FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD CARRERA DE TECNOLOGÍA MÉDICA

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1 FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD CARRERA DE TECNOLOGÍA MÉDICA ASIGNATURA: BIOQUIMICA CLINICA I PROFESOR ENCARGADO : PAMELA CORNEJO Z. DOCENTES : PAMELA CORNEJO Z. (Tecnólogo Médico, PhD) KATIA FERNÁNDEZ M. (Tecnólogo Médico, Lic) CLAUDIO RIOS ((Tecnólogo Médico, Lic) INÉS SALAZAR (Tecnólogo Médico,Mg) IDENTIFICACION DE LA ASIGNATURA Código : TEM y TEM Curso al que se imparte : TERCER AÑO Semestre en que se imparte : 1º Año académico : 2008 Prerrequisitos : TEM1018 FISIOPATOLOGIA Y TEM1052 BIOQUÍMICA Calidad : TEÓRICO Y PRÁCTICO Carácter : OBLIGATORIO Régimen : SEMESTRAL Número de sesiones semanales : 6 Teóricas: 33 % Prácticas: 66 % Número de horas académicas semanales : 12

2 DESCRIPCION DE LA ASIGNATURA Bioquímica Clínica I es una asignatura ubicada en el V semestre de la Malla Curricular de la Especialidad de Laboratorio Clínico, Hematología, y Banco de Sangre, de la Carrera de Tecnología Médica de la Universidad Diego Portales. Permitirá al alumno aplicar e integrar los conocimientos teóricos, habilidades y destrezas desarrolladas en las asignaturas básicas y de formación general con el fin de resolver problemas bioquímicos que ayuden a una mejor comprensión de los procesos metabólicos, los mecanismos de regulación, así como la fundamentación básica de las técnicas de laboratorio. El alumno podrá diseñar, realizar y evaluar protocolos experimentales. Las metodologías aplicadas cubrirán conocimientos, desarrollo de habilidades y actitudes que faciliten abordar los problemas bioquímicos con un enfoque crítico y a destacar la importancia de la rigurosidad en el trabajo de laboratorio. De esta forma se permitirá posteriormente afrontar con idoneidad y eficiencia las exigencias propias de la asignatura de Bioquímica Clínica II, las prácticas profesionales y finalmente, de su desempeño profesional, lo que se traduce en un valioso apoyo al diagnóstico clínico. OBJETIVOS GENERALES Al finalizar el curso los alumnos serán capaces de: Analizar los mecanismos de regulación del metabolismo celular, a nivel enzimático y hormonal Conocer el fundamento y manejo de los principales equipos, instrumentos y materiales utilizados en un laboratorio de bioquímica Diseñar, desarrollar y evaluar protocolos experimentales para el estudio de Proteínas y enzimas Adquirir conocimientos, habilidades, destrezas y actitudes para estandarizar las principales técnicas utilizadas en un laboratorio de bioquímica Adquirir habilidades y destrezas en control de calidad de equipos de laboratorio

3 OBJETIVOS ESPECIFÍCOS a) Cognitivos Al finalizar el curso el estudiante será capaz de: Preparar soluciones y buffer de diferente concentración Diseñar, desarrollar y evaluar curvas de calibración Estandarizar y fundamentar la aplicación de técnicas en el laboratorio Diseñar, desarrollar y evaluar protocolos experimentales Aplicar estrategias y metodologías experimentales para el estudio de proteínas y enzimas Reconocer los diferentes tipos de electroforesis, su fundamento químico y sus aplicaciones Diseñar, desarrollar y evaluar protocolos para separar proteínas del suero, utilizando electroforesis en geles de poliacrilamida Reconocer los diferentes tipos de cromatografía, su fundamento químico y sus aplicaciones Reconocer y analizar los métodos de extracción y purificación de enzimas Diseñar y realizar protocolos para determinar actividad enzimática y específica Diseñar, realizar y evaluar protocolos experimentales para el estudio del efecto de factores que afectan la velocidad de las reacciones enzimáticas Calcular velocidad inicial, velocidad máxima y Km, usando las ecuaciones y los gráficos de Michaelis Menten, Lineaweaver y Burk, y Eadie Hofstee, a partir de datos experimentales obtenidos por los alumnos Analizar los mecanismos de regulación del metabolismo de