Recursos para la puesta en marcha de un programa de Atención al niño con asma. (DT-GVR-5) ANEXO 4 PRUEBAS DIAGNÓSTICAS DE ALERGIA PRICK TEST

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1 ANEXO 4 PRUEBAS DIAGNÓSTICAS DE ALERGIA PRICK TEST Consideraciones previas y precauciones -Disponer de un ambiente tranquilo para realizar la técnica. -Informar a la familia y al paciente de la técnica a realizar, para mitigar temores. Es recomendable disponer del consentimiento por escrito y que alguno de los padres esté presente. - Preguntar por el estado de salud del paciente y medicación que toma para evitar riesgos e interferencias con los resultados. Se desaconseja realizar la prueba ante una crisis asmática, fiebre u otra situación inestable del paciente, urticaria o dermografismo activos graves, administración de fármacos que interfieran con el resultado o antecedentes de reacciones graves con esta técnica. -Todo el material para la prueba debe prepararse previamente, utilizar lancetas y extractos estandarizados, comprobar su caducidad y seguir la técnica de forma sistemática. La batería de extractos debe colocarse siempre en el mismo orden para evitar confusiones. - Tener disponible material y fármacos para actuar ante una reacción anafiláctica. Material necesario - Nevera y termómetro para registro de temperatura máxima y mínima - Extractos alergénicos: se distribuyen en frascos pequeños con cuentagotas (Figura 1). Deben conservarse refrigerados en nevera (2-8ºC) para evitar pérdida de potencia, nunca en el congelador. Existe en el mercado amplia disponibilidad de extractos de diferentes casas comerciales, pero para que la técnica sea reproducible y el diagnóstico fiable, deben utilizarse extractos de alta calidad, potencia y estabilidad conocidas, estandarizados según normas internacionales. Se puede utilizar una batería mínima de extractos, dependiendo de la sospecha por la historia clínica o el entorno ambiental, aunque algunos autores recomiendan que el prick siempre debe incluir ácaros (Dermatophagoides pteronyssinus y farinae), los pólenes más frecuentes de la zona (árboles, gramíneas y malezas), gato, perro y alternaria. No se recomienda evaluar en AP más de alergenos. - Control negativo y positivo: además de los extractos alergénicos, deben analizarse siempre otras sustancias utilizadas como controles. Habitualmente el control negativo es el

2 conservante o diluyente utilizado para los extractos alergénicos, que suele ser suero glicerosalino al 50%. Para el control positivo se emplea histamina. - Lancetas: se recomiendan utilizar lancetas desechables estandarizadas para prick (tipo Morrow-Brown), cuya punta mide 1,0 mm. - Gasas - Suero fisiológico o alcohol de 70º - Papel secante - Regla - Bolígrafo o rotulador - Cinta transparente tipo celo para calcar o redibujar el resultado de la prueba - Hoja de registro de los resultados - Temporizador Técnica 1. En niños y adolescentes se recomienda realizar la técnica en la cara palmar del antebrazo. 2. Limpiar la piel con suero fisiológico o alcohol de 70º. 3. Rotular la piel del antebrazo con una marca que identifique cada alergeno siguiendo siempre el mismo orden (Figura 2). Se puede colocar una doble fila en el mismo antebrazo o utilizar ambos antebrazos si es preciso, ya que debe existir una separación entre cada alergeno de unos 3 cm para evitar interferencias en caso de resultados de positivos. 4. Junto a cada marca (a unos 2 cm), se coloca una gota de cada extracto y de los controles con su propio cuentagotas, evitando que la punta toque la piel del paciente. Para evitar contaminaciones de los frascos o de la piel, que pudieran dar resultados falsos positivos, la primera sustancia será el glicerosalino y la última la histamina. Tras colocar cada gota, se debe cerrar el frasco antes de abrir el siguiente para no introducir, por error, el cuentagotas en un frasco distinto. 5. Después de colocar todos los extractos se realiza una pequeña punción atravesando cada gota con una lanceta distinta, perpendicular a la piel (Figura 3). Sólo deben utilizarse lancetas estandarizadas para prick con punta de 1 mm de longitud. El objetivo es asegurar la penetración del antígeno en la epidermis sin inducir sangrado.

3 6. A los 2-3 minutos se retiran las gotas absorbiendo con papel secante o gasas sin frotar. Se espera minutos hasta la lectura de los resultados. Se debe insistir en que durante este tiempo el paciente evite el rascado o manipulación de la zona. Interpretación - El resultado del prick sólo se refiere a la pápula o habón, no al eritema. Se mide y se registra su diámetro máximo (DM) y el perpendicular. (Figura 4) - Se considera positiva la reacción a un alergeno cuyo DM sea 3 mm. - El control con glicerosalino no debe dar ninguna reacción (0x0 mm) y la histamina debe tener un DM 3 mm. De este modo podemos valorar si la técnica se ha realizado correctamente, así como la variabilidad de cada sujeto. Por ejemplo en un paciente con dermografismo, un control con glicerosalino positivo nos permite descartar falsos positivos y valorar los resultados con los extractos teniendo en cuenta este dato (en este caso se considera positivo el DM 3 mm del control negativo). Al contrario, un control con histamina negativo nos induciría a pensar en una técnica incorrecta o en la posible supresión de respuesta cutánea del paciente por la administración de algún fármaco por vía sistémica o tópica. Se recomienda dibujar en la lámina transparente el contorno del tamaño la reacción y a ser posible guardarlo en la historia del paciente para comparar otros resultados en un futuro. Se debe advertir de la posibilidad muy remota de reacciones tardías. Factores que influyen en los resultados de la técnica 1. Cualificación del personal que realiza la técnica 2. Edad del paciente (menor reactividad en lactantes) 3. Ritmo circadiano (aunque sin relevancia clínica, la reacción suele ser mayor por la tarde que a primera hora de la mañana) 4. Características y zona de la piel (dermografismo puede dar falsos positivos, lesiones en la zona de dermatitis atópica u otro tipo pueden llegar a contraindicar la técnica, la zona cubital es más reactiva que la radial y la distal a la muñeca menos que la proximal). 5. Estación del año (puede observarse mayor reactividad en pacientes sensibilizados a alergenos estacionales Ej. pólenes, si se realiza el prick en dicha época. Tener en cuenta para tomar precauciones en estos casos.) 6. Inmunoterapia a largo plazo (puede disminuir la reactividad)

