FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD CARRERA DE TECNOLOGÍA MÉDICA

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1 PROGRAMA FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD CARRERA DE TECNOLOGÍA MÉDICA ASIGNATURA: BIOQUIMICA CLINICA I PROFESOR ENCARGADO : PAMELA CORNEJO Z. DOCENTES : PAMELA CORNEJO Z. (Tecnólogo Médico, PhD) KATIA FERNÁNDEZ M. (Tecnólogo Médico, Lic) MARIA EUGENIA CABREJOS M. (Bioquímico, PhD) MARIA LILA VERA C. (Tecnólogo Médico,Mg) IDENTIFICACION DE LA ASIGNATURA Código : TEM y TEM Curso al que se imparte Semestre en que se imparte : 1º Año académico : 2007 : TERCER AÑO Prerrequisitos : TEM1018 FISIOPATOLOGIA Y TEM1052 BIOQUÌMICA Calidad : TEÓRICO Y PRÁCTICO Carácter : OBLIGATORIO Régimen : SEMESTRAL Número de sesiones semanales : 6 Teóricas: 33 % Prácticas: 66 % Número de horas académicas semanales : 12 DESCRIPCION DE LA ASIGNATURA Bioquímica Clínica I es una asignatura ubicada en el V semestre de la Malla Curricular de la Especialidad de Laboratorio Clínico, Hematología, y Banco de Sangre, de la Carrera de Tecnología Médica de la Universidad Diego Portales. Permitirá al alumno aplicar e integrar los conocimientos teóricos, habilidades y destrezas desarrolladas en las asignaturas básicas y de formación general con el fin de resolver problemas bioquímicos que ayuden a una mejor comprensión de los procesos metabólicos, los mecanismos de regulación, así como la fundamentación básica de las técnicas de laboratorio. El alumno podrá diseñar, realizar y evaluar protocolos experimentales. Las metodologías aplicadas cubrirán conocimientos, desarrollo de habilidades y actitudes que faciliten abordar los problemas bioquímicos con un enfoque crítico y a destacar la importancia de la rigurosidad en el trabajo de laboratorio. De esta forma se permitirá posteriormente afrontar con idoneidad y eficiencia las exigencias propias de la asignatura de Bioquímica Clínica II, las prácticas profesionales y finalmente, de su desempeño profesional, lo que se traduce en un valioso apoyo al diagnóstico clínico.

2 OBJETIVOS GENERALES Al finalizar el curso los alumnos serán capaces de: Analizar los mecanismos de regulación del metabolismo celular, a nivel enzimático y hormonal Conocer el fundamento y manejo de los principales equipos, instrumentos y materiales utilizados en un laboratorio de bioquímica Diseñar, desarrollar y evaluar protocolos experimentales para el estudio de Proteínas y enzimas Adquirir conocimientos, habilidades, destrezas y actitudes para estandarizar las principales técnicas utilizadas en un laboratorio de bioquímica Adquirir habilidades y destrezas en control de calidad de equipos de laboratorio OBJETIVOS ESPECIFÍCOS a) Cognitivos Al finalizar el curso el estudiante será capaz de: Preparar soluciones y buffer de diferente concentración Diseñar, desarrollar y evaluar curvas de calibración Estandarizar y fundamentar la aplicación de técnicas en el laboratorio Diseñar, desarrollar y evaluar protocolos experimentales Aplicar estrategias y metodologías experimentales para el estudio de proteínas y enzimas Reconocer los diferentes tipos de electroforesis, su fundamento químico y sus aplicaciones Diseñar, desarrollar y evaluar protocolos para separar proteínas del suero, utilizando electroforesis en geles de poliacrilamida Reconocer los diferentes tipos de cromatografía, su fundamento químico y sus aplicaciones Conocer los fundamentos químicos y aplicaciones del isoelectroenfoque Reconocer y analizar los métodos de extracción y purificación de enzimas Diseñar y realizar protocolos para determinar actividad enzimática y específica Diseñar, realizar y evaluar protocolos experimentales para el estudio del efecto de factores que afectan la velocidad de las reacciones enzimáticas Calcular velocidad inicial, velocidad máxima y Km, usando las ecuaciones y los gráficos de Michaelis Menten, Lineaweaver y Burk, y Eadie Hofstee, a partir de datos experimentales obtenidos por los alumnos Analizar los procesos químicos que conducen a la formación de especies reactivas del oxígeno y del nitrógeno y su relación con estrés oxidativo Analizar los mecanismos de regulación del metabolismo de carbohidratos, lípidos y proteínas, mediados por enzimas Analizar los mecanismos de regulación del metabolismo de carbohidratos, lípidos y proteínas mediados por hormonas Reconocer las características y los métodos de obtención de muestras biológicas