carbohidratos, lípidos y proteínas, mediados por enzimas y hormonas Reconocer las características y los métodos de obtención de muestras biológicas b) Objetivos de habilidades y destrezas Manipular muestras biológicas, aplicando la normativa de bioseguridad Adquirir destrezas y habilidades para la planificación, desarrollo y evaluación de protocolos experimentales Preparar diferentes tipos de soluciones usando diferentes expresiones de concentración y almacenarlas de acuerdo a lo establecido en los laboratorio Manejar prolijamente y con destreza los equipos, instrumentos y materiales de laboratorio c) Objetivos afectivos Demostrar honestidad y rigurosidad en las actividades propias del laboratorio Cumplir con los requisitos de la asignatura, respetando el horario asignado, la hora de entrada y uso del uniforme. Ser respetuoso con sus docentes y compañeros de estudio Desarrollar actitudes de orden, limpieza y organización en el trabajo de laboratorio Ser responsable en la aplicación y respeto de las medidas de seguridad en el trabajo de laboratorio. Reconocer la importancia de la responsabilidad en la entrega oportuna de los resultados de los experimentos de laboratorio y en el cumplimiento de la presentación de tareas asignadas

4 CONTENIDOS TEÓRICOS METROLOGIA Y QUIMIOMETRIA -Propiedades y magnitudes. Observaciones mediciones y resultados. Procesos de Medida. Unidades de Medida.Prefijos de las Unidades SI. Reglas ISO de escritura de los números. Principios de metodología -Variables metrológicas que afectan los resultados de un análisis bioquímico. Magnitudes influyentes: interferencias y contaminación. TÉCNICAS DE MEDIDA -Espectrofotometría de absorción molecular UV-VIS: Espectro de radiaciones electromagnéticas. Espectros de absorción y emisión. Aplicación de las leyes de la fotometría. Función de los componentes de un espectrofotómetro. -Aspectos cuantitativos de la adsorción molecular: Ley de Lambert-Beer. Limitaciones a la aplicabilidad de la Ley de Lambert Beer. -Calibradores en Espectrofotometría: calibradores de la longitud de onda, calibradores del recorrido de la radiación, calibradores de la absorbancia, calibradores de la energía radiante dispersa. Control de los espectrofotómetros de absorción molecular. -Curva de Calibración: cálculo del coeficiente de posición, de pendiente, de coeficiente de correlación y factor recíproco de calibración. Principales aplicaciones en Bioquímica Clínica: Medición de concentraciones. Identificación de longitudes de ondas útiles. -Espectrometría de luminiscencia molecular: Espectrofotometría de quimioluminiscencia molecular. TÉCNICAS DE SEPARACION -Centrifugación: Componentes de las centrífugas, Tipos de centrífugas, Técnicas de centrifugación (preparativa y analítica). Cromatografía: Terminología del Proceso Cromatográfico. Clasificación de las técnicas cromatográficas. Fundamentos básicos de la cromatografía. Tipos de cromatografía. Electroforesis. Generalidades. Componentes de un sistema electroforético. Análisis electroforético de los componentes de un espécimen. MEDICION DE LA CONCENTRACIÓN CATALITICA DE ENZIMAS: -Enzimas a nivel tisular. Liberación celular. Difusión de enzimas hacia el compartimento sanguíneo y eliminación del organismo -Características de las reacciones catalizadas por enzimas. Procedimientos para medir la velocidad de reacción enzimática. Cálculo de la velocidad de reacción enzimática. -Factores que afectan la velocidad de reacción enzimática: Efecto de la concentración de sustrato. Cálculo de Km, Ki. Gráficos de Lineaweaver-Burk, Eadie Hofstee y Michaelis y Menten. Isoenzima. Efecto del ph y del tampón. Efecto de la temperatura. Cálculo de Q 10. Fracción de volumen de muestra. Reacciones acopladas. Otros factores e interacciones entre factores. Condiciones óptimas -Origen de las enzimas circulante. Liberación celular de enzimas -Causas de la obtención de velocidades de transformación no constantes. Blancos de reactivos y de muestra. -Conceptos de procedimientos de medida de referencia y procedimientos de medida recomendados.intervalos de medida. -Calibración en enzimología clínica: Calibración con factor fisicoquímico, con materiales químicos y con materiales enzimáticos. -Enzimas de referencia. REGULACIÓN METABOLICA _Regulación del metabolismo de carbohidratos, lípidos y proteínas, mediada por enzimas y hormonas _Integración metabólica

