Cambios anatómicos durante. formación de raíces

Transcripción

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2 Cambios anatómicos durante Dediferenciación formación de raíces Formación de nuevos sitios meristemáticos Marcado por división anticlinal Divisiones celulares iniciales Grupos de células sin polaridad, simétricas, no determinadas Divisiones laterales para formar meristema radical determinado 1500 células, simetría bilateral Crecimiento y emergencia (división y alargamiento) Unión vascular con tallo Raíz es visible

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4 Clasificación de plantas de acuerdo a facilidad de enraizamiento Fáciles de enraizar Difíciles de enraizar Recalcitrantes Ausencia de enzimas para conjugados Ausencia de activadores Presencia de inhibidores enzimáticos Ausencia de sustratos fenólicos Separación física de enzima

5 AIA vs AIB y ANA AIA es degradado por AIA oxidasa, no AIB o ANA Auxina sintéticas no son conjugadas, AIA si. AIA es fotosensible, AIB y ANA no AIA degradado por actividad microbiana AIA solo se formula en forma ácida, soluble en alcohol, puede causar quema

6 Presentación de hormonas AIB o ANA Presentaciones: Polvo, líquida o pura Pura Difícil de preparar (disolución) Polvo: Hormodin, Hormo-Root, Rootone Diferentes concentraciones Usadas en plantas no leñosas o leñosas de fácil enraizamiento Líquida: C-mone, Dip 'N Grow, Wood's Rooting Comp. Concentración alta que se diluye De mayor uso, y más efectivas en especies difíciles

7 Tipo auxina Factores que afectan enraizamiento Concentración de auxina Modo de aplicación de auxina Temperatura de solución de enraizador Genotipo ph de solución de enraizador Tiempo de exposición al enraizador Estado fisiológico del explante Edad fenológica del explante

8 a. Tipo de auxina b. Concentración de auxina

9 # primordios radicales Enraizamiento en Cordyline Cordyline sp TESTIGO 2,4 D (1,25 g/l) 2,4 D (2,5 g/l) 2,4 D (5 g/l) 2,4 D (10 g/l) AIB (1,25 g/l) AIB (2,5 g/l) AIB (5 g/l) AIB (10 g/l) ANA (1,25 g/l) ANA (2,5 g/l) ANA (5 g/l) ANA (10 g/l) tratamiento

10 apariencia Escala de evaluación Cordyline sp. TESTIGO 2,4 D (1,25 g/l) 2,4 D (2,5 g/l) 2,4 D (5 g/l) 2,4 D (10 g/l) AIB (1,25 g/l) AIB (2,5 g/l) tratamiento AIB (5 g/l) AIB (10 g/l) ANA (1,25 g/l) ANA (2,5 g/l) ANA (5 g/l) ANA (10 g/l)

11 # de raíces ANA en el enraizamiento de acodos de D. deremensis var. Janet Craig ANA ppm

12 c. Metodos de Aplicación Formulaciones en polvo Inmersión basal en solución diluida 20 a 500 ppm Inmersión rápida, solución concentrada 500 a ppm Herbáceas 150 a 500 ppm Crisantemo 400 a 500 ppm Estacas herbáceas ppm Estacas leñosas ppm Estacas difíciles a ppm

13 d. Temperatura de enraizador e. genotipo

14 Efecto de la temperatura del sustrato sobre la concentración de IBA requerida para alcanzar 100% de enraizamiento en estacas de Hbiscus cv. "Pink Versicolor" Temperatura Sustrato C Concentración IBA mg / L Carpenter y Cornell (1992)

15 Capacidad natural de enraizamiento de tres cultivares de Hibiscus rosa - sinensis L teniendo en el sustrato una temperatura de 26 C. Cultivar % Enraizamiento Pink Versicolor 73 Jim Hendry 60 Silver Anniversary 41 Carpenter y Cornell (1992)

16 Número de raíces f. ph. Malus domestica Var. Triple Red Malus domestica Var. Gala

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18 Conclusiones ph si afecta la acción de las Auxinas ph ácido es beneficioso, facilita Movimiento de AIA a través de membranas (transportadores) Determinar efecto en cada cultivo

19 g. Estado de desarrollo del explante APICE (AUXINA) RAIZ

20 H. Tipo de explante

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23 i. Efecto de la época del año

24 j. Estado del esqueje Varía según: ambiente tipo de planta tipo de regulador tipo de

25 k. Tipo de esqueje

26 Síntomas de Toxicidad Formación excesiva de callo Muerte de base del esqueje Necrosis de tallo Amarillamiento y caída del follaje Inhibición del crecimiento aéreo y radical Epinastia Deformación en ápice

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29 Causas para variabilidad de enraizamiento Condiciones ambientales y de nutrición de la planta y de los esquejes Manejo de los esquejes luego de su separación de la planta madre Concentración, método de aplicación y tipo de sustancia reguladora Interacción entre sustancias RC Edad de los esquejes

30 apariencia # primordios radicales Efecto de antagonistas de auxinas (BA) 12.0 Cordyline sp BA inhibe y no daña. 0.0 Testigo BA (50 g/l) BA (500 g/l) tratamiento 4.0 Cordyline sp Testigo BA (50 g/l) BA (500 g/l) tratamiento

31 Experimentación

32 Variables evaluadas Las estacas fueron evaluadas a los 28 y a los 56 días después de tratadas (DDT). Se midió la cantidad de raíces por estaca, la uniformidad en la distribución de las raíces y la longitud de la raíz más larga.

33 Uniformidad de emergencia Figura 2. Escala pictórica para cuantificar la uniformidad de la emergencia de las raíces alrededor del tallo. 40 %

34 Cantidad de raíces por estaca Cuadro 1. Efecto de la aplicación de distintas dosis de AIB sobre la cantidad de raíces en estacas de D. deremensis. Tratamiento AIB (mg/l) Número de raíces por estaca 28 días 56 días 0 5,72c* 8,07c 500 6,39c 8,68c ,47a 9,93bc ,51b 9,26bc ,82bc 11,19a *Letras distintas indican diferencias significativas (p 0,05)

35 Longitud de raíces por estaca Cuadro 2. Efecto de la aplicación basal de AIB en la longitud de raíces de estacas de D. deremensis. Tratamiento AIB (mg/l) Longitud de raíces (cm) 28 días 56 días 0 1,37b 10.71ab 500 2,49a 11,26a ,45a 11,10a a 9,48b a 11,19a *Letras distintas indican diferencias significativas (p 0,05)

36 Uniformidad de emergencia Cuadro 3. Efecto de la aplicación basal de distintas dosis de AIB en la uniformidad de las raíces en estacas de D. deremensis. Tratamiento AIB Uniformidad (%) (mg/l) 28 días 56 días c 79.2b b 91.7a a 92.7a bc 83.7ab c 92.7a *Letras distintas indican diferencias significativas (p 0,05)