Tiñas (Ringworm) en perros y gatos (24-Jun-2003)

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1 In: Recent Advances in Canine Infectious Diseases, L. Carmichael (Ed.) Publisher: International Veterinary Information Service ( Ithaca, New York, USA. Tiñas (Ringworm) en perros y gatos (24-Jun-2003) R. A. Cervantes Olivares Departamento de Microbiología e Inmunología, Laboratorio de Micología, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Autónoma de México, México DF, México. Traducido por: R. A. Cervantes Olivares, Departamento de Microbiología e Inmunología, Laboratorio de Micología, Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad Nacional Autónoma de México, México DF, México., (2-Mar- 2004). Introducción Los hongos queratinofílicos son habitantes normales del suelo, donde llevan a cabo el proceso de reciclado de los elementos queratinizados que se desprenden de los animales y el hombre (pelo, escamas de piel, uñas, cuernos, etc.) en el proceso continuo de renovación de la capa epitelial. El grupo de hongos queratinofílicos es muy amplio, dentro de este grupo solamente tres géneros, son capaces de producir infecciones en los animales y el hombre, las lesiones que producen son conocidas como "tiñas", estos hongos son conocidos como dermatofitos y los géneros son Microsporum, Trichophyton y Epidermophyton; siendo los dos primeros los que se encuentran con mayor frecuencia afectando a los animales, mientras que el tercero produce problemas principalmente en humanos [1]. Las tiñas son importantes no solo por el hecho de que afectan la piel en perros y gatos sino que también pueden ser transmitidas a otros animales y a los humanos. Esta capacidad de transmisión que muestran estos tres géneros los hace importantes aunque muy mal entendidos, tanto por los médicos como por los veterinarios de todo el mundo [2]. La clasificación de los dermatofitos de acuerdo con su hábitat fue propuesta en 1954 [3]. Se llevo a cabo un encuesta epidemiológica con muestras de piel de animales y humanos sospechosos de sufrir tiña, cuando se cultivaron los dermatofitos se les dividió en: Zoofílicos aquellos que se encontraron principalmente en animales, pero que pueden ser transmisibles a otros animales y al humano; Antropofílicos aquellos que se encontraron principalmente en humanos y son trasmitidos a otros humanos y muy rara vez a animales y Geofílicos aquellos dermatofitos que se encuentran principalmente en el suelo y de esa fuente se infectan animales y humanos. Esta clasificación la siguen utilizando varios autores [4-6] por ayudar a clarificar las fuentes de infección de las tiñas, aunque actualmente se sabe que casi todos los dermatofitos son geofílicos y el suelo es la fuente de infección de la mayoría de las tiñas [7]. Los perros y gatos pueden sufrir de tiña a cualquier edad pero es mas frecuente en animales jóvenes [8,9]. Además de la edad, los factores de riesgo incluyen, mala nutrición, sobrepoblación animal, mal manejo y la falta de un periodo adecuado de cuarentena para los animales infectados. Es de importancia señalar que las tiñas de los perros son diferentes de las de los gatos clínicamente hablando. En los perros las tiñas producen lesiones mientras que en los gatos los signos clínicos no son siempre evidentes. En gatos, es posible cultivar dermatofitos en animales clínicamente sanos que actúan solo como acarreadores de conidias sin estar infectados [10,11]. La bibliografía sobre el tema de tiñas en animales de compañía menciona grandes diferencias entre las tiñas en felinos y las tiñas de cánidos [12-14]. Por ejemplo algunos de estos informes están basados en muestras tomadas al azar en una población clínicamente sana y otros informes muestran resultados muy diferentes cuando se toman muestras de animales que presentan lesiones de tiña, aunque la proporción de infección es baja en la población abierta, el rango de infección siempre es más alto en gatos que en perros [14-16]. El cuadro 1 lista los resultados de una serie de informes que muestran una gran variación en el numero de aislamientos positivos de dermatofitos de perros y gatos en diferentes partes del mundo y con diferentes antecedentes clínicos.