5 CONTENIDOS LABORATORIO Preparación de soluciones ph y amortiguadores: Tampones fisiológicos. Medida del ph: Disoluciones reguladoras. Precipitación isoeléctrica de la caseína Espectrofotometría: Espectros de Absorción y Cuantificación Colorimétrica de Biomoléculas. Espectro de absorción del o-nitrofenol,curva de calibración y determinación de la concentración de o-nitrofenol de una solución problema Espectro de Absorción de la forma oxidada y reducida del FMN Ley de Lambert-Beer: Cálculo del coeficiente de extinción molar. Determinación colorimétrica de Glucosa Determinación de nitritos Cromatografía en papel de aminoácidos. Separación de aminoácidos por cromatografía en capa fina y detección mediante la reacción de ninhidrina. Cromatografía de filtración en gel de sangre. Formas Redox de la Hemoglobina. Electroforesis desnaturalizante en Geles de Poliacrilamida Estudio enzimático: - Actividad enzimática y específica - Curva de calibración de proteínas - Curva de progreso - Efecto de la concentración de sustrato en la velocidad de reacción enzimática - Efecto del ph sobre la velocidad de reacción enzimática - Efecto de la Tº sobre la velocidad de la reacción enzimática.

6 METODOLOGÍA DOCENTE Se realizarán: Sesiones teóricas 2 sesiones teóricas semanales los días Lunes de 8,00 a 11,20 h, consistirán en clases expositivas y el modulo de regulación metabólica se realizará con clases expositivas y taller una semana después de la clase, para finalizar el capítulo con análisis de casos clínicos. No se entregará a los alumnos copia del material audiovisual utilizado durante las clases Sesiones de laboratorio 3 sesiones de laboratorio semanales, cada sección del curso. Sección 01 : Miércoles de 8,00 a 12,50 h en el laboratorio FCSII Sección 02 : Jueves de 8,00 a 12,50 h en el laboratorio FCSII Se trabajará en forma individual El laboratorio de electroforesis se realizará en horario extra a través de todo el semestre en horario de común acuerdo profesora y alumnos. Talleres-Seminarios 1 sesión de taller-seminario semanal, cada sección del curso Sección 01: Lunes de 11,20 a 12,50 horas Sección 02: Lunes de 13,20 a 14,50 horas. Se realizarán 3 actividades de seminario diferente: a) Talleres: Cada uno de los cuales deberá ser estudiado y preparado por todos los alumnos, ya que en la sesión de taller serán elegidos al azar las personas que resolverán las preguntas y problemas del taller, esta actividad será evaluada. b) Desarrollo de un tema asignado previamente a un grupo de 4 alumnos, y será presentado de acuerdo a las fechas estipuladas en el calendario de actividades Para realizar esta actividad los alumnos deben presentarse con el tema estudiado y analizado considerando lo siguiente: introducción, fundamentos, aplicaciones, comentarios, bibliografía revisada y otros aspectos que se consideren relevantes, además estos temas deberán realizarse como un seminario teórico-práctico, es decir podrán realizar previamente pruebas de laboratorio y/o actividades demostrativas al resto del curso. Previo a su presentación y a lo menos con 48 horas de antelación deberá enviar un informe escrito a la doctora. pamela.cornejo@udp.cl. EL ENVÍO FUERA DE PLAZO SERÁ CALIFICADO CON UNA NOTA 1,0 EN SU PRESENTACIÓN E INFORME. c) Análisis de resultados de laboratorio Un alumno designado por sorteo recopilará al final del laboratorio, los resultados obtenidos por los alumnos los que refundirá y analizará de acuerdos a los objetivos del laboratorio y que presentará en la fecha indicada en el programa.