3 b) Objetivos de habilidades y destrezas Manipular muestras biológicas, aplicando la normativa de bioseguridad Adquirir destrezas y habilidades para la planificación, desarrollo y evaluación de protocolos experimentales Preparar diferentes tipos de soluciones usando diferentes expresiones de concentración y almacenarlas de acuerdo a lo establecido en los laboratorio Manejar prolijamente y con destreza los equipos, instrumentos y materiales de laboratorio c) Objetivos afectivos Demostrar honestidad y rigurosidad en las actividades propias del laboratorio Cumplir con los requisitos de la asignatura, respetando el horario asignado, la hora de entrada y uso del delantal Ser respetuoso con sus docentes y compañeros de estudio Desarrollar actitudes de orden, limpieza y organización en el trabajo de laboratorio Ser responsable en la aplicación y respeto de las medidas de seguridad en el trabajo de laboratorio. Reconocer la importancia de la responsabilidad en la entrega oportuna de los resultados de los experimentos de laboratorio y en el cumplimiento de la presentación de tareas asignadas CONTENIDOS TEÓRICOS METROLOGIA Y QUIMIOMETRIA -: Propiedades y magnitudes. Observaciones mediciones y resultados. Procesos de Medida. Unidades de Medida.Prefijos de las Unidades SI. Reglas ISO de escritura de los números. Principios de metodología -Variables metrològicas que afectan los resultados de un análisis bioquìmico. Magnitudes influyentes: interferencias y contaminación. TÉCNICAS DE MEDIDA -Espectrofotometría de absorción molecular UV-VIS: Espectro de radiaciones electromagnéticas,.espectros de absorción y emisión. Aplicación de las leyes de la fotometría. Función de los componentes de un espectrofotometro. -Aspectos cuantitativos de la adsorciòn molecular: Ley de Lambert-Beer. Limitaciones a la aplicabilidad de la Ley de Lambert Beer. -Calibradores en Espectrofotometría: calibradores de la longitud de onda, calibradores del recorrido de la radiación, calibradores de la absorbancia, calibradores de la energía radiante dispersa. Control de los espectrofotómetros de absorción molecular. -Curva de Calibración: cálculo del coeficiente de posición, de pendiente, de coeficiente de correlación y factor recíproco de calibración. Principales aplicaciones en Bioquímica Clínica: Medicion de concentraciones. Identificación de longitudes de ondas útiles. -Espectrometría de luminiscencia molecular: Espectrofotometria de quimioluminiscencia molecular. TÉCNICAS DE SEPARACION -Centrifugación: Componentes de las centrífugas, Tipos de centrífugas, Técnicas de centrifugación (preparativa y analítica). Cromatografía: Terminología del Proceso Cromatográfico. Clasificación de las técnicas cromatográficas. Fundamentos básicos de la cromatografía. Tipos de cromatografía. Electroforesis.Generalidades. Componentes de un sistema electroforético. Análisis electroforético de los componentes de un espécimen. MEDICION DE LA CONCENTRACIÓN CATALITICA DE ENZIMAS: -Enzimas a nivel tisular.liberación celular. Difusión de enzimas hacia el compartimento sanguíneo y eliminación del organismo