2 Cuadro 1. Dermatofitos aislados de perros y gatos con ó sin lesiones Año Autor Ciudad/País # de muestras de gato # de muestras de perro % gatos positivos % perros positivos 1987 Piontelli [17] Valparaiso/Chile ,9/TD> 23,03 Animales sin lesiones 1988 Zaror [18] Valdivia/Chile ,4 18, Ali-Sthayeh [19] Israel ,7 9, Caretta [20] Pavia/Italia , Bernardo [21] Lisboa/Portugal ,3 21, Wawrkiewicz [22] Lublin/Polonia , Lewis [1] Louisiana/USA ,9 3,8 Animales con lesiones 1991 Vokoun [23] Prague/Checos Katoh [24] Tokio/Japon Sparkes [25] Bristol/UK Marchisio [6] Torino/Italia ,5 29,6 El hongo mas comúnmente aislado del pelo de perros y gatos es Microsporum canis, seguido por M. gypseum y Trichophyton mentagrophytes. Estos tres géneros son los llamados zoofílicos y son los más reportados en todo el mundo [17-19]. Signos Clínicos [20-26] Las lesiones características de las tiñas son redondeadas de borde realzado, aparecen como parches en la piel de los animales dando la impresión de que el animal fue rasurado. Pueden aparecer en cualquier lugar del cuerpo, pero se presentan principalmente en la cabeza, orejas, cola y patas delanteras. Los dermatofitos invaden el estrato corneo de la piel y/o pelo. Una vez que el hongo ha invadido el estrato corneo los folículos pilosos han sido invadidos. El microorganismo crece hacia abajo sobre la superficie del pelo utilizando enzimas queratinolíticas que permiten a la hifa romper la cutícula del pelo y llegar hasta el punto crítico que es conocido como "Borde de Adamson". Los dermatofitos solo invaden pelo que está creciendo, el pelo que esta en un estadio de reposo no es invadido ya que se necesitan de nutrientes esenciales para el crecimiento fungal que en este estadio no están presentes ó su producción es muy pobre. Las lesiones son más visibles en animales jóvenes, mientras que en adultos solo se observan lesiones discretas ó no se observan lesiones. En muchos casos se puede presentar alopecia, pero este signo puede no estar presente especialmente en gatos. La tiña en el perro se presenta como lesiones circulares alopécicas de 1 a 4 cm de diámetro, el pelo se rompe en la base de la lesión dando la impresión de que ha sido rasurado; se pueden observar costras en el centro de la lesión lo que le da una imagen polvosa, mientras que los bordes se observan realzados y eritematosos. Sí lesiones separadas se juntan se puede observar una lesión grande e irregular como la que se muestra en la Figura 1. Figura 1. Tiña causada por Microsporum canis. Sí lesiones separadas se juntan se puede observar una lesión grande e irregular. - Para ver esta imagen en su tamañ;o completo, diríjase al sitio -

3 Al inicio de la infección se pueden observar vesículas y pústulas, después es más común observar como la lesión se cubre de escamas y presenta bordes realzados. En perros, el diagnóstico diferencial incluye foliculitis, furunculosis, alopecia, infección por Demodex sp. y enfermedades autoinmunes de la piel. El animal puede presentar infecciones mixtas con parásitos ó bacterias que pueden causar una hiperpigmentación localizada. En gatos una dermatitis miliar y otras infecciones de la piel pueden parecerse a las tiñas. En el 98% de los casos de tiña en gatos se ha recobrado Microsporum canis. Métodos para el diagnóstico de las tiñas en perros y gatos [25-29] La lámpara de Wood emite luz ultravioleta en una onda entre 330 y 365 nm y se utiliza en un cuarto oscuro para examinar pelo ya que ciertos dermatofitos fluorescen con esta luz. M. canis y M. equinum muestran una fluorescencia verde amarillenta debido a la pteridina que secretan estos hongos cuando están creciendo (Figura 2). El uso de la lámpara de Wood es una herramienta útil en la clínica para pequeñas especies aunque tiene ciertas limitaciones tales como el hecho de que no todas las cepas de M. canis muestran fluorescencia, algunas pomadas y lociones pueden enmascararla y si la piel de la lesión se desinfecta con alcohol la fluorescencia puede ser mucho menos intensa ó habrá una fluorescencia muy difusa. Cuando