7 CALENDARIO DE ACTIVIDADES Fecha Actividad Docentes MARZO Lu/10Marzo 8,00 a 11,10 Mi/12/Marzo Ju/13/Marzo Lu/17/Marzo Lu/17/Marzo 11:20-12:50 Lu/17/Marzo Clase teórica: Introducción. Análisis del Programa. Guías de laboratorio. Distribución Actividades de la asignatura. Requisitos del curso, reglamentación y sistemas de evaluación. Teoría: Propiedades y Magnitudes. Observaciones mediciones y resultados. Procesos de medida. Unidades de medida SI. Reglas ISO de escritura de números. Principios de Metodología. Variables Metrológicas que afectan los resultados de un análisis bioquímico. Magnitudes influyentes. Interferencias y contaminación. Sección 1: Taller 1 (Metrología y quimiometría) Sección 2: Taller 1 (Metrología y quimiometría) Soluciones, soluciones amortiguadoras de ph. Propiedades de aminoácidos y proteínas Sección 1: Taller 2 (Soluciones) Sección 2: Taller 2 (Soluciones) Mi/19/Marzo Ju/20/Marzo Lu/24/marzo Lu/24/marzo 11:20-12:50 Lu/24/marzo Sección 1: Laboratorio Nº1, Preparación de soluciones Sección 2: Laboratorio Nº1, Preparación de soluciones Teoría: Espectrofotometría de absorción molecular UV-VIS. Espectro de radiaciones electromagnéticas. Espectros de Absorción y emisión. Aplicaciones de las leyes de la fotometría Sección 1: Taller 3 (Sol. Amortiguadoras de ph) Sección 2: Taller 3 (Sol. Amortiguadoras de ph) Mi/26/Marzo Sección 1: Laboratorio Nº2: ph y amortiguadores. Tampones fisiológicos Semana Caturra Ju/27/Marzo Sección 2: Laboratorio Nº2, ph y amortiguadores. Tampones fisiológicos Lu/31/Marzo Lu/31/Marzo 11:20-12:50 Lu/31/Marzo ABRIL Mi/2/abril Semana Caturra Teoría: Función de los componentes de un espectrofotómetro. Aspectos cuantitativos de la absorción molecular Ley de Lambert Beer. Limitaciones de la aplicación de la Ley de Lambert Beer. Calibradores en espectrofotometría. Calibradores de longitud de onda. Calibradores del recorrido de la radiación. Calibradores de la Absorbancia. Calibradores de la Energía Radiante Dispersa. Control de los Espectrofotómetros de Absorción Molecular Sección 1: Taller 4 (Aminoácidos y proteínas) y análisis resultados de laboratorio Nº 2 Sección 2: Taller 4 (Aminoácidos y proteínas) y análisis resultados de laboratorio Nº 2 Sección1: Laboratorio Nº 3: Medida del ph: Disoluciones reguladoras. Precipitación Isoeléctrica de la Caseína Ju/3/abril Lu/7/abril Sección 2: Laboratorio Nº 3: Medida del ph: Disoluciones reguladoras. Precipitación Isoeléctrica de la Caseína Teoría: Curvas de Calibración. Cálculo del coeficiente de posición, de pendiente, de coeficiente de correlación y factor recíproco de calibración

8 Lu/7/abril 11:20-12:50 Principales Aplicaciones en Bioquímica Clínica: Medición de concentraciones. Identificación de longitudes de onda útiles. Sección 1: Taller 5 parte 1 (Espectrofotometría) y análisis resultados de laboratorio Nº 3 Lu/7/abril Mi/9/Abril Ju/10/Abril Lu/14/Abril Lu/14/Abril 11:20-12:50 Lu/14/Abril Mi/16/Abril Sección 2: Taller 5 parte 1 (Espectrofotometría) y análisis resultados de laboratorio Nº 3 Sección 1: Laboratorio Nº4, Espectros de Absorción y cuantificaciòn colorimétrica de biomoléculas. Espectros de Absorción del ortonitrofenol. Curva de calibración. Determinación de la concentración de ortonitrofenol de una solución problema Sección 2: Laboratorio Nº4, Espectros de Absorción y cuantificación colorimétrica de biomoléculas. Espectros de Absorción del ortonitrofenol.curva de