4 -Características de las reacciones catalizadas por enzimas. Procedimientos para medir la velocidad de reacción enzimática.cálculo de la velocidad de reacción enzimática. -Factores que afectan la velocidad de reacción enzimática: Efecto de la concentración de sustrato.cálculo de Km,ki. Gráficos de Lineaweaver-Burk, Eadie Hofstee y Michaelis y Menten. Isoenzima. Efecto del ph y del tampón. Efecto de la temperatura. Cálculo de Q 10. Fracción de volumen de muestra. Reacciones acopladas. Otros factores e interacciones entre factores. Condiciones óptimas -Origen de las enzimas circulantes. Liberación celular de enzimas -Causas de la obtención de velocidades de transformación no constantes.blancos de reactivos y de muestra. -Conceptos de procedimientos de medida de referencia y procedimientos de medida recomendados.intervalos de medida. -Calibraciòn en enzimologìa clìnica:calibración con factor fisicoquímico,con materiales químicos y con materiales enzimàticos. -Enzimas de referencia. REGULACIÓN METABOLICA -Regulación del metabolismo de carbohidratos, lípidos y proteínas, mediada por enzimas y hormonas _Interrelaciones metabólicas CONTENIDOS LABORATORIO: Preparación de soluciones ph y amortiguadores: Tampones fisiológicos. Medida del ph : Disoluciones reguladoras. Precipitación isoelèctrica de la caseína Espectrofotometrìa : Espectros de Absorción y Cuantificación Colorimétrica de Biomoléculas. Espectro de absorción del o-nitrofenol,curva de calibración y determinación de la concentración de o-nitrofenol de una solución problema Espectro de Absorción de la forma oxidada y reducida del FMN Ley de Lambert-Bee : Cálculo del coeficiente de extinción molar. Determinación colorimètrica de Glucosa Cromatografía en papel de aminoácidos. Separación de aminoácidos por cromatografía en capa fina y detección mediante la reacción de ninhidrina. Cromatografía de filtración en gel de sangre. Formas Redox de la Hemoglobina. Electroforesis desnaturalizante en Geles de Poliacrilamida Estudio enzimático: Actividad enzimática y específica Curva de calibración de proteínas Curva de progreso Efecto de la concentración de sustrato en la velocidad de reacción enzimática Efecto del ph sobre la velocidad de reacción enzimática Efecto de la Tº sobre la velocidad de la reacción enzimàtica.

5 METODOLOGÍA DOCENTE Se realizarán : Sesiones teóricas 2 sesiones teóricas semanales los días Viernes de 9,40 a 12,50 hrs, consistirán en clases expositivas y el modulo de regulación metabólica se realizará en sesiones aula taller, para esto se entregará el material una semana antes del taller. Sesiones de laboratorio 3 sesiones de laboratorio semanales cada sección del curso. Sección 01 : Miércoles de 8,30 a 13,00 hrs en el laboratorio FCSI 502 Sección 02 : Jueves de 8,30 a 13,00 hrs en el laboratorio FCSI 502 Se trabajará en forma individual El laboratorio de electroforesis se realizará en horario extra a través de todo el semestre en horario de común acuerdo profesora y alumnos. Seminarios Se realizarán los días Jueves : Sección Nº1 : Jueves de 15,00 a 16,30 horas Sección Nº2 : Jueves de 16,40 a 18,10 horas. Se realizarán 2 actividades de seminario diferentes : a) Desarrollo de un tema asignado previamente a cada alumno, y será presentado de acuerdo a las fechas estipuladas en el calendario de actividades Para realizar esta actividad los alumnos deben presentarse con el tema estudiado y analizado considerando lo siguiente: introducción, fundamentos, aplicaciones, comentarios, bibliografía revisada y otros aspectos que se consideren relevantes Previo a su presentación y a lo menos con 48 horas de antelación deberà enviar un informe escrito a la doctora. pamela.cornejo@udp.cl b) Análisis de resultados de laboratorio Un alumno designado por sorteo recopilarà al final del laboratorio, los resultados obtenidos por los alumnos los que refundirà y analizarà de acuerdos a los objetivos del laboratorio y que presentarà en la fecha indicada en el programa. Calendario de Actividades Fecha Actividad Docentes MARZO Ma/06/Marzo 9,40 a 11,10 Ma/06/Marzo 11,20 a 12,50 Mi/07/Marzo JU/08/Marzo JU/08/Marzo Ju/08/Marzo Vi/09/Marzo Mi/14/Marzo Clase teórica: Introducción.Análisis del Programa.Guías de laboratorio. Distribución Actividades de la asignatura. Requisitos del curso, reglamentación y sistemas de evaluación (clase Extraordinaria) Sala: FCSII 203 Prueba Diagnóstica Libre Libre Seminario: Preparación de seminarios Seminario: Preparación de seminarios Teoría: Análisis de prueba diagnóstica y. Taller: preparación de soluciones LaboratorioNº1 : Preparación de soluciones