se utilice la lámpara de Wood si se observa una fluorescencia verde amarillenta en el lugar de la lesión, puede indicar una dermatofitosis, pero si no se presenta no puede decirse que no exista infección por dermatofitos, ya que hay otras especies que pueden producir la lesión y no fluorescen (Figura 2). Figura 2. Fluorescencia del pelo de un perro infectado con M. canis utilizando la lámpara de Wood. (Con el permiso de Veterinary Bacteriology and Mycology, School of Veterinary Medicine, University of Wisconsin, USA). - Para ver esta imagen en su tamañ;o completo, diríjase al sitio - Métodos para el muestreo de perros y gatos sufriendo tiña Raspados de piel y pelos depilados son los métodos más comunes que se utilizan en todo el mundo. Son métodos simples rápidos si el animal puede ser contenido fácilmente, cosa que puede ser difícil en particular con los gatos adultos. La muestra de piel deberá ser tomada del borde de la lesión con una hoja de bisturí. El raspado debe ser muy superficial para evitar sangrado. Las muestras deben ser colectadas en un sobre de papel ó en un pedazo de papel negro- es más fácil observar las escamas de piel en un fondo oscuro -, se debe también tomar algunos pelos por depilación con pinzas. No tiene ningún valor cortar el pelo ya que las formas parasitarias de los dermatofitos (artroconidias) se encuentran en la base del pelo. Alternativamente se puede utilizar la técnica de Mackenzie [26] (Fig. 3), la cuál consiste en un cepillado profuso de la capa del animal utilizando un cepillo dental desinfectado; este es probablemente el mejor método cuando se recolectan muchas muestras de animales infectados ó cuando los animales son difíciles de controlar, por ejemplo gatos adultos. Figura 3. La técnica de Mackenzie consiste en cepillar el pelo de animal con un cepillo dental desinfectado, con el cual se inoculan medios apropiados para intentar el cultivo. - Para ver esta imagen en su tamañ;o completo, diríjase al sitio - Examen microscópico directo La forma parasitaria de los dermatofitos en los tejidos animales aparece como filamentos delgados, verdosos en los raspados de piel ó en las llamadas artroconidias dentro ó alrededor del pelo creando lo que se conoce como "sábana de esporas" [28,29]. Para poder observar estas estructuras es necesario aclarar la muestra usando una solución alcalina fuerte tal como hidróxido de sodio ó potasio (hidróxido de calcio); KOH al 10% es la más común de estas soluciones aclarantes y es usada por micólogos y clínicos (Fig. 4 y Fig. 5). Figura 4. Sábana de artroconidias (flecha) que se observa después del tratamiento de raspado de piel con KOH al 10%. Este es el método diagnóstico de tiña más utilizado por micólogos y clínicos. - Para ver esta imagen en su tamañ;o completo, diríjase al sitio -

4 Figura 5. Hifa micótica (flechas) en raspado de piel aclarado con KOH al 10%. - Para ver esta imagen en su tamañ;o completo, diríjase al sitio - Una técnica diferente que se utiliza para observar las estructuras de los dermatofitos es el método que utiliza una mezcla de hidróxido de potasio y blanco de calco flúor (CFW). El blanco de calco flúor se une a la quitina de la pared celular de los hongos y presenta una fluorescencia de verde brillante a azul, bajo luz ultravioleta cuando se utiliza un microscopio de fluorescencia. Existe una gran cantidad de fluorescencia no específica proveniente de las células del animal, así como de fibras naturales y sintéticas que pueden interferir con ésta técnica. Aunque el blanco de calco flúor resalta estructuras fungales, se debe tomar en cuenta el hecho de que reconocer estas estructuras requiere de práctica para que sea confiable el resultado [29]. Cultivo La piel de los animales esta normalmente contaminada, especialmente por esporas y conidias micóticas y bacterias. Se requiere de paciencia para obtener un aislamiento de dermatofitos que son de lento crecimiento y se requiere de usar medios que ayuden a prevenir el sobrecrecimiento de hongos saprófitos ó bacterias. Los micólogos frecuentemente