calibración. Determinación de la concentración de ortonitrofenol de una solución problema Teoría: Espectrometría de Luminiscencia molecular. Espectrofotometría de Quimioluminiscencia molecular. Técnicas de Separación: Centrifugación. Componentes de las centrífugas. Tipos de Centrífuga. Técnicas de centrifugación (preparativa y analítica) Cromatografía. Terminología del proceso cromatográfico. Clasificación de las Técnicas cromatográficas Sección 1: Taller 5 parte 2 (Espectrofotometría) y análisis resultados de laboratorio Nº 4 Sección 2: Taller 5 parte 2 (Espectrofotometría) y análisis resultados de laboratorio Nº 4 Sección 1: Laboratorio Nº5, Espectro de Absorción de las formas oxidada y reducida del FMN. Ley de Lambert-Beer: Cálculo del coeficiente de extinción molar Ju/17/Abril Sección 2: Laboratorio Nº5, Espectro de Absorción de las formas oxidada y reducida del FMN. Ley de Lambert-Beer: Cálculo del coeficiente de extinción molar Lu/21/Abril Lu/21/Abril 11:20-12:50 Lu/21/Abril Mi/23/Abril Ju/24/Abril Teoría: Métodos de separación de proteínas: Fundamentos básicos de cromatografía. Tipos de cromatografía. Electroforesis: Generalidades. Componentes de un sistema electroforético. Análisis electroforético de los componentes de un espécimen. Sección 1: Taller 6 parte 1 (Técnicas de separación) y análisis resultados de laboratorio Nº 5 Sección 2: Taller 6 parte 1 (Técnicas de separación) y análisis resultados de laboratorio Nº 5 Sección 1: Laboratorio Nº6, Determinación de Glucosa y determinación de nitritos. Sección 2: Laboratorio Nº6, Determinación de Glucosa y determinación de nitritos Lu/28/Abril Lu/28/Abril Lu/28/Abril MAYO Lu/5/mayo 1º SOLEMNE TEÓRICA Sección 1: Taller 6 parte 2 (Técnicas de separación) y análisis resultados de laboratorio Nº 6 Sección 2: Taller 6 parte 2 (Técnicas de separación) y análisis resultados de laboratorio Nº 6 Teoría: Teoría: Enzimas I y II

9 Mi/7/mayo Ju/8/mayo Lu/12/mayo Lu/12/mayo Lu/12/mayo Mi/14/Mayo Ju/15/Mayo Lu/19/Mayo Lu/19/Mayo Lu/19/Mayo Mi/21/Mayo Ju/22/Mayo Lu/26/Mayo Sección 1: Laboratorio Nº7, Cromatografía en papel Sección 2: Laboratorio Nº7, Cromatografìa en papel Teoría : Enzimas III y IV Sección 1: Taller Nº 7 (Enzimas) parte 1 y análisis resultados laboratorio Nº 7 Sección 2: Taller Nº 7 (Enzimas) parte 1 y análisis resultados laboratorio Nº 7 Sección 1: Laboratorio Nº 8: Separación de aminoácidos por cromatografía en capa fina Sección 2: Laboratorio Nº 8, Separación de aminoácidos por cromatografía en capa fina Teoría: Introducción al metabolismo intermediario Regulación Metabolismo de carbohidratos Sección 1: Taller Nº 7 (Enzimas) parte 2 y análisis resultados laboratorio Nº 8 Sección 2: Taller Nº 7 (Enzimas) parte 2 y análisis resultados laboratorio Nº 8 Sección 1: Laboratorio Nº 9, Cromatografía de Filtración en Gel Formas redox de la hemoglobina Sección 2: Laboratorio Nº 9, Cromatografía de Filtración en Gel Formas redox de la hemoglobina Taller: Regulación Metabolismo de carbohidratos Teoría: Regulación de Metabolismo de Lípidos Lu/26/Mayo Sección 1: Seminario teórico-práctico 1 y análisis resultados laboratorio Nº 9 Lu/26/Mayo Sección 2: Seminario teórico-práctico 1 y análisis resultados laboratorio Nº 9 Mi/28/Mayo Sección 1: 1º CONTROL PRÀCTICO Ju/29/Mayo Sección 2: 1º CONTROL PRÀCTICO JUNIO Lu/02/Junio Lu/02/Junio Lu/02/Junio Mi/4/junio Ju/5/junio Lu/9/junio 9,40-12,50 Lu/9/junio Taller: Regulación de Metabolismo