6 Ju/17/Marzo JU/15/Marzo Ju/15/Marzo Vi/16/Marzo Mi/21/Marzo Ju/22/Marzo JU/22/Marzo Ju/22/Marzo Vi/23/Marzo Mi/28Marzo Ju/29/Marzo JU/29/Marzo Ju/29/Marzo Vi/30/Marzo Mi/04/Abril Ju/05/Abril LaboratorioNº1 : Preparación de soluciones Seminario: Preparación de seminarios Seminario: Preparación de seminarios Teoría: Propiedades y Magnitudes. Observaciones mediciones y resultados. Procesos de medida.unidades de medida SI.Reglas ISO de escritura de números. Principios de Metodología.Variales Metrològicas que afectan los resultados de un análisis bioquìmico.magnitudes influyentes.interferencias y contaminación. Laboratorio Nº2 ph y amortiguadores. Tampones fisiológicos Laboratorio Nº2: ph y amortiguadores. Tampones fisiológicos Seminario Nº1: Métodos de Purificación de Agua.Tipos de agua. Seminario Nº1: Métodos de Purificación de Agua.Tipos de agua. Teoría: Espectrofotometría de absorción molecular.uv-vis.espectro de radiaciones electromagnéticas.espectros de Absorción y emisión.aplicaciones de las leyes de la fotometría Laboratorio Nº 3: Medida del ph : Disoluciones reguladoras. Precipitación Isoelèctrica de la Caseína Laboratorio Nº 3: Medida del ph : Disoluciones reguladoras. Precipitación Isoelèctrica de la Caseína a)seminario Nº 2:Disolventes orgánicos e inorgánicos:estructura, propiedades y definición de usos. Seminario Nº 3:Reactivos, líquidos,sòlidos,tiras reactivas : Identificación y uso. b) Análisis de resultados de laboratorio Nº2 a)seminario Nº 2 :Disolventes orgánicos e inorgánicos:estructura, propiedades y definición de usos. Seminario Nº 3: Reactivos, líquidos, sólidos, tiras reactivas : Identificación y uso. b) Análisis de resultados de laboratorio Nº2 Teoría: Función de los componentes de un espectrofotómetro.aspectos cuantitativos de la absorción molecular Ley de Lambert Beer.Limitaciones de la aplicación de la Ley de Lambert Beer. Calibradores en espectrofotometria. Calibradores de longitud de onda. Calibradores del recorrido de la radiación. Calibradores de la Absorbancia. Calibradores de la Energía Radiante Dispersa.Control de los Espectrofotómetros de Absorción Molecular Laboratorio Nº4: Espectros de Absorción y cuantificaciòn colorimètrica de biomoléculas. Espectros de Absorción del ortonitrofenol. Curva de calibración. Determinación de la concentración de ortonitrofenol de una solución problema Laboratorio Nº4: Espectros de Absorción y cuantificación colorimétrica de biomoléculas. Espectros de Absorción del ortonitrofenol.curva de calibración. Determinación de la concentración de ortonitrofenol de una solución problema

7 JU/05/Abril Ju/05/Abril Vi/06/Abril Mi/11/Abril Ju/12/Abril JU/12/Abril Ju/12/Abril a)seminario Nº 4 : Kit de reactivos especificos para cuantificación de un anabolito en un laboratorio clínico: Composición, uso, requisitos de calidad cuidados y condiciones de uso y mantención. Seminario Nº5 : Características del material de vidrio y plástico utilizado para la fabricación del material de laboratorio y pipetas mecánicas y no mecánicas (corrientes) y auxiliares de pipeteo. b)análisis resultados laboratorio Nº3 Seminario Nº 4 : Kit de reactivos especificos para cuantificaciòn de un anabolito en un laboratorio clìnico : Composición, uso, requisitos de calidad, cuidados y condiciones de uso y mantención. Seminario Nº5 : Características del material de vidrio y plástico utilizado para la