utilizan una receta personal para cultivar dermatofitos, pero existen una buena cantidad de medios comerciales disponibles que contienen los ingredientes básicos. Estos incluyen: 4% de Glucosa, 1% de Peptona, 2% de agar (agar dextrosa Sabouraud ó SDA) además de quimioterapéuticos antibacterianos como son cloranfenicol ó la combinación de penicilina-estreptomicina y también cicloheximida esta ultima sirve para detener el crecimiento de hongos saprófitos de rápido crecimiento. Los géneros de dermatofitos que se han reportado en perros y gatos crecen entre 4 a 7 días a Cº (Fig. 6). Figura 6. Cultivo de M. canis. El crecimiento de dermatofitos (Microsporum y Trichophyton) es optimo a 25-28ºC con abundante crecimiento entre 4 y 7 días. - Para ver esta imagen en su tamañ;o completo, diríjase al sitio - Medio para Prueba de Dermatofitos (DTM) El uso de este medio es de gran utilidad para confirmar el aislamiento de un dermatofito. El medio para prueba de dermatofitos se vende comercialmente y es fácil de conseguir por los clínicos quienes lo usan como una ayuda para el diagnostico inicial de tiñas. El DTM tiene un indicador de ph (rojo de fenol) el cual cambia el color del medio de su color original ámbar a rojo cuando un dermatofito se desarrolla en el. Desafortunadamente existen muchos otros hongos y algunas bacterias que pueden crecer en este medio y pueden producir un cambio de ph. El estudio micológico es la única forma valida para confirmar la naturaleza del crecimiento [7]. Identificación y Caracterización de los Dermatofitos Después del aislamiento primario de un posible dermatofito, es necesario identificar a que genero y especie pertenece. El método tradicional consiste en efectuar la técnica de "Microcultivo" y aunque existen varias modificaciones a ella la más simple fue descrita por Harris [29]. Los componentes del sistema para "Microcultivo" son: una caja de Petri, una varilla de vidrio doblada en "V", un portaobjetos y un cubre objetos. Estos elementos deben de ser estériles y para preparar el sistema se coloca la varilla de vidrio y arriba se coloca el portaobjetos, se procede a cortar un bloque de aproximadamente un centímetro cuadrado de un medio limpio (SDA) con la ayuda de una espátula ó un bisturí estéril y se deposita en el centro del portaobjetos, se inocula el medio con el dermatofito sospechoso en los cuatro lados del bloque y se deposita el cubreobjetos encima del bloque. Se debe de añadir una mezcla de agua y glicerina al fondo de la caja de Petri para evitar la deshidratación del medio. Después de la inoculación, la caja de microcultivo se incuba a 25-28ºC. El crecimiento micótico debe de observarse en los puntos de inoculación y pueden eventualmente cubrir toda la superficie del bloque tanto en el cubreobjetos como en el portaobjetos. Las estructuras reproductivas (macroconidias, microconidias, hifas en espiral, etc.) son las que permiten identificar el género y especie del dermatofito de que se trate. Para finalizar el procedimiento de "microcultivo" es necesario tener un porta objetos y un cubreobjetos limpios listos para hacer observaciones usando una gota de Azul de algodón lactofenol (AAL). Se retira con el uso de pinzas el cubreobjetos del bloque con el crecimiento fungal y con cuidado se coloca sobre un portaobjetos limpio donde previamente se coloco una gota de Azul de algodón lactofenol (AAL) evitando la

5 formación de burbujas ya que estas tienden a quedar atrapadas en las partes más críticas e interesantes de la preparación, deformando el campo visual y obstruyendo una visión clara de las conidias. A continuación se levanta con cuidado el bloque de agar donde creció el hongo y se deposita en un recipiente que contenga desinfectante, el bloque debe de ser separado de la laminilla levantándolo, ya que si se arrastra se arruina la preparación. Se coloca una gota de colorante AAL en el lugar donde se observa el crecimiento y se le pone un cubreobjetos nuevo, teniendo así dos laminillas del mismo hongo para finalmente observarlo al microscopio con