarlos por orden, familia, género y especie. 2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS Adquirirás las siguientes habilidades: 1. Aprender sobre los distintos órganos de las flores. 2. Catalogar flores de acuerdo a su morfología. 2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS Cada grupo contará con microscopio compuesto/estereoscopios, escalpelo, pinza, suero fisiológico, hipoclorito de sodio, flores de distinta conformación visual. También los integrantes de los grupos serán responsables de traer consigo al día de práctica cámara fotográfica y por lo menos 5 flores que visualmente sean distintas, y de cada tipo traerá 2 flores (para diferentes tipos de cortes). Entre las flores aconsejadas, algunas son descritas a continuación: mora, arveja, flores del género Prunus, narciso, manzano, pera, ortiga (Urtica) y magnolia. 29
3.- ACTIVIDAD FORMATIVA Prerrequisitos Organografía del tallo. Organografía de la semilla. Organografía de la flor. Descripción de la actividad: Cada grupo irá removiendo las estructuras más externas de las flores e irá analizando las flores para su posterior reporte (composición de cada verticilio). Para ello en anexo se adjunta una tabla de guía para el estudiante. Durante la práctica se verá la morfología de las distintas flores y se irá nombrando las estructuras que las componen. Se clasificará las flores de acuerdo a la posición de los ovarios, simetría por disposición de verticilios; sexualidad. En este primer grupo de flores (por tipo), se hará un corte longitudinal en el ovario, del cual se espera el dibujo respectivo. Con la segunda flor de cada tipo traído por el grupo, se hará cortes transversales de los ovarios para su estudio: colocar una gota de suelo fisiológico en un portaobjetos, sobre el cual se pondrá un corte fino de la muestra. Se procederá a tapar con un cubreobjetos y se procederá a buscar granos de polen en germinación dentro de la cavidad ovárica de la flor. De igual manera dibujar el resultado e incluirlo en el informe respectivo. 6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS Achá D., Fonturbel F., Mondaca D., Zambana I. 1999. Introducción a la Botánica. Herbario Nacional de Bolivia. La Paz, Bolivia. Romero C. 2008. Curso de Botánica General. Escuela Superior de Agricultura. Universidad Autónoma de Sinaloa. Sinaloa, México. Santamaría, M.P., Casekkes, J.R. y García Breijo, F.J. (2004). Prácticas de biología y botánica. Ed Universidad Politécnica de Valencia. España. P 110-120. UMSNH, 2010. Práctica 2. Flor: Cáliz, corola, androceo y gineceo. Manual de Prácticas de 30
Botánica III. Facultad de Biología. UMSNH. México. 7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS A continuación se detalla la rúbrica de evaluación del informe respectivo. PRÁCTICA Nr 5 PARALELO 1/3 31
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ASIGNATUR A: Botánica SIGLA: IAI215 PARALELO: PERIODO: Marzo-Junio 2014 Fecha: PRÁCTICA No: 7 SESIONES: 1 TEMA: Reconocer las Estructura morfológicas de los frutos de cultivos de importancia agroindustrial 1.- OBJETIVO General Conocer e identificar la organografía de las plantas Específicos Identificar las diferentes estructuras de los frutos de varias especies de plantas de importancia agroindustrial 2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS Adquirirás las siguientes habilidades: 1. Conocer el procedimiento para identificar las estructuras morfológicas de los frutos 2. Identificar las diferentes estructuras del fruto y su función dentro del crecimiento y desarrollo 2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS Materiales: Frutos de diferentes especies, papel toalla, bisturí, pinzas Equipos. Estereoscopio 35
3.- ACTIVIDAD FORMATIVA Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberá conocer lo siguiente:) La modalidad utilizada fue teórica en el aula (se dio a conocer la temática correspondiente a su estructura morfológica) Descripción de la actividad: Descripción física de las estructuras externas e internas de los frutos de varias especies 6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS Prost, J. y Michel, J. (1970) La Botánica y sus Aplicaciones Agrícolas. Editorial Mundo Prensa. Madrid, España. Doria J. (2010). Generalidades sobre las semillas: Su producción, conservación y almacenamiento. Revisión Bibliográfica. Cultivos Tropicales. Vol 31. No.1. p.74-85. FAO. (2011). Recursos Fitogenéticos para la Alimentación y la Agricultura en el Mundo. Resumen. Segundo Informe. 16 p. 7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS Informe técnico de la práctica Formato básico: PRACTICA: Trabajo de campo CATEGORIA 4 Excelente 3 Bueno 2 Regular NOTA Trabajo en grupo Cumplimiento de tareas asignadas Presentación del informe Además se incluyen formatos, plantillas, modelos, u otros, necesarios para la realización de la tarea. 36