fabricación del material de laboratorio y pipetas mecánicas y no mecánicas (corrientes) y auxiliares de pipeteo. b)análisis resultados laboratorio Nº3 Teoría:FERIADO Laboratorio Nº5 : Espectro de Absorción de las formas oxidada y reducida del FMN. Ley de Lambert-Beer: Càlculo del coeficiente de extinción molar Laboratorio Nº5 : Espectro de Absorción de las formas oxidada y reducida del FMN. Ley de Lambert-Beer: Càlculo del coeficiente de extinción molar a)seminario Nº6 : Balanzas de precisiòn y analíticas: mecanismo de Funcionamiento y cuidados de pesaje y mantención. b) Análisis laboratorio Nº 4 a)seminario Nº6 : Balanzas de precisión y analíticas: mecanismo de Funcionamiento y cuidados de pesaje y mantención. b) Análisis laboratorio Nº 4 Vi/13/Abril Mi/18/Abril Ju/19/Abril JU/19/Abril Ju/19/Abril Vi/20/Abril Teoría: Curvas de Calibración. Cálculo del coeficiente de posición, de pendiente,de coeficiente de correlación y factor recìproco de calibración Principales Aplicaciones en Bioquímica Clìnica : Mediciòn de concentraciones.identificación de longitudes de onda útiles. LaboratorioNº6 : Determinación de Glucosa LaboratorioNº6 : Determinación de Glucosa a)seminario Nº7 :Turbidimetría y Nefelometría : Definición,mecanismo de funcionamiento y aplicacion en el laboratorio clìnico. b)análisis del laboratorio Nº5 a)seminario Nº7 :Turbidimetría y Nefelometría : Definición,mecanismo de funcionamiento y aplicación en el laboratorio clínico. b)análisis del laboratorio Nº5 Teoría Espectrometría de Luminiscencia molecular. Espectrofotometría de Quimioluminiscencia molecular. Técnicas de Separación : Centrifugación. Componentes de las centrífugas.tipos de Centrífuga. Técnicas de centrifugación (preparativa y analítica) Cromatografía. Terminología del proceso cromatogràfico.clasificaciòn de las Técnicas cromatográficas

8 Mi/25/Abril Ju/26/Abril JU/26/Abril Ju/26/Abril Vi/27/Abril LaboratorioNº7: Cromatografía en papel Laboratorio Nº 7: Cromatografìa en papel a)seminario Nº8 : Componentes del espectrofotómetro de absorción. Tipos de Espectrofotomètros. Seminario Nº 9 :Técnicas electroquímicas.potenciometrìa. Electrodos con Membrana selectiva de iones. a)seminario Nº : Componentes del espectrofotómetro de absorción. Tipos de Espectrofotometros. Seminario Nº 9 : Técnicas electroquímicas.potenciometría. Electrodos con Membrana selectiva de iones. Teoría: Métodos de separación de proteìnas: Fundamentos básicos de cromatografía.tipos de cromatografía. Electroforesis: Generalidades.Componentes de un sistema electroforètico. Análisis electroforètico de los componentes de un espécimen. MAYO Mi/02/Mayo Ju/03/Mayo JU/03/Mayo Ju/03/Mayo Vi/04/Mayo Mi/09/Mayo Ju/10/Mayo JU/10/Mayo Laboratorio Nº 8: Separación de aminoácidos por cromatografía en capa fina Laboratorio Nº 8: Separación de aminoácidos por cromatografía en capa fina a) Seminario Nº10:Espectrofotometría de Masas.Carasterísticas y aplicaciones en Bioquímica Clìnica. b) Seminario Nº11:Floroinmunoanálisis y Quimioinmunoanálisis. c) Análisis laboratorio Nº6 y Nº7 a) Seminario Nº10:Espectrofotometría de Masas.Carasterísticas y aplicaciones en Bioquímica Clìnica b) Seminario Nº11:Floroinmunoanálisis y Quimioinmunoanálisis c) Análisis laboratorio Nº 6 y Nº7 1º SOLEMNE TEÓRICA Laboratorio Nº 9: Cromatografía de Filtración en Gel Formas redox de la hemoglobina Laboratorio Nº 9: Cromatografía de Filtración en Gel Formas redox de la hemoglobina a)seminario Nº12 :Inmunoelectroforesis, contrainmunoelectroforesis e inmunoelectroforesis cruzada. b)seminario Nº13:Isoelectroenfoque.Electroforesis bidimensional.electroforesis capilar. Ju/10/Mayo a)seminario Nº12 : Inmunoelectroforesis, contrainmunoelectroforesis e inmunoelectroforesis cruzada. b)seminario Nº13: Isoelectroenfoque.Electroforesis bidimensional.electroforesis capilar. Vi/11/Mayo Mi/16/Mayo Ju/17/Mayo Teoría: Enzimas I y II 1º CONTROL PRÀCTICO 1º CONTROL PRÀCTICO