los objetivos de 10x y 40x. Se requiere del uso de manuales de identificación para caracterizar adecuadamente el género y la especie de un hongo. Los dos manuales de identificación mas utilizados son los de Rebell y Taplin [7] y de Mackenzie y Philpot [15]. Microsporum canis - Presenta una colonia blanca, plana, aterciopelada, que se desarrolla en 7 a 14 días. Tiene como característica un pigmento amarillo fuerte se puede observar en el reverso de la colonia en agar dextrosa Sabouraud ó en DTM. Este último medio vira del color ámbar a color rojo conforme va creciendo el hongo. Si se observa con Azul de algodón se ven hifas septadas, macroconidias abundantes de forma de quilla de barco y presentan generalmente más de seis septos. Las microconidias son escasas y pequeñas en forma de bastón, otra estructura que puede presentarse son las clamidoconidias que son redondas y refringentes [26]. (Fig 7 y Fig 8). Figura 7. Microsporum canis, se muestra las hifas septadas y numerosas macroconidias fusiformes (flecha) de pared ancha, que contienen más de 6 septos. - Para ver esta imagen en su tamañ;o completo, diríjase al sitio - Figura 8. Macroconidia y microconidia de M. canis. (Con el permiso de Veterinary Bacteriology and Mycology, School of Veterinary Medicine, University of Wisconsin, USA). - Para ver esta imagen en su tamañ;o completo, diríjase al sitio - Microsporum gypseum - Colonia plana polvorienta de color blanca-beige-canela se desarrolla a los 7 a 14 días en agar dextrosa de Sabouraud ó en DTM. Este ultimo medio vira del color ámbar a color rojo conforme va creciendo el hongo. Si se observa con Azul de algodón se ven hifas septadas y un número considerable de macroconidias de pared delgada, elípticas y que muestran menos de 6 septos. Muy pocas microconidias con pared lisa y en forma de bastón pueden estar presentes (Fig 9a). Figura 9a. M. gypseum laminilla teñida con Azul de Algodón Lactofenol en donde se aprecia las hifas septadas y las macroconidias de pared delgada y menos de 6 septos, en raras ocasiones se presentan microconidias (Con el permiso de Veterinary Bacteriology and Mycology, School of Veterinary Medicine, University of Wisconsin, USA). - Para ver esta imagen en su tamañ;o completo, diríjase al sitio - Trichophyton mentagrophytes - En agar dextrosa de Sabouraud ó DTM, se desarrolla una colonia de aspecto polvoriento más plana que la que presenta M. canis, que se desarrolla en 7 a 14 días (Fig. 9b y Fig. 9c). Al reverso de la colonia puede observarse una coloración café. En DTM el medio cambia conforme al crecimiento. Cuando se efectúa la coloración con AAL se observan hifas delgadas septadas, un gran número de microconidias redondeadas que se presentan agrupadas en racimo sobre los conidioforos, las hifas en espiral se observan frecuentemente y macroconidias en forma de cigarro ó puro se presentan en algunos cultivos. Figura 9b. Colonia de Trichophyton mentagrophytes donde se aprecia la superficie polvorienta en el medio agar dextrosa de Sabouraud. - Para ver esta imagen en su tamañ;o completo, diríjase al sitio -

6 Figura 9c. Colonia de Trichophyton mentagrophytes donde la superficie se observa algodonosa en el medio de agar extracto de levadura y fitona (PYE). - Para ver esta imagen en su tamañ;o completo, diríjase al sitio - Profilaxis Es sabido que los hongos queratinofílicos requieren de queratina para sobrevivir; por ello es importante que se retire la mayor cantidad posible de este material de los lugares donde se encuentran los animales. es común que se crea que las esporas de los hongos son muy resistentes pero no existe fundamento para esta creencia. Las esporas de dermatofitos son susceptibles a los desinfectantes mas comunes como son : cloruro de benzalconio, cloro diluido (1:10), ó detergentes fuertes. Remover mecánicamente aspirando con una aspiradora con filtros ó cepillando los lugares donde los animales infectados estuvieron seguida de una desinfección, ayuda mucho al control del problema de tiñas [30]. La clorohexidina no es efectiva como