ASIGNATURA: Botánica SIGLA: IAI215 PARALELO: PERIODO: Fecha: May 2014 PRÁCTICA No: 8 SESIONES: 3 TEMA: Herbarios: Métodos de conservación de muestras secas de plantas, estudio y conservación de Recursos Fitogenéticos. 1 2014-2 1.- OBJETIVO Objetivo General: Establecer la importancia de la conservación y estudio de los recursos fitogenéticos. Objetivos Específicos: 1. Observar los métodos de conservación de muestras de plantas secas. 2. Identificar la importancia de la clasificación sistemática de las plantas 3. Comprender las razones para la conservación de los recursos fitogenéticos. 4. Analizar la biodiversidad vegetal existente en el Ecuador. 2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS El estudiante será capaz de: 1. Comprender los mecanismos de conservación de muestras secas de vegetales. 2. Identificar la importancia de la conservación de los recursos fitogenéticos. 3. Estimar la gran biodiversidad de recursos fitogenéticos que dispone el Ecuador. Resultados esperados: 37
1. Observación de métodos de conservación de vegetales secos. 2. identificar la importancia de toma de muestras de una manera adecuada 3. Observar muestras representativas de la biodiversidad de flora existente en el Ecuador. 2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS Visita a un museo de plantas. Cámaras fotográficas Cuaderno de campo 3.- ACTIVIDAD FORMATIVA Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberás dominar lo siguiente): Conocimiento sobre importancia de los recursos fitogenéticos. Criterios más importante de clasificación sistemática de vegetales. Definición de herbario Métodos utilizados en un herbario. Descripción de la actividad: Observación de procedimientos aplicados para la conservación de muestras secas de vegetales. Visita a la colección de plantas del Ecuador. 6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS ACHÁ D., FONTÚRBEL F., MONDACA D., ZAMBRANA I. 1999. Introducción a la Botánica. Bolivia. 154 p. FULLER J., ZANE B., PAYNE W., BALBACH M. 1974. Botánica. Interamericana. México D.F. 512 p. Iqbal H. (2008). Agricultural Botany. Delhi, India. 269 p. Vargas G. (2011). Botánica General. Desde los musgos hasta los árboles. Costa Rica. Promade. 38
7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS Detalle de las guías para la ejecución de las tareas: Elaborar un informe que esté compuesto por las siguientes secciones: Introducción (no más de 3 carillas), Objetivos, Materiales, Métodos, Resultados, Discusión y Conclusiones Sistema de Evaluación: 39
ASIG NATU RA: BOTÁ NICA SIGLA: IAI215 PARALELO: 1-3 PERIODO: 2014-2 Fecha: 18 de abril 2014 PRÁCTIC A No: 9 SESIONES: 2 TEMA: Visita al Jardín Botánico Quito 1.- OBJETIVO General: Valorar los diferentes tipos de plantas dado que tienen gran función en su hábitat y por lo tanto es sumamente importante su conservación y protección. Específicos: Distinguir algunas plantas que se encuentran en nuestro país. Generalizar la importancia ecológica de distintas plantas presentes en el Jardín Botánico de Quito. 2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS 1. Identificar las plantas más llamativas del lugar. 2. Asociar el rol de la Botánica en la clasificación y caracterización de material vegetal para provecho del ser humano. 2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS 40
Libreta/cuaderno de anotaciones para escribir información mencionada o vista durante la visita con el fin de crear un informe de la visita, el cual incluirá fotografías a tomarse durante la visita al Jardín Botánico de Quito. 3.- ACTIVIDAD FORMATIVA Prerrequisitos Evolución de las plantas. Conservación de recursos genéticos vegetales. Descripción de la actividad: Durante la visita guiada al Jardín Botánico de Quito, los estudiantes se organizarán en grupos pequeños para una mejor comprensión de la información proporcionada por los guías. Durante el recorrido se espera que el estudiante tome nota de lo comentado por el guía, datos/hechos proporcionados, toma de fotos para la posterior elaboración del reporte respectivo, el cual debe está determinado en los lineamientos de la materia. 6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS http://www.fao.org/focus/e/96/06/04-e.htm (recuperado el 3 de marzo 2014) 7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS Rúbrica de evaluación de la visita con su posterior entrega del informe por medio del aula virtual. 41