4 7. Medicación puede disminuir la reactividad (debe suspenderse previamente): -Antihistamínicos: astemizol (30-60 días), hidroxicina y ketotifeno (10-15 días), cetirizina, loratadina, ebastina (4-10 días), difenhidramina (1-3 días), ranitidina (24 horas). - Corticoides: sólo influye la administración tópica en dicha zona (2-3 semanas) y corticoides orales si se administran de forma prolongada. No influye un ciclo corto oral de 7-10 días ni el tratamiento inhalado. - Teofilinas y ß 2 -agonistas sistémicos (12-24 horas). No influyen los broncodilatadores inhalados. - Antidepresivos tricíclicos (7-14 días) TÉCNICA DE PRICK FIGURA 1 FIGURA 2 FIGURA 3 FIGURA 4 Imágenes procedentes Con autorización de Díaz Vázquez C.

5 IMMUNOCAP RAPID Material necesario - Nevera y termómetro para registro de temperatura máxima y mínima - ImmunoCAP Rapid se presenta en cajas que contienen 10 dispositivos individuales, un frasco con la solución reveladora, pipetas, dispositivos de tomas de muestra heparinizados y etiquetas adhesivas para indicar el resultado. Debe almacenarse a temperatura de 2-8ºC. Nunca en el congelador. Phadia es la única empresa que lo fabrica y distribuye. Se encuentran disponibles el perfil sibilancias/rinitis que analiza 8 neumoalergenos (gato, perro, abedul, olivo, artemisa, parietaria, hierba timotea) y 2 alergenos alimentarios (huevo y leche) y el perfil asma/rinitis similar al anterior salvo que sustituye los alergenos alimentarios por otros alergenos ambientales (alternaria y cucaracha). Cada dispositivo consta de un pocillo para la muestra de sangre, un pocillo para la solución reveladora y dos ventanas con tiras de membrana de nitrocelulosa que contienen 5 alergenos en cada una. Se trata de una prueba de flujo lateral que analiza de forma cualitativa (colorimétrica), la presencia de IgE específica de forma individualizada frente a cada uno de los alérgenos. - Lancetas: Es importante utilizar lancetas que proporcionen buen flujo sanguíneo. - Gasas - Suero fisiológico o Alcohol de 70º - Temporizador Técnica Se trata de una técnica in vitro sin riesgos para el paciente.el procedimiento puede comenzar después de que el dispositivo haya estado unos 2 minutos a temperatura ambiente, tiempo que suele transcurrir mientras se prepara el material (Figura 1) y se toma la muestra de sangre. El dispositivo se debe dejar en posición horizontal durante toda la prueba. 1. Aunque no es imprescindible, se puede calentar o frotar previamente la zona de puntura para favorecer el flujo sanguíneo. 2. Limpiar la piel de la yema de un dedo con suero fisiológico o alcohol de 70º. 3. Punción con la lanceta en la yema del dedo dirigiéndolo hacia abajo para facilitar el sangrado.

6 4. Recoger la muestra de sangre con el material suministrado hasta llenarlo (110 µl). Para ello se colocará éste ligeramente inclinado debajo del dedo sin tapar el orificio del émbolo. (Figura 2). 5. Vaciar toda la sangre en el pocillo del dispositivo (indicado con una imagen de una gota roja), presionando suavemente el émbolo a la vez que se tapa su orificio (Figura 3). Se debe tener la precaución de no empujar el émbolo de forma rápida para evitar que la sangre caiga fuera del pocillo. 6. Esperar 5 minutos para que se vayan empapando las tiras de nitrocelulosa. 7. Llenar la pipeta suministrada hasta la marca superior (500 µl) con la solución reveladora. 8. Colocar la solución reveladora en el pocillo para tal fin (indicado con un dibujo de un frasco). Es importante que la pipeta contacte con el fondo del pocillo para evitar la formación de burbujas y facilitar el vaciado completo. (Figura 4) 9. Esperar 15 minutos hasta la lectura de los resultados. Interpretación de los resultados La técnica no se interfiere por fármacos u otras condiciones del paciente. El resultado positivo se detecta mediante una línea de color rosa pálido a rojo junto al código del alérgeno específico. La intensidad del color está directamente relacionada con la cantidad de IgE específica circulante en la sangre del paciente, por tanto también nos permite un análisis semicuantitativo de los resultados. (Figura 5) La prueba se considera negativa si no se observa ningún viraje de color. Independientemente del resultado positivo o negativo para los distintos alergenos, siempre deben aparecer las líneas de color rosa-rojo en las zonas de control (C) de cada una de las ventanas. Ello nos indica que la prueba se ha realizado correctamente. (Figura 6)

7 TÉCNICA DE IMMUNOCAP RAPID Figura 1 Figura 2 Figura 3 Figura 4 Figura 5 Figura 6