9 JU/17/Mayo a)seminario Nº 14: Inmunofijación,transferencia,Western, Electroinmunoanálisis b)seminario Nº15: Cromatografía en fase líquida de alta eficacia(automatizada) Ju/17/Mayo a)seminario Nº 14: Inmunofijación,transferencia,Western, Electroinmunoanálisis b)seminario Nº15:Cromatografía en fase líquida de alta eficacia(automatizada) Vi/18/Mayo Mi/23/Mayo Ju/24/Mayo JU/24/Mayo Ju/24/Mayo Vi/25/Mayo Mi/30/Mayo Ju/31/Mayo JU/31/Mayo JU/31/Mayo JUNIO Teoría : Enzimas III y IV Laboratorio Nº 10. Curva de calibración de Proteínas por el Método de Bradford(azul de Coomassie). Determinación de actividad enzimàtica y especìfica. Laboratorio Nº 10. Curva de calibración de Proteínas por el Método de Bradford(azul de Coomassie). Determinación de actividad enzimàtica y especìfica. a)seminario Nº 16 Enzimoinmunoanálisis(Elisa) b) Análisis laboratorios Nº 8 y Nº9 a)seminario Nº 16 Enzimoinmunoanálisis(Elisa) b) Análisis laboratorios Nº 8 y Nº9 Teoría : Taller de enzimas Radicales libres y estrés oxidativo Laboratorio Nº11: Curva de progreso de una reacción enzimàtica Laboratorio Nº11: Curva de progreso de una reacción enzimàtica a)seminario Nº17 : Funcionamiento y Control de centrífugas,neveras, (teorico práctico) congeladores,estufas, termómetros,baños termostatizados. b)análisis laboratorio Nº10 a)seminario Nº17 : Funcionamiento y Control de centrífugas,neveras, (teórico-práctico) congeladores, estufas, termómetros, baños termostatizados. b)análisis laboratorio Nº10 Vi/01/Junio Teoría: Regulación Metabolismo de carbohidratos Mi/06/Junio Laboratorio Nº12. Efecto de la concentración del O-nitrofenol sobre la Betagalactosidasa Ju/07/Junio Laboratorio Nº12. Efecto de la concentración del O-nitrofenol sobre la Betagalactosidasa JU/07/Junio a)seminario Nº18. Control de los sistemas dispensadores y dilutores. Método (teórico-práctico) Gravimétrico y espectrofotométrico. b)análisis resultados laboratorio Nº11 Ju/07/Junio a)seminario Nº18. Control de los sistemas dispensadores y dilutores. Método (teórico-práctico) Gravimétrico y espectrofotométrico. b)análisis resultados laboratorio Nº11 Vi/08/Junio Teoría: Regulación de Metabolismo de Lípidos y Proteínas Mi/13/Junio Ju/14/Junio Laboratorio Nº13 : Efecto del ph sobre la Actividad enzimàtica de la Betagalactosidasa Laboratorio Nº13 : Efecto del ph sobre la Actividad enzimàtica de la Betagalactosidasa

10 JU/14/Junio Ju/14/Junio a) Seminario Nº19: Control de los analizadores inmunológicos. b) Seminario Nº20: Control Pureza del agua. Uso del conductímetro (teórico-práctico) c)analisis laboratorio Nº 12 a) Seminario Nº19: Control de los analizadores inmunológicos. b)seminario Nº20: Control Pureza del agua. Uso del conductímetro (teórico-pràctico c)analisis laboratorio Nº 12 Vi/15/Junio Teoría: Interrelaciones metabólicas Mi/20/Junio Ju/21/Junio JU/21/Junio LaboratorioNº 14 a)efecto de la Temperatura sobre la actividad de la Betagalactosidasa. b)análisis laboratorio Nº13, Nº14 y Nº15 LaboratorioNº 14 a)efecto de la Temperatura sobre la actividad de la Betagalactosidasa. b) análisis laboratorio Nº13, Nº14 y Nº15 a)seminario Nº 21. Comparación de métodos de cuantificación de proteínas (teórico-práctico) (Biuret, Bradford y Folín-Ciocalteau) b)seminario Nº 22.Informática en el laboratorio Clínico. Sistemas Robotizados Ju/21/Junio a)seminario Nº 21. Comparación de métodos de cuantificaciòn de proteínas (teórico-práctico) (Biuret, Bradford y Folìn-Ciocalteau) b)seminario Nº 22.Informática en el laboratorio Clínico. Sistemas Robotizados Vi/22/Junioo 2º SOLEMNE TEORICA Mi/27/Junio Laboratorio: 2º CONTROL PRÀCTICO Ju/28/Junio JU/28/Junio Laboratorio : 2º CONTROL PRÀCTICO Seminario Nº 23 Hemoglobina glicosilada Seminario Nº 24 Metabolismo de lipoproteínas Ju/28/Junio 16,40 16,10 Seminario Nº 23 Hemoglobina glicosilada Seminario Nº 24 Metabolismo de lipoproteínas Vi/29/Junio Recuperativa teórica JULIO Vi/6/Julio Examen final