sustancia descontaminante del ambiente en este caso y el uso de corticosteroides está contraindicado. El tratamiento adecuado se fundamenta en la eliminación de la infección en un animal, previniendo la diseminación del problema por el material biológico infectante en el ambiente. Como método preventivo en perreras y criaderos de gatos así como en los hogares donde los dermatofitos han sido un problema, se deben de poner en cuarentena a los animales que van a entrar a estos lugares e intentar el cultivo de dermatofitos en todos ellos. Se debe evitar el uso de tierra sobretodo si un dermatofito geofílico está involucrado. Algunos Veterinarios utilizan un tratamiento profiláctico con griseofulvina por una ó dos semanas en animales que han sido expuestos (ver comentario abajo). Tratamiento El tratamiento de tiñas en mascotas puede ser muy caro y muy frustrante, especialmente en hogares ó criaderos con un gran número de animales. Es difícil recomendar un tratamiento universal para las tiñas de perros y gatos - el clínico debe de tomar en consideración si el animal infectado puede responder a tratamiento local con cremas antimicóticas ó si es necesario implementar un tratamiento sistémico con griseofulvina, ketoconazole u si se requiere de algún otro fármaco. En forma general el uso de cremas antimicóticas generalmente falla debido a que los perros y los gatos se quitan el fármaco lamiendo las lesiones. Además de que se sabe que el tratamiento tópico local no ayuda mucho en la recuperación y no se recomienda como la mejor opción aunque se reconoce que tiene un valor limitando la diseminación del hongo en el ambiente [31]. Los shampoos de Lima de azufre (2-2.5% solución de azufre), enilconazole (no disponible en E.U.A.) y miconazole son considerados como los agentes tópicos mas efectivos, aunque al inicio del tratamiento los signos se exacerban y los resultados han sido variables. Los fármacos para tratamiento sistémico incluyen griseofulvina, ketoconazole, itraconazole y fluconazole. Se debe de hacer notar que la griseofulvina puede causar supresión de la medula ósea con anemia y pancitopenia, así que se recomienda medir el hematocrito y células sanguíneas una vez por semana ó cada dos semanas. Es importante señalar que neutropenia es la causa mas común de muerte en gatos. De la misma manera la griseofulvina no debe utilizarse durante los dos primeros tercios de la gestación ya que tiene efecto teratogénico. El ketoconazole puede producir daño hepático e inhibir la producción de hormonas esteroides en perros y no debe ser utilizado como primera opción sino dejarlo en reserva para casos resistentes. Muchos clínicos prefieren ahora utilizar itraconazole ya que presenta menos efectos secundarios no deseados, siento tan efectivo ó mejor que el ketoconazole. Sin embargo, el itraconazole es muy caro, es una droga de los triazoles que se absorbe rápidamente cuando es ingerida con alimento. Es mejor tolerada que el ketoconazole y tiene menor efecto tóxico sobre el hígado. Se prefiere su uso en gatos. Consulte la referencia 31 para más información sobre el tratamiento. Se debe de intentar el aislamiento del agente cuando el periodo de tratamiento haya finalizado y en su caso se debe de continuar con el tratamiento hasta que los cultivos sean negativos. El pronóstico depende de lo extenso de las lesiones y de lo efectivo del tratamiento. Frecuentemente, los animales se "limpian" de infección, después de varios meses, así que el tratamiento ayuda para acelerar la convalecencia y reducir la contaminación del medio ambiente. Los gatos de pelo largo aparentemente sufren de infecciones persistentes y el tratamiento en estos casos es particularmente difícil, sobretodo si existen varios animales en la misma casa. Aunque existen varias revisiones excelentes sobre tiñas en perros y gatos [31-34] los problemas de infección por dermatofitos en medicina veterinaria aun están lejos de estar resueltos, en particular se requiere de tratamientos más efectivos.

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