PRACTICA: 3 CATEGORIA 4 Excelente Comportamiento en la visita Interacción con los guías 3 Bueno 2 Regular PARALELO: 1-3 1 por mejorar NOTA Estructura del informe Calidad de información Se espera que los informes presenten referencias bibliográficas que respalden lo expuesto en el documento. Los informes serán controlados con Turnitin con el fin de garantizar la honestidad académica. 42
ASIGN ATUR A: BOTÁ NICA SIGLA: IAI215 PARALELO : 3 PERIODO: Marzo-Junio 2014 Fecha: PRÁCT ICA No: SESIONES: 3 TEMA: Diversidad y clasificación especies cultivadas de climas templados 10 1.- OBJETIVO General Conocer la diversidad de especies cultivadas en varias regiones del Ecuador Específicos Identificar y clasificar las especies cultivadas de climas templados del Ecuador 2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS Adquirirás las siguientes habilidades: 1. Conocer e identificar las diferentes estructuras y características de las plantas morfológicas de las plantas que crecen en climas templados del Ecuador 2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS Materiales: Cámara fotográfica, bolsas de papel y cuaderno de apuntes Equipos. Tijeras 43
3.- ACTIVIDAD FORMATIVA Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberá conocer lo siguiente:) La modalidad utilizada fue teórica en el aula (se dio a conocer la temática correspondiente a su diversidad de plantas en relación a las estructuras morfológicas) Descripción de la actividad: Visitas al Jardín Botánico de Quito y al INIAP de Tumbaco para observar, describir e identificar la biodiversidad de plantas de clima templado 6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS Prost, J. y Michel, J. (1970) La Botánica y sus Aplicaciones Agrícolas. Editorial Mundo Prensa. Madrid, España. Cerón, C, (2003). Manual de Botánica Sistemática, Etnobotánica y métodos de estudios en El Ecuador, Editorial Universitaria, Quito Ecuador. De la Torre L., Alarcón D., Kvist L., Lecaro J. (2008). Usos medicinales de las plantas. En: Enciclopedia de las Plantas Útiles del Ecuador. Quito, Ecuador. L. de la Torre, H. Navarrete, P. Muriel M., M. J. Macía& H. Balslev (Eds.). Herbario QCA & Herbario AAU. Quito & Aarhus. 105 114. FAO. (2011). Recursos Fitogenéticos para la Alimentación y la Agricultura en el Mundo. Resumen. Segundo Informe. 16 p. 7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS Informe técnico de la práctica Formato básico: PRACTICA: Trabajo de campo CATEGORIA 3 Excelente 2 Bueno 1 Regular NOTA Trabajo en grupo Cumplimiento de tareas asignadas Presentación del informe 44
ASIGNATURA: Cultivos Perecibles SIGLA: IAI215 PARALELO : 3 PERIODO: Marzo- Junio 2014 Fecha: PRÁCTICA No: 11 SESIONES: 3 TEMA: Diversidad y clasificación especies cultivadas de climas tropicales 1.- OBJETIVO General Conocer la diversidad de especies cultivadas en varias regiones del Ecuador Específicos Identificar y clasificar las especies cultivadas de climas tropicales del Ecuador 2.- RESULTADOS DE APRENDIZAJE ESPERADOS Adquirirás las siguientes habilidades: 1. Conocer e identificar las diferentes estructuras y características de las plantas morfológicas de las plantas que crecen en climas tropicales del Ecuador 2.- MATERIALES/RECURSOS Y EQUIPOS Materiales: Cámara fotográfica, bolsas de papel y cuaderno de apuntes Equipos. Tijeras 3.- ACTIVIDAD FORMATIVA 45
Prerrequisitos (Antes de comenzar este ejercicio, deberá conocer lo siguiente:) La modalidad utilizada fue teórica en el aula (se dio a conocer la temática correspondiente a su diversidad de plantas en relación a las estructuras morfológicas) Descripción de la actividad: Visitas al Jardín Botánico de Quito y a bosques de trópico para observar, describir e identificar biodiversidad de plantas de clima templado la 6.- REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS Prost, J. y Michel, J. (1970) La Botánica y sus Aplicaciones Agrícolas. Editorial Mundo Prensa. Madrid, España. Cerón, C, (2003). Manual de Botánica Sistemática, Etnobotánica y métodos de estudios en El Ecuador, Editorial Universitaria, Quito Ecuador. De la Torre L., Alarcón D., Kvist L., Lecaro J. (2008). Usos medicinales de las plantas. En: Enciclopedia de las Plantas Útiles del Ecuador. Quito, Ecuador. L. de la Torre, H. Navarrete, P. Muriel M., M. J. Macía& H. Balslev (Eds.). Herbario QCA & Herbario AAU. Quito & Aarhus. 105 114. FAO. (2011). Recursos Fitogenéticos para la Alimentación y la Agricultura en el Mundo. Resumen. Segundo Informe. 16 p. 7.- MECANISMO DE EVALUACIÓN Y ANEXOS Informe técnico de la práctica Formato básico: PRACTICA: Trabajo de campo CATEGORIA 3 Excelente 2 Bueno 1 Regular NOTA Trabajo en grupo Cumplimiento de tareas asignadas Presentación del informe 46