11 EVALUACIÓN DEL PROCESO DOCENTE Teoría 1.Se realizarán dos pruebas solemnes escritas, que cubrirán los contenidos teóricos, en las fechas indicadas en el Calendario de Actividades. Con una ponderación 60%. 2.Los seminarios serán evaluados por medio de un control escrito que se realizará semanalmente al inicio de éste y versará sobre el o los seminarios de la semana anterior. Además se evaluará con una nota de grupo el trabajo realizado en los talleres de metabolismo de carbohidratos y de interrelaciones metabólicas, la nota de los talleres se promediará junto con la nota de los controles. Tendrá una ponderación del 20%. El alumno que llegue atrasado deberá esperar que el control termine para hacerlo motivo por el cual su inasistencia a éste tendrá calificación Nota obtenida en la presentación de los seminarios: Ponderación 20 % Laboratorio Se evaluará el trabajo de laboratorio a través de : 2 controles prácticos con una ponderación de 30% cada uno Análisis de resultados con una ponderación del 20% Cada laboratorio serà evaluado a travès de pruebas de entrada,informes,controles prácticos. Las pruebas de entrada seràn 15 minutos de duración máximo, abarcarán los temas a tratar en ese laboratorio y los anteriores.. El promedio de las evaluaciones se pondera en un 20% es obligación del alumno tener su archivador con todos los protocolos al dìa(semana a semana). Se revisará al azar y sin previo aviso pasando su calificación a constituir una nota más de las pruebas de entrada (con la misma ponderación). Al término de cada laboratorioserá obligatorio anotar sus resultados experimentales en el formato que se entregará al inicio de la actividad práctica y que deberá entregar antes de retirarse de este. EXIGENCIAS DE LA ASIGNATURA Los alumnos deberán presentarse al laboratorio, a la hora señalada, con su delantal blanco limpio, piocha de identificación, ordenados, con su pelo tomado; sin mochila y sin celular no se permitirán atrasos. Deberán traer su calculadora, la guía práctica un cuaderno donde tomar apuntes, un archivador para guardar sus protocolos de laboratorio y tener los elementos necesarios para realizar gráficos, los que pueden ser solicitados en cualquier momento, junto con los resultados de los trabajos experimentales y un lápiz para marcar tubo (indeleble). La omisión de algunos de estas exigencias no le permitirá acceder al laboratorio. El alumno que llegue atrasado alguna vez por una razón muy justificada no podrá entrar al laboratorio hasta que se haya terminado la exposición teórica del laboratorio. Una vez iniciadas las actividades prácticas no se podrá ingresar al laboratorio. REQUISITOS DE ASISTENCIA: Se exigirá el 100% de asistencia a laboratorios y seminarios y el 75% a clases teóricas La asignatura se regirá por el Reglamento de Evaluación y Promoción de los Estudiantes de Pregrado de la Facultad de Ciencias de la Salud que se encuentra en Reglamentos. Es obligación del alumno estar en conocimiento de éste

12 BIBLIOGRAFÍA -X.Fuentes Arderiu,M.J.Castiñeiras Lacambra, J.M.Queralto Compañò Bioquímica Clìnica y Patología Molecular. Vol I y II. 2º Ed..Mexico. Revertè S.A. (ultima edición). -Lenhinger, D.Albert. Principios de Bioquímica. Ed. Omega, Barcelona. (última edición) -Alberts, B.Bray,J. Biología Molecular de la célula. Ed. Omega, Barcelona(última edición) -Mc Kee, J.R., McKee, Trudy. Bioquímica. La base molecular de la vida. Ed. Mc Graw Hill. Interamericana, Devlin, T.M. Textbook of Biochemistry, with clinical correlations. Ed. Wiley Medical Publication (última edición) www2.uah.es/tejedor_bio/ Pàgina de apoyo al libro de Bioquimica de Stryer Página de apoyo al libro Bioquímica de Lehninger Manual tutelado interactivo para el estudio de la Bioquímica Nomenclatura de enzimas. Protein Data Bank Guía de estudio de la Bioquímica