de Lípidos Teoría: Lipoproteínas Sección 1: Seminario teórico-práctico 2 Sección 2: Seminario teórico-práctico 2 Sección 1: Laboratorio Nº 10. Curva de calibración de Proteínas por el Método de Bradford (azul de Coomassie). Determinación de actividad enzimática y específica. Sección 2: Laboratorio Nº 10. Curva de calibración de Proteínas por el Método de Bradford (azul de Coomassie). Determinación de actividad enzimática y específica. Taller: Lipoproteínas Teoría: Regulación de Metabolismo de Proteínas Sección 1: Seminario teórico-práctico 3 y análisis resultados laboratorio Nº 10

10 Lu/9/junio Mi/11/junio Ju/12/junio Lu/16/Junio Lu/16/Junio Lu/16/Junio Mi/18/Junio Ju/19/Junio Sección 2: Seminario teórico-práctico 3 y análisis resultados laboratorio Nº 10 Sección 1: Laboratorio Nº11: Curva de progreso de una reacción enzimática Sección 2: Laboratorio Nº11: Curva de progreso de una reacción enzimática Taller: Regulación de Metabolismo de Proteínas Teoría: Integración metabólica Sección 1: Seminario teórico-práctico 4 y análisis resultados laboratorio Nº 11 Sección 2: Seminario teórico-práctico 4 y análisis resultados laboratorio Nº 11 Sección 1: Laboratorio Nº12. Efecto de la concentración del o-nitrofenol sobre la betagalactosidasa Sección 2: Laboratorio Nº12. Efecto de la concentración del o-nitrofenol sobre la betagalactosidasa Lu/23/Junio Taller: Casos clínicos alteraciones metabólicas. Lu/23/Junio Sección 1: Seminario teórico-práctico 5 y análisis resultados laboratorio Nº 12 Lu/23/Junio Sección 2: Seminario teórico-práctico 5 y análisis resultados laboratorio Nº 12 Mi/25/Junio Sección 1: Laboratorio Nº13 : Efecto del ph sobre la Actividad enzimática de la betagalactosidasa Ju/26/Junio Sección 2: Laboratorio Nº13 : Efecto del ph sobre la Actividad enzimática de la betagalactosidasa Lu/30/Junio 2º SOLEMNE TEORICA JULIO Mi/2/Julio Sección 1: Laboratorio Nº 14, Efecto de la Temperatura sobre la actividad de la Beta-galactosidasa. Ju/3/Julio Lu/7/Julio Lu/7/Julio Lu/7/Julio Mi/9/Julio Ju/10/Julio Sección 2: Laboratorio Nº 14, Efecto de la Temperatura sobre la actividad de la Beta-galactosidasa. Recuperativa teórica Sección 1: Análisis resultados laboratorio Nº 13, 14 y 15 Sección 2: Análisis resultados laboratorio Nº 13, 14 y 15 Sección 1: 2º CONTROL PRÁCTICO Sección 2: 2º CONTROL PRÁCTICO Ma/15/Julio Examen final Ma/22/Julio Examen repetición

11 EVALUACIÓN DE LOS ALUMNOS Teoría 1. Se realizarán dos pruebas solemnes escritas, que cubrirán los contenidos teóricos, en las fechas indicadas en el Calendario de Actividades. Con una ponderación 70%. 2. Los talleres serán evaluados por medio de un control escrito que se realizará semanalmente al final de éste, sobre lo desarrollado en el mismo taller. Cada vez que el alumno resuelva ejercicios del taller serán evaluados con una nota que se promediará con la de los controles. Los talleres de metabolismo se evaluarán con una prueba al final de la sesión. Tendrá una ponderación del 20%. EL ALUMNO QUE LLEGUE ATRASADO DEBERÁ ESPERAR QUE EL CONTROL TERMINE PARA HACERLO, MOTIVO POR EL CUAL SU INASISTENCIA A ÉSTE TENDRÁ CALIFICACIÓN 1.0. TRES ATRASOS CORRESPONDERAN A UNA INASISTENCIA. 3. Nota obtenida en la presentación de los seminarios teórico-prácticos: Ponderación 10 % Laboratorio Actividad Porcentaje 1º Prueba solemne 35 % 2º Prueba solemne 35 % Controles taller, participación 20 % Presentación seminario Teórico- 10 % Práctico Total 100 % Se evaluará el trabajo de laboratorio a través de : 2 controles teórico-prácticos con una ponderación de 35% cada uno Análisis de resultados con una ponderación del 10% Cada laboratorio será evaluado a través de pruebas de entrada, informes, controles prácticos. Las pruebas de entrada serán 15 minutos de duración máximo, abarcarán los temas a tratar en ese laboratorio y los anteriores. El promedio de las evaluaciones se pondera en un 20% es obligación del alumno tener su archivador con todos los informes al día (semana a semana). Se revisará al azar y sin previo aviso pasando su calificación a constituir una nota más de las pruebas de entrada (con la misma ponderación). Al término de cada laboratorio será obligatorio anotar sus resultados experimentales en el formato que se entregará al inicio de la actividad práctica y que deberá entregar antes de retirarse de este. Actividad Porcentaje 1º Control teórico práctico 35 % 2º Control teórico práctico 35 % Controles laboratorio, informes 20 % Presentación análisis de resultados 10 % Total 100 % EVALUACIÓN DEL PROCESO DOCENTE Los alumnos evaluarán a los docentes a través de la plataforma de internet proporcionada por la universidad.

12 EXIGENCIAS DE LA ASIGNATURA Los alumnos deberán presentarse al laboratorio, a la hora señalada, con su uniforme completo, piocha de identificación, ordenados, con su pelo tomado; sin mochila y sin celular, no se permitirán atrasos. Deberán traer su calculadora, la guía práctica, un cuaderno donde tomar apuntes, un archivador para guardar sus protocolos de laboratorio y tener los elementos necesarios para realizar gráficos, los que pueden ser solicitados en cualquier momento, junto con los resultados de los trabajos experimentales y un lápiz para marcar tubo (indeleble). La omisión de algunos de estas exigencias no le permitirá acceder al laboratorio. El alumno que llegue atrasado alguna vez por una razón muy justificada no podrá entrar al laboratorio hasta que se haya terminado la exposición teórica del laboratorio. Una vez iniciadas las actividades prácticas no se podrá ingresar al laboratorio. REQUISITOS DE ASISTENCIA: Se exigirá el 100% de asistencia a laboratorios, taller y seminarios, y el 75% a clases teóricas BIBLIOGRAFÍA Bibliografía básica 1.- Fuentes Arderiu, X.; Castiñeiras Lacambra, M.J.; Queralto Compaño, J.M. Bioquímica clínica y patología molecular. 1a.ed Ed.Reverte. Barcelona, ISBN X. 2.- Nelson, David. Lehninger, Principios de bioquímica. 3a.ed Ed. Omega, Barcelona, ISBN Bibliografía obligatoria e imprescindible 1.- Fuentes Arderiu, X.; Castiñeiras Lacambra, M.J.; Queralto Compaño, J.M. Bioquímica clínica y patología molecular. 1a.ed Ed. Reverte. Barcelona, ISBN X. Bibliografía complementaria 1.- Alberts, Bruce. Biología molecular de la célula. 3a.ed Ed. Omega. Barcelona. ISBN X. 2.- Devlin, T.M. Bioquímica: libro de texto con aplicaciones clínicas, Ed. Reverté, Barcelona, ISBN Página de apoyo al libro de Bioquímica de Stryer www2.uah.es/tejedor_bio/ Página de apoyo al libro Bioquímica de Lehninger Manual tutelado interactivo para el estudio de la Bioquímica Nomenclatura de enzimas. Protein Data Bank Guía de estudio de la Bioquímica La asignatura se regirá por el Reglamento de Evaluación y Promoción de los Estudiantes de Pregrado de la Facultad de Ciencias de la Salud que se encuentra en Reglamentos. Es obligación del alumno estar en conocimiento de éste